Summary
ここでは、3Dバイオリアクターを用いて滑液間葉系幹細胞から多数のGMPグレードのエキソソームを作製するためのプロトコールを提示する。
Abstract
間葉系幹細胞(MSC)によって分泌されるエクソソームは、軟骨損傷および変形性関節症治療の有望な候補として示唆されている。臨床応用のためのエキソソームは、大規模な生産を必要とします。この目的のために、ヒト滑液MSC(hSF-MSC)をマイクロキャリアビーズ上で成長させ、動的3次元(3D)培養システムで培養しました。3D動的培養を利用することにより、SF-MSC培養上清から大規模なエクソソームを得ることに成功した。エキソソームを超遠心により回収し、透過型電子顕微鏡、ナノ粒子透過アッセイ、およびウェスタンブロッティングによって検証しました。また、エクソソームの微生物学的安全性も検出されました。エキソソーム検出の結果は、このアプローチが多数の適正製造基準(GMP)グレードのエキソソームを生成できることを示唆しています。これらのエキソソームは、エキソソーム生物学研究および臨床変形性関節症治療に利用することができる。
Introduction
関節軟骨とその根底にある骨の破壊に起因する変形性関節症(OA)は、障害につながる深刻な課題であり続けています1,2。血液と神経の供給がなければ、軟骨の自己治癒能力は一度損傷すると最小限になります3,4。過去数十年で、自家軟骨細胞移植(ACI)に基づく治療法は、OA治療においてある程度の進歩を遂げました5。軟骨細胞の単離と拡張のためには、OA関節の非体重支持領域から小さな軟骨を採取する必要があり、軟骨に損傷を与えます。また、この手順は、拡張した軟骨細胞6を移植するための第2の操作を必要とするであろう。したがって、軟骨損傷のないOA治療のためのワンステップ療法が広範囲に検討されています。
間葉系幹細胞(MSC)は、OA治療の有望な代替手段として示唆されています7,8。複数の組織に由来するMSCは、特定の刺激で軟骨細胞に分化することができます。重要なことに、間葉系幹細胞は抗炎症を介して免疫応答を調節することができます9。したがって、間葉系幹細胞は、軟骨欠損を修復し、特に炎症環境において免疫応答を調節することにより、OA治療において大きな利点を有する。OA治療では、滑液由来のMSC(SF-MSC)は、他のMSCソースよりも軟骨細胞分化能が強いため、最近注目を集めています10,11。特に整形外科クリニックでは、関節腔からの炎症性SFの抽出は、OA患者の疼痛症状を緩和するための日常的な治療法です。抽出された炎症性SFは、通常、医療廃棄物として処分される。患者と医師の両方が、炎症性SFから分離された自家間葉系幹細胞を、倫理的葛藤がほとんどないOA治療と見なす準備ができています。ただし、SF-MSC療法は、腫瘍形成のリスク、長期保存、および遠隔輸送の障壁のために損なわれます。
MSCを含む多くの細胞タイプによって分泌されるエキソソームは、親細胞の生体情報の大部分を運びます。無細胞療法として詳細に検討されている12、13。臨床試験政府(ClinicalTrials.gov)のウェブサイトで入手可能な最新のリソースによると、癌、高血圧、および神経変性疾患の研究分野で、より広範なエキソソーム臨床試験が開始され、実施されています。SF-MSCエキソソーム治療は、OAに対処するための刺激的で挑戦的な試験になる可能性があります。適正製造基準(GMP)グレードの大規模なエキソソーム生産は、臨床翻訳に不可欠です。小規模なエキソソーム単離は、2次元(2D)細胞培養に基づいて広く行われています。しかし、大規模なエクソソーム生産戦略には最適化が必要です。本研究では、ゼノフリー条件下での大量のSF-MSC培養に基づいて、大規模なエキソソーム製造方法を開発しました。細胞培養上清からの超遠心分離後、エキソソームの安全性と機能が検証されました。
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Protocol
この研究は、深セン第二人民病院の人間倫理委員会によって承認されました。 インビトロ プロトコルでhSF-MSCから単離されたエキソソームの概略図を 図1に示します。
1. ヒトSF-MSCの培養と同定
- 臨床OA患者から注射器と針を使用して20mLのSFを採取します。
- OA患者の膝関節を消毒します。膝蓋骨の外側の大腿四頭筋腱から7#針で関節腔に穿刺します。
- 関節液10mLを抽出します。輸血スティックで穿刺部位を覆い、5分間押します。
- SF上清を1,500 x g で4°Cで10分間遠心分離した後、廃棄する。
- 細胞ペレットを10 mLの1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で再懸濁し、1,500 x g で4°Cで10分間遠心分離し、PBSを廃棄します。
- ペレットを10 mLのヒトMSC培地で細胞密度5 x 104 cells/mLで再懸濁し( 材料表を参照)、懸濁液を100 mmディッシュにプレートします。
- 5%CO2を含む雰囲気下で37°Cでディッシュをインキュベートする。
- 48時間後、培地を交換して非接着細胞を除去し、1x PBSで洗浄します。3日ごとに2週間培地を交換してください。
- 細胞培養上清を採取する。
- フローサイトメトリーを用いてSF-MSCを同定します。
- 第3世代(P3)のSF-MSCを消化し、1,000 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 上清を捨て、細胞ペレットを回収する。
注:継代は、別の培養皿への細胞の継代培養として認識されます。SFから単離され、ディッシュに播種された初代細胞は、継代ゼロ(P0)としてラベル付けされます。約75%のコンフルエントで、細胞は消化され、ディッシュから切り離され、他のディッシュに播種され、P1として標識されます。 - 400 μLのブロッキングバッファー(1x PBS中の1%BSA)をセルペレット(5 x 104)に加え、室温(RT)で15分間静置します。
- 1,000 x g で4°Cで5分間遠心分離し、上清を廃棄し、ペレットを100 μLの1x PBSに再懸濁します。
- チューブあたり1 μLのCD105、CD73、CD90、CD45、CD34、HLA-DRモノクローナル蛍光抗体(希釈比1:100)( 材料の表を参照)を加え、RTで30分間インキュベートします。
- 1x PBSで2回洗浄し、上清を廃棄します。細胞ペレットを回収し、100 μLの1x PBSに再懸濁します。
- 525/50および585/40のフィルターを使用して最大10,000個の細胞をフローサイトメーターで検出し、蛍光色素を検出します。
- 第3世代(P3)のSF-MSCを消化し、1,000 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 上清を捨て、細胞ペレットを回収する。
2.3Dバイオリアクター細胞培養
- マイクロキャリアの調製
- 乾燥した0.75 gのマイクロキャリア( 材料の表を参照)を膨潤させ、1xダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)(50 mL / gのマイクロキャリア)でRTで少なくとも3時間水和します。
- 上清をデカントし、新鮮なDPBS(50 mL/gのマイクロキャリア)でマイクロキャリアを5分間洗浄します。PBSを廃棄し、新しい1x DPBS(50 mL / gのマイクロキャリア)と交換します。
- マイクロキャリアをオートクレーブ滅菌(121°C、15分、15psi)します。滅菌したマイクロキャリアを沈降させ、上清をデカントします。
- 培養液中のマイクロキャリア(50 mL/gのマイクロキャリア)をRTで短時間すすぎ、マイクロキャリアを沈降させ、上清を廃棄します。
- 灌流バイオリアクター
- オートクレーブ(121°C、15分、15psi)によってバイオリアクターを滅菌します。
- SF-MSCの数を数え、GMPグレードのMSC培養液(250 mL)を灌流したバイオリアクターに2.5 x 107 SF-MSC とマイクロキャリアを割り当てます。
- バイオリアクターを37°Cで5%CO2 の入ったインキュベーターに入れる。 バイオリアクターを15rpmの速度で回転させます。6日ごとに培地を交換してください。
- 14日間の培養後、さらなる分析のために細胞培養上清とマイクロキャリアを収集します。
3. エクソソーム同定と安全性検出
- 超遠心
- 細胞培養上清を300 x g で4°Cで10分間遠心分離し、上清を回収します。細胞の破片を捨てます。
- 上清を2,000 x g で4°Cで10分間遠心分離し、上清を回収します。より大きな小胞(アポトーシス小体といくつかの大きな微小小胞)を捨てます。
- 上清を10,000 x g で4°Cで30分間遠心分離し、より大きな小胞を除去します。ペレットを収集し、40 mLの1x PBSに再懸濁します。
- 再懸濁したペレットを120,000 x g で4°Cで70分間遠心分離し、上清を廃棄し、エキソソームを含むペレットを500 μLの1x PBSに再懸濁します。
- ナノ粒子追跡分析(NTA)
注:各実行について、500 μLのサンプルを30 μL/分の流速でチャンバーに注入しました。24.4°C〜24.5°Cで分析を実行します。- 新たに単離したエキソソームサンプルを滅菌1x PBSで107-10 9 / mLの粒子を含む1 mLに希釈し、ナノ粒子追跡分析システムに注入します( 材料の表を参照)。
- メーカーのプロトコルに従って、キャプチャおよび分析システムを手動で設定します。レーザー光散乱によって粒子を視覚化し、デジタルビデオでブラウン運動をキャプチャします。
- 実行ごとに少なくとも200個の個々の粒子を追跡することに基づいて、ソフトウェア( 材料表を参照)を使用して記録されたビデオテープを分析します。
- 透過型電子顕微鏡
- エキソソームを4%パラホルムアルデヒド(冷たい1x DPBS)で5分間固定します。
- 5 μLのエキソソームを銅グリッドにマウントします。この実験では、エクソソームの濃度はタンパク質アッセイキットによって1 mg / mL定量されます( 材料の表を参照)。
- エキソソームを3%リンタングステン酸に氷上で10分間埋め込みます。余分な酸を取り除き、RTでサンプルを乾燥させます。
- エキソソームサンプルをTEMにより加速電圧100kVでイメージングします。
- ウェスタンブロッティング
- 300 μLの溶解バッファー(1% Triton X-100、0.1% SDS、0.1 M Tris HCl、pH 7)およびプロテアーゼ阻害剤カクテル( 材料の表を参照)をエキソソームに加えます。
- エキソソームを溶解バッファー中で上下にピペッティングして混合し、氷上に20分間静置します。
- 混合物を9,391 x g で4°Cで10分間遠心分離し、上清を回収します。タンパク質アッセイキットを使用してタンパク質濃度を測定します( 材料表を参照)。
- 100 μLの4xタンパク質ローディングバッファーを加え、100°Cで10分間加熱します。
- 15 μLのタンパク質を10 mg/mLの濃度でロードし、ゲル電気泳動(120 V、70分)および100 V、4°Cで60分のエレクトロブロッティングで実行します。
- 非エキソソーム特異的マーカー(カルネキシン)およびエキソソームバイオマーカー(CD9、CD63、およびCD81)を蛍光ウェスタンブロッティングで検出します( 材料の表を参照)。
- 安全性試験
- 細菌、真菌、結核 菌 を検出するには、手順3.5.2〜3.5.5に従います。
- 100 μLのエキソソーム溶液(1 mg/mL)を血液寒天培養プレート( 材料表参照)に播種し、培養プレートを37°Cで24時間インキュベートします。
- 100 μLのエキソソーム溶液(1 mg/mL)をサブロー寒天培地プレート( 材料の表を参照)に播種し、35°Cで48時間インキュベートします。
- 100 μLのエキソソーム溶液(1 mg/mL)をローウェンスタイン・ジェンセン培養培地プレート( 材料の表を参照)に播種し、37°Cで3週間インキュベートします。
- 細菌、真菌、 結核菌 群のコロニーの出現を巨視観察により検出します。
注:エクソソームの安全性を評価するための基準は、培養プレート上に微生物が存在しないことです。 - マイコプラズマを検出するには、手順3.5.7〜3.5.9に従います。
- キットに含まれている50 μLの緩衝液にエキソソームを再懸濁し、95°Cで3分間加熱します。
- PCRマイコプラズマ検出キットを使用して、エキソソーム溶液中のマイコプラズマを増幅します(材料の表を参照)。
- 1.5% アガロースゲル電気泳動 (30 分、120 V) で PCR 産物を検出します。
4. インビトロ エクソソーム機能検出
- エキソソーム標識
- 100 μLのエキソソーム(1 mg/mL)を1 mM Dil(1000x)で標識し( 材料の表を参照)、RTで30分間インキュベートします。
- 100,000 x g で70分間の超遠心によりエキソソームを回収します。ペレットを500 μLの1x PBSに再懸濁します。
- Cy3-miR-140模倣体のエキソソームへの装填
- 1 μg/μLのエキソソームタンパク質と5 μmol/mLのCy3-miR-140を最終容量400 μLのエレクトロポレーションバッファー(1.15 mMリン酸カリウム(pH 7.2)、25 mM塩化カリウム、21%(v/v))に混合します( 材料の表を参照)。
- 混合物を冷たい0.4 cmエレクトロポレーションキュベットに移し、遺伝子トランスフェクションシステムを使用して300 V/100 μFの容量でエレクトロポレーションします(材料の表を参照)。
- エレクトロポレーションの直後に、混合物をRTで30分間維持して、エキソソーム膜が完全に回復することを確認します。
- 混合物を1単位のRNase A( 材料の表を参照)で20分間処理して、エクソソーム外のmiRNA模倣物を除去します。
- エキソソーム混合物を120,000 x g で90分間超遠心し、上清を廃棄して、500 μLの1x PBSにエキソソームを再懸濁します。
- エキソソーム取り込みアッセイ
- 軟骨細胞(1 x 107)を35 mmの共焦点ディッシュに、10%FBSを含む1 mLのDMEM/F12で播種します。
- 24時間後、軟骨細胞をDiI標識エキソソーム(100 ng / mL)またはcy3-miR-140ロードエキソソーム(100 ng / mL)で1時間処理します。
- 1x PBSで3回洗浄した後、DAPI(10 ng / mL)でRTで10分間ラベルを付けます。
- 適切なフィルターを使用して、共焦点レーザー走査型蛍光顕微鏡(CLSM)で蛍光信号を記録します(材料表を参照)。
5.統計分析
- 適切な統計ソフトウェアを使用して統計分析を実行します。
注:各図の代表データは、SD±平均値として表した。スチューデントのt検定は、統計ソフトウェアを使用して2つのグループを比較するために使用されました。一元配置分散分析とそれに続くテューキーの多重分布は、複数のグループ間の比較の場合に実行されました。P 値は <0.05 (*)、<0.01 (**)、または <0.001 (***) です。
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Representative Results
フローサイトメトリーは、国際細胞療法学会が推奨するヒトMSCを定義するための最小限の基準に従って、SF-MSCの表面マーカーを同定するために使用されました14,15。フローサイトメトリー解析の結果、本研究で培養したSF-MSCsがMSCの同定基準を満たしていることが明らかになりました。CD34、CD45、およびHLA-DRは陰性(3%未満)、CD73、CD90、およびCD105(95%以上)は陰性でした(図2)。
倒立顕微鏡下では、SF-MSCがマイクロキャリア上で増殖することが注目されました(図3A)。2D培養プレートおよび3D培養マイクロキャリアから細胞を消化洗浄した後、細胞数をカウントした。2D培養と比較して、3D培養はSF-MSCを6日以降より迅速に増殖させました(図3B)。3つの独立した実験の結果が発表されました。
2Dおよび3D培養のSF-MSCからエクソソーム(Exos)を同定するために、エキソソーム関連タンパク質(CD63、CD9、およびCD81)および陰性タンパク質(カルネキシン)をウェスタンブロッティングを使用して検出しました。結果は、2D-Exosおよび3D-ExosがCD63、CD9、およびCD81を発現する一方で、カルネキシンに対して陰性であることが明らかになりました(図4A)。また、エキソソーム径および形態をNTAおよびTEMを用いてアッセイした。ナノサイト分析により、2D-エクソ(図4B)と3D-エクソ(図4D)の直径は約120 nmであることが実証されました。透過型電子顕微鏡分析により、2D-Exosと3D-Exosの形態が明らかになり、おおよそ回転楕円体小胞が示されました(図4C、E)。
3D培養後、30〜160nmサイズの粒子の粒子濃度は、NTAを用いて分析した1mLあたり4.0×106 である。しかしながら、2D培養後、30〜160nmの粒子の粒子濃度は、1mL当たり 2.5×106である(図5A)。培地中のエキソソームタンパク質収率を計算すると、3D培養は2D培養よりも多くのエキソソームタンパク質を産生した(図5B)。したがって、2D培養と比較して、3D培養はエキソソーム収量を有意に高めた。
エキソソームを最初にディルで標識し、次に軟骨細胞とともに10 μg/mLの濃度で1時間、2時間、および3時間インキュベートして、エクソソームがin vitroで初代軟骨細胞に入ることができるかどうかを調べました。ジル標識エキソソームは初代軟骨細胞に入り、3時間後にピークが見られました(図6)。
ナノキャリアとしてのエクソソームの機能を検出するために、エクソソームにエレクトロポレーションによってCy3標識miR-140をロードし、10 μg/mLの濃度の軟骨細胞で3時間処理しました。結果は、エクソソームが軟骨細胞にmiR-140を送達できることを示しました(図7)。すべての結果は仕様を満たしていました。すべてのサンプルは無菌であり、マイコプラズマに対して陰性でした。
図1: インビトロでhSF-MSCから単離されたエキソソームの模式図。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図2:フローサイトメトリーによるSF-MSCの同定。フローサイトメトリーは、hSF-MSCの陽性または陰性の免疫表現型を示します。 (a)IgG1アイソタイプコントロール抗体による標識。(B)CD73が陽性であり、CD34が陰性である。(C)CD90が陽性であり、CD45が陰性である。(D)CD105が陽性であり、HLA-DRが陰性であり、MSCマーカーとして知られている。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図3:SF-MSCの成長曲線。 (A)倒立顕微鏡下でのマイクロキャリア上のSF-MSC(赤い矢印)を示す代表的な画像(スケールバー=100μm)。(B)2Dおよび3D培養下でのSF-MSCの成長曲線。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図4:エキソソームの同定 。 (A)2D-エクソおよび3D-エクソのウエスタンブロッティング結果。(B)2D-エクソと3D-エクソの直径のナノサイト解析。(C)2D-エクソおよび3D-エクソの形態のTEM検出。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図5:3Dバイオリアクター培養によるエキソソーム産生の収率の向上 。 (A)NTAで分析したエキソソームサイズの代表的な結果。(B)タンパク質収量=エキソソームタンパク質(μg)/馴化培地(mL)。プロットは、各方法の収量とすべての測定値の平均±SDを示します(** p< 0.01)。統計的比較は、一元配置分散分析と事後ボンフェローニの補正、およびスチューデントの t検定によって実行されました。** p< 0.01は有意差であると考えられた。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図6初代軟骨細胞によるディル標識エキソソームのインターナリゼーションを示す代表的な画像。 軟骨細胞をディル標識エキソソームと共に1時間、2時間、および3時間インキュベートした。エキソソームはディル(赤)で標識され、核はヘキスト(青)で標識された。サンプルは60倍の倍率で検出されました。スケールバー = 10 μm。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図7:MSCエキソソームによるmiR-140の インビトロ 送達。 SF-MSCs由来エキソソームに封入されたCy3標識miR-140を取り込み後、軟骨細胞を画像化した。スケールバー = 10 μm。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
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Discussion
間葉系幹細胞は、その自己複製、特殊な機能を有する組織細胞への分化、およびパラクリン効果により、再生医療において広く利用されてきた16,17。特に、エクソソームが及ぼすパラクリン効果が大きな注目を集めている18。エクソソームは間葉系幹細胞の生体情報を運び、その生物学的機能を果たし、面倒な保管や出荷などのMSCの欠点を克服します。このように、間葉系幹細胞由来のエクソソームは、OA療法において最も注目されている治療介入に用いられている。
現在、MSCを増殖させるには、2D培養と3次元(3D)培養の2つの方法があります19。2D培養は、低コストでin vitro研究用のMSCを培養する従来の方法です。ただし、時間がかかり、規模の可能性が限られています。また、2D微小環境でのMSCの伝播は、MSCの最も重要な特性の1つであるステムネス20,21を迅速に推定します。したがって、2D培養はMSC療法の要件を満たすことができません。本研究では、OA治療におけるSF-MSCを目指して、生体微小環境をより正確に模倣できる3次元バイオリアクターの培養を用いてSF-MSC特性の維持に努める。最近、他の研究者がスキャフォールドまたはマイクロキャリアベースの3Dを使用してMSCを培養しています。我々は、3Dコラーゲン足場が、2D培養よりもヒト骨髄由来MSCによって産生されるより濃縮されたエクソソームを可能にすることを見出した23。
エクソソームは、間葉系幹細胞の欠点を回避しながら、MSC機能の大部分を発揮できるため、OA療法用のエクソソームの作製を目指しています。本研究では、3D培養の大量かつ高品質のMSC増殖に基づいて、このシステムを使用してエキソソームの産生および送達機能をさらに検出しました。ロータリー細胞培養システム(RCCS)を3D培養に使用し、大規模なMSC増殖からエキソソームを生成しました。従来の2Dフラスコ培養と比較して、この3D培養システムは、培地交換と細胞継代の繰り返しによる汚染を回避できます。さらに重要なことに、この研究は、3Dバイオリアクターが臨床研究の要件を満たすためにエキソソーム産生を強化できることを示しました。注目すべきは、3D培養上清から単離されたエクソソームはmiRNAを細胞に送達することができ、3D培養がエキソソーム機能を妨げないことを示唆しています。微生物およびエンドトキシンの検出結果は、この研究が生物学的に安全でOA療法に有望なエキソソームを産生できるプロトコルを確立したことをさらに裏付けています。現在、この研究で生産されたエキソソーム量は商業的ニーズを満たすことができません。したがって、膨大な量のエキソソーム生産のための戦略を開発する必要があります。
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Disclosures
著者は、競合する経済的利益はないと宣言しています。
Acknowledgments
中国国家自然科学基金会(第81972116号、第81972085号、第81772394号);広東省自然科学財団の主要プログラム(No.2018B0303110003);広東省国際協力プロジェクト(No.2021A0505030011);深セン科学技術プロジェクト(No.GJHZ20200731095606019、いいえ。JCYJ20170817172023838, No.JCYJ20170306092215436, No.JCYJ20170413161649437);中国ポスドク科学基金会(No.2020M682907);広東省基礎応用基礎研究財団(No.2021A1515010985);深センの三明医学プロジェクト(SZSM201612079);広東省の高レベル病院の建設のための特別基金。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| BCA assay kit | ThermoFisher | 23227 | Protein concentration assay |
| Blood agar plate | Nanjing Yiji Biochemical Technology Co. , Ltd. | P0903 | Bacteria culture |
| CD105 antibody | Elabscience | E-AB-F1243C | Flow cytometry |
| CD34 antibody | Elabscience | E-AB-F1143C | Flow cytometry |
| CD45 antibody | BD Bioscience | 555483 | Flow cytometry |
| CD63 antibody | Abclonal | A5271 | Western blotting |
| CD73 antibody | Elabscience | E-AB-F1242C | Flow cytometry |
| CD81 antibody | ABclonal | A5270 | Western blotting |
| CD9 antibody | Abclonal | A1703 | Western blotting |
| CD90 antibody | Elabscience | E-AB-F1167C | Flow cytometry |
| Centrifuge | Eppendorf | Centrifuge 5810R | |
| CO2 incubator | Thermo | Cell culture | |
| Confocal laser scanning fluorescence microscopy | ZEISS | LSM 800 | |
| Cytodex | GE Healthcare | Microcarrier | |
| Dil | ThermoFisher | D1556 | Exosome label |
| EZ-PCR Mycoplasma detection kit | BI | 20-700-20 | Mycoplasma detection |
| Flowcytometry | Beckman | MSC identification | |
| Gene Pulser II System | Bio-Rad Laboratories | 1652660 | Gene transfection |
| GraphPad Prism 8.0.2 | GraphPad Software, Inc. | Version 8.0.2 | |
| HLA-DR antibody | Elabscience | E-AB-F1111C | Flow cytometry |
| Lowenstein-Jensen culture medium | Nanjing Yiji Biochemical Technology Co. , Ltd. | T0573 | Mycobacterium tuberculosis culture |
| MesenGro | StemRD | MGro-500 | MSC culture |
| Nanosight NS300 | Malvern | Nanosight NS300 | Nanoparticle tracking analysis |
| NTA 2.3 software | Malvern | Data analysis | |
| Odyssey FC | Gene Company Limited | Fluorescent western blotting | |
| OptiPrep electroporation buffer | Sigma | D3911 | Gene transfection |
| Protease inhibitors cocktail | Sigma | P8340 | Proteinase inhibitor |
| RNase A | Qiagen | 158924 | Removal of RNA |
| Sabouraud agar plate | Nanjing Yiji Biochemical Technology Co., Ltd. | P0919 | Fungi culture |
| TEM | JEM-1200EX | ||
| The Rotary Cell Culture System (RCCS) | Synthecon | RCCS-4HD | 3D culture |
| Ultracentrifuge | Beckman | Optima XPN-100 | Exosome centrifuge |
References
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