Summary
在这里，我们描述了一个简单的协议，通过放大VNTR轨迹 D1S80 从上皮细胞DNA生成DNA指纹配置文件。
Abstract
在生物科学中，DNA指纹被广泛用于亲子鉴定、法医应用和植物学研究。在这里，我们描述了一个可靠和可靠的方法，通过在本科实验室课程的背景下，通过可变的串联重复数 （VNTR） 分析对个体进行基因化。本协议中将人类 D1S80 VNTR 轨迹用作基于重复序列数数变化的高度多态标记。
这个简单的协议为教师和在实际实验室课堂上实施DNA指纹传递有用的信息。在介绍的实验室练习中，DNA提取后进行 PCR 放大，用于确定 D1S80 VNTR 轨迹的遗传变异。PCR 产品的碎片大小差异通过糖凝胶电泳可视化。片段大小和重复数字根据DNA大小标准的大小和迁移距离的线性回归进行计算。
按照本指南，学生应能够：
• 从布卡尔粘膜上皮细胞中收获和提取DNA
• 执行 PCR 实验并了解各种反应组件的功能
• 通过糖凝胶电泳分析放大器并解释结果
• 了解 VNTR 在 DNA 指纹中的应用及其在生物科学中的应用
Introduction
分子指纹，也被称为DNA指纹，是由亚历克·杰弗里斯爵士在1984年1月在莱斯特大学遗传学系工作时引入的。它基于人类基因组的0.1%，这些基因组因人而异，由大约300万个变种组成。基因型的这些独特差异允许个体之间的差异，因此可以作为遗传指纹，除了单卵双胞胎。因此，DNA指纹用于估计不同个体的相关性，例如在亲子鉴定或人口多样性研究中应用。在我们的实验室课程中，我们旨在传达DNA指纹和等位基因频率的概念。此处描述的方法通过分析 D1S80 轨迹中的串联重复 （VNTR） 的可变数量，演示了可靠而可靠的遗传指纹识别方法。该方法包括从布卡尔粘膜上皮细胞中提取DNA和随后的聚合酶链反应 （PCR）， 以放大 D1S80 轨迹，然后可视化 agarose 凝胶上的片段长度差异。
D1S80 VNTR小型卫星轨迹变化很大，位于1号染色体（1p36-p35）的端粒区域。1990年，Karsai和同事将其识别并描述为核心重复单元为16 bp的轨迹，允许将等位基因只分离一个单元2。此外，D1S80显示高度变化，突变率约为7.77 x 10-53。D1S80具有高度的异质性4，5（例如，80.8%的异质性为白种人6和高达87%的异质性为非裔美国人7）。此外，D1S80轨迹在大多数人群中是多态的，通常超过 15 个不同的等位基因，每个等位基因具有 14 到 41 个重复。D1S80等位基因的频率因种群而异。有24个重复单元的等位基因（等位基因24）在欧洲和亚洲人口中最为常见，而等位基因21在欧洲4、7、8、9、10等非洲人群中最为常见。因此，等位基因频率分布是针对不同人群的诊断，需要考虑到相关性的估计（例如，在亲子鉴定中）。
基于PCR的D1S80 VNTR轨迹的放大在法医科学、亲子鉴定、疾病分析和人口多样性研究11、12、13、14等方面都是非常有用的方法。虽然在今天法医中，VNTR的使用已被短串联重复所取代，但D1S80 VNTR轨迹被广泛用于确定4、8、9、11种人群之间和之间的起源和遗传关系。此外，它经常用于教授DNA指纹在实际实验室类15，16。此处描述的方法代表一种坚固、经济高效且易于使用的方法，在本科实验室课程中成功率非常高。本文的目的是为从布卡尔粘膜上皮细胞中对人类D1S80小型卫星轨迹的分子分析提供工作流程的概述。它包括技术演示，简化的协议和实际建议，在以前出版的作品2，17描述。
Protocol
注：此协议仅在学生或各自的法定监护人同意执行此协议时使用，因为基因特征特征有助于深入了解遗传关系。DNA指纹是一种常见的分子生物学方法，主要应用于人口研究和法医研究。因此，应注意尽可能降低污染风险。为了避免用来自外部来源或 DNases 的 DNA 污染样品，应佩戴手套，对仪器进行彻底清洁或消毒，并在使用前对溶液进行过滤消毒或自动切割。
1. 收获布卡尔粘膜上皮细胞
注意：与唾液和上皮细胞合作可导致传染病的传播。因此，应采用标准和基于传输的预防措施（例如使用适当的个人防护设备）。
注：包括由讲师提供的正对照（例如，讲师提取的DNA），并包含在下游处理步骤中。
- 在采集标本之前，在进食或刷牙后至少等待1小时。
- 标记一个空的和无菌的2.0 mL微中微管。
- 从包装中取出一个无菌布卡拭子，在脸颊内侧大力摩擦30-40次或30-40秒，以收获布卡穆科萨上皮细胞。
- 将收集拭子的尖端放入先前标记的无菌微中冲管中，并用手或使用无菌剪刀打破延伸至边缘以外的塑料长度。
- 将盖子安全地放在管子上，将收集的拭子密封在里面。
2. 从人类细胞中提取基因组DNA
- 提取前，将热搅拌机或加热块设置为 65 °C 以进行样品裂解。
注意：使用的某些化学品属于危险类。仔细阅读安全数据表，在处理前采取相应的安全措施。- 通过过滤或自动过滤所有所需的缓冲和溶液（裂解溶液、8 M 醋酸钾、2 丙醇、70% 乙醇和洗脱缓冲器）来准备和消毒。
注意：除非指定，否则所有离心步骤应在室温（20-30 °C）下执行。
- 通过过滤或自动过滤所有所需的缓冲和溶液（裂解溶液、8 M 醋酸钾、2 丙醇、70% 乙醇和洗脱缓冲器）来准备和消毒。
- 在吸血拭子中加入 500μL 的裂解溶液（50 mM Tris/HCl，pH 8.0;10 mM 四乙酰胺四乙酸乙烯酸;2% 硫酸钠 （SDS）），确保样品完全浸入裂解溶液中。
- 涡流大力至少5s。
- 在热混合器中以 65 °C 的温孵化样品 10 分钟。
- 在孵化过程中，通过脉冲涡流混合样品 3-4 次，进行 5 s。
- 从裂解缓冲区中取出拭子，将拭子压在管子内部，以获得最大样本量。
- 在解体细胞中加入100微升的8M醋酸钾。
- 通过倒置管子彻底混合，直到有一个白色沉淀物。
- 在室温下孵化5分钟。
- 在 18，000 x g下将样品离心 5 分钟。
- 将超自然的 450 μL 转移到清洁无菌的 1.5 mL 微中微富格管中。
- 加入450微升的2丙醇，通过倒置管（DNA的沉淀）彻底混合。
- 在室温下孵化5分钟。
- 离心机5分钟，18，000 x 克。
- 丢弃超自然剂，将管子倒置在干净的纸巾上，以干燥颗粒，避免交叉污染。
- 在加热块中以 65 °C 将 DNA 孵化 5 分钟，以完全干燥颗粒。
- 要清洗DNA，添加500微升的70%乙醇。
- 离心机1分钟，18，000 x 克。
- 丢弃超自然剂，将管子倒置在干净的纸巾上，以干燥颗粒。
- 在颗粒中加入 30μL 的悬念缓冲（10 mM 三轮/HCl pH 8.0，1 mM EDTA）。
- 在加热块中以 65 °C 将 DNA 孵化 10 分钟，以激活 DNases。
3. 使用 PCR 放大 D1S80 VNTR 轨迹
注：在收集必要的塑料和其他材料之前，记录将要使用的样品数量，并用所需的试剂及其体积准备工作表。将无菌管/条状/板贴有标签，用于使用样品编号的 PCR。请记住，使用 H2O 代替 DNA 和正对照（例如，使用讲师提供的 DNA）来验证 PCR，包括负对照。
- 准备包含 10 μL 5x PCR 反应缓冲器（包含 15 mM MgCl2）、1μL脱氧核糖核酸三磷酸 （dNTPs） （10 mM）、 5 μL （10pmol） 的 1 倍 PCR 主混合 每个引物 pMCT118-f 和 pMCT118-r （前进 - 5'-加法特卡卡阿克特克-3'， 反向 - 5'- GTCTTGGGATGCGCCC-3'） 根据卡赛等人。2， 23.8 μL 超纯 H2O， 和 0.2 μL 的塔克 DNA 聚合酶 （5 U/μL）.
注：pMCT118-f/pMCT118-r的引物设计在 D1S80 VNTR区域的侧翼区域，放大了整个轨迹。 - 将 PCR 管/条形/板与要使用的示例编号进行标记。
- 阿里报价 45 μL 的主混合到每个标记的 PCR 样品管或井。
- 在每个 PCR 管/板井中将 DNA 模板的 5μL 添加到主混合物中，以获得总容量为 50 μL 的营养。 更改每个 DNA 样本的移液器尖端，以避免交叉污染。
- 使用超纯 H2O 而不是 DNA，包括无模板控制 （NTC）。
- 关闭 PCR 管/条或密封板并混合。
- 使用桌面离心机将PCR管/条/板离心机进行20次。
注：本协议中给出的 PCR 条件使用 DNA 聚合酶和使用 PCR 热循环器进行优化。一般来说，PCR条件必须适应DNA聚合酶。Taq DNA聚合酶的标准延长时间为1分钟/kb。 - 将样品管/条状/板放在热循环器中，并使用以下条件（DNA聚合酶延长时间）孵化反应：1周期95°C 2分钟：25个周期，94°C代表15s，60°C代表15s，72°C代表30s;1个周期72°C，10分钟。
- 程序完成后，从恒温器中取出产品，并在 4 °C 过夜或 -20 °C 存储，直到电泳。
4. PCR 产品的阿加罗斯凝胶电泳
- 准备1.5%的蔗糖凝胶。
- 使用 1.5 克的蔗糖粉末，将其与 100 mL 的 1x 三乙酸酯-EDTA （TAE） 缓冲液混合在烧瓶中。
- 在微波炉（600 W）中加热混合物约1.5-2分钟。如有必要，再次旋转内容和热量，以完全溶解糖。稍微冷却，并将2μL的佩克绿色添加到蔗糖中。
- 使用足够适合所有样品的梳子将凝胶以一种形式倒入，并添加至少一个分子重量标记。
注意：可能会发生沸腾延迟。在重新悬念尚未溶解的浮油时，小心地摇动烧瓶。
注：PeqGreen 是一种用于检测核酸的无毒染料。它适用于双链DNA（dsDNA）和单链DNA（sSDNA）以及RNA的染色。灵敏度可与溴化钠相媲美。
- 从 4 °C 和离心机中取出 PCR 产品约 10s。
- 用 10 μL 样品装载凝胶井。不要过载凝胶。
注：DNA聚合酶缓冲器还包括增加样品密度的化合物，以便样品可以直接加载到凝胶上，而无需装载染料。这使得样品能够沉入井中，染料有助于跟踪DNA样本的迁移程度。- 在侧翼油井中加入分子重量标准（最好是 50 bp 分子重量标准）。
注意：将残留的 PCR 样品存储在 -20 °C，以防必须重复 agarose 凝胶电泳。
- 在侧翼油井中加入分子重量标准（最好是 50 bp 分子重量标准）。
- 在 1x TAE 中运行缓冲区，在 150 V（常数）下运行约 40 分钟，或直到以大约 50 bp 的速度行驶的黄色染料前部到达凝胶的下端。
- 应用蓝光或紫外线（UV）光时对凝胶进行成像，并记录图像以进行碎片长度分析。
注意：紫外线会损害你的眼睛和皮肤。使用紫外线灯箱时，请务必佩戴防护服和紫外线安全眼镜。 - 按照机构危险品政策处置凝胶。
5. 碎片长度结果分析
注意：使用线性回归分析来估计碎片的长度。
- 为了调整 D1S80 PCR 片段的大小，在 50 bp 分子重量标准车道上的凝胶照片上放置一把尺子，使标尺顶部与装样品的井底排成一行（图 1）。
注意：为了计算分子重量标准（50 bp 分子重量标准）的线性回归方程，使用了电子表格程序。 - 使用电子表格程序（图 2）在表中记录 50 bp 分子重量标准中每个波段与油井的距离（例如，以厘米为准）。
- 确定每个50 bp分子重量标准的每个片段大小的日志（例如，基数10），并将日志值输入表（图2）。
- 使用散射图（图 3）绘制每个数据点，其中带有垂直轴 （y 轴） 上的波段大小日志以及从凝胶顶部到水平轴 （x 轴） 分子重量标准每个波段的测量运行距离的图形。
- 适合趋势线（线性回归线），并显示回归方程（y = ax + b）和图形上的 R2值（图 4）。
- 测量每个 D1S80 放大器（图 5）的迁移距离（例如以厘米为数）。
- 使用回归方程估计每个 D1S80 放大器的大小：y = ax + b
其中y=碎片大小的日志
a =线的斜度（以第5点计算）
x=与井的距离（厘米）
b=回归线拦截y轴的点（以点5计算）
注：由于 y 值表示碎片大小的日志，必须计算抗日志 （10y）以获得 D1S80 放大器 bp 的碎片大小。
6. 估计被测试个体等位基因中的重复单位数
注 ：D1S80 重复装置长度为 16 bp。 D1S80 已知的最小等位基因有 14 次重复。此处描述的放大灯方案产生与侧翼区域加起来额外的 145 bp 到最终大小的放大灯。
- 使用 表 1 来估计每个 PCR 片段中包含多少重复单元。使用线性回归推断的大小应在任何特定等位基因的 8 bp 以内。
- 将每个被测试个体的基因型记录为等位基因重复大小数字的组合。
Representative Results
使用上述协议，对从通过拭子采样（图6）采集的布卡尔粘膜上皮细胞中提取的人类基因组DNA进行了D1S80 VNTR标记分析。使用 PCR 放大后，图 1中显示了含有D1S80放大器的 agarose 凝胶的典型表示。第 1 巷显示 50 bp 分子重量标准。在分子重量标准旁边，可视化 8 个学生样本中的 PCR 产品。车道 10 显示使用水而不是模板 DNA 的 NTC。大多数分析样本清楚地显示两个波段，代表D1S80轨迹的个体异质。2 巷和 9 巷显示一个单一的乐队， 代表D1s80轨迹的同源个体。第 5 巷显示一个模棱两可的单带， 与其他乐队相比要宽得多。这可能是两个D1S80等位基因在一个重复单元中不同的结果。如进一步分析，5 号车道中的样本将被视为单个带，代表同源个体。
对经过验证的 PCR 产品进行下游凝胶电泳片段分析，用于不同学生样本的 D1S80 VNTR 轨迹的大小调用。PCR 分析获得的放大器大小的解释依赖于使用的分子重量标准。测量了分子重量标准每个波段与油井的距离（图1），并记录了（图2）。根据大小和迁移距离，可以使用线性回归分析计算单个波段的大小。日志（基数 10 ）是为学生样本中的每个波段（图 5 ）确定的，而相应的抗日志表示每个放的 bp 数。重复单位的数量可以根据获得的放大体大小计算（表2）。
对于每个学生样本，放大器大小是通过线性回归计算的，每个波段可以很容易地分配给表 2中所示的特定等位基因。然后，有关D1S80等位基因大小的信息可用于确定本科生小人口子集中的等位基因频率。28重复等位基因是学生中最常出现的，因为重复等位基因有两个同源个体（个体1和4）。第二个最常见的等位基因是18重复等位基因，它由同源个体8和异质个体6携带。低频等位基因是分别在6、5和3个个体中只发现一次的21-、26和30重复等位基因。小学生群体D1S80 VNTR轨迹的等位基因频率模式可以进一步与较大人群的等位基因频率进行比较，例如来自不同大陆的4、7、8、9、10等人群。
在学生中，个人2和3共享24重复等位基因，个人2和7共享20重复等位基因，个人5和7共享23重复等位基因。有趣的是，两个 D1S80 同源个体（个体1和4）共享28重复等位基因。匹配两个人之间的等位基因可以表明潜在的相关性。但是，共享等位基因也可能发生。因此，确定两个人之间等位基因匹配的可能性至关重要。可能性取决于一般人群中单个等位基因的等位基因频率，应采用统计方法，将统计权重与 VNTR 标记分析（如 Bayesian 方法）相连接。总之，所呈现的指纹识别方法可用于实践类实践，教授VNTR在DNA指纹识别中的应用及其在生物科学中的应用。
图1： D1S80 放大产品电泳后，用一把尺子放在 50 bp 分子重量标准车道旁边，表示一种糖凝胶。 1 号车道包含 50 bp 分子重量标准，而 2-9 车道包含 PCR 反应产品。车道 10 包含无模板控制 （NTC）。 请单击此处查看此图的较大版本。
图2：确定DNA片段迁移距离和每个片段大小的日志，分子重量标准为50bp。 记录每个 50 bp 分子重量标准波段与井（cm）的距离，并确定每个片段的日志（基数 10）。使用电子表格程序将值输入表中。 请单击此处查看此图的较大版本。
图3：绘制X轴上分子重量标准的DNA片段迁移距离，与y轴上每个片段大小的日志（基10）对比产生的散射图。 请单击此处查看此图的较大版本。
图4：利用线性回归线和回归方程以及数据的R2值。请单击此处查看此图的较大版本。
图5： 确定D1S80 放大器的大小。 每个片段与井的距离输入回归方程。y 值的反日志表示 bp 中的片段大小。 请单击此处查看此图的更大版本。
图6：D1S80 VNTR分析建议的时间表和工作流程。此处介绍的整个D1S80 VNTR 分析过程，从布卡上皮细胞采集到片段长度评估，可在一个工作日内完成。请单击此处查看此图的较大版本。
| 等位基因大小（以 bp 为内） | 重复次数 |
| 369 | 14 |
| 385 | 15 |
| 401 | 16 |
| 417 | 17 |
| 433 | 18 |
| 449 | 19 |
| 465 | 20 |
| 481 | 21 |
| 497 | 22 |
| 513 | 23 |
| 529 | 24 |
| 545 | 25 |
| 561 | 26 |
| 577 | 27 |
| 593 | 28 |
| 609 | 29 |
| 625 | 30 |
| 641 | 31 |
| 657 | 32 |
| 673 | 33 |
| 689 | 34 |
| 705 | 35 |
| 721 | 36 |
| 737 | 37 |
| 753 | 38 |
| 769 | 39 |
| 785 | 40 |
| 801 | 41 |
表1：每个D1S80 VNTR轨迹的放大器大小。
| 个人 | 等位基因 | 距离（厘米） | 大小（以 bp 为内） | 重复单位数 |
| 1 | 同源 | 5 | 600 | 28 |
| 2 | 异质性 | 5.2 ;5.5 | 535, 458 | 24, 20 |
| 3 | 异质性 | 4.9 ;5.2 | 626, 535 | 30, 24 |
| 4 | 同源 | 5 | 600 | 28 |
| 5 | 异质性 | 5.1 ;5.3 | 564, 508 | 26, 23 |
| 6 | 异质性 | 5.4 ;5.6 | 483, 435 | 21, 18 |
| 7 | 异质性 | 5.3 ;5.5 | 508, 458 | 23, 20 |
| 8 | 同源 | 5.6 | 435 | 18 |
表2：测试的不同个体的等位基因组成。 重复单位的数量可以根据线性回归分析获得的放大体大小进行近似。
Discussion
在这里，我们介绍了一种简单且经济高效的方法，用于在本科实践课上实施分子指纹识别。
为了在 D1S80 球体中筛选基因变异，需要采集人类生物样本以及DNA提取和分析。必须确保在整个过程中确保人类生物标本的道德使用。样品管理在一个全面的监管框架内进行，以确保正确使用样品和相关数据18（ 例如，同意使用人类生物材料）。参与者必须适当了解其样本的使用、遗传关系中异常发现的风险（例如，相关个人）、隐私保护以及未来储存生物标本和数据的意图。所有捐助者（学生或同事）必须自由同意，并理解无缘无故退出的权利。一般来说，在进行这个实验室课程之前，必须熟悉人类样品管理的相关准则和规定。
对于本科实验室课程中布卡尔粘膜上皮细胞的收集，必须小心避免使用操作员或 DNases 的 DNA 污染 DNA 样本。建议始终使用实验室外套、手套和防护眼镜以及无菌棉签和微中性管。基于布卡尔拭子的细胞采集被认为是一种方便且经济高效的方法，用于收集适合基于 PCR 的 VNTR 分析的遗传物质，因为它相对便宜且非侵入性。除了泡泡拭子，唾液是医学研究最常见的口服取样方法。结果表明，腹膜拭子中上皮细胞的比例高于唾液，因此在为基于PCR的D1S80 VNTR分析提供足够的DNA数量和质量方面，它们比唾液更可靠。此外，在自我收集克服地理障碍后，例如，在人口多样性研究21中使用时，可以邮寄出球茎拭子。
由于从不同公司开发提取包，DNA提取变得相对容易。然而，由于财政资源有限，这些试剂盒在实验室课程中可能不适合使用。在这里，我们提出了一种简单、快速和经济高效的方法，无需市售的DNA提取工具包即可从人类样本中提取DNA。描述的DNA提取方法不使用有机溶剂，而是通过使用8M醋酸钾溶液增加盐浓度来去除细胞蛋白。这种方法还允许同时处理多个样本，并产生足够的DNA，用于每个样本的数种基因型分析。
PCR 是许多分子实验室的常见技术。虽然一般没有麻烦，但有陷阱，可能会使产生虚假结果的反应复杂化，这在其他地方已经讨论过22。面对低模板DNA质量，此处呈现的PCR条件显得非常稳健，但使用DNA浓度极低的模板时，由于布卡上皮细胞采集不良，偶尔会发现缺乏PCR放大。本研究中使用的DNA引物可以从不同的公司订购，例如本文末尾材料表中引用的DNA引物。使用 DNA 引物时必须特别小心，以避免操作员使用 DNases 或 DNA 进行污染。不使用 PCR 产品时也应保持冷。
另一个关键步骤是阿加罗斯凝胶电泳。在凝胶电泳中，只有一个16 bp的重复单位不同，碎片可能无法分离，因此以单个波段出现。在这种情况下，不能保证正确确定测试的 D1S80 等位基因的重复单位数。因此，应增加凝胶的运行时间，同时必须降低电压，并增加凝胶浓度，以提供更好的分辨率和分离单波段。
值得一提的是，并非所有 VNTR 轨迹的等位基因都包含完整的重复单元。包含不完全重复单元的非共识等位基因（微瓦里安特）在大多数 VNTR loci 中很常见，其大小在等位基因大小与完全重复单元之间。这些微瓦因糖凝胶电泳而几乎无法检测。相比之下，多晶酰胺凝胶或毛细细丝电泳等技术可以解决等位基因的差异，一个到几个重复单位或微瓦里安特12，23，24，25，26。然而，后一种技术不太适合本科实验室课程，因为它们有许多缺点，包括使用危险化合物、复杂的制备和缺乏设备。对于碎片大小的确定，在测量迁移的DNA片段的距离时必须特别小心。如果波段过于分散而无法精确测量，则通过线性回归计算D1S80等位基因片段大小可能不正确，导致对重复单位数的错误估计。在这种情况下，在优化凝胶条件后重新运行的阿加罗斯凝胶电泳是可取的，如Lorenz和同事22之前描述的那样。
这里介绍的整个 D1S80 VNTR 分析过程，从布卡上皮细胞采集到片段长度评估，可在一个工作日内完成。该协议是一种坚固、经济、易于使用的方法，适用于本科实践实验室课程。
Disclosures
作者没有利益冲突要披露。
Acknowledgments
作者要感谢凯文·格雷厄姆的画像和所有为这项工作捐赠样本的参与者。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1.5 mL microcentrifuge tube | Sarstedt | 72,706 | autoclaved |
| 2 mL microcentrifuge tube | Sarstedt | 7,26,95,500 | autoclaved |
| 2-propanol | Fisher chemical | PI7508/17 | |
| 5x PCR buffer | Promega | M7845 | |
| Acetic acid | Sigma/Merck | A6283-500ML | |
| Agarose | BioBudget | 10-35-1020 | |
| Buccal swabs | BioBudget | 57-BS-05-600 | |
| Centrifuge | Eppendorf | 5430 | |
| Combs | BioRad | ||
| dNTPs (10 mM) | Invitrogen | R0192 | |
| EDTA | Carl Roth | 8043.1 | |
| Ethanol | Honeywell | 32221-2.5L | |
| Gel caster | BioRad | ||
| Gel chamber | BioRad | SubCell GT | |
| Gel Doc XR+ | BioRad | ||
| Geltray | BioRad | SubCell GT | |
| GeneRuler 50 bp DNA Ladder | Thermo Fisher | SM0371 | |
| Go-Taq Polymerase | Promega | M7845 | |
| Heating block | Eppendorf | Thermomixer | 1.5 mL and 2 mL |
| Microwave | Sharp | R-941STW | |
| peqGreen | VWR | 732-3196 | |
| Pipettes | Gilson | 1000 µL, 200 µL, 20 µL, 2 µL | |
| Potassium acetate | Arcos Organics | 217100010 | |
| PowerPac power supply | BioRad | 100-120/220-240V | |
| Primers | Sigma/Merck | ||
| Scale | Kern | PCB 2.5 kg | |
| SDS | Arcos Organics | 218591000 | |
| Shaker | IKA labortechnik | IKA RH basic | |
| Tabletop centrifuge | myFuge | ||
| Thermal Cycler | BioRad | C100 Touch | |
| Tris | VWR | 103156x | |
| Vortex mixer | LMS | VTX-3000L |
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