Summary
该协议旨在成为研究硬化症和分子，生化，细胞变化产生的肝细胞过度暴露 在体外脂质的工具。
Abstract
代谢功能障碍相关的脂肪肝疾病（MAFLD），以前被称为非酒精性脂肪肝疾病（NAFLD），是全世界最普遍的肝脏疾病，因为它与肥胖症、糖尿病2型和脂质血症有关。肝硬化是肝炎、纤维化和末期肝病中观察到的炎症之前疾病的一个关键特征，它积累在肝炎中。肝细胞中的脂质积累可能会干扰异生物和内源分子的正常代谢，并诱导导致疾病进展的细胞过程。虽然在 体内可以进行硬化实验研究，但 体外 研究硬化的方法是具有不同优势的互补工具。脂质超载介质中的肝细胞培养是研究肝硬化的极好可重复选择，它能够识别与脂质积累相关的细胞过程，如氧化和网状压力、自噬、增殖、细胞死亡等，以及包括药物有效性、毒理学测试等许多其他可能应用的其他测试。在这里，它的目的是描述肝细胞培养在脂质超载调节介质的方法。HepG2细胞在RMPI 1640中型中培养，以棕榈酸钠和油酸钠为条件。重要的是，这两种脂质的比例对于有利于脂质液滴积累至关重要，同时保持细胞增殖和中等死亡率，就像疾病期间肝脏中发生的情况一样。该方法，从脂溶液库存的制备，混合物，除了介质，肝细胞培养表现出来。通过这种方法，可以识别肝细胞中易于观察到的油红色 O 染色剂中的脂质液滴，以及增殖/死亡率曲线。
Introduction
脂肪肝与代谢功能障碍有关，在世界范围内非常普遍1，2：据估计，多达25%的人口受到影响3。这种疾病以前被称为非酒精性脂肪肝病（NAFLD），它更新了代谢功能障碍相关的脂肪肝疾病（MAFLD）的命名，以准确反映与肥胖，胰岛素抵抗，糖尿病2型和血脂异常有关的发病机制，以及疾病的可能管理3，4。
无论名称如何，该病包括广泛的组织病理学变化，其特征是肝脏中脂质的异常高积累（肝细胞5中脂肪的>5%），并可能通过通常存在于简单硬化中的脂质积累进展到硬膜炎，这反过来又可能导致纤维化、肝硬化的发展， 肝细胞癌和肝衰竭5，6，7，8。由于其日益流行，MAFLD有望成为肝移植的第一个迹象和肝细胞癌9的主要原因。
虽然它被认为是脂肪肝疾病的良性或温和形式，肝硬化实际上是MAFLD10中的代谢键。不同的代谢途径受肝脏脂质积累的影响，包括但不限于脂质合成、出口和代谢10。胰岛素抵抗、氧化应激、网状应激和细胞功能障碍与肝脂质11、12密切相关。另一方面，脂肪肝细胞是活性氧物种的目标，使代谢物成为过氧化脂、蛋白质碳基和核酸的附庸。在细胞水平上，脂肪肝细胞可能经历线粒体损伤14，细胞衰老15，凋亡16，热细胞增多12，自噬17，以及其他事件。
肝细胞对新陈代谢、排毒和广泛分子的合成负有高度责任。许多这些功能可能因在硬化中观察到的脂质积累而受损。因此，拥有可重复的工具，以便准确评估硬化，是非常重要的。从这个意义上说，体外模型是易于适用和高度可重复的。体外史的斯蒂特病已经用不同的目标16，18，19。HepG2细胞被广泛用作肝细胞系。它具有易于培养和特征良好的优点。也许，HepG2细胞的唯一缺点是它是致癌细胞系，所以在分析结果时必须考虑这一点。在这里，显示了脂肪酸混合物在细胞培养中广泛使用的应用：棕榈酸（PA）和油酸（OA）。PA 和 OA 在文化20中都提供了不同的结果。PA （C 16：0） 是最常见的饱和脂肪酸从饮食16获得。PA被认为是非脂肪生成的生物标志物，是NAFLD21发展的关键一步。PA显示为剧毒22：因此，可能不建议在体外诱发硬化。OA （C 18：1） 是一种单不饱和脂肪酸。与PA相比，OA被建议具有抗炎和抗氧化特性，能够对抗PA12。PA和OA都是甘油三酯中的主要脂肪酸，无论健康状况或疾病16。表1提供了肝细胞培养与PA，OA，及其混合物的例子，以及报告的结果12，23，24，25，26，27。其他脂肪酸也用于肝细胞培养，包括乳酸（C 18：0）28，29，30，亚油酸 （C 18：1）28，30，31及其结合 （CLA）28，32，棕榈酸 （C 16：1）29.然而，他们的使用在文献中最不常被报道，也许是因为他们的肝丰度低于PA和OA16。
同时，这两种脂肪酸类似于体外硬化，提供增殖细胞，与控制条件相比，细胞死亡增加，生存能力降低。值得一提的是，这些脂肪酸的盐是可用的，也可以使用。评估肝细胞培养中的脂质超载时，主要问题之一是毒理模型和最能代表硬化的模型之间的差异。许多模型可以在第一种情况下进行说明。事实上，单单使用PA就可视为其中之一，而高死亡率是最明显的结果12、16、23、24、25、26、27。即使在OA的情况下，使用高剂量也可以被视为毒理学模型。这里显示的协议是根据硬化的发展更高，因为它显示低死亡率相比，观察到的其他模型，并允许它遵循在几天与渐进脂质积累，因为它发生在NAFLD。通过实验条件评估轻度和重度硬化的可能性被认为是另一个优势。
| 脂肪酸 | 条件 | 结果 | 参考 | ||
| 宾夕法尼亚州 | 浓度： 200 μM | 脂质积累 | 严等人， 201925. | ||
| 时间曝光： 24 小时 | 肝细胞损伤 | ||||
| 跨氨酶高程 | |||||
| 宾夕法尼亚州 | 浓度： 50、100 和 200 μM | 脂质积累 | 兴等人， 201924. | ||
| 时间曝光： 24 小时 | |||||
| 宾夕法尼亚州 | 浓度：250 μM、500 μM、750 μM 和 1，000 μM | 脂质积累 | 王等人， 202026. | ||
| 时间曝光： 24 小时 | 逐步降低细胞生存能力 | ||||
| OA/PA 的混合 | 浓度： 1mM | 脂质积累 | 肖等人， 202027. | ||
| 时间曝光： 24 小时 | 不报告脂质 | ||||
| 费率： 2OA：1PA | |||||
| OA/PA 的混合 | 第一次刺激 200 μM 和 400 μM 的 PA，然后第二次刺激与 200 μM 的 OA | 脂质积累。 | 曾等人， 202012. | ||
| 浓度：400 μM PA： 200 μM OA | PA 诱发的脂质性的证据因 OA 的刺激而减少。 | ||||
| 价格： 2PA：1OA | |||||
| 时间曝光： 24 小时 | |||||
| OA/PA 的混合 | 浓度： 400 μM PA： 200 μM OA | 脂质积累 | 陈等人， 201823. | ||
| 价格： 2PA：1OA | |||||
| 时间曝光： 24 小时 | |||||
| OA/PA 的混合 | 浓度 ：50 和 500 μM | 两种类型的硬化的生成：轻度硬化和 严重的硬化。 |
坎波斯和古兹曼 2021 | ||
| 价格： 2PA：1OA | 模拟脂质超载的长期阐述 | ||||
| 时间暴露：24小时，2天，3天和4天。 | |||||
表1。肝细胞培养在造菌条件下。 该表介绍了脂肪酸的使用类型、维持的条件以及肝细胞培养的观察结果。PA：棕榈酸。欧亚：油酸。
最后，该模型不仅适用于硬化和脂肪肝的研究，还适用于在硬化背景下的肝代谢、合成和排毒途径。此外， 体外 诱发的硬化可能为确定该疾病的潜在标记和治疗靶点提供证据。
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Protocol
1. 标准和有条件的中等准备
- 要准备标准RPMI 1640，补充RPMI 1640培养介质与10%（v/v）的胎儿牛血清（FBS，以前热灭活）和1%（v/v）青霉素-链霉素溶液。使用 0.22 μm 过滤器将介质存储在 4 °C.消毒。
- 要准备棕榈酸盐库存溶液，请在标准 RPMI 1640 中准备 50 mM 的棕榈酸盐溶液，以前补充 1% 的牛血清白蛋白（无脂）。该库存的 5-10 mL 的体积就足够了。使用 0.22 μm 过滤器对库存溶液进行消毒。在 4 °C 下存放，最长达 1 个月不受光线照射。
- 要准备油酸盐库存溶液，请在标准 RPMI 1640 中准备 50 mM 的油酸盐溶液，该溶液以前补充了 1% 的牛血清白蛋白（无脂）。10 mL 的体积就足够了。使用 0.22 μm 过滤器对库存溶液进行消毒。在 -20 °C 下存放，最长达 1 个月不受光线照射。
- 要从先前准备的库存中准备造血介质，准备一个 1 部分的棕榈酸盐：2 部分油酸盐造血介质介质，在两个可能的水平：轻度和重度硬化。
- 轻度凝血：准备 100 mL 的 1 部分棕榈酸盐：2 部分油酸盐 （50 μM） 混合在标准 RPMI 1640 中。使用 0.22 μm 过滤器进行消毒。在 4 °C 下存放长达 1 周。
- 严重硬化：准备 100 mL 的 1 部分棕榈酸盐：2 部分油酸盐 （500 μM） 混合在标准 RPMI 1640 中。使用 0.22 μm 过滤器进行消毒。在 4 °C 下存放长达 1 周。
- 股票解决方案的替代准备。
- 使用上述免费脂质白蛋白使用各自的脂肪酸准备两种库存溶液。
- 当缺乏免费脂质白蛋白时，使用棕榈酸盐和油酸盐盐。
- 溶解在2mL的绝对乙醇中，然后混合在标准RPMI 1640（5-10 mL）的最终体积中。通过在标准RPMI 1640培养介质中搅拌直接溶解油酸盐。
- 允许乙醇蒸发，在70°C的水浴中孵化;彻底混合。
- 在每种情况下，使用 0.22 μm 过滤器对两种库存解决方案进行消毒。将棕榈酸盐库存溶液存储在 4 °C 下，将油酸盐库存溶液存储在 - 20 °C。 保护两种解决方案免受光线照射。这些解决方案稳定 1 个月。
2. 文化前
- 在24井板中每口井播种100，000个赫普G2细胞。添加 1 mL 标准 RPMI 1640。
- 在 37 °C 和 5% CO 2 的24 小时预孵育，允许细胞附着。
3. 致病文化
- 培养前后，丢弃标准RPMI 1640介质，并相应地添加造质介质。
- 丢弃超高超剂，每24小时加入新鲜的造乳介质。
4. 可行性和死亡率评估
- 在24井板中每口井播种100，000个赫普G2细胞。添加 1 mL 标准 RPMI 1640。
- 在 37 °C 和 5% CO 2 下预孵育24小时。
- 改变标准RPMI 1640介质的造菌介质。
- 每24小时孵育24小时、2天、3天和4天，每24小时刷新一次造菌介质。
- 在适当时间后，丢弃超高等。
- 通过添加 500 μL 的 0.05% Trypsin-EDTA 从井中分离出细胞。在 37 °C 和 5% CO2下孵育 5 分钟。
- 在微管中收集重新悬存的细胞。
- 离心机在300 x g 和丢弃超高。
- 添加 200 μL 的标准 RPMI 1640 并重新悬回电池。
- 在新鲜的微管中加入 15 μL 的 0.4% Trypan 蓝色溶液。与之前的电池悬架的 15 μL 混合。
- 在血细胞计中数一数染色细胞和未染色细胞。
- 相应地计算生存能力和死亡率。
可行性 |
死亡率 |
5. 脂质染色与油红 O
- 将细胞培养盖唇放入每个井的 24 井板中。
- 每口井100，000个赫普G2细胞。添加 1 mL 标准 RPMI 1640。
- 在 37 °C 和 5% CO 2 的24 小时预孵育。
- 改变标准RPMI 1640介质的造菌介质。
- 孵育24小时，2天，3天，4天，每24小时刷新一次造菌介质。
- 在适当时间后，丢弃超高等。
- 用 1 mL 磷酸盐缓冲盐水 （PBS） 清洗。丢弃超高纳特。
- 修复与 1 mL 的 4% 的副甲醛在 PBS。
- 在室温下孵育1小时。
- 丢弃过量的副甲醛。
- 用1兆升蒸馏水冲洗细胞。
- 加入1 mL的70%异丙酚，孵育5分钟。
- 丢弃过量的等丙醇。此时不需要 PBS 洗涤。
- 加入1mL油红O溶液，孵育30分钟。
- 丢弃油红色 O 溶液的过量。
- 用1兆升蒸馏水冲洗。
- 添加 500 μL 血氧林溶液。孵化3分钟。
- 丢弃过量的血氧林溶液。
- 用1兆升蒸馏水冲洗。
- 在显微镜下观察放大400倍（目标40倍，眼部10倍）。
6. 脂质含量的形态测量评估
- 随机从井的整个区域选择并捕获 10 个光学场的照片。每口井重复一次。
- 根据费雷拉和拉斯班德33评估使用 ImageJ 软件中的颜色阈值工具的红色染色区域百分比。
- 根据费雷拉和拉斯班德33，使用 ImageJ 软件中的分析粒子工具将染色区域与光学场的完整区域进行比较。
- 计算每口井的平均百分比。
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Representative Results
培养在造菌介质中培养的肝细胞在井表面显示生长：然而，脂肪肝细胞的生长速度低于控制介质培养的细胞。OA和PA的拟议比例和浓度，保证细胞在培养过程中的存活。在24井板中每口井播种1×105 个细胞，如 图1所示，提供最佳汇合。
与对照条件相比，培养细胞在造血组（轻度和重度）中的生存能力较低。事实上，随着文化时间的增加，生存能力逐渐减弱，在4天严重硬化（图2A）中达到60%的最低点。因此，在造血条件下培养的肝细胞的死亡率较高，并且随着接触脂质的时间（图2B）而逐渐增加。细胞数量因增殖而逐渐增加（图2C）。然而，在3天和4天轻度硬化中，增殖率较低。相比之下，严重的硬化与从24小时开始的低增殖有关。
在拟议协议中培养的 HepG2 细胞显示了硬化、细胞内脂质积累的最重要特征。涂有油红 O 的细胞允许观察在造血条件下培养的细胞中脂质液滴至少增加两倍，如图 3 和 图 4所示。细胞内脂肪根据在造菌介质中接触培养物的时间而增加（图3）。在轻度硬化中，脂质含量从第 2 天开始增加，而在严重硬化中，脂质含量从 24 小时显著增加。
图1：细胞生长。 HepG2肝细胞培养在控制 （图1A-D） 和温和的造影条件 （图 1E-H）。照片显示了从1-4天的文化成长。缩放栏 = 500 μm. 请单击此处查看此图的较大版本。
图2：生存能力和死亡率。 （B） 死亡率。（C） 细胞号。通过尝试蓝色染色来评估控制下的肝细胞培养和造菌条件的可行性和死亡率。平均± SD.两个独立的实验，每次三重文化。圆圈：控制条件：方形：轻度硬化：三角形：严重硬化。单向 ANOVA 用于比较相同条件下的培养条件和时间。p < 0.05 被认为是重要的： "*" - 控制与严重硬化："]" - 控制与轻度硬化;"+" - 轻度与严重性硬化。请单击此处查看此图的较大版本。
图3： 脂质积累。 HepG2肝细胞培养在控制和造血条件评估脂质含量油红色O染色，然后使用成像J软件（NIH，美国）进行形态分析。脂质百分比是指将 100% 视为分析的每个光学场的完整区域时，由油红 O （脂质） 染色面积的百分比。平均± SD.两个独立的实验，每次三重文化。圆圈：控制条件：方形：轻度硬化：三角形：严重硬化。单向 ANOVA 用于比较相同条件下的培养条件和时间。p < 0.05 被认为是重要的： "*" - 控制与严重硬化："]" - 控制与轻度硬化;"+" - 轻度与严重性硬化。 请单击此处查看此图的较大版本。
图4：体外病变。HepG2肝细胞培养在控制（图4A-D），轻度造血（图4E-H），和严重造血（图4I-L）条件评估脂质含量油红色O染色。照片显示肝细胞脂质液滴从24小时到4天。缩放栏 = 50 μm.请单击此处查看此图的较大版本。
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Discussion
该协议旨在提供一个战略，研究体 外硬化。细胞培养是研究暴露在不同条件下的细胞的细胞、分子、生化和毒理学方面的有力工具。通过这种方法，硬化不仅可以被想象为MAFLD复杂疾病的一个阶段，而且可以被想象为肝细胞过度暴露在脂质中以及这种接触可能的结果。因此，它的应用并不局限于MAFLD的生理病理学，而是脂肪肝患者接触到治疗药物、污染物以及其他可能受硬化影响的疾病。因此，本协议在毒理学、药理学和确定治疗该病的治疗目标方面具有潜在的应用。
在制定本协议时，最关键的步骤之一是准备造血混合物：1部分棕榈酸盐：2部分油酸盐，从第2天开始诱发硬化（图3，图4），允许肝细胞增殖-尽管生存率略有下降和死亡率上升（图2）。然而，降低的生存能力不应超过30%-40%，因为这可能代表一种有毒影响，而不是长期可能随之而来的影响。肝硬化是长期过度暴露于脂质的结果。从这个意义上说，脂质积累，起初，与温和的感情肝细胞，如这个模型观察到的。另一个功能是脂质液滴配置文件。在轻度硬化中，在培养过程中观察到脂质液滴的大小增加（图4E-H）。在严重硬化中，液滴大小比轻度硬化（图4I-L）高得多，而对照组则不显示脂质液滴大小的变化（图4A-D）。
最好将温和和严重的致病媒介储存在 4 °C 下长达一周。之后，建议准备新鲜的造菌介质。但是，OA 库存可在 -20 °C 下保存长达一个月，而 PA 库存可在 4 °C 下存储长达一个月。建议时间后使用这些库存溶液可能代表脂肪酸降解的风险。为了确保每次使用前溶液的适当浓度，建议通过非酯化脂肪酸 （NEFA） 检测试剂盒测量脂肪酸浓度。
PA和OA，以及它们各自的盐，已分别用于诱导脂质积累：然而，每脂肪酸16，20的差异被观察到。一方面，单单使用棕榈酸盐是硬化的良好诱导剂。它诱发细胞死亡，肝胰岛素抵抗，线粒体功能障碍，网状应激16，34，35，36。然而，棕榈酸盐是剧毒的16，34，并期望单独使用它在培养的结果包括较低的生存能力和更高的死亡率相比，PA和OA16，20的混合物。另一方面，油酸盐也诱发硬化。它诱发脱脂，胰岛素抵抗37，38和高扩散38。然而，与棕榈酸盐和混合物16，20相比，用油酸盐观察到的结果通常比较温和。这可能与其保护作用有关。奥勒特是橄榄油的主要成分，是地中海饮食中的关键成分，是著名的抗MAFLD39的成功策略之一。
由于该协议的可重复性和获得结果所需的时间短，因此可能被视为研究硬化症的好工具。这与使用MAFLD的实验模型相比，增加了一个事实，即它并不意味着使用啮齿动物模型所固有的伦理问题。此协议允许遵循几天，前提是每 24 小时刷新一次致病介质。该模型也具有成本效益，具有广泛的应用。它也可以调整到其他细胞系，不仅肝细胞，但广泛的细胞在肥胖期间受脂质过度暴露的影响。此协议的局限性之一是使用 HepG2 细胞。由于这是一个致癌细胞系，它可能会隐藏或增加一些结果。然而，HepG2细胞在这些类型的研究中的应用被广泛接受，因为它在脂质代谢与健康的肝细胞40相似。使用混合物PA：2OA也可能被证明是有争议的，因为它并不完全类似于NEFA在NAFLD/MAFLD患者41的血液中观察到的配置文件。其他脂肪酸，包括亚麻酸或乳酸，可能包括在进一步修改和改进本协议。另一个限制是，只有一个细胞类型，肝细胞，被研究，缺乏与肝脏中的其他肝细胞的相互作用，包括正弦内皮，库普弗，肝固酸盐细胞等，从事MAFLD的进展。此外，这是一个模型，专门诱导硬化，没有进展到斯蒂托肝炎和纤维化。
最后，该研究提供了肝细胞硬化的 体外 协议，易于实施，可重复，并在研究硬化以及脂肪肝的肝细胞功能方面具有广泛的应用。
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Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项工作由国家委员会和特克诺洛尼亚委员会资助（委员会，CB-221137）。阿德里亚娜·坎波斯是墨西哥国立奥蒂诺马大学生物学博士项目的博士生，并得到科纳西特（CVU：1002502）的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Biosafety cabinet | ESCO Airstream | AC2-452+C2:C26 | Class II Type A2 Biological Safety Cabinet |
| Bottle top filter | Corning, US | 430513 | Non-pyrogenic, polystyrene, sterile. 1 filter/Bag. 0.22 μm, 500 mL. |
| Bovine serum albimun (BSA) | Gold Biotechnology, US | A-421-10 | BSA Fatty Acid Free for cell culture |
| Culture media RPMI 1640 | ThermoFisher-Gibco, US | 31800-022 | - |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | ThermoFisher-Gibco, US | A4766801 | - |
| Hemocytometer | Marienfeld, DE | 640010 | - |
| HepG2 cell line | ATCC, US | HB-8065 | Hepatocellular carcinoma human cells. |
| Humidified incubator | Thermo Electronic Corporation,US | Model: 3110 | Temperature (37 °C ± 1 °C), humidity (90% ± 5%) , CO2 (5% ± 1%) |
| Inverted microscope Eclipse | NIKON, JPN | Model: TE2000-S | - |
| Isopropanol | Sigma-Aldrich, US | I9030-4L | - |
| Oil Red O Kit | Abcam, US | ab150678 | Kit for histological visualization of neutral fat. |
| Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich, US | P6148-500G | - |
| Penicillin/streptomycin | ThermoFisher-Gibco, US | 15140-122 | Antibiotics 10,000 U/mL Penicillin, 10,000 μg/mL Streptomycin |
| pH meter | Beckman, US | Model: 360 PH/Temp/MV Meter | - |
| Phosphate buffered saline | ThermoFisher-Gibco, US | 10010-023 | - |
| Serological Pipettes | Sarstedt, AUS | 86.1253.001 | Non-pyrogenic, sterile, 5 mL |
| Serological Pipettes | Sarstedt, AUS | 86.1254.001 | Non-pyrogenic, sterile, 10 mL |
| Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich, US | S5761-1KG | Preparation of culture media |
| Sodium oleate | Santa Cruz Biotechnology, US | sc-215879A | - |
| Sodium palmitate | Santa Cruz Biotechnology, US | sc-215881 | - |
| Syring filter | Corning, US | 431219 | Non-pyrogenic, sterile, 28 mm, 0.2 μm. |
| Trypan Blue | Sigma-Aldrich, US | T6146-25G | - |
| Trypsin 0.05% /EDTA 0.53 mM | Corning, US | 25-052-Cl | - |
| 24 well cell culture cluster | Corning, US | 3524 | Flat bottom with lid. Tissue culture treated. Nonpyrogenic, polystyrene, sterile. 1/Pack. |
| 96 well cell culture cluster | Corning, US | 3599 | Flat bottom with lid. Tissue culture treated. Nonpyrogenic, polystyrene, sterile. 1/Pack. |
References
- Younossi, Z. M. Non-alcoholic fatty liver disease - a global public health perspective. Journal of Hepatology. 70 (3), 531-544 (2019).
- Younossi, Z., et al. Global perspectives on nonalcoholic fatty liver disease and nonalcoholic steatohepatitis. Hepatology. 69 (6), 2672-2682 (2019).
- Eslam, M., et al. A new definition for metabolic dysfunction-associated fatty liver disease: An international expert consensus statement. Journal of Hepatology. 73 (1), 202-209 (2020).
- Eslam, M., Sanyal, A. J., George, J. MAFLD: A consensus-driven proposed nomenclature for metabolic associated fatty liver disease. Gastroenterology. 158 (7), 1999-2014 (2020).
- Chalasani, N., et al. The diagnosis and management of nonalcoholic fatty liver disease: Practice guidance from the American association for the study of liver diseases. Hepatology. 67 (1), 328-357 (2018).
- Calzadilla Bertot, L., Adams, L. A. The natural course of non-alcoholic fatty liver disease. International Journal of Molecular Science. 17 (5), 774 (2016).
- Reccia, I., et al. Non-alcoholic fatty liver disease: A sign of systemic disease. Metabolism. 72, 94-108 (2017).
- Tomita, K., et al. Free cholesterol accumulation in hepatic stellate cells: Mechanism of liver fibrosis aggravation in nonalcoholic steatohepatitis in mice. Hepatology. 59 (1), 154-169 (2014).
- Byrne, C. D., Targher, G. Nafld: A multisystem disease. Journal of Hepatology. 62, 1 Suppl 47-64 (2015).
- Ipsen, D. H., Lykkesfeldt, J., Tveden-Nyborg, P. Molecular mechanisms of hepatic lipid accumulation in non-alcoholic fatty liver disease. Cellular and Molecular Life Sciences. 75 (18), 3313-3327 (2018).
- Diehl, A. M., Day, C. Cause, pathogenesis, and treatment of nonalcoholic steatohepatitis. New England Journal of Medicine. 377 (21), 2063-2072 (2017).
- Zeng, X., et al. Oleic acid ameliorates palmitic acid induced hepatocellular lipotoxicity by inhibition of ER stress and pyroptosis. Nutrition and Metabolism. 17, London. 11 (2020).
- Ore, A., Akinloye, O. A. Oxidative stress and antioxidant biomarkers in clinical and experimental models of non-alcoholic fatty liver disease. Medicina (Kaunas). 55 (2), 26 (2019).
- Paradies, G., Paradies, V., Ruggiero, F. M., Petrosillo, G. Oxidative stress, cardiolipin and mitochondrial dysfunction in nonalcoholic fatty liver disease. World Journal of Gastroenterology. 20 (39), 14205-14218 (2014).
- Aravinthan, A., et al. Hepatocyte senescence predicts progression in non-alcohol-related fatty liver disease. Journal of Hepatology. 58 (3), 549-556 (2013).
- Gomez, M. J., et al. A human hepatocellular in vitro model to investigate steatosis. Chemico Biological Interactions. 165 (2), 106-116 (2007).
- Wu, W. K. K., Zhang, L., Chan, M. T. V. Autophagy, NAFLD and NAFLD-related HCC. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1061, 127-138 (2018).
- Levy, G., Cohen, M., Nahmias, Y. In vitro cell culture models of hepatic steatosis. Methods in Molecular Biology. 1250, 377-390 (2015).
- Kanuri, G., Bergheim, I. In vitro and in vivo models of non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD). International Journal of Molecular Science. 14 (6), 11963-11980 (2013).
- Ricchi, M., et al. Differential effect of oleic and palmitic acid on lipid accumulation and apoptosis in cultured hepatocytes. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 24 (5), 830-840 (2009).
- Lee, Y., et al. Serial biomarkers of de novo lipogenesis fatty acids and incident heart failure in older adults: The cardiovascular health study. Journal of the American Heart Association. 9 (4), 014119 (2020).
- Alnahdi, A., John, A., Raza, H. Augmentation of glucotoxicity, oxidative stress, apoptosis and mitochondrial dysfunction in Hepg2 cells by palmitic acid. Nutrients. 11 (9), 1979 (2019).
- Chen, X., et al. Oleic acid protects saturated fatty acid mediated lipotoxicity in hepatocytes and rat of non-alcoholic steatohepatitis. Life Sciences. 203, 291-304 (2018).
- Xing, J. H., et al. NLRP3 inflammasome mediate palmitate-induced endothelial dysfunction. Life Sciences. 239, 116882 (2019).
- Yan, H., et al. Insulin-like Growth Factor Binding Protein 7 accelerates hepatic steatosis and insulin resistance in non-alcoholic fatty liver disease. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 46 (12), 1101-1110 (2019).
- Wang, J., Hu, R., Yin, C., Xiao, Y. Tanshinone IIA reduces palmitate-induced apoptosis via inhibition of endoplasmic reticulum stress in Hepg2 liver cells. Fundamental and Clinical Pharmacology. 34 (2), 249-262 (2020).
- Xiao, Z., Chu, Y., Qin, W. IGFBP5 modulates lipid metabolism and insulin sensitivity through activating ampk pathway in non-alcoholic fatty liver disease. Life Sciences. 256, 117997 (2020).
- Avila, G., et al. In vitro effects of conjugated linoleic acid (CLA) on inflammatory functions of bovine monocytes. Journal of Dairy Science. 103 (9), 8554-8563 (2020).
- Malhi, H., Bronk, S. F., Werneburg, N. W., Gores, G. J. Free fatty acids induce JNK-dependent hepatocyte lipoapoptosis. The Journal of Biological Chemistry. 281 (17), 12093-12101 (2006).
- Oh, J. M., et al. Effects of palmitic acid on TNF-alpha-induced cytotoxicity in SK-Hep-1 cells. Toxicology In Vitro: An International Journal Published in Association with BIBRA. 26 (6), 783-790 (2012).
- Stellavato, A., et al. In vitro assessment of nutraceutical compounds and novel nutraceutical formulations in a liver-steatosis-based model. Lipids in Health and Disease. 17 (1), 24 (2018).
- Pachikian, B. D., et al. Implication of trans-11, trans-13 conjugated linoleic acid in the development of hepatic steatosis. PLoS One. 13 (2), 0192447 (2018).
- Ferreira, T., Rasband, W. Analyze. ImageJ User Guide. , Ch. 30 132-135 (2012).
- Geng, Y., Wu, Z., Buist-Homan, M., Blokzijl, H., Moshage, H. Hesperetin protects against palmitate-induced cellular toxicity via induction of GRP78 in hepatocytes. Toxicology and Applied Pharmacology. , 404 (2020).
- Geng, Y., et al. Protective effect of metformin against palmitate-induced hepatic cell death. Biochimica et Biophysica Acta - Molecular Basis of Disease. 1866 (3), 165621 (2020).
- Sarnyai, F., et al. Effect of cis- and trans-monounsaturated fatty acids on palmitate toxicity and on palmitate-induced accumulation of ceramides and diglycerides. International Journal of Molecular Science. 21 (7), 2626 (2020).
- Chen, J. W., et al. Tetrahydrocurcumin ameliorates free fatty acid-induced hepatic steatosis and improves insulin resistance in HepG2 cells. Journal of Food and Drug Analysis. 26 (3), 1075-1085 (2018).
- Burhans, M. S., et al. Hepatic oleate regulates adipose tissue lipogenesis and fatty acid oxidation. Journal of Lipid Research. 56 (2), 304-318 (2015).
- Abenavoli, L., Milanovic, M., Milic, N., Luzza, F., Giuffre, A. M. Olive oil antioxidants and non-alcoholic fatty liver disease. Expert Reviews in Gastroenterology and Hepatology. 13 (8), 739-749 (2019).
- Nagarajan, S. R., et al. Lipid and glucose metabolism in hepatocyte cell lines and primary mouse hepatocytes: A comprehensive resource for in vitro studies of hepatic metabolism. American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. 316 (4), 578-589 (2019).
- Hodson, L., Skeaff, C. M., Fielding, B. A. Fatty acid composition of adipose tissue and blood in humans and its use as a biomarker of dietary intake. Progress in Lipid Research. 47 (5), 348-380 (2008).
