Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

Sentinel lymfeknuter kartlegging og biopsi for endometrial kreft på tidlig stadium med Laparoscopy

Published: August 19, 2021 doi: 10.3791/63044

Summary

Denne protokollen beskriver identifisering og reseksjon av sentinel lymfeknuter for å gjøre operasjonen så enkel og minimalt invasiv som mulig.

Abstract

Sentinel lymfeknute (SLN) kartlegging og biopsi er en lovende teknikk for å visualisere og evaluere lymfeknutestatus hos kreft. Denne tilnærmingen har blitt anbefalt for lavrisiko endometriekreft (EC) pasienter ved autoritative internasjonale retningslinjer, men det har ikke blitt utført bredt i Kina og over hele verden. Dette arbeidet tar sikte på å beskrive detaljerte SLN-kartleggings- og biopsiprosedyrer for å fremme den kliniske anvendelsen. SLN-kartlegging og postoperativ patologisk ultrastaging ble utført hos en pasient med lavrisiko-EC ved hjelp av indocyaningrønn (ICG) fargestoff for å spore SLN-ene under laparoskopi og resecting dem helt for ultrastaging. Til slutt beskriver denne protokollen detaljer om ICG-injeksjon, og SLN-kartlegging og biopsi hos EC-pasienter basert på erfaringene fra klinisk praksis.

Introduction

Endometrial kreft (EC) er en av de vanligste sykdommene i gynekologisk onkologi, og forekomsten stiger1,2. Kirurgi er førstelinjebehandling for tidlig stadium EC3,4. Evalueringen av lymfeknutemetastase er en viktig del av kirurgisk iscenesettelse i EC. Gynecologic Oncology Group (GOG) studie 33 viste at lymfeknutemetastaser er forbundet med dårlig prognose5.

Som en ny og essensiell teknikk for evaluering av lymfeknutemetastase har sentinel lymfeknute (SLN) kartlegging og biopsi dukket opp de siste årene og har blitt anbefalt å bli ansatt for pasienter med tilsynelatende livmor-begrenset EC i henhold til National Comprehensive Cancer Network (NCCN) retningslinjer for livmorkreft6,7,8,9,10. SLN-kartlegging har også blitt mye brukt i svulster som brystkreft11, lungekreft12, skjoldbruskkreft13og melanom14. Patologisk ultrastaging har oppnådd god ytelse i kolorektal og gynekologisk kreft15,16,17 og anbefales av de autoritative europeiske retningslinjene18. Selv om prinsipper for SLN-kartlegging for EC-iscenesettelse er gitt i internasjonale retningslinjer10,19, er det ingen detaljerte manipulasjoner av kirurgi i andre nåværende verk.

Dette arbeidet presenterer protokollen for detaljert SLN-kartlegging og biopsi med ICG hos en 28 år gammel kvinne som hadde blitt klinisk diagnostisert med tidlig eus, og dermed forbedret og fremmet diagnosen pasienter.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alle operasjonsprosedyrer relatert til pasienten beskrevet her ble godkjent av Etikkkomiteene for obstetrikk &gynekologisk sykehus ved Fudan University i Shanghai, Kina. Informert samtykke ble innhentet fra pasienten.

1. Indikasjoner for SLN-kartlegging med ICG hos EC-pasienter

  1. Sørg for at pasienter er klinisk diagnostisert med primær EC begrenset til livmor med lavrisikofaktorer (grad 1 eller 2 endometrioid karsinomer, pre-kirurgisk endometrial lesjon ≤2 cm, og myometrial invasjon <50%).
  2. Forsikre deg om at pasientene ikke er allergiske mot utvikleren (ICG).
  3. Sørg for at pasienter ikke har opplevd retroperitoneal lymfeknute disseksjon av en eller annen grunn før sykdommen.
  4. Sørg for at pasientene forstår SLN kirurgiske prosedyrer og har signert kirurgiske samtykkeskjemaer.
  5. Sørg for at pasientene ikke kan utføre systematisk lymfadenektomi, men SLN-kartlegging for kirurgisk iscenesettelse av en eller annen grunn.
  6. Sørg for at pasientene er registrert i den kliniske studien i SLN-kartgruppen hvis de er med mellomnivårisiko EC.

2. Pasientforberedelse

  1. Preoperativ tarmforberedelse
    1. Gi avføringsmidler for tarmforberedelse og klyster til pasienter som har gjennomgått flere bekken- og mageoperasjoner.
      MERK: Intestinal forberedelse er ikke nødvendig for pasienter uten tarmkirurgi historie.
  2. Preoperativ diett forberedelse
    1. Unngå fast mat i 8 timer før operasjonen, forhindre et halvflytende kosthold i 6 timer før prosedyren, og slutt å drikke i 2 timer før prosedyren.
  3. Anestesi
    1. Bruk intravenøse midler (f.eks. propofol) for å produsere bevisstløshet og tilsett noen nevromuskulære blokkere ved innånding eller intravenøse ruter for å oppnå den nødvendige dybden av anestesi. Bruk en kombinasjon av administrasjoner for bedøvelsesvedlikehold for å sikre at pasienten er bevisstløs og helt avslappet med stabile vitale tegn gjennom hele operasjonen.
      MERK: Bruken av bedøvelse vil følge reglene for anestesiavdelingen til hvert senter.
  4. Posisjon
    1. Når pasienten er bedøvet, la pasienten være i litotomistilling med Trendelenburg-stilling.
  5. Forbered huden på operasjonsstedet. Utfør hudpreparering med et antiseptisk preparat (f.eks. povidon-jod) på en organisert måte fra det tiltenkte stedet for snittet som stråler ut til kantene på det tiltenkte området av hudeksponering, med den øvre grensen til flat xiphoid-prosess, sidekanter av midtaksillære linjer og nedre grense for øvre lår (figur 1).

3. Fluorescerende fargestoffpreparat

  1. Indocyanin grønn (ICG) forberedelse
    1. Løs opp 25 mg ICG i 20 ml sterilt vann for en endelig konsentrasjon på 1,25 mg/ml og rist forsiktig.

4. ICG-injeksjon

  1. Bruk en 2 ml sprøyte (med nålstørrelse på 0,6 mm x 32 mm TW LB) for å injisere 0,5 ml av den tilberedte ICG klokken 3 og klokken 9 på ectocervixen ved henholdsvis overfladisk (2-3 mm) og dyp (1-2 cm) cervix (Figur 2).
    MERK: I noen tilfeller kan også ectocervix-posisjonene på klokken 6 og 12 velges. ICG bør unngås ved injisert i Nesslers cyste.

5. Intraoperativ SLN-identifikasjon

  1. Forberedelse før utvikling
    1. Ta tak i huden rundt navlestrengen med to håndkle tang for å heve bukveggen. Gjør et snitt på ca 10 mm bredt i huden på navlestrengen og gjennom fascia og peritoneum.
    2. Sett en 10 mm trokar gjennom navlestrengen, og produserer pneumoperitoneum med intraperitonealt trykk på ca. 13-14 mmHg. Sett inn et laparoskop (med lyskilde og kameraer) via trokaren.
    3. Gjør tre andre små snitt på ~ 5 mm brede i underlivet og sett 5 mm trokarer gjennom bukveggen inn i hulrommet. Sett inn instrumenter for manipulering via de tre andre 5 mm trokarene (figur 1).
    4. Identifiser egglederne under laparoskopi. Grip og løft rørene nær fimbriae og bind en ligatur rundt røret med en 2-0 / T silke sutur.
      MERK: Dette trinnet brukes for å forhindre at endometriale tumorceller kommer inn i bukhulen langs egglederne fra livmorhulen.
    5. Ta bukhinnevasken med 100 ml normal saltvann før betydelig håndtering eller manipulering av livmoren. Samle vaskevæsken for cytologi.
    6. Åpne fluorescensmodusen til det endoskopiske fluorescensavbildningssystemet (se trinn 5.2). Løft ensidig bekken infundibulum ligament og livmor for å avsløre lateral peritoneum og se etter fluorescens lymfatiske kar.
      MERK: Hvis det ikke er identifisert fluorescenslym lymfekar, er det lov å injisere ICG gjentatte ganger.
  2. SLN-tilordning
    1. Endoskopisk fluorescensavbildningssystempreparering (PINPOINT).
    2. Juster fluorescensmodusen til nær-infrarød laser (eksitasjonslys, 805 nm) for det beste synsfeltet.
      MERK: Det endoskopiske fluorescensavbildningssystemet har flere moduser, for eksempel HD (High definition) hvitt lys, SPY fluorescens, PINPOINT fluorescens og SPY CSF-modus, og kirurgen kan bytte til en annen modus om nødvendig.
  3. Identifiser SLNer under en fluorescens laparoskopi.
    1. Hold en ultralyd skalpell og tannløse tang med hver hånd (utført av kirurgen).
      MERK: Assistenten griper tannløse tang for å samarbeide med kirurgen.
    2. Løft og åpne bukhinnen, skille sub-peritoneal fett og bindevev for å avsløre de nødvendige strukturer, inkludert urinlederen, indre iliac kar, og obturator nerver i henhold til indikasjonen av grønn fluorescens lymfatiske linjer, samt å beskytte dem mot skade.
      MERK: En ultralyd skalpell med aktivering brukes til å kutte vevet, mens en inaktivert skalpell kan brukes til stump disseksjon.
    3. Vær oppmerksom på SLN-ene som dekkes av bukhinnen ca. 5-10 min etter ICG-injeksjon.
      MERK: Vanligvis er SLNs til stede sammen med fluorescens lymfatiske kar fra begge sider av livmorhalsen til minst høyden på det vanlige iliac blodkaret. Av og til dukker SLN-ene opp ved siden av abdominal aorta. PINPOINT-utstyr har flere moduser, inkludert hvitt lys, fluorescens og svart-hvitt-modus. Veksling mellom flere modi bidrar til å bestemme plasseringen av SLNer.

6. Intraoperativ SLN biopsi

  1. Finn SLN, den første kartlagte lymfeknuten langs drenering fra parametrium i hvert hemi-bekken, og bruk flere moduser for å bekrefte det. Utsett SLN-ene fullstendig for fullstendig reseksjon (figur 3).
  2. Grip og løft SLN ved tannløse tang og utfør en fullstendig reseksjon av lymfeknuten langs periferien av lymfeknuten i hvitt lys.
    MERK: Unngå skade på lymfeknute, noe som kan føre til forurensning med tumorceller.
  3. Legg de fjernede SLN-ene i obturatorfossa eller legg dem i en liten, enkel pose. Etter at livmoren er helt fjernet og tatt ut gjennom skjeden, blir bilaterale SLNer tatt helt ut gjennom skjeden i stedet for gjennom 5 mm trokaråpningen for å unngå fragmentering.
  4. Send de fjernede lymfeknuter til patologiavdelingen for patologisk ultrastaging.
  5. Under operasjonen, resect forstørrede eller mistenkelige lymfeknuter samtidig og sende dem til patologisk undersøkelse.
  6. Registrer plasseringen av SLNer på standardiserte intraoperative datainnsamlingsskjemaer.
  7. Hvis SLN-kartlegging mislykkes på en eller begge sider, utfør sidespesifikk lymfadenektomi i henhold til NCCN-retningslinjene.
    MERK: Hvis det ikke er noen fluorescerende node i hemipelet, fortsett å søke den kartlagte noden langs lymfekarene til paraaortaområdet på grunn av muligheten for kartlegging på uventede steder. En mislykket SLN-kartlegging på hver side betyr at enhver fluorescerende grønn node ikke er synlig med eller uten fluorescerende grønne lymfatiske kar under fluorescens laparoskopsystemet på hver side av bekkenet og paraaortaområdet.
  8. Utfør en total hysterektomi pluss bilateral salpingektomi.
    MERK: Siden dette var en 28 år gammel pasient med tidlig endometrioid kreft som hadde et sterkt ønske om fruktbarhet bevaring og normal-vises ovariekreft og hadde ingen tilsynelatende familiehistorie med bryst / eggstokkkreft eller Lynch syndrom, ovarian bevaring kunne vurderes.
  9. Indwell et dreneringsrør for potensiell restvæske i bekkenet.
  10. Fjern laparoskopet og slipp gassen fra magen. Lukk snittene i navlestrengen og underlivet med en enkelt maske med 2-0/T silke sutur.

7. Postoperativ SLN ultrastaging20

  1. Klipp SLN langs maksimal diameter og mikro-seksjonert 50 μm fra hverandre for å få tre hematoksylin-eosin (H&E) lysbilder og en immunhiistokjemi (IHC) lysbilde med anti-cytokeratin antistoff (AE1 / AE3).
    MERK: Ultrastaging innebærer tynn seriell seksjonering av brutto SLN. Cytokeratin IHC er ikke viktig. Ingen standardprotokoll er for ultrastaging.
  2. Lymfeknutemetastaser ble beskrevet som makrometastaser (>2 mm), mikrometastaser (0,2-2,0 mm) eller isolerte tumorceller (ITC) i henhold til klassifiseringen av American Joint Committee on Cancer (AJCC)21.
  3. Rapporter den postoperative patologien med detaljer om tumorstørrelse, histopologisk type og klasse, myometrial invasjon, lymfevaskulær plassinvolvering, cervical stromal involvering, antall og status per lymfeknuter, og cytologien til peritoneal vask.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Pasienten i dette tilfellet var en 28 år gammel kvinne med uregelmessig vaginal blødning i 2 år, og hun ble diagnostisert med en abnormitet av endometriumet for 4 måneder siden. Transvaginal ultralydundersøkelse avslørte en heterogen endometrial tykkelse med en adnektale masse. Abdominopelvic magnetisk resonansavbildning (MR) demonstrerte en 51 mm x 56 mm x 88 mm masse med en klar grense innenfor livmorhulen under et høyt T2WI-signal på et lokalt sykehus. Deretter ble hun evaluert av hysteroskopi, og den endometriale lesjonen ble dissekert. De patologiske resultatene viste grad 1 endometrial kreft. Denne pasienten kom til sykehuset for videre behandling med et sterkt fruktbarhetskrav. Etter en omfattende evaluering (inkludert en annen MR-undersøkelse som viste et uregelmessig signal om endometrium på sykehus, figur 4) og signering informert samtykke, opplevde hun fertilitet bevaring behandling. Imidlertid avslørte den andre hysteroskopien på sykehuset overfladisk myometrial invasjon, en kontraindikasjon av fruktbarhet bevaring. Til slutt, etter at pasienten ble informert om tilstanden hennes, bestemte hun seg for å gjennomgå en total hysterektomi + bilateral salpingektomi + SLN-kartlegging.

Livmorhalsen ble injisert med fortynnet ICG ved henholdsvis 3 og 9 posisjoner overfladisk og dypt (figur 2). Deretter ble lymfekarene og SLN-ene fluorescerende merket, noe som tillot anerkjennelse under ulike fargemoduser (grønn for fluorescensmodus og blå og rød for fargesegmentert modus) i Pinpoint Endoscopic Fluorescence Imaging system (Figur 3). Deretter utførte patologiavdelingen H&E- og IHC-farging av SLN (figur 5 og figur 6) og ultrastaging av SLN. Iscenesettelsesresultatene viste en negativ metastaseproduksjon.

Figure 1
Figur 1: Antiseptisk forberedelsesomfang av SLN-kartlegging i EF med laparoskopi. Den svarte pilen angir midtaksillære linjer. De nummererte røde sirklene indikerer stedene til fire trokarer på bukveggen. Sirkel nr. 2 er for 10 mm trokar. Resten av sirklene er for 5 mm trokarer. Avstanden mellom sirkler Nr. 2 og 3 er rundt fire fingerbreadths. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 2
Figur 2: Illustrasjon av SLN-kartleggingen i EC. (A) Anatomisk diagram over SLN i bekkenet. Den mørkegrønne linjen representerer retningen av lymfatisk drenering. Piler indikerer SLN lymfeknuter i dette tilfellet (gul pil presenterer lymfeknuten som ligger mellom høyre ytre og indre iliac-kar, brun pil demonstrerer SLN i venstre obturator foramen, og svart pil viser forstørret lymfeknute på venstre iliac vene). Blå flat linje angir klokkeretninger. (B) Plassering av injeksjonssted i livmorhalsen. ICG = indocyanin grønn. Grønne prikker indikerer injeksjonsflekker. Den blå firkanten viser 3 og 9-posisjonene til ectocervixen. (C) Forstørret cervix diagram: grønne prikker indikerer overfladiske og dype Cervical injeksjoner. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 3
Figur 3: Intraoperativ avbildning av SLN i EC. (A) Fluorescensmodus. Den grønne pilen angir SLN under fluorescensmodus. (B) Fargesegmentert fluorescensmodus. Den gule pilen indikerer lymfeknuten under fargesegmentert modus. (C) Florescensmodus for sentinel lymfeknuter i dette tilfellet. (D) Fargesegmentert fluorescensmodus for sentinel lymfeknuter i dette tilfellet. HD: Høy definisjon; CSF: Fargesegmentert fluorescens. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 4
Figur 4: MR til EC-pasient. (A) Uregelmessig signal fra endometriumet som ligger i nedre livmorhule (piler) på T1WI. (B) Uregelmessig signal fra endometrium (piler) på T2WI. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 5
Figur 5: H&E farging av EC- og IHC-farging av SLN. (A) H&E farging av myoinvasjon i EF. (B) H&E farging av SLN. (C) IHC farging av AE1/AE3 (AE1/AE3 kan farge myofibroblaster og glatte muskelceller og indikere gjenværende tumorceller) i SLN. 2,5x og 5x refererer til forstørrelsen under mikroskopet. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 6
Figur 6: IHC-farging av EC-pasienter. (A) IHC farging av østrogen reseptor (ER) med fem forstørrelser. (B) IHC farging av progesteronreseptor (PR). (C) IHC farging av P53. (D) IHC farging av Ki67. (E) IHC-farging av MLH1. (F) IHC-farging av MSH2. (G) IHC-farging av PMS2. (H) IHC farging av MSH6. Alle bildene er tatt med 5x forstørrelse. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Tabell 1: Sammenligning mellom sporstoffer av blått fargestoff, ICG og Tc99. Klikk her for å laste ned denne tabellen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

SLN-kartlegging og biopsi er en mer selektiv og skreddersydd lymfeknute disseksjonstilnærming som har blitt brukt i klinikken i nesten 20 år. Innen EF har SLN-kartlegging og biopsi i økende grad blitt anbefalt av flere retningslinjer på grunn av deres høye diagnostiske effektivitet i tidlig fase EC, og oppnår generelle og bilaterale deteksjonsrater på henholdsvis 89% -95% og 52% -82%, med en følsomhet på 84% -100% og negativ prediktiv verdi på henholdsvis 97%-100%22. Den nåværende studien rapporterer en typisk EC-pasient som utførte SLN-kartlegging og beskrev SLN-protokollen i detalj fra ICG-injeksjon til SLN-biopsi.

SLN-kartlegging er mulig med ulike fargestoffer. Tidligere forskning på lymfeknute iscenesettelse av bryst- og endometriekreft påført blått fargestoff (vanligvis metylenblå eller isosulfanblå (ISB), radiocolloid, eller begge23,24,25,26), når god ytelse og nøyaktighet. Som vist i hvitt lys, har de blå fargestoffene nevnt ovenfor blitt mye brukt på grunn av deres bekvemmelighet og det minst komplekse utstyrskravet. Imidlertid hadde ICG-fargestoffet høyere SLN-deteksjonsrater (83%) enn ISB (64%)26. Dermed anses ICG som et bedre alternativ for vellykket deteksjon. Sammenligning mellom ulike fargestoffer er angitt i tabell 1 i henhold til SGO-konsensus27.

I tillegg til trackerfarger påvirker injeksjonsposisjoner også deteksjonsraten for SLN-kartlegging. Fargeinjeksjon i livmorhalsen kan ikke helt reflektere lymfatisk drenering, selv om prosedyren er relativt enkel og populær i kliniske studier28,29. En hysteroskopisk injeksjon krever mer dyktighet og ligger i nærheten av tumorlesjonen. Myometrial nettstedet er utfordrende å få tilgang til intraoperativt, noe som resulterer i en lav negativ prediktiv rate på 87.50% og en falsk-negativ rate på 33.30%30. I studier med cervical injeksjon var følsomhetsområdet 62,5%-97,5%, mens myometrium injeksjon var 66,70%-94,10%31. En systematisk oversikt inkludert 55 kvalifiserte studier viste en samlet deteksjonsrate på 81% (95% konfidensintervall er fra 77 til 84)32. Dobbeltregistrering fungerer bedre enn enkel deteksjon, uavhengig av injeksjonssted33. I den pågående kliniske studien (NCT04276532), hvor 92 EC-pasienter ble påmeldt, var SLN-kartleggingsdeteksjonsraten så høy som 91,3%, med en total følsomhet på 73,3%. Kombinere Cervical og fundus injeksjoner nådde en høyere para-aorta deteksjonsrate (40,4%) enn cervical injeksjoner alene (4,4%), noe som indikerer at den kombinerte injeksjonen er mer effektiv.

Det er mange mulige årsaker til utilstrekkelig SLN-deteksjon. Anatomisk påvirker Naboth-cysten og postsurgisk unormal bekken kartnøyaktighet. Overdreven fettvev nær livmorhalsen og cervical stenose på grunn av aldring fører også til mislykket kartlegging. Faktorer som kroppsmasseindeks (BMI), ISB-fargestoffbruk og forstørrede noder er knyttet til SLN-tilordningsfeil34. Kontroversielt rapporterte en prospektiv studie inkludert 110 EC-pasienter at fedme og tilstedeværelsen av lymfeknutemetastaser ikke var forbundet med deteksjonssvikt35. Lymfevaskulær rominvasjon kan også føre til svikt i SLN-kartlegging.

Internasjonale retningslinjer anser SLN-kartlegging og biopsi som nødvendige prosedyrer10,18. Det er imidlertid debatter om hvorvidt man skal gjennomføre SLN-kartlegging hos EUs pasienter med middels høy risiko. Pasienter med alvorlig karsinom, klart cellekarsinom og karsinosarkom har høyere risiko for nodemetastase36. Tvert imot har noen studier fastslått at SLN-kartlegging er et trygt alternativ til systematisk lymfadenektomi på grunn av lavere komplikasjonsforekomst37,38 og tilsvarende total overlevelse37. Det kreves flere kliniske studier av høy kvalitet for å bestemme de optimale inkluderingsstandardene.

Avslutningsvis er SLN-kartlegging og biopsi bedre alternativer enn systematisk lymfadenektomi for å gjøre operasjonen så enkel og minimal invasiv som mulig. Det kan til og med forbedre den patologiske fasen av sykdommen ved å bruke en patologisk ultrastaging-metode for å veilede den postoperative adjuvante behandlingen mer nøyaktig. For å maksimere spesifisiteten og følsomheten til SLN-deteksjon, gir denne protokollen tips for SLN-kartlegging og biopsi for å sikre et bedre resultat av operasjonen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne har ingenting å avsløre.

Acknowledgments

Dette arbeidet ble delvis støttet av tilskudd fra National Natural Science Foundation of China (81772777), Shanghai Science and Technology Commission Medical Guidance Project (18411963700), Clinical Research Plan of SHDC (No. SHDC2020CR4079); Shanghai Pujiang Talents Prosjekt (17PJ14014000). Vi takker rettidig hjelp gitt av Fenghua Ma fra radiologi avdeling for MR bilder og Chao Wang fra patologi avdeling for patologiske bilder fra Obstetrikk og Gynecology Hospital of Fudan University.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-mL syringe Becton, Dickinson and Company, USA 301940
Coagulation forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory D0A010
Fluorescence microscope Olympus IX73
Harmonic scalpel Soering GmbH SONOCA190
Hematoxylin-eosin staining Beyotime Biotechnologies Corporation,CN C0107
Immunohistochemical cytokeratin staining MXB Biotechnologies Corporation, CN Kit-0020
Indocyanine green (ICG) Dandong Medical Innovation Pharmaceutical Corporation. 3599-32-4
Pararaffin Sangon biotech Co., Ltd. A601889
Pinpoint Endoscopic Fluorescence Imaging system Novadaq Technoloies Bonita, Springs, FL NA
Propofol Injection Fresenius Kabi Deutschland GmbH D-61346 Bad Homburg v.d.H., Germany H20030124
Silk Braided non-absorbable suture Shanghai Ethicon SA854G
Silk thread Beijing AKIN AIEN International Medical Technology Co.,Ltd. VCPP71D
Suction-Irrigation Tube Shanghai SMAF YX980D
Toothless forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory J41010
Trocar ETHICON Co,. Ltd, USA B10LT, B5LT

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2019. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 69 (1), 7-34 (2019).
  2. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  3. Morice, P., Leary, A., Creutzberg, C., Abu-Rustum, N., Darai, E. Endometrial cancer. Lancet. 387 (10023), London, England. 1094-1108 (2016).
  4. de Boer, S. M., et al. Adjuvant chemoradiotherapy versus radiotherapy alone for women with high-risk endometrial cancer (PORTEC-3): final results of an international, open-label, multicentre, randomised, phase 3 trial. The Lancet. Oncology. 19 (3), 295-309 (2018).
  5. Creasman, W. T., et al. Surgical pathologic spread patterns of endometrial cancer. A Gynecologic Oncology Group Study. Cancer. 60 (8), 2035-2041 (1987).
  6. Bodurtha Smith, A., Fader, A., Tanner, E. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  7. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  8. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  9. Gezer, S., et al. Cervical versus endometrial injection for sentinel lymph node detection in endometrial cancer: a randomized clinical trial. International Journal of Gynecological Cancer. 30 (3), 325-331 (2020).
  10. McMillian, N., Motter, A. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology of Uterine Neoplasms 2021 v1. , Available from: www.nccn.org (2021).
  11. Manca, G., et al. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: Indications, contraindications, and controversies. Clinical Nuclear Medicine. 41 (2), 126-133 (2016).
  12. Digesu, C. S., Weiss, K. D., Colson, Y. L. Near-infrared sentinel lymph node identification in non-small cell lung cancer. JAMA Surgery. 153 (5), 487-488 (2018).
  13. Garau, L. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in small papillary thyroid cancer. A review on novel surgical techniques. Endocrine. 62 (2), 340-350 (2018).
  14. Gonzalez, A. Sentinel lymph node biopsy: Past and present implications for the management of cutaneous melanoma with nodal metastasis. American Journal of Clinical Dermatology. 19, Suppl 1 24-30 (2018).
  15. Levenback, C. F., et al. Lymphatic mapping and sentinel lymph node biopsy in women with squamous cell carcinoma of the vulva: a gynecologic oncology group study. Journal of Clinical Oncology. 30 (31), 3786-3791 (2012).
  16. Protic, M., et al. Prognostic effect of ultra-staging node-negative colon cancer without adjuvant chemotherapy: A prospective national cancer institute-sponsored clinical trial. Journal of the American College of Surgeons. 221 (3), 643-651 (2015).
  17. Price, P. M., Badawi, R. D., Cherry, S. R., Jones, T. Ultra staging to unmask the prescribing of adjuvant therapy in cancer patients: the future opportunity to image micrometastases using total-body 18F-FDG PET scanning. The Journal of Nuclear Medicine. 55 (4), 696-697 (2014).
  18. Concin, N., et al. ESGO/ESTRO/ESP Guidelines for the management of patients with endometrial carcinoma. Virchows Archiv: An International Journal of Pathology. 478 (2), 153-190 (2021).
  19. FIGO Committee on Gynecologic Oncology. FIGO staging for carcinoma of the vulva, cervix, and corpus uteri. International journal of gynaecology and obstetrics: the official organ of the International Federation of Gynaecology and Obstetrics. 125 (2), 97-98 (2014).
  20. Barlin, J. N., et al. The importance of applying a sentinel lymph node mapping algorithm in endometrial cancer staging: beyond removal of blue nodes. Gynecologic Oncology. 125 (3), 531-535 (2012).
  21. Amin, M. B., et al. AJCC Cancer Staging Manual, 8th edition. , Springer. (2017).
  22. Eriksson, A. G. Z., et al. Update on sentinel lymph node biopsy in surgical staging of endometrial carcinoma. Clinical Medicine. 10 (14), (2021).
  23. Kelley, M. C., Hansen, N., McMasters, K. M. Lymphatic mapping and sentinel lymphadenectomy for breast cancer. The American Journal of Surgery. 188 (1), 49-61 (2004).
  24. Sakorafas, G. H., Peros, G. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: what a physician should know, a decade after its introduction in clinical practice. European Journal of Cancer Care. 16 (4), 318-321 (2007).
  25. Niikura, H., et al. Tracer injection sites and combinations for sentinel lymph node detection in patients with endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 131 (2), 299-303 (2013).
  26. Backes, F. J., et al. Prospective clinical trial of robotic sentinel lymph node assessment with isosulfane blue (ISB) and indocyanine green (ICG) in endometrial cancer and the impact of ultrastaging (NCT01818739). Gynecologic Oncology. 153 (3), 496-499 (2019).
  27. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  28. Ballester, M., et al. Detection rate and diagnostic accuracy of sentinel-node biopsy in early stage endometrial cancer: a prospective multicentre study (SENTI-ENDO). The Lancet. Oncology. 12 (5), 469-476 (2011).
  29. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  30. Mayoral, M., et al. F-FDG PET/CT and sentinel lymph node biopsy in the staging of patients with cervical and endometrial cancer. Role of dual-time-point imaging. Revista Espanola de Medicina Nuclear e Imagen Molecular. 36 (1), 20-26 (2017).
  31. Lecointre, L., et al. Diagnostic accuracy and clinical impact of sentinel lymph node sampling in endometrial cancer at high risk of recurrence: A meta-analysis. Journal of Clinical Medicine. 9 (12), (2020).
  32. Bodurtha Smith, A. J., Fader, A. N., Tanner, E. J. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  33. Bonneau, C., Bricou, A., Barranger, E. Current position of the sentinel lymph node procedure in endometrial cancer. Bulletin du Cancer. 98 (2), 133-145 (2011).
  34. Tanner, E. J., et al. Factors associated with successful bilateral sentinel lymph node mapping in endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 138 (3), 542-547 (2015).
  35. Ianieri, M. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in the treatment of endometrial cancer: Why we fail? Results of a prospective multicenter study on the factors associated with failure of node mapping with indocyanine green. Gynecologic and Obstetric Investigation. 84 (4), 383-389 (2019).
  36. Naoura, I., Canlorbe, G., Bendifallah, S., Ballester, M., Daraï, E. Relevance of sentinel lymph node procedure for patients with high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 136 (1), 60-64 (2015).
  37. Schiavone, M. B., et al. Survival of patients with uterine carcinosarcoma undergoing sentinel lymph node mapping. Annals of Surgical Oncology. 23 (1), 196-202 (2016).
  38. Soliman, P. T., et al. A prospective validation study of sentinel lymph node mapping for high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 146 (2), 234-239 (2017).

Tags

Kreftforskning Utgave 174 sentinel lymfeknute kartlegging biopsi endometriekreft laparoskopi
Sentinel lymfeknuter kartlegging og biopsi for endometrial kreft på tidlig stadium med Laparoscopy
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., More

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., Chen, X., Wang, C. Sentinel Lymph Node Mapping and Biopsy for Endometrial Cancer at Early Stage with Laparoscopy. J. Vis. Exp. (174), e63044, doi:10.3791/63044 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter