Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

Sentinel Lymph Node Mapping en Biopsie voor endometriumkanker in een vroeg stadium met laparoscopie

Published: August 19, 2021 doi: 10.3791/63044

Summary

Dit protocol beschrijft de identificatie en resectie van schildwachtklieren om de operatie zo eenvoudig en minimaal invasief mogelijk te maken.

Abstract

Sentinel lymph node (SLN) mapping en biopsie is een veelbelovende techniek voor het visualiseren en evalueren van de lymfeklierstatus bij kanker. Deze aanpak is aanbevolen voor patiënten met een laag risico op endometriumkanker (EC) door gezaghebbende internationale richtlijnen, maar het is niet breed uitgevoerd in China en wereldwijd. Dit werk heeft tot doel gedetailleerde SLN-karterings- en biopsieprocedures te beschrijven om de klinische toepassing te bevorderen. SLN-mapping en postoperatieve pathologische ultrastaging werden uitgevoerd bij een patiënt met een laag risico EC met behulp van indocyaninegroen (ICG) kleurstof om de SLNs onder laparoscopie te volgen en volledig te reseceren voor ultrastaging. Concluderend beschrijft dit protocol details van ICG-injectie en SLN-mapping en biopsie bij EC-patiënten op basis van de ervaringen die zijn opgedaan tijdens de klinische praktijk.

Introduction

Endometriumkanker (EC) is een van de meest voorkomende ziekten in de gynaecologische oncologie en de incidentie ervan stijgt1,2. Chirurgie is de eerstelijnsbehandeling voor EC in een vroeg stadium3,4. De evaluatie van lymfekliermetastase is een essentieel onderdeel van chirurgische stadiëring in EC. De gynaecologische oncologiegroep (GOG) studie 33 toonde aan dat lymfekliermetastasen geassocieerd zijn met een slechte prognose5.

Als een nieuwe en essentiële techniek voor het evalueren van lymfekliermetastase, zijn sentinel lymph node (SLN) mapping en biopsie de afgelopen jaren ontstaan en zijn aanbevolen om te worden gebruikt voor patiënten met schijnbaar baarmoeder-opgesloten EC volgens de National Comprehensive Cancer Network (NCCN) richtlijnen voor baarmoederkanker6,7,8,9,10. SLN mapping is ook uitgebreid toegepast bij tumoren zoals borstkanker11,longkanker12,schildklierkanker13en melanoom14. Pathologische ultrastaging heeft goede prestaties behaald bij colorectale en gynaecologische kanker15,16,17 en wordt aanbevolen door de gezaghebbende Europese richtlijnen18. Hoewel principes van SLN-mapping voor EC-stadiëring zijn opgenomen in internationale richtlijnen10,19,zijn er geen gedetailleerde manipulaties van chirurgie in andere huidige werken.

Dit werk presenteert het protocol voor gedetailleerde SLN-mapping en biopsie met ICG bij een 28-jarige vrouw die klinisch was gediagnosticeerd met EC in een vroeg stadium, waardoor de diagnose van patiënten werd verbeterd en bevorderd.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alle chirurgische procedures met betrekking tot de hier beschreven patiënt werden goedgekeurd door de ethische commissies van het Obstetrics & Gynecology Hospital van de Fudan University in Shanghai, China. Geïnformeerde toestemming werd verkregen van de patiënt.

1. Indicaties voor SLN-mapping met ICG bij EC-patiënten

  1. Zorg ervoor dat patiënten klinisch worden gediagnosticeerd met primaire EC beperkt tot de baarmoeder met lage risicofactoren (graad 1 of 2 endometrioïde carcinomen, pre-chirurgische endometriumlaesie ≤2 cm en myometriale invasie <50%).
  2. Zorg ervoor dat patiënten niet allergisch zijn voor de ontwikkelaar (ICG).
  3. Zorg ervoor dat patiënten vóór de ziekte geen retroperitoneale lymfeklierdissectie om welke reden dan ook hebben ervaren.
  4. Zorg ervoor dat de patiënten de SLN-chirurgische procedures begrijpen en de chirurgische toestemmingsformulieren hebben ondertekend.
  5. Zorg ervoor dat de patiënten geen systematische lymfadenectomie kunnen uitvoeren, maar SLN-mapping voor chirurgische stadiëring om welke reden dan ook.
  6. Zorg ervoor dat de patiënten worden opgenomen in de klinische studie in de SLN-mappinggroep als ze ec met een gemiddeld hoog risico hebben.

2. Voorbereiding van de patiënt

  1. Preoperatieve darmvoorbereiding
    1. Zorg voor laxeermiddelen voor darmvoorbereiding en klysma aan patiënten die meerdere bekken- en buikoperaties hebben ondergaan.
      OPMERKING: Darmvoorbereiding is niet vereist voor patiënten zonder darmchirurgiegeschiedenis.
  2. Preoperatieve dieetvoorbereiding
    1. Vermijd vast voedsel gedurende 8 uur voor de operatie, voorkom een semi-vloeibaar dieet gedurende 6 uur vóór de procedure en stop met drinken gedurende 2 uur vóór de procedure.
  3. Anesthesie
    1. Gebruik intraveneuze middelen (bijv. Propofol) om bewusteloosheid te produceren en voeg enkele neuromusculaire blokkers toe door inhalatie of intraveneuze routes om de benodigde diepte van de anesthesie te bereiken. Gebruik een combinatie van toedieningen voor anesthetisch onderhoud om ervoor te zorgen dat de patiënt bewusteloos en volledig ontspannen is met stabiele vitale functies tijdens de operatie.
      OPMERKING: Het gebruik van anesthetica zal de regels van de afdeling anesthesiologie van elk centrum volgen.
  4. Positie
    1. Zodra de patiënt is verdoofd, laat u de patiënt in de lithotomiepositie zijn met trendelenburgpositie.
  5. Bereid de huid voor op de operatieplaats. Voer het huidpreparaat uit met een antiseptisch preparaat (bijv. povidon-jodium) op een georganiseerde manier vanaf de beoogde plaats van de incisie die uitstraalt naar de randen van het beoogde gebied van blootstelling aan de huid, met de bovengrens van het platte xiphoid-proces, zijranden van middelste oksellijnen en ondergrens van de bovenbeen(figuur 1).

3. Fluorescerende kleurstofbereiding

  1. Indocyanine groen (ICG) bereiding
    1. Los 25 mg ICG op in 20 ml steriel water voor een eindconcentratie van 1,25 mg/ml en schud voorzichtig.

4. ICG injectie

  1. Gebruik een spuit van 2 ml (met de naaldgrootte van 0,6 mm x 32 mm TW LB) om 0,5 ml van de bereide ICG te injecteren om 3 uur en 9 uur van de ectocervix bij respectievelijk de oppervlakkige (2-3 mm) en diepe (1-2 cm) baarmoederhals(figuur 2).
    OPMERKING: In sommige gevallen kunnen ook de ectocervix-posities van 6 en 12 uur worden geselecteerd. ICG moet worden vermeden wanneer het in de cyste van Nessler wordt geïnjecteerd.

5. Intraoperatieve SLN-identificatie

  1. Voorbereiding voor ontwikkeling
    1. Pak de huid rond de navelstreng vast met twee handdoektangen om de buikwand te verheffen. Maak een incisie van ongeveer 10 mm breed in de huid van de navel en door de fascia en het peritoneum.
    2. Breng een trocar van 10 mm door de navelstreng en produceer het pneumoperitoneum met een intraperitoneale druk van ongeveer 13-14 mmHg. Plaats een laparoscoop (met lichtbron en camera's) via de trocar.
    3. Maak drie andere kleine incisies van ~ 5 mm breed in de onderbuik en steek 5 mm trocars door de buikwand in de holte. Plaats instrumenten voor manipulatie via de andere drie trocars van 5 mm(figuur 1).
    4. Identificeer de eileiders onder laparoscopie. Pak de buizen dicht bij fimbriae en til ze op en bind een ligatuur rond de buis met een 2-0 /T zijden hechtdraad.
      OPMERKING: Deze stap wordt gebruikt om te voorkomen dat endometriumtumorcellen de buikholte langs de eileiders van de baarmoederholte binnendringen.
    5. Neem de peritoneale wassingen met 100 ml normale zoutoplossing vóór elke significante behandeling of manipulatie van de baarmoeder. Verzamel het wasvocht voor cytologie.
    6. Open de fluorescentiemodus van het endoscopische fluorescentiebeeldvormingssysteem (zie stap 5.2). Til eenzijdig bekkeninfundibulum ligament en baarmoeder op om het laterale peritoneum te onthullen en zoek naar de fluorescentie lymfevaten.
      OPMERKING: Als er geen fluorescentielymfevaten zijn geïdentificeerd, is het toegestaan om ICG herhaaldelijk te injecteren.
  2. SLN-toewijzing
    1. Endoscopische fluorescentie beeldvormingssysteemvoorbereiding (PINPOINT).
    2. Pas de fluorescentiemodus aan op nabij-infraroodlaser (excitatielicht, 805 nm) voor het beste gezichtsveld.
      OPMERKING: Het endoscopische fluorescentiebeeldvormingssysteem heeft verschillende modi, zoals HD (High Definition) wit licht, SPY-fluorescentie, PINPOINT-fluorescentie en SPY CSF-modus, en de chirurg kan indien nodig overschakelen naar een andere modus.
  3. Identificeer SLNs onder een fluorescentie laparoscopie.
    1. Houd een ultrasoon scalpel en tandeloze tang met elke hand (uitgevoerd door de chirurg).
      OPMERKING: De assistent grijpt tandeloze tang om samen te werken met de chirurg.
    2. Til het peritoneum op en open het, scheid het subperitoneale vet en bindweefsels om de nodige structuren te onthullen, waaronder de urineleider, interne iliacale vaten en obturatorzenuwen volgens de indicatie van groene fluorescentie lymfelijnen, en om ze te beschermen tegen letsel.
      OPMERKING: Een ultrasoon scalpel met activering wordt gebruikt om de weefsels te snijden, terwijl een geïnactiveerd scalpel kan worden gebruikt voor stompe dissectie.
    3. Observeer de SLNs bedekt door het peritoneum ongeveer 5-10 minuten na ICG-injectie.
      OPMERKING: Meestal presenteren SLNs samen met de fluorescentielymfevaten van beide zijden van de baarmoederhals tot ten minste de hoogte van het gemeenschappelijke iliacale bloedvat. Af en toe komen de SLNs naast de abdominale aorta tevoorschijn. PINPOINT-apparatuur heeft meerdere modi, waaronder wit licht, fluorescentie en zwart-witmodi. Schakelen tussen meerdere modi helpt bij het bepalen van de locatie van SLNs.

6. Intraoperatieve SLN-biopsie

  1. Lokaliseer de SLN, de eerste in kaart gebrachte lymfeklier langs de drainage van parametrium in elk hemi-bekken, en gebruik meerdere modi om dit te bevestigen. Stel de SLN's volledig bloot voor volledige resectie(figuur 3).
  2. Pak en verhef de SLN met een tandeloze tang en voer een volledige resectie van de lymfeklier uit langs de periferie van de lymfeklier in wit licht.
    OPMERKING: Vermijd lymfeklierschade, die besmetting met tumorcellen kan veroorzaken.
  3. Plaats de verwijderde SLNs in de obturator fossa of doe ze in een kleine, eenvoudige zak. Nadat de baarmoeder volledig is verwijderd en via de vagina is verwijderd, worden bilaterale SLNs volledig via de vagina verwijderd in plaats van via de trocar-opening van 5 mm om fragmentatie te voorkomen.
  4. Stuur de verwijderde lymfeklieren naar de afdeling pathologie voor pathologische ultrastaging.
  5. Reseceer tijdens de operatie de vergrote of verdachte lymfeklieren tegelijkertijd en stuur ze voor pathologisch onderzoek.
  6. Noteer de locaties van SLNs op gestandaardiseerde intraoperatieve gegevensverzamelingsformulieren.
  7. Als SLN-mapping aan één of beide zijden faalt, voer dan zijdelingse specifieke lymfadenectomie uit volgens de NCCN-richtlijnen.
    OPMERKING: Als er geen fluorescerend knooppunt in de hemipelvis is, blijf dan zoeken naar de in kaart gebrachte knoop langs de lymfevaten tot het para-aortagebied vanwege de mogelijkheid om op onverwachte locaties in kaart te worden gebracht. Een mislukte SLN-mapping aan weerszijden betekent dat een fluorescerend groen knooppunt niet zichtbaar is met of zonder fluorescerende groene lymfevaten onder het fluorescentie laparoscoopsysteem aan weerszijden van het bekken en het para-aortagebied.
  8. Voer een totale hysterectomie plus bilaterale salpingectomie uit.
    OPMERKING: Aangezien dit een 28-jarige patiënt was met endometrioïde kanker in een vroeg stadium die een sterk verlangen had naar vruchtbaarheidsbehoud en normaal lijkende eierstokkanker en geen duidelijke familiegeschiedenis van borst- / eierstokkanker of Lynch-syndroom had, kon eierstokbehoud worden overwogen.
  9. Indwell een drainagebuis voor mogelijk restvocht in het bekken.
  10. Verwijder de laparoscoop en laat het gas uit de buik los. Sluit de incisies in de navel en onderbuik met een enkele steek door 2-0/T zijden hechtdraad.

7. Postoperatieve SLN ultrastaging20

  1. Snijd de SLN langs de maximale diameter en micro-sectie 50 μm uit elkaar om drie hematoxyline-eosine (H & E) dia's en één immunohistochemie (IHC) dia met anti-cytokeratine antilichaam (AE1 / AE3) te krijgen.
    OPMERKING: Ultrastaging omvat dunne seriële sectie van de bruto SLN. Cytokeratine IHC is niet essentieel. Geen enkel standaardprotocol is voor ultrastaging.
  2. Lymfekliermetastasen werden beschreven als macrometastasen (>2 mm), micrometastasen (0,2-2,0 mm) of geïsoleerde tumorcellen (ITC's) volgens de classificatie van het American Joint Committee on Cancer (AJCC)21.
  3. Rapporteer de postoperatieve pathologie met details over de tumorgrootte, histologische type en graad, myometriale invasie, betrokkenheid van lymfovasculaire ruimte, cervicale stromale betrokkenheid, aantal en status van per lymfeklieren en de cytologie van peritoneale wassingen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Patiënte in het onderhavige geval was een 28-jarige vrouw met gedurende 2 jaar onregelmatige vaginale bloedingen en zij werd 4 maanden geleden gediagnosticeerd met een afwijking van het baarmoederslijmvlies. Transvaginaal echografisch onderzoek toonde een heterogene endometriumdikte met een adnexale massa. Abdominopelvische magnetische resonantie beeldvorming (MRI) toonde een massa van 51 mm x 56 mm x 88 mm met een duidelijke grens in de baarmoederholte onder een hoog T2WI-signaal in een lokaal ziekenhuis. Vervolgens werd ze geëvalueerd door hysteroscopie en werd de endometriumlaesie ontleed. De pathologische resultaten toonden graad 1 endometriumkanker. Deze patiënt kwam naar het ziekenhuis voor verdere behandeling met een sterke vruchtbaarheidsbehoefte. Na een uitgebreide evaluatie (inclusief een ander MRI-onderzoek dat een onregelmatig signaal van endometrium in het ziekenhuis liet zien, figuur 4)en het ondertekenen van geïnformeerde toestemming, onderging ze een vruchtbaarheidsbehandeling. De tweede hysteroscopie in het ziekenhuis onthulde echter een oppervlakkige myometriale invasie, een contra-indicatie voor vruchtbaarheidsbehoud. Uiteindelijk, nadat de patiënt op de hoogte was gesteld van haar toestand, besloot zij een totale hysterectomie + bilaterale salpingectomie + SLN-mapping te ondergaan.

De baarmoederhals werd geïnjecteerd met verdunde ICG op respectievelijk 3 en 9 uur positie oppervlakkig en diep(figuur 2). Vervolgens werden de lymfevaten en SLNs fluorescerend gelabeld, waardoor ze konden worden herkend onder verschillende kleurmodi (groen voor fluorescentiemodus en blauw en rood voor kleurgesegmenteerde modus) in het Pinpoint Endoscopic Fluorescence Imaging-systeem (Figuur 3). Vervolgens voerde de afdeling pathologie H&E- en IHC-kleuring van SLN(figuur 5 en figuur 6)en ultrastaging van SLN uit. De staging-resultaten toonden een negatieve metastase-output.

Figure 1
Figuur 1: Antiseptische bereiding reikwijdte van SLN mapping in EC met laparoscopie. De zwarte pijl geeft de middelste oksellijnen aan. De genummerde rode cirkels geven de plaatsen van vier trocars op de buikwand aan. Cirkel nr. 2 is voor de 10 mm trocar. De rest van de cirkels zijn voor 5 mm trocars. De afstand tussen cirkels nr. 2 en 3 is ongeveer vier vingerbreadden. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 2
Figuur 2: Illustratie van de SLN mapping in EC. (A) Anatomisch diagram van de SLN in het bekken. De donkergroene lijn geeft de richting van de lymfedrainage aan. Pijlen geven in dit geval SLN-lymfeklieren aan (gele pijl presenteert de lymfeklier tussen de rechter externe en interne iliacale vaten, bruine pijl toont de SLN in het linker obturatorforamen en zwarte pijl toont vergrote lymfeklier op de linker iliacale ader). Blauwe platte lijn geeft de klokrichtingen aan. (B)Injectiepleklocaties in de baarmoederhals. ICG = indocyanine groen. Groene stippen geven de injectievlekken aan. Het blauwe vierkant toont de 3- en 9-uursposities van de ectocervix. (C) Vergroot baarmoederhalsdiagram: groene stippen geven oppervlakkige en diepe cervicale injecties aan. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 3
Figuur 3: Intraoperatieve beeldvorming van de SLN in EC. (A) Fluorescentiemodus. De groene pijl geeft de SLN aan onder fluorescentiemodus. (B) Kleurgesegmenteerde fluorescentiemodus. De gele pijl geeft de lymfeklier aan in de kleursegmentatiemodus. (C) Florescence mode van schildwachtklieren van dit geval. (D) Kleur-gesegmenteerde fluorescentiemodus van schildwachtklieren van dit geval. HD: Hoge definitie; CSF: Kleur-gesegmenteerde fluorescentie. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 4
Figuur 4: De MRI van EC-patiënt. (A) Onregelmatig signaal van het endometrium in de onderste baarmoederholte (pijlen) op T1WI. (B) Onregelmatig signaal van het endometrium (pijlen) op T2WI. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 5
Figuur 5: H&E kleuring van EC en IHC kleuring van SLN. (A) H & E-kleuring van myo-invasie in EC. (B) H & E-kleuring van SLN. (C)IHC-kleuring van AE1/AE3 (AE1/AE3 kan myofibroblasten en gladde spiercellen kleuren en wijzen op de resterende tumorcellen) in SLN. 2,5x en 5x verwijzen naar de vergroting onder de microscoop. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 6
Figuur 6: IHC-kleuring bij EG-patiënten. (A)IHC-kleuring van oestrogeenreceptor (ER) met vijf vergrotingen. (B) IHC kleuring van progesteron receptor (PR). (C) IHC-kleuring van P53. (D) IHC kleuring van Ki67. (E) IHC-kleuring van MLH1. (F) IHC-kleuring van MSH2. (G) IHC-kleuring van PMS2. (H) IHC-kleuring van MSH6. Alle beelden worden vastgelegd met 5x vergroting. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Tabel 1: Vergelijking tussen tracers van blauwe kleurstof, ICG en Tc99. Klik hier om deze tabel te downloaden.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

SLN mapping en biopsie is een meer selectieve en op maat gemaakte lymfeklierdissectie aanpak die al bijna 20 jaar in de kliniek wordt toegepast. Op het gebied van EC zijn SLN-mapping en biopsie in toenemende mate aanbevolen door verschillende richtlijnen vanwege hun hoge diagnostische efficiëntie in het vroege stadium van EC, waarbij algemene en bilaterale detectiepercentages van respectievelijk 89% -95% en 52% -82% worden bereikt, met een gevoeligheid van 84% -100% en een negatieve voorspellende waarde van 97% -100%22. De huidige studie rapporteert een typische EC-patiënt die SLN-mapping uitvoerde en het SLN-protocol in detail beschreef van ICG-injectie tot SLN-biopsie.

SLN mapping is haalbaar met verschillende kleurstoffen. Eerder onderzoek naar lymfeklierstadiëring van borst- en endometriumkankers toegepaste blauwe kleurstof (meestal methyleenblauw of isosulfaanblauw (ISB), radiocolloïde, of beide23,24,25,26), het bereiken van goede prestaties en nauwkeurigheid. Zoals te zien is in wit licht, zijn de hierboven genoemde blauwe kleurstoffen op grote schaal gebruikt vanwege hun gemak en de minst complexe apparatuurvereisten. De ICG-kleurstof had echter hogere SLN-detectiepercentages (83%) dan de ISB (64%)26. ICG wordt dus beschouwd als een betere optie voor succesvolle detectie. Vergelijking tussen verschillende kleurstoffen is weergegeven in tabel 1 volgens de SGO-consensus27.

Naast trackerkleurstoffen hebben injectieposities ook invloed op de detectiesnelheden van SLN-mapping. Kleurstofinjectie in de baarmoederhals kan de lymfedrainage niet volledig weerspiegelen, hoewel de procedure relatief eenvoudig en populair is in klinische onderzoeken28,29. Een hysteroscopische injectie vereist meer vaardigheid en bevindt zich in de buurt van de tumorlaesie. De myometriale site is een uitdaging om intraoperatief toegankelijk te zijn, wat resulteert in een laag negatief voorspellend percentage van 87,50% en een vals-negatief percentage van 33,30%30. In studies met cervicale injectie was het gevoeligheidsbereik 62,5% -97,5%, terwijl myometriuminjectie 66,70% -94,10%was 31. Een systematische review met 55 in aanmerking komende studies onthulde een algemeen detectiepercentage van 81% (95% betrouwbaarheidsinterval is van 77 tot 84)32. Dubbele detectie werkt beter dan enkele detectie, ongeacht de injectielocatie33. In de lopende klinische studie (NCT04276532), waarbij 92 EC-patiënten werden geïncludeerd, was het detectiepercentage van SLN-mapping zo hoog als 91,3%, met een totale gevoeligheid van 73,3%. Het combineren van cervicale en fundusinjecties bereikte een hoger para-aortadetectiepercentage (40,4%) dan cervicale injecties alleen (4,4%), wat aangeeft dat de gecombineerde injectie efficiënter is.

Er zijn veel mogelijke redenen voor onvoldoende SLN-detectie. Anatomisch gezien beïnvloeden de Naboth-cyste en het postoperatieve abnormale bekken de nauwkeurigheid van het in kaart brengen. Overmatig vetweefsel in de buurt van de baarmoederhals en cervicale stenose als gevolg van veroudering leiden ook tot mislukte mapping. Factoren zoals body mass index (BMI), ISB-kleurstofgebruik en vergrote knooppunten zijn geassocieerd met SLN-mappingfout34. Controversieel is dat een prospectieve studie met 110 EC-patiënten meldde dat obesitas en de aanwezigheid van lymfekliermetastasen niet geassocieerd waren met detectiefalen35. Lymfovasculaire ruimte-invasie kan ook leiden tot het falen van SLN-mapping.

Internationale richtlijnen beschouwen SLN-kartering en biopsie als noodzakelijke procedures10,18. Er zijn echter discussies over het al dan niet uitvoeren van SLN-mapping bij EC-patiënten met een gemiddeld hoog risico. Patiënten met ernstig carcinoom, heldercellig carcinoom en carcinosarcoom hebben een hoger risico op knoopmetastase36. Integendeel, sommige onderzoeken hebben vastgesteld dat SLN-mapping een veilig alternatief is voor systematische lymfadenectomie vanwege lagere complicaties37,38 en gelijkwaardige totale overleving37. Er zijn meer klinische onderzoeken van hoge kwaliteit nodig om de optimale inclusienormen te bepalen.

Kortom, SLN-mapping en biopsie zijn betere opties dan systematische lymfadenectomie om de operatie zo eenvoudig en minimaal invasief mogelijk te maken. Het kan zelfs het pathologische stadium van de ziekte verbeteren door een pathologische ultrastaging-methode te gebruiken om de postoperatieve adjuvante therapie nauwkeuriger te begeleiden. Voor het maximaliseren van de specificiteit en gevoeligheid van SLN-detectie, biedt dit protocol tips voor SLN-mapping en biopsie om een beter resultaat van de operatie te garanderen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door subsidies van de National Natural Science Foundation of China (81772777), Shanghai Science and Technology Commission Medical Guidance Project (18411963700), Clinical Research Plan van SHDC (nr. SHDC2020CR4079); Shanghai Pujiang Talenten Project (17PJ1401400). We bedanken de tijdige hulp van Fenghua Ma van de afdeling radiologie voor MR-beelden en Chao Wang van de afdeling pathologie voor pathologische beelden van het Obstetrics and Gynecology Hospital van de Fudan University.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-mL syringe Becton, Dickinson and Company, USA 301940
Coagulation forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory D0A010
Fluorescence microscope Olympus IX73
Harmonic scalpel Soering GmbH SONOCA190
Hematoxylin-eosin staining Beyotime Biotechnologies Corporation,CN C0107
Immunohistochemical cytokeratin staining MXB Biotechnologies Corporation, CN Kit-0020
Indocyanine green (ICG) Dandong Medical Innovation Pharmaceutical Corporation. 3599-32-4
Pararaffin Sangon biotech Co., Ltd. A601889
Pinpoint Endoscopic Fluorescence Imaging system Novadaq Technoloies Bonita, Springs, FL NA
Propofol Injection Fresenius Kabi Deutschland GmbH D-61346 Bad Homburg v.d.H., Germany H20030124
Silk Braided non-absorbable suture Shanghai Ethicon SA854G
Silk thread Beijing AKIN AIEN International Medical Technology Co.,Ltd. VCPP71D
Suction-Irrigation Tube Shanghai SMAF YX980D
Toothless forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory J41010
Trocar ETHICON Co,. Ltd, USA B10LT, B5LT

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2019. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 69 (1), 7-34 (2019).
  2. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  3. Morice, P., Leary, A., Creutzberg, C., Abu-Rustum, N., Darai, E. Endometrial cancer. Lancet. 387 (10023), London, England. 1094-1108 (2016).
  4. de Boer, S. M., et al. Adjuvant chemoradiotherapy versus radiotherapy alone for women with high-risk endometrial cancer (PORTEC-3): final results of an international, open-label, multicentre, randomised, phase 3 trial. The Lancet. Oncology. 19 (3), 295-309 (2018).
  5. Creasman, W. T., et al. Surgical pathologic spread patterns of endometrial cancer. A Gynecologic Oncology Group Study. Cancer. 60 (8), 2035-2041 (1987).
  6. Bodurtha Smith, A., Fader, A., Tanner, E. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  7. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  8. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  9. Gezer, S., et al. Cervical versus endometrial injection for sentinel lymph node detection in endometrial cancer: a randomized clinical trial. International Journal of Gynecological Cancer. 30 (3), 325-331 (2020).
  10. McMillian, N., Motter, A. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology of Uterine Neoplasms 2021 v1. , Available from: www.nccn.org (2021).
  11. Manca, G., et al. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: Indications, contraindications, and controversies. Clinical Nuclear Medicine. 41 (2), 126-133 (2016).
  12. Digesu, C. S., Weiss, K. D., Colson, Y. L. Near-infrared sentinel lymph node identification in non-small cell lung cancer. JAMA Surgery. 153 (5), 487-488 (2018).
  13. Garau, L. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in small papillary thyroid cancer. A review on novel surgical techniques. Endocrine. 62 (2), 340-350 (2018).
  14. Gonzalez, A. Sentinel lymph node biopsy: Past and present implications for the management of cutaneous melanoma with nodal metastasis. American Journal of Clinical Dermatology. 19, Suppl 1 24-30 (2018).
  15. Levenback, C. F., et al. Lymphatic mapping and sentinel lymph node biopsy in women with squamous cell carcinoma of the vulva: a gynecologic oncology group study. Journal of Clinical Oncology. 30 (31), 3786-3791 (2012).
  16. Protic, M., et al. Prognostic effect of ultra-staging node-negative colon cancer without adjuvant chemotherapy: A prospective national cancer institute-sponsored clinical trial. Journal of the American College of Surgeons. 221 (3), 643-651 (2015).
  17. Price, P. M., Badawi, R. D., Cherry, S. R., Jones, T. Ultra staging to unmask the prescribing of adjuvant therapy in cancer patients: the future opportunity to image micrometastases using total-body 18F-FDG PET scanning. The Journal of Nuclear Medicine. 55 (4), 696-697 (2014).
  18. Concin, N., et al. ESGO/ESTRO/ESP Guidelines for the management of patients with endometrial carcinoma. Virchows Archiv: An International Journal of Pathology. 478 (2), 153-190 (2021).
  19. FIGO Committee on Gynecologic Oncology. FIGO staging for carcinoma of the vulva, cervix, and corpus uteri. International journal of gynaecology and obstetrics: the official organ of the International Federation of Gynaecology and Obstetrics. 125 (2), 97-98 (2014).
  20. Barlin, J. N., et al. The importance of applying a sentinel lymph node mapping algorithm in endometrial cancer staging: beyond removal of blue nodes. Gynecologic Oncology. 125 (3), 531-535 (2012).
  21. Amin, M. B., et al. AJCC Cancer Staging Manual, 8th edition. , Springer. (2017).
  22. Eriksson, A. G. Z., et al. Update on sentinel lymph node biopsy in surgical staging of endometrial carcinoma. Clinical Medicine. 10 (14), (2021).
  23. Kelley, M. C., Hansen, N., McMasters, K. M. Lymphatic mapping and sentinel lymphadenectomy for breast cancer. The American Journal of Surgery. 188 (1), 49-61 (2004).
  24. Sakorafas, G. H., Peros, G. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: what a physician should know, a decade after its introduction in clinical practice. European Journal of Cancer Care. 16 (4), 318-321 (2007).
  25. Niikura, H., et al. Tracer injection sites and combinations for sentinel lymph node detection in patients with endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 131 (2), 299-303 (2013).
  26. Backes, F. J., et al. Prospective clinical trial of robotic sentinel lymph node assessment with isosulfane blue (ISB) and indocyanine green (ICG) in endometrial cancer and the impact of ultrastaging (NCT01818739). Gynecologic Oncology. 153 (3), 496-499 (2019).
  27. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  28. Ballester, M., et al. Detection rate and diagnostic accuracy of sentinel-node biopsy in early stage endometrial cancer: a prospective multicentre study (SENTI-ENDO). The Lancet. Oncology. 12 (5), 469-476 (2011).
  29. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  30. Mayoral, M., et al. F-FDG PET/CT and sentinel lymph node biopsy in the staging of patients with cervical and endometrial cancer. Role of dual-time-point imaging. Revista Espanola de Medicina Nuclear e Imagen Molecular. 36 (1), 20-26 (2017).
  31. Lecointre, L., et al. Diagnostic accuracy and clinical impact of sentinel lymph node sampling in endometrial cancer at high risk of recurrence: A meta-analysis. Journal of Clinical Medicine. 9 (12), (2020).
  32. Bodurtha Smith, A. J., Fader, A. N., Tanner, E. J. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  33. Bonneau, C., Bricou, A., Barranger, E. Current position of the sentinel lymph node procedure in endometrial cancer. Bulletin du Cancer. 98 (2), 133-145 (2011).
  34. Tanner, E. J., et al. Factors associated with successful bilateral sentinel lymph node mapping in endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 138 (3), 542-547 (2015).
  35. Ianieri, M. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in the treatment of endometrial cancer: Why we fail? Results of a prospective multicenter study on the factors associated with failure of node mapping with indocyanine green. Gynecologic and Obstetric Investigation. 84 (4), 383-389 (2019).
  36. Naoura, I., Canlorbe, G., Bendifallah, S., Ballester, M., Daraï, E. Relevance of sentinel lymph node procedure for patients with high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 136 (1), 60-64 (2015).
  37. Schiavone, M. B., et al. Survival of patients with uterine carcinosarcoma undergoing sentinel lymph node mapping. Annals of Surgical Oncology. 23 (1), 196-202 (2016).
  38. Soliman, P. T., et al. A prospective validation study of sentinel lymph node mapping for high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 146 (2), 234-239 (2017).

Tags

Kankeronderzoek Nummer 174 schildwachtklier mapping biopsie endometriumkanker laparoscopie
Sentinel Lymph Node Mapping en Biopsie voor endometriumkanker in een vroeg stadium met laparoscopie
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., More

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., Chen, X., Wang, C. Sentinel Lymph Node Mapping and Biopsy for Endometrial Cancer at Early Stage with Laparoscopy. J. Vis. Exp. (174), e63044, doi:10.3791/63044 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter