Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Verbeterde renale denervatie verminderde hypertensie geïnduceerd door angiotensine II-infusie

Published: May 26, 2022 doi: 10.3791/63719
* These authors contributed equally

Summary

Hier presenteren we een protocol voor renale sympathische denervatie (RDN) bij muizen met hypertensie geïnduceerd door angiotensine II-infusie. De procedure is herhaalbaar, handig en maakt het mogelijk om de regulerende mechanismen van RDN op hypertensie en cardiale hypertrofie te bestuderen.

Abstract

De voordelen van renale sympathische denervatie (RDN) op de bloeddruk zijn de afgelopen jaren in een groot aantal klinische onderzoeken bewezen. Het regulerende mechanisme van RDN op hypertensie blijft echter ongrijpbaar. Het is dus essentieel om een eenvoudiger RDN-model bij muizen vast te stellen. In deze studie werden osmotische minipompen gevuld met Angiotensine II geïmplanteerd in 14 weken oude C57BL/6-muizen. Een week na de implantatie van de mini-osmotische pomp werd een gemodificeerde RDN-procedure uitgevoerd op bilaterale nierslagaders van de muizen met behulp van fenol. Leeftijdsseks-gematchte muizen kregen een zoutoplossing en dienden als schijngroep. De bloeddruk werd gemeten bij baseline en vervolgens elke week gedurende 21 dagen. Vervolgens werden nierslagader, abdominale aorta en hart verzameld voor histologisch onderzoek met behulp van H &E- en Masson-kleuring. In deze studie presenteren we een eenvoudig, praktisch, herhaalbaar en gestandaardiseerd RDN-model, dat hypertensie kan beheersen en cardiale hypertrofie kan verlichten. De techniek kan perifere renale sympathische zenuwen denerveren zonder schade aan de nierslagader. In vergelijking met eerdere modellen vergemakkelijkt de gemodificeerde RDN de studie van de pathobiologie en pathofysiologie van hypertensie.

Introduction

Hypertensie is een belangrijke chronische hart- en vaatziekten over de hele wereld. Ongecontroleerde hypertensie kan doelorganen beschadigen en bijdragen aan hartfalen, beroerte en chronische nierziekten 1,2,3. De prevalentie van hypertensie is tussen 1991 en 2007 in China gestegen van 20% naar 31%. Het aantal volwassenen met hypertensie in China zou kunnen verdubbelen na een recente herziening van de diagnostische criteria voor hypertensie (130/80 mmHg)4. Hypertensie kan door de geneeskunde worden gecontroleerd, maar ongeveer 20% van de patiënten is niet in staat om hun hypertensie onder controle te houden, zelfs wanneer ze ten minste drie antihypertensiva (waaronder één diureticum) krijgen in een maximaal getolereerde dosis, wat kan leiden tot de ontwikkeling van geneesmiddelresistente hypertensie5.

Renal sympathische denervatie (RDN) is bewezen een potentiële behandeling voor hypertensie te zijn. In 2009 rapporteerden Krum en collega's voor het eerst een resistente hypertensiebehandeling met RDN. Het bleek dat percutane nierslagaderablatie effectief kan leiden tot aanhoudende bloeddrukverlaging bij patiënten6. Het falen van de Symplicity Hypertension 3 (HTN-3) studie belemmerde echter de toepassing van RDN7, waardoor RDN een controversiële therapie werd. Toch is het vooruitzicht van RDN nog niet uitgesloten. Recente klinische onderzoeken, waaronder RADIANCE-HTN SOLO, SPYRAL HTN-OFF MED/ON MED en SPYRAL HTN-OFF MED Pivotal hebben de werkzaamheid van RDN op hypertensie 8,9,10,11,12 bevestigd. Er moet dus meer gedetailleerd mechanistisch onderzoek worden uitgevoerd om de effecten van RDN te onderzoeken.

Het algemene doel van deze studie is om aan te tonen hoe RDN bij muizen kan worden aangepast om een eenvoudigere en stabielere operatie te produceren. Een groot aantal experimenten heeft verschillende benaderingen van RDN bestudeerd, zoals intravasculaire cryoablatie, extracorporale echografie en lokale toepassing van een chemische stof of neurotoxine in verschillende diermodellen 13,14,15,16,17. Het RDN-model gegenereerd met behulp van chemische ablatie met fenol is een goed ingeburgerd experimenteel model om de pathogenese van sympathische activering bij hypertensie te bestuderen. Dit model wordt gegenereerd door chemische corrosie van de renale sympathische zenuwen met 10% fenol/ethanol oplossing met behulp van een wattenstaafje18. Aan de ene kant remt de conventionele RDN mogelijk de renale sympathische activiteit, die vervolgens de reninesecretie en natriumreabsorptie vermindert en de renale bloedstroom verhoogt. Aan de andere kant onderdrukt het renine-angiotensine-aldosteronsysteem19. Daardoor heeft RDN een gunstig effect op hypertensie. Het door chemische ablatie gegenereerde RDN-model mist echter ablatiecriteria en ablatietijd en de details van de experimentele procedure zijn nog onduidelijk. Ook zijn er geen technische rapporten beschikbaar. In dit rapport beschrijven we een chirurgisch protocol voor het genereren van RDN-model met fenol met behulp van weegpapier bij angiotensine II (Ang II) geïnduceerde hypertensie bij C57BL/6-muizen. We wikkelen de nierslagader met weegpapier dat fenol bevat en verenigen de ablatietijd, wat helpt om een meer reproduceerbaar, betrouwbaar RDN-model vast te stellen. Dit experimentele model is gericht op het evalueren van het effect van RDN op hypertensie.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alle dierproefprocedures voldeden aan de relevante ethische gids voor de verzorging en het gebruik van proefdieren (NIH-publicatie nr. 85-23, herzien 2011) en werden goedgekeurd door de commissies voor dieronderzoek van het Huadong-ziekenhuis verbonden aan de Fudan University. Veertien weken oude mannelijke C57BL/6 muizen (28-30g) werden willekeurig verdeeld in vier groepen: Sham groep, Sham+Ang II groep, RDN groep, RDN+Ang II groep, n = 6 in elke groep. Alle dieren werden onder specifieke gesloten pathogeenvrije omstandigheden gehouden in een temperatuurgecontroleerde ruimte bij 24 ± 1 °C met een licht/donkercyclus van 12 uur en vrije toegang tot standaard knaagdier chow en water ad libitum.

1. Voorbereiding van het operatieveld

  1. Desinfecteer de operatietafel met 70% ethanol. Stel de temperatuur van het verwarmingskussen in op 37 °C.
  2. Zorg ervoor dat alle chirurgische instrumenten vóór de operatie bij 121 °C gedurende 30 minuten of op andere wijze worden gesteriliseerd. Deze procedure vereist een microchirurgische schaar, twee fijne rechte tangen, twee fijne gebogen tangen, hemostatische tangen, steriele gaasjes en weegpapier.

2. Angiotensine II geïnduceerde hypertensie

  1. Geef meloxicam (0,5 mg/kg, SC) aan de C57BL/6-muizen kort voor de inductie van de anesthesie. Verdoof vervolgens de muizen met behulp van natriumpentobarbitalinjectie zoals eerder beschreven20,21. Isofluraan kan ook worden gebruikt, indien gewenst. Bevestig de anesthesiediepte met een negatieve teenknijpreflex.
  2. Verwijder het haar op de rug met een scheerapparaat. Breng dierenartszalf aan op de ogen om uitdroging te voorkomen terwijl u onder narcose bent.
  3. Leg het dier op een operatietafel in de dorsale positie. Wattenstaafje en veeg het geschoren gebied af met povidon-jodium gevolgd door drie doekjes met 70% ethanol.
  4. Maak een incisie van 1 cm met behulp van een steriel scalpelmes, loodrecht op de staart, achter het oor over het schouderblad van het voorbeen.
  5. Gebruik een steriele hemostaat om een onderhuidse tunnel onder de huid te maken en een zak voor de pomp te maken22. Steek een osmotische pomp gevuld met Angiotensine II (1.000 ng/kg/min) voorzichtig in de zak. Zorg ervoor dat er voldoende vrije ruimte is om de wond te hechten zonder de huid uit te rekken.
  6. Hecht de spier met onderbroken 6-0 Vicryl hechtingen en sluit de huid met onderbroken 4-0 nylon hechtingen. Wattenstaafje en veeg de wondplaats af met povidon-jodium. Voer dezelfde operatie uit met een gelijk volume zoutoplossing voor de controlegroep.
  7. Plaats alle chirurgische instrumenten gedurende 10 s in een sterilisator en vervang de steriele handschoenen tussen de operaties door. Controleer alle muizen totdat ze volledig zijn hersteld.
  8. Nauwlettend toezicht houden en observeren van wondgenezing bij muizen ten minste tweemaal daags tijdens de eerste week en eenmaal per dag daarna, inclusief roodheid, zwelling en infectie. Voer dissectie onmiddellijk uit als de muizen sterven tijdens de Ang II-infusie.
  9. Meet de bloeddruk bij baseline en elke week na Ang II-infusie met de staart-manchet plethysmografiemethode23 bij bewuste muizen. Zorg ervoor dat de bloeddrukmetingsexperimenten worden uitgevoerd in een rustige omgeving, bij 22 ± 2 °C, waar muizen gedurende 1 uur worden geacclimatiseerd voordat het experiment begint. Laat muizen minstens 5 opeenvolgende dagen wennen vóór de bloeddrukmetingenbij aanvang 23,24.

3. Bilaterale renale denervatie

  1. Selecteer de muizen met verhoogde bloeddruk (BP) ≥140/90mmHg of 25% toename van systolische BP/diastolische BP, 1 week na de Ang II-infusie.
  2. Noteer het gewicht van het dier vóór de operatie en kies dieren met een minimumgewicht van 24 g voor nierdenervatiechirurgie.
  3. Verdoof de muizen met natriumpentobarbital. Bevestig de anesthesiediepte met een negatieve teenknijpreflex.
  4. Verwijder het haar op de buik met een scheerapparaat. Voer deze procedure zorgvuldig en grondig uit om chirurgische besmetting te voorkomen.
  5. Plaats de muizen op de operatietafel, houd de buik omhoog en bevestig de ledematen met tape. Desinfecteer de buikhuid met povidon-jodium gevolgd door drie doekjes met 70% ethanol.
  6. Maak een ventrale buikincisie van 2 cm met behulp van een scalpelmesje. Trek de darm terug met gaas gedrenkt in een zoutoplossing van 37 °C om de linker nierslagader bloot te leggen. Ontleed voorzichtig maar botweg het vet weg van de nierslagader met behulp van een gebogen pincet. (Figuur 1A-C).
  7. Snijd het weegpapier in een rechthoek van dezelfde grootte als de nierslagader met een steriele scherpe schaar. Snijd ter referentie het weegpapier in hetzelfde formaat als aangegeven door de stippellijn in figuur 1C.
    OPMERKING: Het is een cruciaal onderdeel van de operatie, probeer meerdere stukken van het weegpapier tegelijk te snijden om dezelfde vorm te behouden.
  8. Dompel het weegpapier gedurende ten minste 30 s in 10% fenol/ethanoloplossing. Bedek het oppervlak van de linker nierslagader en wikkel het vat in met het weegpapier, gedurende 2 minuten bewaren (figuur 1D). Gebruik gaas om de omliggende weefsels te beschermen om te voorkomen dat het weegpapier de omliggende nier en darm raakt.
    OPMERKING: De fenoloplossing is stabiel in plastic buizen, maar niet in glazen injectieflacons. Daarom moet de oplossing voor elk experiment vers worden bereid18.
  9. Voer dezelfde procedure uit voor de rechter nierslagader. Voer de schijnoperatie uit met weegpapier ondergedompeld in zoutoplossing.
  10. Verplaats de spieren in hun beginpositie en sluit het peritoneum met 6-0 Vicryl-hechtingen in een onderbroken hechting. Sluit vervolgens de huid met onderbroken 4-0 nylon hechtingen. Controleer alle muizen totdat ze volledig zijn hersteld.

4. Postoperatieve zorg

  1. Breng povidon-jodium aan op de incisie en plaats het dier in een verwarmde elektrische deken voor herstel en postoperatieve monitoring.
  2. Controleer de muizen twee keer per dag om te beoordelen op roodheid, zwelling en pijn of buikinfectie. Geef meloxicam (0,5 mg/kg, SC) aan alle muizen ongeveer 1 uur voor en 24 uur na de RDN-procedure.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Statistiek
Alle gegevens worden uitgedrukt als gemiddelde ± standaarddeviatie. One-way ANOVA werd gebruikt voor experimenten met drie of meer aandoeningen gevolgd door Bonferroni posthoc tests voor vergelijkingen tussen individuele groepen. Beschouw een p-waarde gelijk aan of kleiner dan 0,05 als significant. Een commerciële software werd gebruikt om alle statistische analyses uit te voeren.

Verhoging van de bloeddruk geïnduceerd door Ang II werd verzwakt na RDN
Significante toename van systolische BP (SBP) werd waargenomen 1 week na infusie met Ang II. De RDN + Ang II-groep vertoonde een significante vermindering van SBP in vergelijking met de Sham + Ang II-groep 21 dagen na de RDN-procedure (143,50 ± 5,43 versus 196,67 ± 14,26 mmHg, p < 0,01). Er was geen verschil tussen Sham-groep en RDN-groep (113,33 ± 9,35 vs 113,17 ± 8,47 mmHg, p > 0,05) op 2 weken na RDN (figuur 2).

Bevestiging van RDN en beschadiging van de nierslagader
Na 21 dagen Ang II-infusie werden de dieren geëuthanaseerd met intraperitoneale injectie van natriumpentobarbital (250 mg/kg). Hart en nieren werden verzameld. H&E-kleuring werd uitgevoerd om de schade aan de nierzenuw en nierslagaders te detecteren. De resultaten toonden aan dat er geen duidelijke verdikking van de renale vasculaire intimale laag in elke groep was (figuur 3A-D). H&E-kleuring van nierzenuwen toonde een groot aantal pyknotische kernen, spijsverteringskamers en zwelling van zenuwkernen veroorzaakt door RDN (figuur 3E-H). Immunohistochemie van de zenuwbundels toonde aan dat de expressie van tyrosinehydroxylase (TH, 1:500 verdunning) significant was afgenomen in de RDN-groep en rdn+ang II-groep (figuur 4). RDN verlaagde het corticale noradrenalinegehalte van de nieren in zowel normotensieve als hypertensieve groep (schijngroep vs RDN-groep, 18,60 ± 6,91 vs 180,76 ± 11,47 ng / g, p < 0,01; Figuur 5).

RDN-behandeling verminderde Ang II-infusie geïnduceerde pathologische cardiale hypertrofie
Masson-kleuring vertoonde geen opmerkelijke toename van intima media van abdominale aorta bij deze groepen. Ang II infusie geïnduceerde cardiale hypertrofie werd verbeterd door RDN-behandeling, zoals blijkt uit de afname van interstitiële fibrose (7,45% ± 0,28 vs 4,53% ± 0,32, p < 0,01) en cardiomyocytengrootte (348,39 ± 31,56 vs 322,21 ± 22,26 μm, p = 0,37; Figuur 6).

Figure 1
Figuur 1: Procedure van RDN met weegpapier. (A,B) Anatomische beelden van nierslagaders van C57BL/6 (ex vivo) muizen. C) Het gedeelte binnen de twee stippellijnen verwijst naar het gebied waarop het weegpapier betrekking heeft. D) Het oppervlak van de bilaterale nierslagader bedekken met het juiste weegpapier, ondergedompeld in 10% fenol/ethanoloplossing. Bedek het filtreerpapier niet voorbij de stippellijn. * geeft het weegpapier aan. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 2
Figuur 2: RDN verlicht hypertensie geïnduceerd door Ang II-infusie. De bloeddruk werd gemeten met behulp van de staart-manchet plethysmografiemethode bij baseline en elke week na Ang II-infusie. * geeft statistische significantie aan (p < 0,05), ** geeft statistische significantie aan (p < 0,01). Waarden worden weergegeven als gemiddelde ± standaardfout; N = 6 in elke groep; RDN + Ang II-groep geeft nierdenervatie aan die 1 week na Ang II-infusie bij C57BL/6-muizen is opgetreden. Afkortingen: SBP = systolische bloeddruk. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 3
Figuur 3: Representatieve beelden van renale sympathische zenuw en nierslagader. (A-D) In de vier groepen werd geen verdikking van de intimalaag van de nierslagader waargenomen. Representatieve beelden van de beschadigde nierzenuwen na RDN. (E-H) Gefragmenteerde en pyknotische kernen, spijsvertering, zwelling van endoneuraal weefsel werden waargenomen in zowel RDN- als RDN + Ang II-groep. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 4
Figuur 4: Immunostaining van tyrosinehydroxylase in renale sympathische zenuw. (A) Sterke positieve reactie op TH-antilichaamkleuring werd waargenomen bij schijngeoperatiede muizen, terwijl een zwakkere reactie werd waargenomen bij RDN-geopereerde muizen. Schaalbalk = 50 μm. (B) Kwantificering van TH-expressie in nierzenuwen. ** geeft statistische significantie aan (p < 0,01), ns geeft aan niet significant. Waarden zijn gemiddelde ± standaardfout; N = 6 in elke groep; RDN + Ang II-groep geeft nierdenervatie aan die 1 week na Ang II-infusie bij C57BL/6-muizen is opgetreden. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 5
Figuur 5: Renale corticale weefsel noradrenaline niveaus geanalyseerd door ELISA. Het renale corticale noradrenalinegehalte in de gedenervateerde nieren was duidelijk verlaagd in vergelijking met dat van de geïnnerveerde nier. ** geeft statistische significantie aan (p < 0,01), ns geeft aan niet significant. Waarden zijn gemiddelde ± standaardfout; N = 6 in elke groep; RDN+Ang II-groep geeft nierdenervatie aan die 1 week na Ang II-infusie in C57BL/6 is opgetreden. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 6
Figuur 6: RDN verlicht Ang II geïnduceerde pathologische cardiale hypertrofie. (A) Representatieve foto's van abdominale aorta. Bij deze groep werd geen verdikking van de intimalaag van abdominale aorta waargenomen (Masson-kleuring). (B,C) Representatieve beelden van het myocardium in verschillende groepen (H&E, Masson-kleuring). (D) Kwantificering van het percentage fibrose in het linkerventrikelgebied en de analyse van het percentage fibrosegebied (het aantal gezichtsvelden per muis). Schaalbalk = 50 μm. N = 6 in elke groep; RDN + Ang II geeft nierdenervatie aan die 1 week na Ang II-infusie in C57BL/6 wordt uitgevoerd. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Of RDN de bloeddruk zou kunnen verlagen, is controversieel geworden sinds de publicatie van het negatieve resultaat van de sympliciteit HTN-3-studie 7,25. De verschillende klinische onderzoeken en dierproeven hebben echter positieve en effectieve resultaten van RDN aangetoond bij hypertensieve mensen en dieren 9,10,11,12,13,14,15,16,17. Fenol wordt gebruikt voor de vernietiging van de nierzenuw bij dieren en de details van ablatie blijven onbekend in eerder onderzoek, zoals het ablatiegebied en de ablatietijd, die mogelijk hebben bijgedragen aan verschillende resultaten16.

De conventionele methoden voor RDN, zoals het gebruik van wattenstaafje met fenol bij ratten, katheter-gebaseerde ablatie en stereotactische radiotherapie bij varkens, veroorzaken schade aan de nierzenuw 18,26,27,28. Deze methoden zijn ook niet geschikt voor muizen, die slechts tientallen grammen wegen en meer kans hebben om tot de dood te leiden. Bovendien veroorzaken deze methoden nierslagaderstenose. In feite hebben we RDN-modellen voorbereid en deze methoden gebruikt in ons pre-experiment. 40/50 muizen stierven echter. De methode met wattenstaafje met fenol resulteerde in een hoge mortaliteit.

In deze studie werd dus een methode vastgesteld die de gestandaardiseerde prestaties van RDN mogelijk maakt, maar minder chirurgische vaardigheden en kortere operatietijd vereist. We gebruikten 10% fenol/ethanol oplossing-gedrenkt weegpapier, geplaatst gedurende 2 minuten op de nierslagader, wat een betrouwbare methode biedt om de renale sympathische zenuw bij muizen te corroderen. De effectiviteit ervan wordt bevestigd door histopathologie van de nierzenuw. Het verzwakte aanzienlijk de SBP-elevatie geïnduceerd door Ang II. Bovendien verlichtte het ook Ang II-geïnduceerde cardiale hypertrofie. Bovendien heeft de verbeterde procedure verschillende kenmerken, waaronder gemakkelijk uit te voeren en verhoogde slagingspercentages en overlevingspercentages in vergelijking met conventionele procedures.

Het meest kritieke deel van het protocol is dat het weegpapier met fenol de omliggende weefsels niet mag raken, anders kan het fatale darmobstructie, abdominale infectie en nierslagaderstenose veroorzaken. Het wordt geadviseerd om de oplossing voor de nier niet aan te raken, omdat slechts een kleine hoeveelheid fenol mogelijk renale sympathische overactiviteit kan veroorzaken18. Bovendien moet speciale aandacht worden besteed aan het snijden van het weegpapier. Het is beter om het onder de microscoop aan te passen met een chirurgische schaar. We raden af om nierzenuwen te isoleren met een micro-pincet, omdat dit de nierbloedvaten kan beschadigen. Meestal kan de procedure veilig binnen 20 minuten worden uitgevoerd, zelfs bij langzame prestaties. Bovendien is het smeltpunt van fenol 40,5 °C.

De belangrijkste beperking van de verbeterde RDN-procedure is dat de postoperatieve follow-uptijd slechts 2 weken was. Het effect van langdurige RDN op BP en regeneratie van de nierzenuw is onduidelijk.

Toekomstige toepassing van dit model is om meer gestandaardiseerde denervatiediermodellen te produceren die kunnen bijdragen aan het uiteenzetten van de paden die ten grondslag liggen aan het proces van hypertensie en cardiale hypertrofie.

Kortom, deze methode is praktisch en herhaalbaar. Het belangrijkste is dat het gestandaardiseerde RDN-modellen kan genereren om de mechanismen te bestuderen die hypertensie beheersen en hart- en vaatziekten zoals cardiale hypertrofie bestrijden.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Er zijn geen belangenconflicten, financieel of anderszins, zoals verklaard door de auteurs.

Acknowledgments

Dit werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (81770420), Science and Technology Commission of Shanghai Municipality (20140900600), Shanghai Key Laboratory of Clinical Geriatric Medicine (13dz2260700), Shanghai Municipal Key Clinical Specialty (shslczdzk02801) en Center of geriatric coronary artery disease, Huadong Hospital Affiliated to Fudan University.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Angiotensin II Sangon Biotech CAS:4474-91-3 To make a hypertensive animol model
Anti-Tyrosine Hydroxylase antibody Abcam ab137869 To evaluate the expression of TH of renal nerves
Blood Pressure Analysis Visitech Systems BP-2000 Measure the blood pressure of mice
Mini-osmotic pump DURECT Corporation CA 95014 To fill with Angiotensin II
Norepinephrine ELISA Kit Abcam ab287789 to measure renal norepinephrine levels
Phenol Sangon Biotech CAS:108-95-2 Damage the renal sympathetic nerve
Weighing paper Sangon Biotech F512112 To destroy renal nerve with weighing paper immersed with phenol; https://www.sangon.com/productDetail?productInfo.code=F512112. 

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Messerli, F. H., Rimoldi, S. F., Bangalore, S. The transition from hypertension to heart failure: Contemporary update. JACC Heart Failure. 5 (8), 543-551 (2017).
  2. Lackland, D. T., et al. Implications of recent clinical trials and hypertension guidelines on stroke and future cerebrovascular research. Stroke. 49 (3), 772-779 (2018).
  3. Rossignol, P., et al. The double challenge of resistant hypertension and chronic kidney disease. The Lancet. 386 (10003), 1588-1598 (2015).
  4. Du, X., Patel, A., Anderson, C. S., Dong, J., Ma, C. Epidemiology of cardiovascular disease in China and opportunities for improvement. JACC International. Journal of the American College of Cardiology. 73 (24), 3135-3147 (2019).
  5. Valenzuela, P. L., et al. Lifestyle interventions for the prevention and treatment of hypertension. Nature Review Cardiology. 18 (4), 251-275 (2021).
  6. Krum, H., et al. Catheter-based renal sympathetic denervation for resistant hypertension: a multicentre safety and proof-of-principle cohort study. The Lancet. 373 (9671), 1275-1281 (2009).
  7. Bhatt, D. L., et al. A controlled trial of renal denervation for resistant hypertension. The New England Journal of Medicine. 370 (15), 1393-1401 (2014).
  8. Kjeldsen, S. E., Narkiewicz, K., Burnier, M., Oparil, S. Renal denervation achieved by endovascular delivery of ultrasound in RADIANCE-HTN SOLO or by radiofrequency energy in SPYRAL HTN-OFF and SPYRAL-ON lowers blood pressure. Blood Press. 27 (4), 185-187 (2018).
  9. Böhm, M., et al. Efficacy of catheter-based renal denervation in the absence of antihypertensive medications (SPYRAL HTN-OFF MED Pivotal): a multicentre, randomised, sham-controlled trial. The Lancet. 395 (10234), 1444-1451 (2020).
  10. Azizi, M., et al. Endovascular ultrasound renal denervation to treat hypertension (RADIANCE-HTN SOLO): a multicentre, international, single-blind, randomised, sham-controlled trial. The Lancet. 391 (10137), 2335-2345 (2018).
  11. Kandzari, D. E., et al. Effect of renal denervation on blood pressure in the presence of antihypertensive drugs: 6-month efficacy and safety results from the SPYRAL HTN-ON MED proof-of-concept randomised trial. The Lancet. 391 (10137), 2346-2355 (2018).
  12. Townsend, R. R., et al. Catheter-based renal denervation in patients with uncontrolled hypertension in the absence of antihypertensive medications (SPYRAL HTN-OFF MED): a randomised, sham-controlled, proof-of-concept trial. The Lancet. 390 (10108), 2160-2170 (2017).
  13. Sun, X., et al. Renal denervation restrains the inflammatory response in myocardial ischemia-reperfusion injury. Basic Research in Cardiology. 115 (2), 15 (2020).
  14. Sharp, T. E., et al. Renal denervation prevents heart failure progression via inhibition of the renin-angiotensin system. Journal of the American College of Cardiology. 72 (21), 2609-2621 (2018).
  15. Wang, H., et al. Renal denervation attenuates progression of atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice independent of blood pressure lowering. Hypertension. 65 (4), 758-765 (2015).
  16. Chen, H., et al. Renal denervation mitigates atherosclerosis in ApoE-/- mice via the suppression of inflammation. American Journal of Translational Research. 12 (9), 5362-5380 (2020).
  17. Wang, Y., et al. Renal denervation promotes atherosclerosis in hypertensive apolipoprotein E-deficient mice infused with Angiotensin II. Frontiers in Physiology. 8, 215 (2017).
  18. Eriguchi, M., Tsuruya, K. Renal sympathetic denervation in rats. Methods in Molecular Biology. 1397, 45-52 (2016).
  19. Thukkani, A. K., Bhatt, D. L. Renal denervation therapy for hypertension. Circulation. 128 (20), 2251-2254 (2013).
  20. Zhang, Y. J., et al. NAD(+) administration decreases microvascular damage following cardiac ischemia/reperfusion by restoring autophagic flux. Basic Research in Cardiology. 115 (5), 57 (2020).
  21. Wang, M., et al. Long-term renal sympathetic denervation ameliorates renal fibrosis and delays the onset of hypertension in spontaneously hypertensive rats. American Journal of Translational Research. 10 (12), 4042-4053 (2018).
  22. Lu, H., et al. Subcutaneous Angiotensin II infusion using osmotic pumps induces aortic aneurysms in mice. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (103), e53191 (2015).
  23. Wilde, E., et al. Tail-cuff technique and its influence on central blood pressure in the mouse. Journal of the American Heart Association. 6 (6), 005204 (2017).
  24. Daugherty, A., Rateri, D., Hong, L., Balakrishnan, A. Measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (27), e1291 (2009).
  25. Esler, M. Illusions of truths in the Symplicity HTN-3 trial: generic design strengths but neuroscience failings. Journal of the American Society of Hypertension. 8 (8), 593-598 (2014).
  26. Han, W., et al. Low-dose sustained-release deoxycorticosterone acetate-induced hypertension in Bama miniature pigs for renal sympathetic nerve denervation. Journal of the American Society of Hypertension. 11 (5), 314-320 (2017).
  27. Han, W., et al. The safety of renal denervation as assessed by optical coherence tomography: pre- and post-procedure comparison with multi-electrode ablation catheter in animal experiment. Hellenic Journal of Cardiology. 61 (3), 190-196 (2020).
  28. Cai, X., et al. Noninvasive stereotactic radiotherapy for renal denervation in a swine model. Journal of the American College of Cardiology. 74 (13), 1697-1709 (2019).

Tags

Geneeskunde Nummer 183 RDN hypertensie angiotensine II fenol osmotische pomp cardiale hypertrofie
Verbeterde renale denervatie verminderde hypertensie geïnduceerd door angiotensine II-infusie
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, M., Zhang, S., Han, W., Ye,More

Wang, M., Zhang, S., Han, W., Ye, M., Qu, X., Han, W. Improved Renal Denervation Mitigated Hypertension Induced by Angiotensin II Infusion. J. Vis. Exp. (183), e63719, doi:10.3791/63719 (2022).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter