Summary
前臨床モデルは、がん生物学の知識を進歩させ、治療効果を予測することを目的としています。この論文では、腫瘍組織断片を用いたゼブラフィッシュベースの患者由来異種移植片(zPDX)の生成について説明します。zPDXを化学療法で治療し、その治療効果を移植組織の細胞アポトーシスに関して評価した。
Abstract
がんは世界中の主な死因の1つであり、多くの種類のがんの発生率は増加し続けています。スクリーニング、予防、治療の面で多くの進歩が見られました。しかし、がん患者の化学感受性プロファイルを予測する前臨床モデルはまだ不足しています。このギャップを埋めるために、 in vivo 患者由来の異種移植片モデルが開発され、検証されました。このモデルは、受精後2日目のゼブラフィッシュ (Danio rerio) 胚に基づいており、患者の手術標本から採取した腫瘍組織の異種移植片断片のレシピエントとして使用されました。
腫瘍の挙動および治療への反応を分析する上で重要である腫瘍微小環境を維持するために、生体試料が消化または分解されなかったことも注目に値する。このプロトコルは、原発性固形腫瘍外科的切除からゼブラフィッシュベースの患者由来異種移植片(zPDX)を確立するための方法を詳述しています。解剖病理学者によるスクリーニングの後、標本はメスの刃を使用して解剖されます。壊死組織、血管、または脂肪組織を取り除き、0.3 mm x 0.3 mm x 0.3 mmの断片に切り刻みます。
次に、断片を蛍光標識し、ゼブラフィッシュ胚の卵周囲腔に異種移植します。多数の胚を低コストで処理できるため、複数の抗がん剤に対するzPDXの化学療法感受性をハイスループットにin vivo で解析することができます。共焦点画像は、対照群と比較して化学療法治療によって誘発されるアポトーシスレベルを検出および定量するために日常的に取得されます。異種移植片の手順は、1日で完了することができ、共同臨床試験の治療スクリーニングを実施するための合理的な時間枠を提供するため、時間的に大きな利点があります。
Introduction
臨床がん研究の問題点の一つは、がんが単一の疾患ではなく、時間とともに進化する様々な疾患であり、腫瘍自体や患者の特性に応じて特定の治療が必要であることです1。したがって、課題は、がん治療の結果を早期に予測するための新しい個別化された戦略を特定するために、患者指向のがん研究に移行することです2。これは、膵管腺癌(PDAC)が治療が困難な癌と見なされ、5年生存率が11%であるため、特に重要です3。
診断の遅れ、急速な進行、効果的な治療法の欠如は、PDACの最も差し迫った臨床問題のままです。したがって、主な課題は、患者をモデル化し、個別化医療に沿った最も効果的な治療法を選択するためにクリニックで適用できるバイオマーカーを特定することです4,5,6。時が経つにつれて、がん疾患をモデル化するための新しいアプローチが提案されてきました:患者由来オルガノイド(PDO)およびヒト腫瘍組織の供給源に由来するマウス患者由来異種移植片(mPDX)。それらは、治療に対する反応と抵抗性、ならびに疾患の再発を研究するために疾患を再現するために使用されてきた7,8,9。
同様に、ゼブラフィッシュベースの患者由来異種移植片(zPDX)モデルへの関心は、そのユニークで有望な特性10のおかげで増加しており、癌研究のための迅速かつ低コストのツールを表しています11,12。zPDXモデルでは腫瘍サンプルサイズが小さいため、化学療法のハイスループットスクリーニングが可能です13。zPDXモデルに使用される最も一般的な手法は、完全なサンプル消化と初代細胞集団の移植に基づいており、腫瘍を部分的に再現しますが、腫瘍の微小環境の欠如と悪性細胞と健康な細胞の間のクロストークという欠点があります14。
この研究は、zPDXを前臨床モデルとして使用して、膵臓がん患者の化学感受性プロファイルを特定する方法を示しています。貴重な戦略は、細胞増殖の必要がないため、異種移植プロセスを促進し、化学療法スクリーニングの加速を可能にします。このモデルの強みは、よく知られているように、腫瘍の挙動はそれらの相互作用に依存するため、すべての微小環境成分が患者の癌組織内でそのまま維持されることです15,16。これは、腫瘍の不均一性を維持し、患者固有の方法で治療結果と再発の予測可能性を改善することに貢献し、zPDXモデルを共同臨床試験で使用できるようにするため、文献の代替方法よりも非常に有利です。この原稿では、zPDXモデルの作成に必要なステップを、患者の腫瘍切除から始めて治療し、化学療法に対する反応を分析する手順について説明します。
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Protocol
イタリア公衆衛生省は、動物の使用と管理に関する指令2010/63 / EUに準拠して、記載されているすべての動物実験を承認しました。地元の倫理委員会は、登録番号70213で研究を承認しました。関係するすべての被験者からインフォームドコンセントが得られました。始める前に、すべての解決策と機器を準備し(セクション1)、魚を渡る必要があります(セクション2)。
1.溶液と機器の準備
メモ: 調製する溶液とメディアについては、 表 1 を参照してください。
- アガロースゲルサポート
- 電子レンジ対応フラスコでアガロース粉末を秤量し、所定の量のE3ゼブラフィッシュ培地に溶解して1%ゲルを作ります。アガロースが完全に溶解するまで電子レンジで加熱します。
注意: 溶液を沸騰させすぎないでください。 - 溶かしたアガロースをペトリ皿に注ぎ、ゲルが完全に固まるまで待ちます。
- 先端を切り取ったプラスチックパスツールピペットを使用して、小さなアガロースシリンダー(高さ~5 mm)を作ります。調製したら、アルミホイルで包んで4°Cのシャーレに保管します。
- 電子レンジ対応フラスコでアガロース粉末を秤量し、所定の量のE3ゼブラフィッシュ培地に溶解して1%ゲルを作ります。アガロースが完全に溶解するまで電子レンジで加熱します。
- ガラスマイクロニードル
- ホウケイ酸ガラスの毛細血管をプーラーで引っ張って、細い針を取得します(設定:HEAT 990、PULL 550)。
注:1つのキャピラリーから、先端直径10μmの細い針を2本得ることができます。
- ホウケイ酸ガラスの毛細血管をプーラーで引っ張って、細い針を取得します(設定:HEAT 990、PULL 550)。
2.魚の交配と卵の収集
- Avdeshら17によって説明されているように、組織移植の3日前に成魚を繁殖タンクに移す。
- 注:男性と女性の比率は1:1または2:3をお勧めします。魚の密度は、水1リットルあたり最大5匹の魚でなければなりません。男性と女性をバリアで一晩分離してください。
- 翌日、障壁を取り除き、魚が交尾できるようにします。
- 繁殖タンクから魚を取り出し、収容タンクに戻します。
- 繁殖タンクから細かいメッシュネットを通して水を注ぎます。受精卵をE3ゼブラフィッシュ培地を含むペトリ皿に移します。
- 実体顕微鏡でペトリ皿を確認し、濁った卵を捨てます。受精卵を28°Cの新鮮なE3ゼブラフィッシュ培地に保管します。
3. 標本採取
注:オートクレーブ鉗子とメスハンドル。
- 即時処理
- 腫瘍の手術標本を4°Cの腫瘍培地10 mL(直径5 mmから10 mmの範囲の腫瘍標本)に採取します。サンプルを目的の場所から4°Cで移し、すぐに処理します。
- 一晩保管(オプション)
- 手術用腫瘍標本を10 mLの腫瘍培地に採取し、4°Cで一晩保存します。
- -80°Cでの保管(オプション、最低推奨)
- サンプルを-80°Cで、5%ジメチルスルホキシド(DMSO)を添加した腫瘍培地を含む極低温バイアルに保存します。
4. サンプル処理
注意: 滅菌組織培養層流フードの下で手順を実行します。
- 腫瘍組織全体を5 mLの新鮮な腫瘍培地で洗浄し、プラスチック製パスツールピペットを使用して10回上下にピペッティングします。洗浄媒体を吸引して廃棄します。この手順を 3 回繰り返します。
注意: 腫瘍組織はプラスチック製のパスツールピペットに付着したままになる可能性があるため、吸引は避けてください。 - サンプルをペトリ皿に移し、1〜2 mLの新鮮な腫瘍培地に浸します。メスの刃を使用して腫瘍サンプルを小片(1〜2 mm3)に切断し、腫瘍培地を入れた滅菌5 mLプラスチックチューブに入れます。
- マキルウェインティッシュチョッパーを100μmの厚さに設定します。試料の破片をチョッパーの円形のプラスチックテーブルに置き、それらを粉砕します。テーブルを90°回転させ、チョッピングを繰り返します。
- 断片を300 × g で3分間遠心分離します。その後、上清を注意深く吸引し、廃棄します。
- 蛍光セルトラッカー、CM-DiI(ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水[DPBS]中の最終濃度10 μg/mL)、ディープレッド(DPBS中の最終濃度1 μL/mL)、またはセルトレース(DPBS中の最終濃度5 μM)でフラグメントを30分間インキュベートし、チューブを37°Cの水浴に入れます。
- 10分ごとにゆっくりと上下にピペッティングして、フラグメントを再懸濁します。
注意: CellTraceの場合は、製造元の指示に従って、インキュベーションの最後に少なくとも1%のタンパク質を含む培地を追加します。 - 300 x g で3分間遠心分離し、上清を廃棄します。このステップを1 mLのDPBSで3回繰り返し、取り込まれていない色素を除去します。
- 断片を60 mmのペトリ皿に5 mLのDPBSに懸濁します。
注意: 組織が乾かないようにしてください。
5. zPDXの設立
注意: 滅菌組織培養層流フードの下で手順を実行します。
- 受精後2日間(dpf)の胚に、E3ゼブラフィッシュ培地中の0.16 mg / mLトリカインで麻酔します。
- 3つのアガロースシリンダー(ステップ1.1.3)をペトリ皿に入れ、ゼブラフィッシュの胚をシリンダーの上に置き、片側を露出させます。余分な溶液を取り除き、胚を薄いフィルムに保ちます。
- 滅菌鉗子で染色された組織片をペトリ皿から胚が横たわっている1%アガロース支持体に移します。組織を拾い上げ、胚卵黄の上に置き、熱で引っ張ったガラスマイクロニードルを使用して卵胞周囲腔に押し込みます(ステップ1.2.1)。
- E3 1%ペニシリン-ストレプトマイシン(ペン-ストレップ)を胚に数滴静かに加えて、胚を液体に戻します。
- すべての胚に対して手順5.2〜5.4を繰り返し、最後にペトリ皿からアガロース支持体を取り出し、35°Cで胚をインキュベートします。
- 蛍光実体顕微鏡を使用して、着床後2時間で胚の正しい異種移植片(陽性染色)を確認します。完全に卵胞周囲腔内にない腫瘍片を含む胚、および死んだ胚を廃棄します。胚を6つのマルチウェルプレート(最大n = 20胚/ウェル)にランダムに分配し、実験計画に従ってグループに均等に分けます(例:コントロールとFOLFOXIRI)。
6.治療
- 薬物(例:.、5-フルオロウラシル、オキサリプラチン、イリノテカン)をE3 1%ペンストレップに希釈し、数回上下にピペッティングして完全に混合します。.Usaiら12によって提案されたように、等価血漿濃度(EPC)に対して、魚水中の薬物の5倍希釈を使用する。
- 薬を混ぜてカクテルを準備します(例:フォルフォキシリ)。
- 各ウェルから培地を取り出し、移植の2時間後に薬物カクテルを加える。
- 胚を3日間治療します。ドラッグカクテルを毎日更新してください。
7. ホールマウント免疫蛍光染色
注意: 開始する前に、アセトンを-20°Cで置き、表1にリストされている溶液を準備します。
- 1日目:
- 幼虫を1 mLの4%パラホルムアルデヒドでガラスバイアルに4°Cで一晩固定します。
- 2日目:
- 幼虫を1 mLのPBSで3 x 5分間洗浄し、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 1 mLの100%メタノールに-20°Cで一晩保存します(または長期保存の場合)。
- 1 mLのPTw(PBS中の0.1%トゥイーン)で3 x 10分間再水和し、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 1 mLの150 mM Tris-HClをpH 8.8で室温で5分間透過処理した後、70°Cで15分間加熱します。
- 1 mLのPTwで2 x 10分間洗浄し、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 1 mLのdH 2 Oで2x 5分間洗浄し、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 1 mLの氷冷アセトンで-20°Cで20分間透過処理します。
- 1 mLのdH 2 Oで2x 5分間洗浄し、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 1 mLのPTwで2 x 5分間洗浄し、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 幼虫を1 mLのブロッキングバッファー中で4°Cで3時間インキュベートし、実験室のプラットフォームロッカー(400 rpm)で穏やかに攪拌します。
- 幼虫をグループごとに分けたウェルプレートに次のように配置します:96ウェルプレートの50 μLの容量/ウェルに10匹の幼虫、または48ウェルプレートに100 μLの容量/ウェルに20匹の幼虫。
- ブロッキングバッファーを廃棄し、インキュベーションバッファーで希釈した一次抗体溶液(例:ウサギ抗ヒト切断カスパーゼ-3、1:250)で幼虫を暗所で4°Cで一晩インキュベートし、シェーカープレート(400rpm)で穏やかに揺り動かします。推奨ボリュームについては、ステップ 7.2.11 を参照してください。
- 3日目:
- 幼虫を1 mLのPBS-TS(10%ヤギ血清、PBS中の1%トリトンX-100)で3 x 1時間順番に洗浄し、次に1 mLのPBS-T(PBS中の1%トリトンX-100)で2 x 10分、1 mLのPBS-TSで2 x 1時間。各洗浄では、幼虫を含むプレートをシェーカープレート(400 rpm)で静かに攪拌します。
- 蛍光色素結合二次抗体(例:ヤギ抗ウサギIgG [H+L]交差吸着二次抗体、Alexa Fluor 647、1:500)およびインキュベーションバッファーで希釈した100 μg/mL Hoechst 33258をシェーカープレート(400 rpm)上で穏やかに撹拌しながら、暗所で4°Cで一晩インキュベートします。二次抗体溶液の推奨量については、ステップ7.2.11を参照してください。
- 4日目:
- シェーカープレート(400 rpm)で穏やかに攪拌しながら、1 mLのPBS-TSで3 x 1時間、1 mLのPTwで2 x 1時間洗浄します。
- 顕微鏡スライド上にエナメル質(厚さ~0.5-1 mm)で円形の層を作成します。エナメル質を乾かし、幼虫を円形層の中央に置き、異種移植片の側面を露出させます。
- 余分な溶液を乾燥させ、ガラスカバーガラスに水溶性の非蛍光封入剤を取り付けます。
8. イメージング
- 40倍の対物レンズを備えた共焦点顕微鏡下で画像をキャプチャします。次の取得パラメータを使用します:解像度は1024 x 512ピクセル、Z間隔は5 μmです。
9. ImageJによるアポトーシスの解析
- ロード(フィジーはジャスト)ImageJソフトウェア(https://imagej.net/Fiji/Downloads)を開き、Zスタックファイルイメージを開きます( ファイル|開く)。ポップアップウィンドウで、[スタック 表示/ハイパースタック ]を選択し、[ OK]をクリックします。
- 画像を選択してさまざまなチャンネルをオーバーレイ する |カラー |コンポジットを作る。
- 画像の下部にあるZバーをドラッグしてZスタック画像を参照し、異種移植片領域(蛍光細胞トラッカー陽性の細胞)を特定します。ステップ4.5)を参照してください)ゼブラフィッシュペリビテリンスペースで。
- ポイントツールを選択し、補足ビデオS1に示すように、アポトーシスヒト細胞(蛍光細胞トラッカーおよび切断カスパーゼ-3に対して陽性)の数をカウントします。
- ポイントツールアイコンをダブルクリックし、カウンターを変更して、ヒト細胞核(CM-DiI陽性細胞の核)の総数をカウントします。
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Representative Results
このプロトコルは、原発性ヒト膵臓腺癌からzPDXを確立するための実験的アプローチを説明しています。腫瘍サンプルを採取し、細切し、プロトコルセクション4に記載されているように蛍光色素を使用して染色した。次に、zPDXは、プロトコルセクション5で説明されているように、2つのdpfゼブラフィッシュ胚の卵周囲腔に腫瘍片を移植することによって首尾よく確立されました。プロトコルセクション6に記載されるように、zPDXをさらにスクリーニングして、患者由来の癌細胞の化学療法感受性プロファイルを同定した。たとえば、化学療法の組み合わせFOLFOXIRI(5-フルオロウラシル、フォリン酸、オキサリプラチン、およびイリノテカン)は、進行性膵管腺癌および転移性結腸直腸癌の第一選択化学療法として使用されるため、テストされました。zPDXの全マウント画像を共焦点顕微鏡でZスタックとして取得し、プロトコルセクション8および9に記載されているようにアポトーシス誘導を分析しました。図1A、Bに示すように、併用療法は、対照群と比較して細胞アポトーシスの増加をもたらした。ここで報告されたケーススタディでは、移植された異種移植片におけるアポトーシス細胞の割合の統計的に有意な増加が、対照群と比較してFOLFOXIRI治療群で確認されました(図1C)。
| 図1:FOLFOXIRI治療3日後のヒト膵管腺癌由来のzPDX。細胞膜をCM-DiI(赤色)で染色し、組織を2dpf AB野生型ゼブラフィッシュの卵胞周囲腔に異種移植した。幼虫をFOLFOXIRI併用(0.216 mg/mL 5-フルオロウラシル、0.013 mg/mLフォリン酸、0.006 mg/mLオキサリプラチン、0.011 mg/mLイリノテカン)または非曝露(CTRL)に3日間曝露し、固定し、切断したカスパーゼ-3抗体(シアン)で免疫染色し、ヘキスト(青色核)で対比染色した。幼虫は、ガラス顕微鏡スライドにアクアポリマウントでマウントされました。(A1-3)対照幼虫(化学療法に曝露されていない)の代表例。切断されたカスパーゼ-3陽性細胞は観察されなかった。(B1-3)FOLFOXIRI処理後3日目の異種移植幼虫の代表例は、切断されたカスパーゼ-3の一貫した活性化を示す。ホールマウント画像は、デジタルカメラを備えたニコンA1共焦点顕微鏡で撮影されました。破線は異種移植片領域を示す。(C)FOLFOXIRIで処理した異種移植幼虫における切断されたカスパーゼ-3およびCM-DiI二重陽性細胞の定量化、CTRLと比較し、SEM±平均としてプロット(n ≥ 12);p < 0.001、マン・ホイットニーU検定。スケールバー= 100 μm。略語:zPDX =ゼブラフィッシュ患者由来の異種移植片;DPF =受精後の日数。FOLFOXIRI = 5-フルオロウラシル、フォリン酸、オキサリプラチン、およびイリノテカン;Ctrl = コントロール。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。 |
| ソリューション/媒体 | 構成、コメント | 目的 | ||
| 腫瘍培地 (1x) | RPMI-1640培地に、ペニシリン-ストレプトマイシン(最終濃度100 U / mL)とアムホテリシン(最終濃度2.50 μg / mL)を追加します。 | |||
| E3 ゼブラフィッシュ培地 (1x) | 60x E3胚培地(NaCl 3 M、KCl 0.1 M、CaCl 2 0.2 M、MgSO4 0.2 M)を脱イオン水で最終作業濃度1倍に希釈します。 | |||
| E3 1% ペンストレップ | 1 mLのペニシリン-ストレプトマイシンを99 mLのE3ゼブラフィッシュ培地に加えます。反転で混ぜます。溶液を4°Cで保存する | |||
| ティッカー | PBSで0.1%トゥイーン | ホールマウント免疫染色 | ||
| ブロッキングバッファ | 10%ヤギ血清、1%DMSO、1%BSA、0.8%トリトンX-100PTw | ホールマウント免疫染色 | ||
| インキュベーションバッファー | 1%ヤギ血清、1%DMSO、1%BSA、0.8%トリトンX-100PTw | ホールマウント免疫染色 | ||
| PBS-TS | 10%ヤギ血清、1%トリトンX-100PBS中 | ホールマウント免疫染色 | ||
| PBS-T | PBS中の1%トリトンX-100 | ホールマウント免疫染色 | ||
表1:プロトコルで使用されるソリューションとメディア。
補足図S1:PDAC腫瘍サンプルをDiO染色(緑色)し、 2dpfゼブラフィッシュ胚 の卵胞周囲腔に異種移植した。3日間のインキュベーション時間の後、zPDXに2 μg/mLヨウ化プロピジウム(PI;赤)を注射し、3D共焦点イメージングにかけました。細胞生存率は、ヒト細胞の総数のうちPI陽性細胞(DiO陽性)を測定することにより確認した。スケールバー = 100 μm。略語:PDAC =膵管腺癌;DPF =受精後の日数。zPDX = ゼブラフィッシュ患者由来の異種移植片。 このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足ビデオS1:ImageJのマルチポイントツールを使用したアポトーシスヒト細胞カウントの例。 ビデオは、移植後3日目のzPDXのZスタックであり、切断されたカスパーゼ-3とHoechst 33258免疫染色の後に取得されました。略称:zPDX =ゼブラフィッシュ患者由来の異種移植片。 このビデオをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
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Discussion
がん研究におけるin vivoモデルは、がん生物学を理解し、がん治療反応を予測するための貴重なツールを提供します。現在、異なるin vivoモデル、例えば、遺伝子改変動物(トランスジェニックマウスおよびノックアウトマウス)またはヒト初代細胞からの患者由来の異種移植片が利用可能である。多くの最適な機能にもかかわらず、それぞれにさまざまな制限があります。特に、前述のモデルは、患者の腫瘍組織の微小環境を模倣するための信頼できる方法を欠いている。
腫瘍微小環境が薬物応答において多くの重要な役割を果たす可能性があることが示唆されています18。したがって、腫瘍組織の微小環境を維持する適切な動物モデルを見つけるために、2つのdpfゼブラフィッシュ胚に異種移植された腫瘍組織の断片を使用して、代替のPDXモデルが開発されました。このプロトコルは、多数の胚で異種移植片を実行する方法を記述し、単剤および組み合わせの両方で薬物のハイスループットスクリーニングを可能にします。
この革新的なアプローチの重要なポイントは、単一細胞懸濁液で一般的に実行されるzPDXと比較して、細胞間相互作用と腫瘍微小環境の両方を維持することです。手術標本からのPDACは直ちに新鮮で冷たい腫瘍培地に入れられ、腫瘍は小さな断片に切り刻まれます。zPDXモデルを生成するために使用される全体的な手順は、患者の腫瘍からの断片を2dpfゼブラフィッシュ胚の卵胞周囲腔に直接移植することに基づいています。
提案されたモデルは、患者由来の腫瘍組織サンプルの消化に基づくPDXモデルの代替として機能し、その後、卵黄嚢または卵胞周囲腔に直接注入されます。Fiorらの研究によって証明されるように、外科的に切除された膵臓胆道癌の酵素解剖からzAvatarモデルを確立することが可能である。移植率は、腫瘍膵臓サンプルの典型的な低い細胞性および好ましくない密なデスモプラスティック間質19のために、44%から64%の範囲であった。
しかしながら、細胞懸濁液は元の腫瘍14を部分的にしか再現しなかった。逆に、腫瘍組織を免疫不全マウスに直接移植することによって構築されたmPDXは、元の腫瘍に最もよく似ており、臨床医が腫瘍の挙動を理解し、治療前に個々の反応を評価するのに役立ちます20。実際、小さな生着した断片は、元の腫瘍21と同様に、腫瘍の微小環境を維持し、悪性細胞と健康な細胞の間のクロストークを維持します。したがって、化学療法感受性または化学療法耐性はよりよく再現され、トランスレーショナル腫瘍学の分野におけるzPDX技術の直接的な影響があります14。zPDXアプローチにより、各患者は生体系で独自の腫瘍を発生させることができます。したがって、これは、腫瘍組織が無傷でオルソグラフトされるか、または細胞内で脱凝集され、次いでマウスレシピエントモデルに異種移植されるmPDXの使用に代わる良好な代替手段である13。
このプロトコルは、移植に最適な腫瘍片の選択を担当する病理学者と共同で開発されました。生物学的組織サンプルは、常に外科的標本から採取され、生検から採取されることはありませんが、後者は通常、組織の不足を特徴とし、したがって診断目的のみを目的としているためです。組織サンプリングの基準は通常、辺縁対コアではなく、出血や壊死のない腫瘍領域です。このため、材料の即時品質管理のために、常にサンプルの半分に対してクライオスタット組織学的切片が実施されました。本研究は、ゼブラフィッシュ胚の卵周囲腔に生着する原発腫瘍細胞の能力によって制限される可能性がある。しかし、移植3日目には、4°C保存後(12例/15例)と-80°Cからの解凍後(10例/12例)の両方で80%の生着率が観察され、細胞生存率は74%±2%で効果的に凍結保存できることが示唆されました(補足図S1)。それにもかかわらず、組織生着の成功率はPDAC患者の腫瘍によって異なります。その結果、外科的切除直後の組織の迅速な処理、ならびに凍結の防止は、効率を高めることができる。
いくつかの技術的手段も、異種移植を成功させるためのプロトコルで提案されています。たとえば、チョッパーを使用すると、異種移植片の寸法が標準化されました。細断後の腫瘍組織の断片の寸法が等しいことを確認するための潜在的な解決策は、異種移植前の断片の直径を測定するために較正ガラスを使用することです。
1%アガロースシリンダー支持体の使用は、片側に胚を産むことと単に腫瘍片を移植することの両方にとって、そしてマイクロニードルの破損を防ぐために不可欠です。腫瘍は高い変動性を示すので、この方法の別の制限は、腫瘍内不均一性が細胞懸濁液と比較して断片で表されることが少ないことである。実際、小さな組織片は、良性の細胞集団と腫瘍サブクローンの観点から分岐する可能性があります。この批判を克服するには、多数の注入された胚を使用して、腫瘍の不均一性を再現し、分析の変動性を減らす必要があります。統計分析によると、各グループには、d = 2の効果サイズ、および80%および95%の検出力の統計的有意性を考慮して、15を超えるサンプルサイズが必要です。熟練したオペレーターは毎時約40個の胚を処理できるため、この数は妥当です。
zPDXモデルの生成に使用された方法論に加えて、FOLFOXIRIの組み合わせがzPDXモデルにおける患者由来細胞のアポトーシスを誘導することもここで証明されました。FOLFOXIRIと同様に、Usaiらによって成功裏に試験されたような他の化学療法スキームに対するzPDX化学感受性を試験することが可能である11。
さらに、目的の特徴を定量化するために、ホールマウント免疫染色およびイメージングの技術が提示されています。いくつかの問題を克服し、全マウント免疫染色を成功させるには、組織を透過処理するために5%DMSO溶液が推奨されます。共焦点イメージングに関しては、共焦点顕微鏡の解像度の制限により、異種移植幼虫のより深いスタックの取得が損なわれる可能性があります。ただし、この研究では、アポトーシス細胞は患者細胞の総数からカウントされます。移植された腫瘍塊の基部から上部まで、ステップサイズが5μmの3次元再構成により、同じ核が前または次のZ平面内に広がる可能性を考慮して、すべてのヒト核を同定することができます。その結果、ImageJマルチポイントツールカウンターを使用して、同じ細胞を2回カウントすることを制御および防止し、同じZスタック(全ヒト細胞からのアポトーシス)で二重カウントを実行し、単一細胞レベルでアポトーシスを簡単に追跡できます。
その限界にもかかわらず、zPDXモデルには、 in vivo モデルと比較していくつかの利点があります:ゼブラフィッシュの非常に速いライフサイクル、短時間で多数の動物を得ることができること。開発段階における光学的透明度。そして、何よりも、受精後の0〜120時間における倫理的影響が極めて低い時間枠22。現在、zPDXを用いた共同臨床試験は、マウスベースのPDXを用いた共同臨床試験よりも安価であり、免疫不全宿主株は腫瘍増殖をモニタリングするために高いメンテナンスコストと複雑なイメージング法を必要とするため23。結論として、これらすべての要因は、癌患者の化学療法感受性プロファイルを予測するための共同臨床試験での使用、および薬物スクリーニングのための新しいモデルに関心のある研究者による使用のためのzPDXモデルの可能性を浮き彫りにします。
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Disclosures
著者には、宣言する利益相反はありません。
Acknowledgments
この作品は、フォンダツィオーネピサ(プロジェクト114/16)によって資金提供されました。著者らは、Azienda Ospedaliera Pisanaの組織病理学ユニットのRaffaele Gaeta氏に、患者サンプルの選択と病理学のサポートに感謝の意を表したい。また、実験における技術サポートを提供してくれたアレッシア・ガランテにも感謝します。この記事は、COST(欧州科学技術協力)の支援を受けたCOST Action TRANSPAN, CA21116の作業に基づいています。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 5-fluorouracil | Teva Pharma AG | SMP 1532755 | |
| 48 multiwell plate | Sarstedt | 83 3923 | |
| 96 multiwell plate | Sarstedt | 82.1581.001 | |
| Acetone | Merck | 179124 | |
| Agarose powder | Merck | A9539 | |
| Amphotericin | Thermo Fisher Scientific | 15290018 | |
| Anti-Nuclei Antibody, clone 235-1 | Merck | MAB1281 | 1:200 dilution |
| Aquarium net QN6 | Penn-plax | 0-30172-23006-6 | |
| BSA | Merck | A9418 | |
| CellTrace | Thermo Fisher Scientific | C34567 | |
| CellTracker CM-DiI | Thermo Fisher Scientific | C7001 | |
| CellTracker Deep Red | Thermo Fisher Scientific | C34565 | |
| Cleaved Caspase-3 (Asp175) (5A1E) Rabbit mAb | Cell Signaling Technology | 9661S | 1:250 dilution |
| Dimethyl sulfoxide (DMSO) | PanReac AppliChem ITW Reagents | A3672,0250 | |
| Dumont #5 forceps | World Precision Instruments | 501985 | |
| Folinic acid - Lederfolin | Pfizer | ||
| Glass capillaries, 3.5" | Drummond Scientific Company | 3-000-203-G/X | Outer diameter = 1.14 mm. Inner diameter = 0.53 mm. |
| Glass vials | VWR International | WHEAW224581 | |
| Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 647 | Thermo Fisher Scientific | A-21244 | 1:500 dilution |
| Goat serum | Thermo Fisher Scientific | 31872 | |
| Hoechst 33342 | Thermo Fisher Scientific | H3570 | |
| Irinotecan | Hospira | ||
| Low Temperature Freezer Vials | VWR International | 479-1220 | |
| McIlwain Tissue Chopper | World Precision Instruments | ||
| Microplate Mixer | SCILOGEX | 822000049999 | |
| Oxaliplatin | Teva | ||
| Paraformaldehyde | Merck | P6148-500G | |
| PBS | Thermo Fisher Scientific | 14190094 | |
| Penicillin-streptomycin | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
| Petri dish 100 mm | Sarstedt | 83 3902500 | |
| Petri dish 60 mm | Sarstedt | 83 3901 | |
| Plastic Pasteur pipette | Sarstedt | 86.1171.010 | |
| Poly-Mount | Tebu-bio | 18606-5 | |
| Propidium iodide | Merck | P4170 | |
| RPMI-1640 medium | Thermo Fisher Scientific | 11875093 | |
| Scalpel blade No 10 Sterile Stainless Steel | VWR International | SWAN3001 | |
| Scalpel handle #3 | World Precision Instruments | 500236 | |
| Tricaine | Merck | E10521 | |
| Triton X-100 | Merck | T8787 | |
| Tween 20 | Merck | P9416 | |
| Vertical Micropipette Puller | Shutter instrument | P-30 |
References
- Rubin, H.
- Krzyszczyk, P., et al. The growing role of precision and personalized medicine for cancer treatment. Technology. 6 (3-4), 79-100 (2018).
- Siegel, R. L., Miller, K. D., Fuchs, H. E., Jemal, A.
- Trunk, A., et al. Emerging treatment strategies in pancreatic cancer. Pancreas. 50 (6), 773-787 (2021).
- Moffat, G. T., Epstein, A. S., O'Reilly, E. M. Pancreatic cancer-A disease in need: Optimizing and integrating supportive care. Cancer. 125 (22), 3927-3935 (2019).
- Sarantis, P., Koustas, E., Papadimitropoulou, A., Papavassiliou, A. G., Karamouzis, M. V. Pancreatic ductal adenocarcinoma: Treatment hurdles, tumor microenvironment and immunotherapy. World Journal of Gastrointestinal Oncology. 12 (2), 173-181 (2020).
- Marshall, L. J., Triunfol, M., Seidle, T. Patient-derived xenograft vs. organoids: a preliminary analysis of cancer research output, funding and human health impact in 2014-2019. Animals. 10 (10), 1923 (2020).
- Li, Y., Tang, P., Cai, S., Peng, J., Hua, G. Organoid based personalized medicine: from bench to bedside. Cell Regeneration. 9 (1), 21 (2020).
- Jung, J., Seol, H. S., Chang, S. The generation and application of patient-derived xenograft model for cancer research. Cancer Research and Treatment. 50 (1), 1-10 (2018).
- Rizzo, G., Bertotti, A., Leto, S. M., Vetrano, S. Patient-derived tumor models: a more suitable tool for pre-clinical studies in colorectal cancer. Journal of Experimental & Clinical Cancer Research. 40 (1), 178 (2021).
- Usai, A., et al. Zebrafish patient-derived xenografts identify chemo-response in pancreatic ductal adenocarcinoma patients. Cancers. 13 (16), 4131 (2021).
- Usai, A., et al. A model of a zebrafish avatar for co-clinical trials. Cancers. 12 (3), 677 (2020).
- Chen, X., Li, Y., Yao, T., Jia, R. Benefits of zebrafish xenograft models in cancer research. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 616551 (2021).
- Miserocchi, G., et al. Management and potentialities of primary cancer cultures in preclinical and translational studies. Journal of Translational Medicine. 15 (1), 229 (2017).
- Baghban, R., et al. Tumor microenvironment complexity and therapeutic implications at a glance. Cell Communication and Signaling. 18 (1), 59 (2020).
- Albini, A., et al. Cancer stem cells and the tumor microenvironment: interplay in tumor heterogeneity. Connective Tissue Research. 56 (5), 414-425 (2015).
- Avdesh, A., et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. Journal of Visualized Experiments. (69), e4196 (2012).
- Quail, D. F., Joyce, J. A. Microenvironmental regulation of tumor progression and metastasis. Nature Medicine. 19 (11), 1423-1437 (2013).
- Tavares Barroso, M., et al. Establishment of pancreatobiliary cancer zebrafish avatars for chemotherapy screening. Cells. 10 (8), 2077 (2021).
- Kopetz, S., Lemos, R., Powis, G. The promise of patient-derived xenografts: the best laid plans of mice and men. Clinical Cancer Research. 18 (19), 5160-5162 (2012).
- Xing, F., Saidou, J., Watabe, K. Cancer associated fibroblasts (CAFs) in tumor microenvironment. Frontiers in Bioscience. 15 (1), 166-179 (2010).
- Strähle, U., et al. Zebrafish embryos as an alternative to animal experiments-a commentary on the definition of the onset of protected life stages in animal welfare regulations. Reproductive Toxicology. 33 (2), 128-132 (2012).
- Hidalgo, M., et al. Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research. Cancer Discovery. 4 (9), 998-1013 (2014).
