Summary
L'obiettivo di questo manoscritto è quello di descrivere il modello murino KitV558Δ/+ e le tecniche per la dissezione e l'elaborazione di campioni di topo.
Abstract
Il tumore stromale gastrointestinale (GIST) è il sarcoma umano più comune ed è tipicamente guidato da una singola mutazione nel recettore KIT. Tra i tipi di tumore, sono stati sviluppati numerosi modelli murini al fine di studiare la prossima generazione di terapie contro il cancro. Tuttavia, in GIST, la maggior parte degli studi in vivo utilizza modelli murini con xenotrapianto che presentano limitazioni intrinseche. Qui, descriviamo un modello murino immunocompetente e geneticamente modificato di tumore stromale gastrointestinale che ospita una mutazione KitV558Δ / + . In questo modello, il KIT mutante, l'oncogene responsabile della maggior parte dei GIST, è guidato dal suo promotore endogeno che porta a un GIST che imita l'aspetto istologico e l'infiltrato immunitario visto nei GIST umani. Inoltre, questo modello è stato utilizzato con successo per studiare sia terapie molecolari mirate che immunitarie. Qui descriviamo l'allevamento e il mantenimento di una colonia di topi KitV558Δ/+ . Inoltre, questo documento descrive in dettaglio il trattamento e l'approvvigionamento di GIST, drenaggio del linfonodo mesenterico e cieco adiacente nei topi KitV558Δ / + , nonché la preparazione del campione per analisi molecolari e immunologiche.
Introduction
GIST è il sarcoma più comune negli esseri umani con un'incidenza di circa 6.000 casi negli Stati Uniti d'America1. GiST sembra provenire dalle cellule pacemaker gastrointestinali chiamate cellule interstiziali di Cajal ed è tipicamente guidato da una singola mutazione nella tirosin-chinasi KIT o PDGFRA2. La chirurgia è il pilastro del trattamento per GIST e può essere curativa, ma i pazienti con malattia avanzata possono essere trattati con l'inibitore della tirosin-chinasi (TKI), imatinib. Dalla sua introduzione oltre 20 anni fa, imatinib ha trasformato il paradigma di trattamento in GIST, migliorando la sopravvivenza nella malattia avanzata da 1 a oltre 5 anni 3,4,5. Sfortunatamente, imatinib è raramente curativo a causa delle mutazioni KIT acquisite, quindi sono necessari nuovi trattamenti per questo tumore.
I modelli murini sono un importante strumento di ricerca nello studio di nuove terapie nel cancro. In GIST 6,7 sono stati sviluppati e studiati più modelli di xenotrapianto sottocutaneo e derivati dal paziente. Tuttavia, i topi immunodeficienti non rappresentano pienamente il GIST umano poiché i GIST ospitano profili immunitari differenziali a seconda della loro mutazione oncogenica e l'alterazione del microambiente tumorale gastrointestinale migliora gli effetti della terapia TKI 8,9. Il topo KitV558Δ/+ ha una delezione della linea germinale eterozigote nell'esone Kit 11, che codifica nel dominio juxtamembrane, il sito più comunemente mutato nel GIST10 umano. I topi del kitV558Δ/+ sviluppano un singolo GIST cecale con penetranza al 100% e i tumori hanno istologia, segnalazione molecolare, infiltrazione immunitaria e risposta alla terapia simili a quelle umane di GIST 8,11,12,13. Qui, descriviamo l'allevamento, il trattamento e l'isolamento e l'elaborazione dei campioni nei topi KitV558Δ / + per l'uso nella ricerca molecolare e immunologica in GIST.
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Protocol
Tutti i topi sono stati ospitati in condizioni prive di agenti patogeni presso l'Università della Pennsylvania secondo le linee guida NIH e con l'approvazione dell'Università della Pennsylvania IACUC. L'eutanasia è stata eseguita seguendo le procedure operative standard dell'Università della Pennsylvania Laboratory Animal Resources.
1. KitV558Δ/+ allevamento di topi
- Incrocia i mouse KitV558Δ/+ più di 10 volte su uno sfondo C57BL/6J utilizzando mouse C57BL/6J. Per fare questo, allevare i topi maschi KitV558Δ / + con topi C57BL / 6J femmina con un rapporto 1: 2.
NOTA: Il genotipo omozigote KitV558Δ/V558Δ è letale in utero. È possibile allevare topi KitV558Δ/+ femmina con topi maschi C57BL/6J, ma la dimensione della cucciolata è circa la metà di quella osservata dai topi femmina C57BL/6J. Inoltre, i topi Femmina KitV558Δ/+ producono cucciolate limitate dopo i 4 mesi di età. - Genotipizzare i cuccioli a 7-14 giorni di età mediante clipping della punta per confermare la presenza del genotipo KitV558Δ/ +. Utilizzare il primer in avanti: TCTCCTCCAGAAACCCATGTATGAA; reporter 1: CCTCGACAACCTTCCA; primer inverso: TTGCGTCGGGTCTATGTAAACAT; e reporter 2: TCTCCTCGACCTTCCA per la genotipizzazione.
2. KitV558Δ/+ trattamento mouse
- Età e sesso corrispondono ai topi KitV558Δ/+prima del trattamento. Utilizzare i topi abbinati all'età e al sesso in coorti poiché i tumori dei topi KitV558Δ / + femminili sono più grandi di quelli nei topi maschi. Trattare i topi a 8-12 settimane di età, momento in cui i tumori sono stabiliti (Figura 1).
- Somministrare inibitori della tirosin-chinasi per via orale o mediante iniezione intraperitoneale (i.p.); I tumori del kitV558Δ/+ sono sensibili agli inibitori della tirosina chinasi. Somministrare imatinib in una dose di 600 mg/L in acqua potabile o iniezioni i.p. di 45 mg/kg due volte al giorno. Misurare la riduzione del peso del tumore utilizzando bilance digitali dopo la dissezione del tumore come mostrato nella fase 3, che è di circa il 50% a 1 settimana e l'80% a 4 settimane dopo il trattamento con imatinib (Figura 2).
3. KitV558Δ/+ prelievo di organi di topo
- Eutanasia dei topi mediantenarcosi da CO 2 ad una portata del 60% del volume della camera al minuto. Lasciare i topi nella camera per almeno 2 minuti dopo che la respirazione è cessata, quindi eseguire la lussazione cervicale per confermare la morte.
- Sterilizzare tutti gli strumenti, indossare guanti durante la procedura e mantenere un campo sterile. Preparare la pelle con il 70% di etanolo. Fai un'incisione verticale della linea mediana di 2 cm usando le forbici ed entra nella cavità addominale. Lisare bruscamente eventuali aderenze intra-addominali.
- Per rimuovere il linfonodo mesenterico drenante, seguire i passaggi descritti di seguito.
- Identifica il cieco e solleva il suo mesentere in modo superiore. Approssimativamente a metà strada verso la base del mesentere del colon, identificare il linfonodo mesenterico e sezionarlo bruscamente. Il linfonodo è bianco sporco e di circa 0,5 cm x 0,5 cm di dimensione.
- Dividere il tessuto linfonodale in terzi per l'isolamento proteico, l'istologia e la sospensione unicellulare, se necessario. Per le sospensioni monocellulari, posizionare il tessuto linfonodale in 20 ml di mezzi privi di siero (RPMI) e mantenere sul ghiaccio.
- Per l'isolamento del GIST e del cieco, seguire i passaggi descritti di seguito.
- Il cieco nei topi KitV558Δ/+ è per lo più sostituito da un GIST. Dividere con attenzione la giunzione ileocolica dalla base del tumore. Per raccogliere il cieco, dividere nuovamente il colon, 2 cm prossimale alla base del tumore.
- Nel 50%-60% dei topi KitV558Δ/+ , la testa del tumore contiene un cappuccio di tessuto cecale, che in genere contiene liquido sieroso ma può raramente contenere pus (Figura 3). Sezionare bruscamente il tessuto del cappuccio lontano dal tessuto tumorale.
- Dividere il tessuto tumorale e / o il cieco in terzi per l'isolamento proteico, l'istologia e la sospensione unicellulare, se necessario. Per le sospensioni monocellulari, posizionare il tessuto tumorale o il cieco in HBSS con FCS al 2%, sufficiente per coprire il campione e mantenere il ghiaccio.
4. Analisi Western blot del tessuto GIST
- Preparare un tampone di lisi tissutale contenente 50 mM TrisHCl (pH 7,5), 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, detergente non denaturante all'1%, 2 mM Na3VO4, 1 mM PMSF, 10 mM NaF e 20 μl/ml di miscela di inibitori della proteinasi.
- Preparare una soluzione salina 1x Tris-buffered con 1% Tween 20 (TBST) combinando 1800 mL di acqua deionizzata, 2 mL di Tween 20 e 200 mL di 10x Tris-buffered saline (TBS).
- Risospese il tessuto dal punto 3.4.3 in un tubo FACS in 5mL/g di tampone di lisi tissutale e omogeneizzare due volte con un omogeneizzatore meccanico a 15.000 giri / min per 15 s su ghiaccio. Incubare lisato per 30 minuti su ghiaccio.
- Trasferire il lisato in un tubo microcentrifuga da 1,5 ml. Centrifugare alla massima velocità per 20 min a 4 °C. Trasferire il surnatante in un nuovo tubo microcentrifuga.
- Eseguire lisati su un gel sfumato dal 4% al 15%, quindi trasferirli su una membrana di nitrocellulosa, come descritto in14.
- Lavare la membrana una volta in 1x TBS per 5 minuti e quindi bloccare la membrana nel latte al 5% per 1 ora. Ancora una volta, lavare la membrana una volta in 1x TBS per 10 minuti.
- Membrana di incubazione in anticorpo primario diluito 1:1000 in BSA al 5% a 4 °C durante la notte. Lavare la membrana 3x in 1x TBST per 10 min ciascuno. Incubare blot con anticorpo secondario diluito 1:2500 in latte al 2,5% per 1 ora a temperatura ambiente.
- Lavare la membrana una volta in 1x TBS per 5 min. Aggiungere abbastanza substrato HRP per coprire la membrana, in genere 200-500 μL, e utilizzare un imager digitale per rilevare e quantificare la chemiluminescenza.
5. Immunoistochimica del tessuto GIST
- Fissare il tessuto dal passo 3.3.2 o 3.4.3 in paraformaldeide al 4% a 4 °C durante la notte. Conservare il tessuto in 70% EtOH fino al momento della lavorazione. Incorporare e sezionare blocchi a 5 μm di spessore su vetrini, come descritto15,16.
- Rilevamento immunoistochimico completo utilizzando un kit di immunodetezione di base, come descritto in precedenza17.
6. Sospensione unicellulare del linfonodo mesenterico
- Versare il fluido RPMI con il campione linfonodale dal passaggio 3.3.2 su un filtro da 100 μm. Spostare il filtro sul nuovo linfonodo conico e poltiglia da 50 mL con l'estremità morbida di una siringa di plastica da 3 mL. Filtro di lavaggio con 20 mL di supporti RPMI.
- Centrifugare il filtrato a 450 x g a 4 °C per 5 min. Aspirare il surnatante.
- Risciacquare il pellet in 20 ml di FBS all'1% in PBS (tampone perline) e versare su un filtro da 40 μm. Raccogliere il filtrato cellulare. Conta le cellule usando un emocitometro.
- Centrifugare il filtrato a 450 x g a 4 °C per 5 min. Aspirare il surnatante. Risospeso in tampone di perline a 6 x 107 cellule/mL per citometria a flusso.
7. Sospensione monocellulare di GIST
- Preparare il tampone della collagenasi aggiungendo 250 mg di collagenasi IV, una compressa di inibitore della proteasi privo di EDTA e 100 μL di DNasi I a 50 ml di HBSS. Ruotare per 10 minuti a temperatura ambiente fino a quando non si scioglie.
- Mettere GIST in un piatto sterile e aggiungere 2,5 ml di tampone di collagenasi. Tritare il tumore usando un bisturi sterile e forbici fino a quando il tumore è in frammenti fini. Utilizzare una pipetta di grandi dimensioni per aspirare il tumore e la collagenasi in un tubo da 50 ml.
- Incubare in un incubatore vibrante a 100 giri/min a 37 °C per 30 min. Reazione di spegnimento con 2 ml di FBS.
- Versare la collagenasi con il campione GIST su un filtro da 100 μm e schiacciare il tumore con l'estremità morbida di una siringa di plastica da 3 ml e raccogliere in un tubo da 50 ml. Filtro di lavaggio con 20 ml di HBSS. Centrifugare il filtrato a 450 x g, 4 °C per 5 min. Aspirare il surnatante.
- Risospesare il pellet in 20 ml di tampone perline e versare su un filtro da 40 μm. Raccogliere il filtrato e contare le cellule utilizzando un emocitometro. Centrifugare il filtrato a 450 x g, 4 °C per 5 min. Aspirare il surnatante. Risospeso in tampone di perline a 6 x 107 cellule/mL per citometria a flusso.
8. Sospensione unicellulare del cieco
- Preparare il tampone di collagenasi come nel passaggio 7.1. Usando le forbici, dividere il cieco longitudinalmente per esporre la mucosa interna. Tagliare in sezioni di 0,5 cm e posizionare in un tubo da 50 ml con 5 mL di HBSS con il 2% di FBS. Agitare energicamente per 30 s, centrifugare a 450 x g per 20 s, quindi aspirare il surnatante.
- Aggiungere 5 mL di HBSS con 2 mM EDTA. Incubare in un incubatore vibrante a 37 °C a 100 giri/min per 15 min. Centrifuga a 450 x g per 20 s. Aspirare il surnatante.
- Aggiungere 5 ml di HBSS. Agitare energicamente per 30 s, centrifugare a 450 x g per 20 s, quindi aspirare il surnatante. Ripeti ancora una volta.
- Aggiungere 5 ml di tampone di collagenasi. Incubare in un incubatore vibrante a 37 °C per 30 minuti a 100 giri/min. Agitare energicamente ogni 10 minuti. Reazione di spegnimento con 2 ml di FBS.
- Versare la collagenasi con un campione di cieco su un filtro da 100 μm e schiacciare con l'estremità morbida di una siringa di plastica da 3 ml. Filtro di lavaggio con 20 ml di HBSS. Raccogliere il filtrato.
- Centrifugare il filtrato a 450 x g per 5 min a 4 °C. Aspirare il surnatante. Sostituire il pellet in 20 mL di tampone perline e versare su un filtro da 40 μm. Raccogliere filtrare e contare le cellule utilizzando un emocitometro.
- Centrifugare il filtrato a 450 x g per 5 min a 4 °C. Aspirare il surnatante. Risospeso in tampone di perline a 6 x 107 cellule/mL per citometria a flusso.
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Representative Results
Il modello murino Kit V558Δ/+ consente lo studio delle terapie in un modello murino immunocompetente. I topi KitV558Δ/+ hanno una durata media di 8 mesi a causa dell'ostruzione intestinale progressiva (Figura 4). I tumori dei topi kitV558Δ/+ esprimono marcatori canonici di GIST tra cui il KIT tirosin-chinasico e il canale transmembrana DOG1 (Figura 5), nonché il fattore di trascrizione ETV1 (non mostrato). I tumori possono essere studiati per i cambiamenti nella via di segnalazione KIT, come i marcatori a valle ERK e AKT (Figura 6), o il microambiente immunitario che imita da vicino il GIST umano 8,11,12,13. Larisonanza magnetica 8 o TC (Figura 7) può anche essere utilizzata per tracciare il volume del tumore come misurazione accurata della risposta tumorale. Un topo KitV558Δ/+ non trattato ha ricevuto 200 μL di gastrograffina per via orale 1 ora prima dell'imaging. L'imaging TC è stato completato su una piattaforma vivaCT 80. La ricostruzione 3D è stata eseguita con il software Fiji, che può anche misurare il volume del tumore.
Figura 1: Confronto dei pesi tumorali nei topi KitV558Δ/+ maschi e femmine. I tumori di topi maschi e femmine non trattati di 9 settimane non trattati sono stati isolati e pesati (n = 15 topi/ gruppo). I dati rappresentano la media ± errore standard di media (SEM); i valori p sono stati calcolati utilizzando il test t di uno studente; * = P < 0,05. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Effetto di imatinib sui tumori dei topi KitV558Δ/+. I topi del kitV558Δ/+ sono stati trattati con imatinib vehicle o 600 mg/L in acqua potabile per 1 o 4 settimane. I tumori sono stati isolati e pesati (n = 4-5 topi/gruppo). I dati rappresentano la media ± SEM; i valori p sono stati calcolati utilizzando un confronto ANOVA unidirezionale con un post-test Bonferroni per il confronto di singoli gruppi; * = P < 0,05. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: KitV558Δ/+ tumore con cappuccio. Foto rappresentativa di un tumore da un topo KitV558Δ/+ con un cappuccio cecale contenente liquido sieroso. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4: Durata dei mouse KitV558Δ/ +. La sopravvivenza dei topi KitV558Δ/+ non trattati è stata monitorata per > 400 giorni (n = 43 topi). Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 5: Analisi immunoistochimica. Istologia rappresentativa di un tumore KitV558Δ/+ dove la barra della scala è 40 μm. Abbreviazioni: H&E = colorazione ematossilina ed eosina; Kit = un marchio canonico di GIST e recettore tirosina chinasi; Dog1 = un marcatore canonico di GIST con ruolo nel trasporto di anioni. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 6: Analisi della segnalazione molecolare. I topi del kitV558Δ/+ sono stati trattati con imatinib o 600 mg/L in acqua potabile per 1 settimana. Ai topi è stata somministrata una singola iniezione i.p. di veicolo o 45 mg/kg di imatinib 6 ore prima dell'analisi. I lisati proteici dei tumori del KitV558Δ/+ sono stati esaminati da Western blot (n = 2 topi/gruppo). Abbreviazioni: P Kit = tirosina chinasi del recettore del Kit fosforilato; Kit T = tirosina chinasi totale del recettore Kit; P ERK = proteina chinasi attivata dal mitogeno fosforilata; T ERK = proteina chinasi totale attivata dal mitogeno; P AKT = proteina chinasi serina-treonina fosforilata; T AKT = proteina chinasi totale della serina-treonina. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 7: Analisi di imaging TC. Ricostruzione TC 3D di un topo KitV558Δ/+ non trattato che dimostra un tumore (freccia) nel bacino. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Discussion
Il modellomurino Kit V558Δ/+ è un potente strumento di ricerca nell'analisi molecolare e immunologica del GIST. Sebbene la strategia di allevamento richieda un singolo incrocio, l'utilizzo di coorti di topi KitV558Δ/+ in esperimenti di analisi della risposta tumorale richiede un allevamento estensivo. I topi dovrebbero essere abbinati all'età e al sesso per garantire pesi tumorali simili e il 10% dei topi muore prima delle 8 settimane di età quando i tumori sono stabiliti. Strategie di allevamento meno estese sono possibili se si utilizzano tecniche di imaging avanzate come la TC o la risonanza magnetica per tracciare il volume del tumore all'interno dei singoli topi. Tuttavia, i topi KitV558Δ/+ sono stati incrociati con successo ad altri modelli murini knock-out o inducibili, rivelando importanti meccanismi immunitari e molecolari12.
Le cellule tumorali dei topi KitV558Δ/+ sono facilmente isolate mediante ordinamento delle colonne per KIT (CD117) o per citometria a flusso18. Cellule tumorali isolate da topi KitV558Δ/+ possono essere coltivate in vitro12. Nei primi passaggi, le cellule tumorali isolate dei topi KitV558Δ/+ mantengono l'espressione kit e possono essere utilizzate per studi in vitro . Tuttavia, dopo diversi passaggi, queste linee cellulari perdono l'espressione kit, limitandone l'applicabilità. Come la maggior parte dei modelli murini, i tumori del KitV558Δ/+ non metastatizzano, il che limita lo studio del GIST extraintestinale. Allo stesso modo, i tumori dei topi KitV558Δ/+ si verificano solo nel cieco e le cellule isolate dai tumori KitV558Δ/+ non crescono quando isolate e iniettate nel fegato o nella milza, il che limita la valutazione del microambiente tumorale da diversi siti di malattia. Inoltre, la mutazione KitV558Δ/+ non ha alcun impatto noto sullo sviluppo ematologico delle cellule in questo modello murino.
Il microambiente immunitario nei tumori dei topi KitV558Δ/+ contiene principalmente macrofagi seguiti da cellule T, che imitano da vicino il GIST11 umano. Tuttavia, è imperativo che il cappuccio cecale sia rimosso completamente dal tumore prima di valutare il peso del tumore o l'infiltrato immunitario, poiché esistono popolazioni immunitarie distinte nel tumore rispetto al cieco. Nella nostra esperienza, i pesi tumorali sono paragonabili anche tra quelli con cappucci e non vi è alcuna associazione significativa tra la terapia con inibitori della tirosin-chinasi e lo sviluppo di un cappuccio cecale. Inoltre, non abbiamo trovato alcuna differenza significativa nel microambiente tumorale confrontando i tumori con e senza cappucci cecali.
Molti modelli murini geneticamente modificati sono stati sviluppati per l'uso nella ricerca sul cancro, soprattutto dopo l'avvento dell'editing genetico CRISPR. Mentre numerosi modelli immunocompetenti si basano sull'attivazione mediata da cre-loxP di oncogeni o sull'inattivazione di geni oncosoppressori, i tumori KitV558Δ/+ sono guidati dal loro promotore endogeno. Di conseguenza, i risultati del modello murino KitV558Δ/+ sono altamente traducibili in malattie umane, in particolare nella valutazione della segnalazione KIT19. Guardando al futuro, il topo KitV558Δ/+ dovrebbe continuare a servire come modello prezioso in quanto nuove strategie di trattamento, tra cui il blocco del checkpoint e la terapia CAR T, continuano ad essere esplorate per il trattamento dei tumori dei tessuti molli, incluso il GIST.
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Disclosures
Gli autori non hanno conflitti di interesse da divulgare.
Acknowledgments
I topi KitV558Δ/+ sono stati geneticamente modificati e condivisi dal Dr. Peter Besmer10. Questo lavoro è stato supportato dalle sovvenzioni NIH R01 CA102613 e T32 CA251063.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 100 micron filter | EMSCO | 1194-2360 | |
| 1x RBC lysis buffer | Life Technologies | 00-4333-57 | |
| 3mL syringe | Thermo Fisher Scientific/BD Biosciences | 14823435 | |
| 4–15% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels, 10-well, 30 µl | Bio-Rad | 4561083 | |
| 4% Paraformaldehyde Solution | Thermo Fisher Scientific | AAJ19943K2 | |
| 40 micron filter | EMSCO | 1194-2340 | |
| 5M NaCl | Sigma Aldrich | S6546 | |
| 70 micron filter | EMSCO | 1194-2350 | |
| AKT antibody (C67E7) | Cell Signaling | 4691 | |
| C57BL/6J mice | The Jackson Laboratory | ||
| Collagenase IV | Sigma Aldrich | C5138 | |
| Complete mini edta free protease inhibitor | Thomas Scientific | C852A34 | |
| Countess II Automated Cell Counter | Thermo Fisher Scientific | ||
| Disposable Scalpels | Thermo Fisher Scientific/Exel International | 14-840-00 | |
| Dnase I | Thomas Scientific | C756V81 | |
| Dog1 antibody | abcam | ab64085 | |
| EDTA | Sigma Aldrich | E9884 | |
| ERK antibody (p44/42) | Cell Signaling | 9102 | |
| FBS | Thomas Scientific | C788U23 | |
| FIJI software | FIJI | https://imagej.net/software/fiji | |
| Fisherbrand 850 Homogenizer | Thermo Fisher Scientific | 15-340-169 | |
| HBSS | University of Pennsylvania Cell Center | ||
| Imatinib mesylate | Selleck Chemicals | S1026 | |
| KIT antibody (D13A2) | Cell Signaling | 3074 | |
| KitV558Δ/+ Genotyping | Transnetyx | ||
| Microcentrifuge tubes (1.5mL) | Thermo Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| Mouse on Mouse Immunodetection Kit, Basic | Vector Laboratories | BMK-2202 | |
| Nitrocellulose Membrane, Precut, 0.45 µm | Rio-Rad | 1620145 | |
| Nonfat Dry Milk | Thermo Fisher Scientific | NC9121673 | |
| Nonidet P 40 Substitute | Sigma Aldrich | 74385 | |
| p-AKT antibody (S473) | Cell Signaling | 4060 | |
| p-ERK antibody (p44/42) | Cell Signaling | 9101 | |
| p-KIT antibody (Y719) | Cell Signaling | 3391 | |
| PMSF Protease Inhibitor | Thermo Fisher Scientific | 36978 | |
| Proeinase K | Thermo Fisher Scientific | BP170050 | |
| Round-Bottom Polystyrene Test (FACS) Tubes | Falcon/Thermo Fisher Scientific | 14-959-2A | |
| RPMI | University of Pennsylvania Cell Center | ||
| Sodium fluoride (NaF) | Sigma Aldrich | 201154 | |
| Sodium orthovanadate (Na3VO4) | Sigma Aldrich | S6508 | |
| SuperSignal West Dura Extended Duration Substrate | Thermo Fisher Scientific | 34076 | |
| TBS buffer (10x) | University of Pennsylvania Cell Center | ||
| Tissue culture dish (100mm2) | Thermo Fisher Scientific/Falcon | 08-772E | |
| TrisHCL | Thermo Fisher Scientific | BP1757500 | |
| Tween 20 | Rio-Rad | 1706531 | |
| vivaCT 80 platform | Scanco medical |
References
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