Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Immunology and Infection
Click here for the English version

Immunology and Infection

Обогащение нативных и рекомбинантных внеклеточных везикул микобактерий

Published: December 8, 2023 doi: 10.3791/65138
Automatic Translation
1, 1, 1,2, 1,3, 1, 1, 1, 1,4, 1, 1
1Bacterial Pathogenesis Laboratory, Infectious Diseases and Immunology Group, Translational Health Science and Technology Institute, NCR Biotech Science Cluster, 2Clinical Microbiology Division, CSIR-Indian Institute of Integrative Medicine, 3ICAR-Research Complex for Eastern Region, 4Public Health Research Institute, Rutgers University

ERRATUM NOTICE

Summary

В этом протоколе подробно описывается обогащение нативных микобактериальных внеклеточных везикул (mEV) из аксенических культур Mycobacterium smegmatis (Msm) и то, как можно спроектировать и обогатить mCherry (красный флуоресцентный репортер), содержащие рекомбинантные MsmEV. Наконец, он подтверждает новый подход с обогащением MsmEV, содержащих белок EsxA Mycobacterium tuberculosis.

Abstract

Большинство бактерий, включая микобактерии, продуцируют внеклеточные везикулы (ВВ). Поскольку бактериальные ВВ (бВВ) содержат подмножество клеточных компонентов, включая метаболиты, липиды, белки и нуклеиновые кислоты, несколько групп оценили либо нативные, либо рекомбинантные версии ВВ на предмет их защитной активности в качестве субъединичных вакцин-кандидатов. В отличие от нативных ВВ, рекомбинантные ВВ имеют молекулярную инженерию, содержащую один или несколько интересующих иммуногенов. За последнее десятилетие различные группы исследовали различные подходы к созданию рекомбинантных электромобилей. Однако здесь мы сообщаем о разработке, конструировании и обогащении рекомбинантных микобактериальных ВВ (мВВ) в микобактериях. Для этого в качестве модельной системы мы используем Mycobacterium smegmatis (Msm), авирулентную почвенную микобактерию. Сначала мы опишем генерацию и обогащение нативных электромобилей Msm. Затем мы описываем дизайн и конструкцию рекомбинантных mEV, которые содержат либо mCherry, красный флуоресцентный репортерный белок, либо EsxA (Esat-6), известный иммуноген Mycobacterium tuberculosis. Мы достигаем этого путем раздельного слияния mCherry и EsxA N-концов с С-концом небольшого белка Msm Cfp-29. Cfp-29 является одним из немногих белков, присутствующих в изобилии в MsmEV. Протокол генерации и обогащения рекомбинантных mEV из Msm остается идентичным протоколу генерации и обогащения нативных EV Msm.

Introduction

Несмотря на разработку и применение широкого спектра вакцин против инфекционных болезней, даже по сей день ~30% всех случаев смерти людей по-прежнему происходит от инфекционныхболезней1. До появления вакцины против туберкулеза (ТБ) - Bacillus Calmette Guerin (БЦЖ) - туберкулез был убийцей номер один (от ~10 000 до 15 000 на 100 000 населения)2. Благодаря введению БЦЖ и легкому доступу к противотуберкулезным препаратам первой и второй линии к 2022 г. смертность, связанная с туберкулезом, резко снизилась до ~1 млн/год к 2022 г. (т.е. ~15-20 на 100 000населения1). Тем не менее, в эндемичных по туберкулезу популяциях мира смертность, связанная с туберкулезом, по-прежнему составляет ~100-550 на 100 000населения1. В то время как эксперты признают несколько причин, приводящих к таким искаженным цифрам, опосредованная БЦЖ защита, не сохраняющаяся даже в течение первого десятилетия жизни, по-видимому, является основной причиной 3,4,5,6,7. Таким образом, с учетом обновленных «Целей в области устойчивого развития» ООН и «Стратегии ВОЗ по ликвидации туберкулеза» предпринимаются согласованные глобальные усилия по разработке гораздо более совершенной альтернативы БЦЖ, которая, возможно, обеспечит пожизненную защиту от туберкулеза.

Для достижения этой цели несколько групп в настоящее время оценивают модифицированные/рекомбинантные штаммы БЦЖ, непатогенные и аттенуированные виды микобактерий, отличные от БЦЖ, и субъединичные кандидаты 8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18 . Как правило, субъединичные вакцины представляют собой липосомы, селективно нагруженные небольшим количеством очищенных (~1-6) полноразмерных или укороченных иммуногенных белков патогена. Тем не менее, из-за их ложного сворачивания в ненативные конформации и/или случайных нефункциональных взаимодействий между загруженными белками, субъединицы часто не имеют нативных и германных эпитопов и, следовательно, не могут в достаточной степени подготовить иммунную систему14,19,20.

Следовательно, внеклеточные везикулы (ВВ) бактерий набрали обороты в качестве многообещающей альтернативы 21,22,23,24,25,26. Как правило, бактериальные ВВ (бВВ) содержат подмножество своих клеточных компонентов, включая некоторые части нуклеиновых кислот, липидов и сотни метаболитов и белков27,28. В отличие от липосом, в которых несколько очищенных белков искусственно загружены, бэв содержат сотни естественно загруженных, нативно свернутых белков с большей склонностью к подготовке иммунной системы, особенно без усиления/помощи адъювантов и агонистов толл-подобных рецепторов (TLR)27,28,29. Именно в рамках этого направления исследований мы и другие изучили полезность микобактериальных EV в качестве потенциальных субъединичных бустеров BCG30. Несмотря на опасения по поводу того, что у бэв отсутствует однородная антигенная нагрузка, ВВ аттенуированной Neisseria meningitidis успешно защищают людей от менингококка серогруппы В31,32.

По крайней мере, теоретически, лучшими ВВ, которые могут хорошо повысить БЦЖ, являются ВВ, обогащенные патогенными бактериями. Однако обогащение электромобилей, генерируемых патогенными микобактериями, является дорогостоящим, трудоемким и рискованным процессом. Кроме того, электромобили, генерируемые патогенами, могут быть более вирулентными, чем защитными. Учитывая потенциальные риски, здесь мы сообщаем о хорошо протестированном протоколе обогащения электромобилей, генерируемых аксенически выращенной МСМ, авирулентной микобактерией.

Однако, несмотря на то, что авирулентные микобактерии кодируют несколько ортологов патогенных белков, им не хватает нескольких вакцинных антигенов/эпитопов патогенных белков, необходимых для того, чтобы в достаточной степени подготовить иммунную системук защите. Поэтому мы также исследовали создание и обогащение рекомбинантных ВВ МСМ с помощью молекулярной инженерии, таким образом, чтобы значительная часть любого патогенного белка, представляющего интерес, экспрессируемого и транслируемого в МСМ, должна достигать своих ВВ. Мы предположили, что один или несколько из 10 наиболее распространенных белков МСМ ВВ при слиянии с интересующим белком будут способствовать такой транслокации.

В 2011 году, когда мы начали стандартизировать обогащение микобактериальных ВВ (мВВ) в нашей лаборатории, Прадос-Росалес и др. впервые сообщили о визуализации и обогащении МЭВ in vitro30. Позже, в 2014 году, та же группа опубликовала модифицированную версию своего метода34 2011 года. В 2015 году Lee et al. также сообщили о независимом стандартизированном методе обогащения mEV из аксенических культур микобактерий35. Объединив оба протокола 34,35 и включив некоторые из наших модификаций после тщательной стандартизации, мы описываем здесь протокол, который помогает регулярно обогащать mEV из аксенических культур микобактерий36.

Здесь мы особенно подробно остановимся на обогащении ВВ, специфичных для МСМ, которое является расширением опубликованного протокола36 для обогащения ВВ микобактерий в целом. Мы также подробно описываем, как конструировать рекомбинантные mEV (R-mEV), которые содержат белок mCherry (в виде красного флуоресцентного репортера) и EsxA (Esat-6)37,38,39, преобладающий иммуноген и потенциальный субъединица вакциногена Mycobacterium tuberculosis. Протокол обогащения R-mEV остается идентичным тому, который мы описали для обогащения нативных электромобилей от Msm.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Условия произрастания Mycobacterium smegmatis, Escherichia coli и их производных

  1. Медиа
    1. Миддлбрук 7H9 жидкий бульон
      1. Приготовьте 20% исходный раствор Tween-80, предварительно нагрев необходимый объем воды двойной дистилляции (ddw) в стеклянном стакане до ~45-50 oC в микроволновой печи, добавьте необходимый объем Tween-80 с помощью соответствующего мерного цилиндра и непрерывно перемешивайте на небольшой магнитной мешалке, чтобы привести 20% Tween-80 в однородный раствор. Отфильтруйте 20% Tween-80 через фильтр для утилизации 0,22 мкм и храните бледно-желтый исходный раствор при температуре 4 °C.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Все следы Tween-80 в измерительном цилиндре должны быть перенесены в стакан для точной конечной концентрации. Подготовленную заготовку Tween-80 не автоклавировать. Процедите (используйте 0,22 мкМ), стерилизуйте и храните при температуре 4 оС.
      2. Следуйте инструкциям производителя по приготовлению бульона 7Н9. Суспендировать 4,7 г порошка 7H9 в 900 мл ddw. Добавьте 2 мл глицерина, перемешайте содержимое и автоклавируйте при температуре 121 °C, 15 фунтов на квадратный дюйм в течение 20 минут.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Не добавляйте обогащение Middlebrook ADC (ADC) и Tween-80 перед автоклавированием.
      3. После того, как автоклавная среда остынет до комнатной температуры (RT, т.е. ~25 oC), в стандартный шкаф биобезопасности типа A2 асептически добавьте 10 запасов по 100 мл АЦП (окончательный 1 раз) и 2,5 мл (конечные 0,05%) 20% Tween-80. Отфильтруйте смесь через одноразовый фильтрующий блок 0,22 мкм и храните очень светлый желтовато-зеленый, прозрачный исходный раствор при температуре 4 °C.
        ПРИМЕЧАНИЕ: pH среды должен быть от ~6,6 до 6,8 (если <6,4 или >7,0, выбросьте и приготовьте свежим). Хранить при температуре 4 оС (стабильно 3-4 недели). Настоятельно рекомендуется дважды отфильтровать фильтрующий материал 7H9 (после добавления АЦП и Tween-80) через два независимых одноразовых фильтрующих блока 0,22 мкм.
    2. Жидкий бульон Соутона (минимальная среда)
      1. Растворите L-аспарагин (0,4% масс.) и лимонную кислоту (0,2% масс.) в 950 мл ддв. Добавьте по 1 мл свежеприготовленных 1000 бульонов (в ддв) двухосновного фосфата калия (бесцветного; бульон 10 г/20 мл; конечный 1 x 0,5 г/л); гептагидрат сульфата магния (бесцветный; бульон 10 г/20 мл; конечный 1x 0,5 г/л); и цитрат аммония железа (очень светло-коричневый; запас 1,6 г/40 мл; конечный 1x 0,04 г/л) и хорошо перемешать на магнитной мешалке.
        ПРИМЕЧАНИЕ: В лучшем случае акции 1,000x могут быть 2-недельной давности; если старше этого срока, приготовьте свежие бульоны; хранить их в RT в темноте (например, в шкафу/на полке). Если цитрат аммония темно-коричневый, выбросьте его и сделайте свежим. Лучше всего добавить три соли в порядке, указанном в шаге 1.1.2.1. Перемешивайте раствор каждый раз перед добавлением каждого солевого раствора.
      2. Измерьте и запишите рН с помощью рН-метра; Убедитесь, что он составляет от 3,1 до 3,2. Если рН больше 3,7, выбросьте бульоны и заготовьте свежие. Чтобы отрегулировать pH до 7,4, используйте столько капель гидроксида натрия 10 Н, сколько необходимо. Контролируйте конечный pH, непрерывно перемешивая раствор/среду на магнитной мешалке.
      3. Добавьте 4,76 мл глицерина, 0,25 мл 20% Tween-80 (конечные 0,005%, см. также примечание к шагу 2.2.1.3), и только после этого доведите объем до 1 л. Затем процедите-стерилизуйте дважды 1 л среды с помощью двух отдельных фильтров для утилизации 0,22 мкм. Хранить прозрачную бесцветную среду при температуре 4 °C (стабильную в течение 2 недель).
        ПРИМЕЧАНИЕ: Только после того, как pH будет доведен до 7,4, добавьте глицерин. В противном случае носитель станет мутно-белым. Если он мутный, выбросьте его (не пытайтесь нагревать) и приготовьте свежий. Для всех приготовлений электромобилей используйте свежеприготовленный Sauton's.
    3. Миддлбрук 7Н11 агаровая основа
      1. Следуйте инструкциям производителя по приготовлению. Суспендировать 19 г порошка 7H11 в 900 мл ddw. Добавьте 5 мл глицерина, перемешайте на магнитной мешалке до получения однородной суспензии (бледно-зеленой; pH от 6,6 до 6,8; если >7,2, выбросьте и приготовьте свежие) и автоклавируйте при 121 oC, 15 фунтов на квадратный дюйм и в течение 20 минут.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Не добавляйте АЦП и 0,05% Tween-80 перед автоклавированием.
      2. Когда среда остынет до ~50 °C, асептически в шкафу биобезопасности типа A2 добавьте 100 мл ADC (доведенный до RT) и 2,5 мл 20% (конечный 0,05%) Tween-80 (доведенный до RT). Сразу же дозировать асептически в чашки Петри.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Пластины стабильны при температуре 4 °C в течение не менее 4-6 недель. Убедитесь, что пластины находятся на RT в течение ночи, прежде чем заворачивать пластины для хранения при температуре 4 °C. В противном случае влага будет задерживаться в пластинах во время инкубации при 37 оС.
    4. Миллер Лурия Бертани (LB) бульон и агаровая основа
      1. Следуйте инструкциям производителя по приготовлению. Для приготовления отвара LB 25 г порошка суспендировать в 1 000 мл ddw и осторожно перемешать в течение 5 минут в стеклянном стакане на магнитной мешалке. После равномерной суспензии необходимо распределить необходимые объемы во флаконы со средой (например, 300 мл во флакон со средой объемом 500 мл) и автоклавировать. Для приготовления агара LB суспендируют 40 г порошка в 1 000 мл ddw и автоклаве (12 г порошка в 300 мл ddw во флаконе со стеклянной средой объемом 500 мл).
  2. Условия произрастания
    ПРИМЕЧАНИЕ: Все этапы работы с бактериальным культивированием должны выполняться в шкафу биобезопасности (тип A2). Все культуры должны быть обработаны стерильными пробирками, колбами и наконечниками для пипеток.
    1. День 1
      1. Добавьте по 1 мл глицеринового бульона Msm (из морозильной камеры -80 °C) в 2 x 10 мл (в стерильных конических центрифугированных пробирках по 50 мл) свежеклавированных, охлажденных и предварительно подогретых (~37 oC) бульона 7H9, трижды перемешайте, закройте крышками и инкубируйте пробирки в течение ночи при 37 °C и 200-220 об/мин (шейкер инкубатора).
        ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы вырастить Mycobacterium tuberculosis (Mtb), выполните аналогичные шаги, но инкубируйте пробирки объемом 50 мл в течение 4-6 дней при 37 °C и 120-150 об/мин (встряхиватель инкубатора) в настройках BSL3. Соблюдайте ВСЕ международные рекомендации и методы биобезопасности в отношении патогенов BSL3 и группы риска 3 при обращении и утилизации Mtb и его культур. Используйте шкаф биобезопасности типа B2 для работы с Mtb и его культурами.
    2. День 2
      1. Когда OD 600 (A600 нм; клеточный денситометр) достигает ~1,0, центрифугируют культуры МСМ в течение 10 мин при 3200 × г и RT (настольная центрифуга). Выбросьте надосадочную жидкость с помощью стерильных наконечников для пипеток объемом 1 мл.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Описанный выше шаг остается таким же для культур MTB, за исключением того, что количество дней составляет 4-7. Следите за тем, чтобы не прикасаться к бактериальным гранулам наконечником пипетки.
      2. Промывка: К каждой грануле Msm добавьте 1 мл предварительно подогретой среды Sauton (при RT) (шаг 1.1.2) и осторожно ресуспендируйте наконечниками дозатора объемом 1 мл, чтобы получить однородную суспензию. Используя стерильные наконечники для пипеток, доведите объемы до 10 мл (в каждом) с той же средой. Центрифугируют суспензии в течение 10 мин при 3 200 × г и RT и выбрасывают надосадочную жидкость. Повторите этот шаг еще раз.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Описанный выше шаг остается прежним для культур Mtb.
      3. Ресуспендируйте дважды промытые клетки Msm в 20 мл (каждая) предварительно подогретых клеток Sauton (предварительно подогретых в планшете или шейкер-инкубаторе) и измерьте оптическую плотность клеток при 600 нм. Посев необходимого объема культур МСМ в стерильные колбы Эрленмейера объемом 1 л, содержащие ~330 мл стерильного Саутона, так, чтобы окончательный OD600 составил ~0,05.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Ресуспендация всегда должна начинаться в небольшом объеме. Если конечный объем добавляется непосредственно в гранулу в один этап, ячейки останутся в виде диффузных гранул (индикатор плохой ресуспендии). Единственный способ решить эту проблему — раскрутить культуры и повторить суспендию в соответствии с рекомендациями. Описанный выше шаг остается прежним для культур Mtb.
    3. День 2/3
      1. Инкубируйте культуру объемом 330 мл в шейкере инкубатора при 200 об/мин и 37 °C до тех пор, пока культура OD600 не достигнет ~0,3. Затем промойте ячейки один раз (аналогично шагу 1.2.2.2, но с тем же объемом), а затем повторно суспендируйте гранулы в том же объеме. Распределите по 50 мл ресуспендированных культур в шесть стерильных колб Эрленмейера по 1 л, каждая из которых содержит 280 мл стерильного предварительно подогретого Соутона с 1/10 нормальноиспользуемого (0,05%) Tween-80, т.е. 0,005% (см. также примечание к шагу 2.2.1.3., чтобы понять, почему 1/10). Окончательный наружный диаметр600 должен быть около 0,05.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Для культур Mtb вместо колб Эрленмейера используйте роликовые бутылки (емкостью 1/2/4 л). Отрегулируйте объем культуры на флакон таким образом, чтобы при хранении на роликовом аппарате культура не достигала горлышка бутылки. Фактический объем в роликовой бутылке будет зависеть от вместимости роликовой бутылки.
      2. Инкубируйте каждую из культур объемом 330 мл в шейкере инкубатора при 200 об/мин и 37 °C до тех пор, пока OD600 не достигнет 2,0-2,5 (~15-18 ч).
        ПРИМЕЧАНИЕ: Для культур Mtb убедитесь, что окончательный OD600 составляет ~1.0-1.2 (занимает ~5-8 дней).

2. Обогащение мЭВ МСМ с помощью центрифугирования с градиентом плотности

  1. День 4
    1. Центрифугируют ~2 л культур МСМ средней экспоненциальной стадии в 6 стерильных флаконах центрифуги по 400 мл при 4 °С в течение 20 мин при ~8 000 × г (напольная модель центрифуги). Соберите отработанную надосадочную жидкость в две предварительно охлажденные автоклавные колбы по Эрленмейеру объемом 1 л и храните аликвоту гранулы для любых аналитических процедур (таких как SDS-PAGE и вестерн-блоттинг - здесь не описано).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Все последующие этапы должны выполняться при низкой температуре (~ 4 °C) для лучшего сохранения целостности электромобилей. Электромобили довольно стабильны при RT, но охлаждение является обязательным условием для долгосрочной стабильности (повторное замораживание и размораживание не рекомендуется). Во время аксенического роста культуры мЭВ диссоциируют с поверхности МСМ/МТБ и накапливаются в надосадочной жидкости/отработанной среде культуры.
    2. Отфильтруйте надосадочную жидкость культуры МСМ сначала через блок (блоки) фильтрации 0,45 мкм, а затем через блок (блоки) фильтрации для утилизации 0,22 мкм, чтобы удалить все следы бактерий.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Прямая фильтрация через фильтры 0,22 мкм часто приводит к засорению фильтрующих блоков (так как бактериальные гранулы могут быть повреждены во время выполнения шага 2.1.1.). Для получения надосадочной жидкости для культуры МТБ необходимо провести три этапа фильтрации культур МТБ (т.е. первую ступень фильтрации с помощью одноразового фильтрующего блока 0,45 мкм; две последовательные ступени фильтрации с одноразовыми фильтрующими блоками 0,22 мкм) перед перемещением фильтратов культуры в настройки BSL-2.
  2. День 4/5
    1. Используйте мембранные концентраторы 30 кДа для концентрирования фильтрата культуры МСМ (~2 л) до ~ 38 мл путем центрифугирования фильтрата культуры при 4 °C, 20 мин и 3 200 × г.
      1. Предварительно промойте концентраторы стерильным холодным ddw (~15 мл) (промыть при 4 °C, 5 мин и 3 200 × g).
      2. Промойте ~15 мл предварительно отфильтрованного холодного Sauton (те же условия, что и для воды (2.2.1.1.)), чтобы удалить все следы химикатов (используемых при производстве).
      3. Поскольку для концентрирования ~2 л культурального фильтрата технически требуется ~130 центриконов (при однократном использовании), при необходимости используйте центриконы повторно не менее 3-4 раз. Выполните следующие действия: концентрируйте от 15 мл до 0,5–1,0 мл (следуйте шагу 2.2.1), перелейте концентрат в чистую, автоклавированную и холодную ультрацентрифужную пробирку объемом 38 мл, а затем повторно перенесите оставшийся неконцентрированный фильтрат культуры в использованные центриконы для повторного концентрирования.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Использование концентраторов с давлением 24, 30 кДа для концентрирования 2 л фильтрата культуры займет до 6 часов. При концентрировании фильтрата культуры Tween-80 также концентрируется и может блокировать концентратор. Использование Tween-80 до 0,005% final (а не 0,05%) в носителях Sauton помогает предотвратить эту блокировку. Пониженная концентрация Tween-80 не влияет на равномерную суспензию МСМ в процессе роста и не вызывает слипания клеток МСМ. Однако, поскольку ячейки Mtb слипываются на 0,005% Tween-80, используйте 0,05% Tween-80 для EV, специфичных для Mtb.
    2. Концентрированный фильтрат культуры Msm (~38 мл) переносят в чистую, промытую (с ddw) и предварительно охлажденную полипропиленовую центрифужную пробирку объемом 40-50 мл и подвергают ее двухступенчатому центрифугированию, сначала при 4 000 × г, а затем при 15 000 × г, обе стадии при 4 °C в течение 20 мин (для удаления всего мусора). Для этого используйте центрифугу напольного типа.
  3. День 5/6
    1. Переносят надосадочную жидкость культуры в предварительно охлажденную полипропиленовую ультрацентрифужную пробирку объемом 38,5 мл и отжимают ее в ультрацентрифуге при 100 000 × г в течение 4 ч при 4 °С.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Поворотный ковш лучше всего работает на этой скорости. Убедитесь, что пробирка ультрацентрифуги заполнена до краев и имеет балансирную ультрацентрифужную пробирку эквивалентного веса. Если какая-либо из трубок прилипла к поворотному ведру после центрифугирования (что происходит из-за конденсации), с помощью щипцов осторожно извлеките ее из ротора. Вытирание конденсированной влаги, присутствующей на внешней поверхности ультрацентрифуги, перед ультрацентрифугированием предотвращает прилипание.
    2. Храните надосадочную жидкость в предварительно охлажденной пробирке объемом 50 мл (см. примечание). Переверните пробирку ультрацентрифуги на свежую безворсовую впитывающую бумагу, чтобы удалить следы надосадочной жидкости. Ресуспендировать гранулу в 600 мкл буферного раствора HEPES (50 мМ HEPES и 150 мМ NaCl, рН 7,4; перед использованием процедить-стерилизовать).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Сохраняйте надосадочную жидкость только в качестве резервной копии. Нативная гранула mEV выглядит как желеобразное пятно диаметром 5-7 мм от тусклого серовато-желтого до полупрозрачного цвета. Если гранулы не видны, повторите шаг 2.3.1, повторно используя сохраненный надосадочную жидкость. Если после повторения шага 2.3.1 гранулы не появились, выбросьте и начните заново с шага 1.2. Для ресуспендирования гранулы требуется время. Рекомендуется добавить буфер HEPES и оставить его на ночь при температуре 4 °C для облегчения ресуспендирования. Ресуспендируйте осторожно, но с повторным пипетированием (используйте наконечники P200 для лучшей ресуспендации) до равномерного ресуспендирования.
  4. День 6
    1. Подвергнуть ресуспендированную гранулу центрифугированию с градиентом плотности на основе йодиксанола.
      1. Выложите ресуспендированную гранулу на дно чистой, промытой (с ddw) и предварительно охлажденной сверхпрозрачной полипропиленовой ультрацентрифужной пробиркой объемом 13 мл и осторожно смешайте (используйте пипетку объемом 1 мл) с ~4 мл раствора йодиксанола с градиентом инертной плотности (коммерчески доступен в виде ~60% раствора по массе). После укладки ресуспендированной гранулы на дно пробирки (максимум до 5 мл), затем наложите по 1 мл (w/v) на каждый из 40%, 30%, 20% и 10% субстоков йодиксанола в соответствующем порядке (подготовьте суб-запасы (с буфером HEPES) из 60% запаса). Затем добавьте 4 мл 6%-ного суббульона (приготовленного из 60% бульона с буфером HEPES) сверху, чтобы заполнить пробирку.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Подготовьте градиент непосредственно перед использованием; Никогда не храните и не используйте.
      2. Осторожно (не встряхивая) взвесьте трубку в стеклянном стакане, и аккуратно перенесите ее в ротор качающегося ковша.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Взвешивание необходимо проводить с помощью фиктивной трубки (также взвешенной).
      3. Подвергают ультрацентрифугированию при 141 000 × г в течение 16 ч при 4 °С.
  5. День 7
    1. Осторожно извлеките пробирку (см. примечание к шагу 2.3.1) и соберите фракции по 1 мл в свежеавтоклавные пробирки для микроцентрифуг; обратите внимание на 4-ю и6-ю фракции, которые обычно содержат MSM mEV.
      ПРИМЕЧАНИЕ: МЭВ из этих фракций обычно фракционируются на три или четыре полосы мЭВ (одна из них является основной полосой) тускло-белого цвета. R-mEV, содержащие mCherry, фракционируются на 5-7-ю фракции и имеют цвет оттемно-фиолетового до пурпурного. Электромобили Mtb обычно разделяются на 5-7-ю фракции. Разделение мЭВ в градиенте зависит от используемой концентрации градиента и от того, насколько хорошо градиент слоистый. Если mEV разрываются частично, они могут расщепляться на более ранние фракции. В качестве альтернативы, если гранула, полученная после этапа 2.3.2, не была хорошо ресуспендирована, везикулы образуют плотные микрогранулы, которые расщепляются в виде более поздних фракций. Мы рекомендуем точный сбор фракций только в том случае, если пользователь хочет оценить, какая из фракций в 1 мл содержит mEV. Пользователи могут захотеть аликвотировать на более мелкие или более крупные фракции в зависимости от их удобства. Когда мы используем их для определенных применений, например, при тестировании их в качестве потенциального субъединичного бустера вакцины для БЦЖ, мы ограничиваем сбор мЭВ до менее чем 250 мкл фракций (где мЭВ фракционируются), чтобы мы могли специально собирать только полосы мЭВ и обрабатывать, как указано в 2.7.5. Это помогает более эффективно удалить все следы йодиксанола, которые могут помешать нашим последующим экспериментам.
  6. День 8
    1. Фракции, содержащие mEVs, объединяют, разбавляют буфером HEPES до 38 мл и повторяют ультрацентрифугирование при 4 oC в течение 16 ч при 100 000 × г. Ресуспендируйте гранулу (как на шаге 2.3.2 с теми же предостережениями) либо в буфере HEPES, либо в любом буфере, который требуется для последующих экспериментов (здесь не описано), таких как оценка белка, анализ нанотрекинга, негативное окрашивание, просвечивающая электронная микроскопия, вестерн-блоттинг и мечение иммунным золотом.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Для лучшей ресуспензии проведите ультразвуковую обработку трубки, содержащей mEV, в течение 10 минут с помощью ультразвукового ультразвукового ультразвукового соника на водяной бане. Ультразвуковая обработка в течение длительного времени может инициировать разрыв и потерю неповрежденных mEV. Если хорошо подвешен, ультразвуковая обработка не нужна. Все шаги от 2.1 до 2.6 идентичны при обогащении электромобилей, сгенерированных Mtb.

3. Конструирование и обогащение рекомбинантных мЭВ.

ПРИМЕЧАНИЕ: Одним из 10 наиболее распространенных белков (идентифицированных с помощью масс-спектрометрии) МСМ EV является Cfp-2930. Учитывая его небольшой размер (29 кДа), простую вторичную структуру40, локализацию на мембране 41 и склонность к секреции в отработанной среде в аксенических культурах (например, в виде белка-фильтрата культуры; секретируемого как Msm, так и Mtb42,43), в данном случае он был использован для доставки красного флуоресцентного репортера и интересующего белка (EsxAMtb) в mEV. Для этого необходимо

  1. Используйте соответствующие прямые и обратные праймеры (табл. 1; совместимы с прямым клонированием в челночный вектор, такой как pMV261) для амплификации cfp-29 из Msm. Используя ~50 нг высокомолекулярной (~>20 kb) геномной ДНК Msm в качестве матрицы, ПЦР-амплифицируют фрагмент гена cfp-29 с помощью высокоточной корректурной ДНК-полимеразы (например, Phusion или Q5). Следуйте рекомендациям производителя по проведению ПЦР.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Спроектируйте необходимые места ограничения в праймеры для легкого клонирования в любой интересующий вас альтернативный вектор челнока. Условия и объем ПЦР будут варьироваться в зависимости от типа и марки используемой ДНК-полимеразы для корректуры. Объем реакционной смеси будет варьироваться в зависимости от количества матрицы ДНК и количества корректирующей ДНК-полимеразы. Следуйте рекомендациям производителя по условиям ПЦР, успешности амплификации и исключения неспецифического отжига праймеров.
  2. ПЦР очищают элюированный ампликон с помощью любого имеющегося в продаже набора для очистки ПЦР и проверяют длину ампликона с помощью стандартного электрофореза в агарозном геле. Переварить очищенный ампликон.
    1. Оцените количество очищенного ампликона на спектрофотометре. Используйте не менее 2 мкг ампликона cfp-29 для пищеварения.
    2. Сначала дигестируют с BstB1 при 65 °С в течение 1 ч (тип и количество буфера и фермента - в соответствии с рекомендациями производителя), снижают температуру реакции до RT, а затем переваривают с HindIII в течение 1 ч при 37 °С (тип и количество буфера и фермента - в соответствии с рекомендациями производителя).
    3. ПЦР очищают и элюируют переваренный ампликон в 50 мкл автоклавного безнуклеазного ddw.
    4. Оценивают концентрацию и выход переваренного ампликона с помощью спектрофотометра. Хранить при температуре -20 °С до начала лигирования. ПРИМЕЧАНИЕ: После ПЦР проверьте длину ампликона (~798 + 50.н.) и выход путем электрофореза 10 мкл смеси ПЦР-реакции на 1% агарозном геле. Хотя двойное расщепление невозможно при такой комбинации ферментов, совместимый буфер предотвратит повторную ПЦР-очистку и последующую потерю переваренного ампликона. Концентрация расщепленного ампликона варьируется в зависимости от набора, используемого для ПЦР-очистки. Она также изменяется в зависимости от длины (в.н.) любых альтернативных векторов по выбору.
  3. Используйте прямой и обратный праймеры (табл. 1), корректурную ДНК-полимеразу и ~50 нг геномной ДНК Mtb, амплификацию ПЦР esxA- или esxA-3X FLAG-специфичного ампликона. Используйте ~5 нг соответствующей плазмидной ДНК для ПЦР-амплификации mCherry. Сведения о плазмидах и последовательностях находятся в Дополнительном файле 1.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте линкер Glycine, Glycine, Glycine, Glycine, Serine 44,45(G4S) между cfp-29 и mCherry/esxA/esxA-3X FLAG; Перед запуском mCherry линкер G4S помогает mCherry не подвергаться ложным нефункциональным складкам (в том числе вызванным Cfp-29). Обратитесь к последовательностям cfp-29, hsp60 promoter, mCherry и esxA в Дополнительном файле 1. Плазмиды, служащие шаблонами для mCherry, доступны в различных репозиториях/банках плазмид. Доступны различные версии (слегка измененные последовательности) mCherry, которые потребуют измененных прямых и обратных последовательностей праймеров. Праймеры (Таблица 1) помогают усилить mCherry, упомянутый в Дополнительном файле 1. Слияние N-конца mCherry/esxA/esxA::3XFLAG с С-концевым концом Cfp-29 работает хорошо.
  4. Расщепляют 1 мкг ДНК ампликонов mCherry/esxA/esxA::3XFLAG и очищают переваренную ДНК.
    1. Дважды переваривайте каждый ампликон с HindIII и HpaI в течение 1 ч при 37 °C (или в соответствии с рекомендациями производителя).
    2. Используйте имеющийся в продаже набор для очистки ПЦР и рекомендации производителя по очистке переваренного ампликона. Элюируют переваренный ампликон в 50 мкл автоклавного безнуклеазного ddw.
    3. Оценивают концентрацию и выход переваренного ампликона с помощью спектрофотометра. Хранить при температуре -20 °С до начала лигирования.
  5. Расщепляют 2 мкг pMV261-KanR (Дополнительный файл 1) или подходящий вектор клонирования с выбранным ферментом (ферментами).
    1. Сначала дигестируют с BstB1 при 65 °С в течение 1 ч (тип и количество буфера и фермента - в соответствии с рекомендациями производителя), снижают температуру реакции до RT, а затем переваривают с HindIII в течение 1 ч при 37 °С (тип и количество буфера и фермента - в соответствии с рекомендациями производителя).
    2. Гель очищают и элюируют в 50 мкл автоклавной безнуклеазной ddw.
    3. Оцените концентрацию и выход переваренного вектора с помощью спектрофотометра. Хранить при температуре -20 °С до начала лигирования.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Одноэтапное двухфрагментное клонирование возможно с помощью вышеуказанных праймеров для pMV261. Любой альтернативный вектор челнока, который выживет в виде эписомы, будет работать. Интегративные плазмиды также будут работать, но выход рекомбинантного белка будет относительно меньше на клеточную основу.
  6. Лигируют и превращаются в совместимый штамм кишечной палочки.
    1. Для лигирования используют 125 нг вектора. Используйте надлежащим образом переваренные ампликоны mCherry/esxA/esxA::3XFLAG в молярном соотношении 1:3. Лигирование проводят в течение ночи с использованием Т4 ДНК-лигазы (количество согласно рекомендациям производителя) при 16 °C на охлажденной циркулирующей водяной бане.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте соответствующие элементы управления, такие как вектор, только с ДНК-лигазой Т4 и без нее, для оценки эффективности пищеварения и прогнозирования эффективности успешного клонирования.
    2. Преобразование
      1. Разморозить аликвоты химически компетентных клеток NEB5α (~100 мкл на превращение) на льду в течение 15 мин. Аккуратно дважды перемешайте стерильным наконечником пипетки. Добавьте лиговую смесь (до 20 мкл) к холодным компетентным клеткам.
      2. Аккуратно смешайте клетки пипетки + лигированную ДНК. Выдерживайте смесь на льду еще 30 минут.
      3. Обеспечьте тепловой шок при температуре 42 °C (на водяной бане) в течение 60 с и немедленно перенесите обратно на лед еще на 15 минут.
      4. Восстановите трансформированные клетки, добавив 1 мл бульона SOC (2% триптона, 0,5% дрожжевого экстракта, 10 мМ NaCl, 2,5 мМ KCl, 10 мМ MgCl2, 10 мМ MgSO4 и 20 мМ глюкозы) и инкубируйте при 37 °C в течение 1 ч при 200 об/мин.
      5. Отжим восстановленные бактерии в микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 мл (3000 × г, RT и 10 мин), выбросьте надосадочную жидкость, повторно суспендируйте гранулу в 200 мкл стерильной, предварительно подогретой, свежеприготовленной среды LB и распределите суспензию на свежевылитых пластинах с агаром LB Miller, содержащих необходимые антибиотики в соответствующих концентрациях.
      6. Инкубируйте чашки Петри в пластинчатом инкубаторе, предварительно настроенном на 37 оС.
  7. Скрининг (здесь не описано) на наличие потенциальных клонов, верификация (с помощью ПЦР/ферментов рестрикции колонии)46 и секвенирование (секвенирование по Сэнгеру) для подтверждения слияния.
  8. Экстрагируют плазмидную ДНК (~200 нг/1-2 мкл; любой коммерчески доступный набор) подтвержденного клона (фон E. coli ) и трансформируют ее в свежеполученные электрокомпетентные клетки МСМ.
  9. Подготовка электрокомпетентных ячеек МСМ
    1. Свежевыращенный Msm (как в шагах 1.2.1 и 1.2.2). Промойте свежевыращенный Msm, как в шагах 1.3.3 и 1.3.4 (за исключением того, что используйте 7H9 + ADC + Tween-80 (насыщенный) вместо Sauton's).
    2. Добавьте аликвоту промытых клеток Msm к конечному OD600 ~0,05 в стерильную колбу Эрленмейера объемом 500 мл, содержащую 150 мл насыщенной среды.
    3. Инкубируют в шейкере инкубатора при 200 об/мин и 37 °С до тех пор, пока культура OD600 не достигнет ~0,8-1,0 (~12-14 ч).
    4. Переложите культуру в предварительно охлажденную бутылку с центрифугой объемом 400 мл и инкубируйте на льду в течение 60-90 мин. Затем гранулируйте клетки при температуре 4 °С в течение 15 минут при концентрации 4 000 × г.
    5. Промойте клетки дважды (каждая промывка 150 мл, при 4000 × г, 4 °C и 15 мин) ледяным, стерильным (в автоклавированном) 10% глицерине.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При каждой стирке гранулы становятся рыхлыми. Соблюдайте осторожность при сливе всей надосадочной жидкости (после каждой стирки). В противном случае большая часть клеток будет потеряна в выброшенном надосадочной жидкости.
    6. Еще раз промойте клетки 75 мл ледяного стерильного 10% глицерина, содержащего 0,005% Tween-80.
    7. Ресуспендант клеточной гранулы в 7,5 мл 10% глицерина с 0,005% Tween-80 и аликвоту в 400 мкл аликвот.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Несмотря на то, что электрокомпетентные ячейки MSM пригодны для работы не менее 4 месяцев, свежеприготовленные электрокомпетентные элементы дают наилучшие результаты. При использовании старых компетентных клеток несколько нерозовых колоний (белых) выглядят как ложные трансформеры. Чем старше компетентные клетки, тем больше белых колоний.
  10. Трансформация МСМ
    1. Размораживают МСМ компетентные клетки аликвотами на льду.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Размораживание на RT и трансформация таких ячеек дает меньшую эффективность.
    2. Добавляют 1-2 мкл плазмидной ДНК (~200 нг всего) к холодным компетентным клеткам, осторожно перемешивают стерильным наконечником пипетки объемом 1 мл и переносят в предварительно охлажденную стерильную 2-миллиметровую электропорационную кювету.
    3. Перенесите закрытую кювету со смесью Msm-компетентных клеток + плазмидной ДНК в мышь электропортора, осторожно закройте крышку и подайте импульс (тип экспоненциального затухания) на 2,5 кВ (напряжение), 25 мкФ (емкость) и 1000 Ω (сопротивление).
    4. Немедленно добавьте в кювету 1 мл предварительно подогретой стерильной насыщенной (7H9 + ADC + Tween-80) среды, аккуратно перемешайте стерильным наконечником пипетки объемом 1 мл и перелейте все содержимое в стерильную пробирку объемом 10 мл.
    5. Инкубируйте содержимое в течение 3 ч в инкубаторе-шейкере, установленном на 37 оС и 200 об/мин. Открутите содержимое в микроцентрифужной пробирке (4 000 × г, RT и 10 мин), выбросьте надосадочную жидкость, повторно суспендируйте гранулу в 200 мкл стерильной предварительно нагретой богатой среды и распределите суспензию по свежевылитым агаровым пластинам 7H11, содержащим ADC, Tween-80 и необходимые антибиотики в соответствующих концентрациях.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Для МСМ, когда это необходимо, используйте Гигромицин, Канамицин и Апрамицин в конечных концентрациях 50 мкг/мл, 25 мкг/мл и 50 мкг/мл соответственно. МСМ сам по себе НЕ устойчив к этим антибиотикам. Применяют эти антибиотики только при использовании плазмид с соответствующими резистентными генами для селекции/роста трансформентов/рекомбинантных колоний МСМ.
    6. Инкубируйте чашки Петри в пластинчатом инкубаторе, настроенном на 37 °C. Обычно трансформанты появляются через 3-5 дней.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если интересующий нас белок токсичен для МСМ, трансформанты могут появиться позже или не появиться. В таких случаях клонируйте усеченные версии на всю длину.
    7. Сделайте запасы глицерина в возникающих колониях МСМ после проверки на наличие положительных клонов (то же, что и на шаге 3.7)
  11. Чтобы обогатить R-mEV, содержащие белки mCherry или EsxA, сначала вырастите R-Msm, экспрессирующий либо mCherry, либо exsA, либо esxA::3X FLAG, выполнив шаги 1.2.1–1.2.3, а затем выполните шаги 2.1–2.6. для обогащения R-mEV. R-mEV элюируют в4-7-ю фракции пост-градиентного спина плотности (шаг 2.5). Гранулы R-mEVs после первой стадии ультрацентрифугирования (2.3.1). Выполнив действия, идентичные шагу 2.3.1, убедитесь, что R-mEV видны в виде гранул диаметром 5–7 мм от темно-фиолетового до пурпурного цвета в нижней части центра ультрацентрифуги.
  12. Проведите западный анализ47 (здесь не описано) для обнаружения интересующего белка (белков) в обогащенных R-mEV.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Мы используем M. smegmatis (Msm) в качестве модельной микобактерии, чтобы продемонстрировать обогащение как нативных, так и рекомбинантных mEV (R-mEV). Этот схематически обобщенный протокол обогащения mEVs (рис. 1) также работает для обогащения R-mEV Msm и собственных EV Mtb (с незначительными изменениями, как в примечаниях к протоколу 1.2). Визуализация обогащенных МЭВ требует их негативного окрашивания под просвечивающим электронным микроскопом36 (рис. 2А). Как правило, ВВ, специфичные для МСМ, разделяются на4-6-ю фракции по 1 мл градиента плотности 13 мл6-60 % (рис. 2B). Примерно 80-100 мкг белкового эквивалента ВВ обычно получают из 2 л среднелогарифмических аксенических культур МСМ. Их диаметр обычно колеблется от 20 нм до 250 нм (рис. 2C).

Одной из долгосрочных целей нашей лаборатории является оценка того, могут ли mEV различных микобактерий потенциально действовать в качестве субъединичного бустера существующей вакцины БЦЖ. Поскольку обогащение mEV, генерируемых патогенными бактериями, является трудоемким, рискованным и дорогостоящим процессом, использование нативных и рекомбинантных EV из авирулентных микобактерий может работать в качестве подходящей альтернативы. Таким образом, мы стремимся не только стандартизировать протокол для обогащения mEV Msm, но и для создания и обогащения его R-mEV.

Чтобы сконструировать R-mEV, мы сначала отобрали 10 наиболее распространенных белков Msm EV (Таблица 1; мы идентифицировали их с помощью детального масс-спектрометрического анализа Msm EV)30. Мы предположили, что если интересующий нас чужеродный белок трансляционно соединить с любым из них, он должен быть способен локализоваться в mEV. Затем мы включили Cfp-29 в число 10, потому что он самый маленький среди них (~29 кДа), локализован на мембране и представляет собой белок-фильтрат культуры с относительно простой вторичной структурой40,41,42,43. Мы трансляционно соединили N-концевой конец mCherry (флуоресцентный белок) с С-концевым концом Cfp-29 и оценили его загрузку/доставку в mEV. Часть обогащенных mEV МСМ окрасилась в розовый цвет (рис. 3), что указывает на способность Cfp-29 переносить интересующий чужеродный белок в МСМ.

Учитывая эту способность Cfp-29 (рис. 3), мы затем оценили EsxA (Esat-6), основной иммуногенный белок37,38,39, доставляемый в МСМ ВВ. Опять же, мы сгенерировали два независимых трансляционных слияния с С-концом EsxA, только для Cfp-29, и тегом EsxA + 3X FLAG (3X FLAG, слитый с C-концом EsxA. Как и ожидалось, мы наблюдали EsxA Mtb в электромобилях Msm (полосы 5, 6 и 10, рис. 4A,B), хотя и в небольших количествах. Интересно, что Cfp-29::EsxA::3XFLAG был гораздо более стабильным (полосы 3 и 4 плюс 8 и 9; Рисунок 4А) и накапливались на более высоких уровнях в электромобилях (полосы 3 и 4, а также 8 и 9; Рисунок 4Б). Таким образом, мы демонстрируем дизайн, конструкцию и обогащение R-mEV, содержащих интересующий нас чужеродный белок (рис. 3 и рис. 4).

Figure 1
Рисунок 1: Схематическое изображение обогащения микобактерий внеклеточными везикулами. «Дни» (выделены красным шрифтом, вверху рисунка) означают дни, необходимые для обогащения mEV от Msm (в частности, для шагов протокола 1 и 2). «Шаги» (черным шрифтом, внизу рисунка) относятся к шагам протокола, описанным в разделе протокола. Для обогащения mEV из Mtb, несмотря на то, что все этапы похожи, требуется не менее 10 дней для различных этапов культивирования (шаг 1) до первого этапа центрифугирования (шаг 2). Последующие шаги требуют такой же длительности (как указано красным шрифтом). До градиента плотности гранулы mEVs + внеклеточные комплексы выглядят бесцветными при обогащении как нативных mEV, так и R-mEV. Тем не менее, он будет выглядеть от розоватого до синего (см. рис. 3) при обогащении mEV, содержащих mCherry. После градиента плотности mEV будут выглядеть белыми (собственные и R-mEV) или розовыми (если содержат mCherry) в трубке градиента плотности. Цвета mEV на рисунке предназначены только для наглядности и не отражают точные цвета. Для большей наглядности см. рисунок 3 . Сокращения: Msm = M. smegmatis; Мтб = М. туберкулез; 0,45 и 0,22 мкм = размер пор блоков фильтрации утилизации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 2
Рисунок 2: Микобактериальные ВВ имеют круглую форму, концентрируются с градиентами плотности и различаются по размерам . (A) Репрезентативное изображение МСМ ВВ при их визуализации с негативным окрашиванием и просмотре под просвечивающим электронным микроскопом. Масштабная линейка = 200 нм. (B) Репрезентативное изображение того, как mEV появляются в ультрацентрифужной пробирке при выполнении градиента плотности 6-60%. Если градиент от 6 до 60% не распределен точно, положение основной (верхняя открытая стрелка) и малой (нижняя открытая стрелка) полос mEV может значительно измениться, что приведет к изменению числа фракций 1 мл. (C) Репрезентативное изображение, полученное при анализе нанотрекинга обогащенных мЭВ МСМ. Анализ нанотрекинга позволяет определить пропорции и концентрации МЭВ разного размера, а также общее количество МЭВ в препарате. В среднем, с протоколом, описанным здесь, ~1-3 ×10 10 EV обогащаются из 2 л Msm и Mtb. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 3
Рисунок 3: Различные этапы, указывающие на обогащение mEV, экспрессирующих mCherry. (A) Репрезентативное изображение, демонстрирующее аксеническую культуру МСМ, экспрессирующую Cfp-29::mCherry. (B) Репрезентативное изображение бактериальных гранул после центрифугирования аксенической культуры МСМ, экспрессирующей Cfp-29::mCherry. (C) Репрезентативное изображение концентрата фильтрата культуры, полученное после концентрирования отработанной среды аксенической культуры МСМ, экспрессирующей Cfp-29::mCherry, через концентраторы центриконов. (D) Репрезентативное изображение гранул mEVs + внеклеточных комплексов после ультрацентрифугирования концентрата культурального фильтрата, полученного из аксенической культуры МСМ, экспрессирующей Cfp-29::mCherry. Гранула, однако, оставалась бы бесцветной, если бы mEV были либо нативными, либо рекомбинантными (при слиянии с Cfp-29) для любого чужеродного белка (белков), кроме mCherry. (E) Репрезентативные изображения mCherry, содержащие mEV. Обратите внимание, что не все mEV имеют розовый цвет, что указывает на то, что не все mEV содержат Cfp-29. Хорошо: Репрезентативное изображение, показывающее различные диапазоны mEV, обычно получаемые после обогащения для электромобилей Cfp-29::mCherry. Поскольку EV, содержащие mCherry, более плотные, они разделяются на более поздние фракции. Плохо: Репрезентативное изображение, указывающее на плохое разделение (белые mEV отделяются в первой/второй фракции, а mEV, содержащие mCherry, отделяются в 10-й фракции (возможно,из-за плохой ресуспендирования гранул mEV, т. е. шаг протокола 2.3.2). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 4
Рисунок 4: Рекомбинантные mEV, содержащие EsxA (ESAT-6), Mtb-кодируемый иммуноген в общем клеточном лизате Msm, и ВВ, генерируемые Msm. (A) Изображения геля Кумасси и (B) вестерн-анализа (обнаруженные с помощью ESAT6-специфических поликлональных антител), показывающие накопление слившегося ExsA как в общем клеточном лизате Msm, так и в mEV, экспрессирующих либо cfp-29::esxA::3XFLAG (+ 3XFLAG, дорожки 3 и 4 (общий лизат) и дорожки 8 и 9 (mEV)), либо cfp-29:: esxA (- 3XFLAG, полосы 5 и 6 (общий лизат) и дорожка 10 (мEV)). Стрелки Open и Filled показывают накопленные Cfp-29::ExsA::3XFLAG и Cfp-29::ExsA соответственно. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.

Грунтовки:
Сл # Ген Букварь Последовательность (от 5 до 3 футов) Источник Клонирование в
1 КФП-29 Вперёд CAGTTCGAA(BstBI)ATGAACAACCTCTATCGC Геномная ДНК МСМ ПМВ261
Обратный GAAAAGCTT(HindIII)GGGGGTCAGCGCGACAG Геномная ДНК МСМ ПМВ261
2 Вишня Вперёд GAAAAGCTT(HindIII) ggcggcggtggctcg (G4S linker)ATGGTGAGCAAGGGCGAGGAGG Лабораторная коллекция ПМВ261
Обратный TGTGTTAAC(HpaI)CTACTTGTACAGCTCGTCC Лабораторная коллекция ПМВ261
3 esxA Вперёд GAAAAGCTT(HindIII)ggcggcggtggctcg (компоновщик G4S) ATGACAGAGCAGCAGTGGAATTTCGCGGGTATCGAG Геномная ДНК Mtb ПМВ261
Обратный TGTGTTAAC(HpaI)TCATGCGAACA
TCCCAGTGACGTTGCCTTCGGTCG		 Геномная ДНК Mtb ПМВ261
4 ФЛАГ exsA-3X Вперёд GAAAAGCTT(HindIII)ggcggcggtggctcg (компоновщик G4S) ATGACAGAGCAGCAGTGGAATTTCGCGGGTATCGAG Геномная ДНК Mtb ПМВ261
Обратный ТГТГТТААК(ГПАИ)ТСА
CTGTCGTCGTCGTCCTTGTAGTCGATGTCGTCGTG
gtccttgtagtcaccgtgtggtccttgtagtc (3XFLAG) TGCGAACATCCCAGTGACGTTG
CCTTCGGTCGAAGCCATTGCCTGACC		 Геномная ДНК Mtb ПМВ261

Таблица 1: Последовательности праймеров. Перечислены прямые и обратные праймеры для амплификации cfp-29, mCherry, esxA и esxA::3X FLAG и клонирования в челночный вектор pMV261.

Дополнительный файл 1: A: pMV261, его круговая карта, основные характеристики и полная нуклеотидная последовательность. Желтым цветом выделена последовательность нуклеотидов промотора hsp60 ; Зеленые и голубые сайты ограничения бликов, в которые клонировались ампликоны mCherry, esxA и esxA::3X FLAG. B, C и D: нуклеотидные последовательности cfp-29, mCherry и esxA соответственно. Зеленым цветом выделен стоповый кодон cfp-29, mCherry и esxA. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Поскольку разработка новой противотуберкулезной вакцины, превосходящей БЦЖ и способной заменить ее, остается серьезной проблемой в качестве альтернативы, несколько групп работают над открытием различных субъединичных противотуберкулезных вакцин, которые могут повысить эффективность БЦЖ ипродлить продолжительность ее защиты. Учитывая растущее внимание к бактериальным ВВ (бВВ) как потенциальным субъединицам и природным адъювантам50,51, важным шагом стало последовательное обогащение достаточным количеством ВВ для их последующего тестирования/анализа. Именно с учетом этих исследовательских вопросов данный протокол направлен на обогащение мЭВ из аксенических культур и их рекомбинантных версий.

Во время детального масс-спектрометрического анализа протеомов МСМ ВВ Prados-Rosales et al. идентифицировали 10 наиболее распространенных белков30. Кроме того, мы предположили, что при достаточной молекулярной инженерии одного из них должно быть достаточно, чтобы перенести интересующий нас чужеродный белок в мЭВ. Интересно, что Cfp-29 выделялся как лучший возможный вариант из-за его различных характеристик 39,40,41,42. Наши данные действительно показывают, что этого достаточно, чтобы переносить mCherry и EsxA (хотя EsxA требовал небольшой метки на С-конце, чтобы быть более стабильным) и накапливать их в mEV. Недавно, в 2021 году, Tang et al. продемонстрировали, что Cfp-29 является инкапсулином, способным переносить пероксидазы40-типа обесцвечивающей краситель (DyP) типа. Возможно, Cfp-29 может переносить и другие чужеродные белки.

Мы исследовали EsxA, потому что он является выдающимся иммуногеном Mtb 37,38,39, может быть защитным в качестве субъединичной вакцины на животной модели37,38,39, имеет небольшой размер; а его ортолог (MSMEG_0066) интересно отсутствует у МСМ EV. Хотя мы не обсуждаем это здесь, мы успешно сгенерировали R-mEV для нескольких других белков Mtb (уникально присутствующих в Mtb и не кодируемых Msm), включая Antigen 85B (Rv 1886c). В то же время, что интересно, нам также не удалось сгенерировать R-mEV для нескольких других, включая полноразмерные Rv2660c и Rv0288, возможно, потому, что белки токсичны для Msm. Мы пришли к такому выводу, потому что, несмотря на клонирование правильных нуклеотидных последовательностей и выполнение повторных превращений, трансформанты Msm не появились. Поскольку EsxA требовал метки 3XFLAG на С-конце для лучшего накопления в mEV, мы добавили метку 3XFLAG ко всем другим белкам, кодируемым Mtb, которые мы оценивали. Несмотря на метку, МСМ не выжил, что указывает на то, что некоторые белки Mtb остаются токсичными, несмотря на слияние меток. Мы предполагаем, что в этих случаях может окупиться клонирование только предсказанных областей эпитопов или сшивание нескольких эпитопов вместе (в настоящее время оценивается в нашей лаборатории). Мы использовали небольшой пятиаминокислотный линкер (четыре глицина и один серин) между Cfp-29 и mCherry/EsxA, чтобы свести к минимуму негативное влияние на сворачивание интересующего белка44,45. Мы предсказываем, что без этого линкера на интересующий нас белок будет сильно влиять сворачивание Cfp-29.

Этот протокол обогащения легко расширяется для обогащения электромобилей, генерируемых Mtb. Мы также предполагаем, что обогащение mEV микобактериями из окружающей среды также должно быть осуществимо с помощью этого протокола. Несмотря на то, что протокол прост и понятен, ему все равно требуется 7-8 дней для обогащения EV и R-mEV, сгенерированных Msm. Для сравнения, для обогащения электромобилей, сгенерированных Mtb, требуется 15-20 дней. Концентрация электромобилей в меньшем объеме отнимает много времени и средств, и в настоящее время мы изучаем фильтрацию тангенциального потока и другие подходы для решения проблемы времени.

Наконец, мы используем Sauton's, а не 7H9 для обогащения mEV, потому что добавка ADC содержит большое количество бычьего сывороточного альбумина, который может помешать любому последующему использованию mEV. Этот протокол может быть легко расширен на любую другую специфическую среду (например, среду с низким содержанием железа), которая должна использоваться для оценки состава mEV. В качестве альтернативы, для некоторых применений, на последнем этапе (т.е. на шаге протокола 2.7.5), вместо буфера HEPES можно использовать стерильный физиологический раствор при введении его мышам или морским свинкам для различных анализов in vivo.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Все авторы заявляют, что данная исследовательская работа проводилась в отсутствие каких-либо коммерческих или финансовых отношений/интересов, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Acknowledgments

Авторы искренне благодарят профессора Сару М. Форчун (Sarah M. Fortune) за любезное предоставление материала M. smegmatis mc2155. Они также выражают признательность компании «Сервье Медикал Арт» (smart.servier.com) за предоставление некоторых основных элементов для рисунка 1. Они искренне признательны остальным сотрудникам лаборатории за поддержку их пациентов во время длительного использования шейкеров инкубатора, центрифуг и ультрацентрифуг для обогащения mEV. Они также выражают признательность г-ну Сурджиту Ядаву, лаборанту, за то, что он всегда следил за тем, чтобы необходимая стеклянная посуда и расходные материалы всегда были под рукой. Наконец, они выражают признательность административной, закупочной и финансовой командам THSTI за их постоянную поддержку и помощь в бесперебойной реализации проекта.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
A2 type Biosafety Cabinet Thermo Fisher Scientific, USA 1300 series
Bench top Centrifuge Eppendorf, USA 5810 R
BstB1, HindIII, HpaI NEB, USA NEB
Cell densitometer GE Healthcare, USA Ultraspec 10
Citric Acid Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Dibasic Potassium Phosphate Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Double Distilled Water Merck, USA ~18.2 MW/cm @ 25 oC
Electroporation cuvettes Bio-Rad, USA 2 mm
Electroporator Bio-Rad, USA Electroporator
EsxA-specific Ab Abcam, UK Rabbit polyclonal
Ferric Ammonium Citrate Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Floor model centrifuge Thermo Fisher Scientific, USA Sorvall RC6 plus
Glassware Borosil, INDIA 1 L Erlenmeyer flasks
Glycerol Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
HEPES and Sodium Chloride Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Incubator shakers Thermo Fisher Scientific, USA MaxQ 6000 & 8000
L-Asparagine Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Luria Bertani Broth and Agar, Miller Hi Media, INDIA Hi Media
Magnesium Sulfate Heptahydrate Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Magnetic stirrer Tarsons, INDIA Tarsons
mCherry-specific Ab Abcam, UK Rabbit monoclonal
Microwave LG, INDIA MC3286BLT
Middlebrook 7H9 Broth BD, USA Difco Middlebrook 7H9 Broth
Middlebrook ADC enrichment BD, USA BBL Middlebrook ADC enrichment
Nanodrop Thermo Fisher Scientific, USA Spectronic 200 UV-Vis
NEB5a NEB, USA a derivative of DH5a
Optiprep (Iodixanol) Merck, USA Available as 60% stock solution (in water)
PCR purification kit Hi Media, INDIA Hi Media
pH Meter Mettler Toledo, USA Mettler Toledo
Plasmid DNA mini kit Hi Media, INDIA Hi Media
Plate incubator Thermo Fisher Scientific, USA New Series
Plasmid pMV261 Addgene, USA *
*The   plasmid   is   no   more available in this plasmid bank		 Shuttle vector
Proof-reading DNA Polymerase Thermo Fisher Scientific, USA Phusion DNA Plus Polymerase
Q5 Proof-reading DNA Polymerase NEB, USA NEB
Refrigerated circulating water bath Thermo Fisher Scientific, USA R20
Middlebrock 7H11 Agar base BD, USA BBL Seven H11 Agar base
SOC broth Hi Media, INDIA Hi Media
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
T4 DNA Ligase NEB, USA NEB
Tween-80 Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Ultracentrifuge Beckman Coulter, USA Optima L100K
Ultracentrifuge tubes - 14 mL Beckman Coulter, USA Polyallomer type – ultra clear type in SW40Ti rotor
Ultracentrifuge tubes - 38 mL Beckman Coulter, USA Polypropylene type– cloudy type for SW28 rotor
Ultrasonics cleaning waterbath sonicator Thermo Fisher Scientific, USA Sonicator - bench top model
0.22 µm Disposable filters Thermo Fisher Scientific, USA Nunc-Nalgene
30-kDa Centricon concentrators Merck, USA Amicon Ultra centrifugal filters - Millipore
3X FLAG antibody Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
400 mL Centrifuge bottles Thermo Fisher Scientific, USA Nunc-Nalgene
50 mL Centrifuge tubes Corning, USA Sterile, pre-packed
Bacteria
Strain
Escherichia coli NEB, USA NEB 5-alpha (a derivative of DH5α).
Msm expressing cfp29::mCherry This study MC2 155
Msm expressing cfp29::esxA This study MC2 155
Msm expressing cfp29::esxA::3X FLAG This study MC2 155
Mycobacterium smegmatis (Msm) Prof. Sarah M. Fortune, Harvard Univ, USA  MC2 155

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Global Tuberculosis Report 2022. , https://www.who.int/publications/m/item/global-tb-report (2022).
  2. Luca, S., Mihaescu, T. History of BCG vaccine. Mædica. 8 (1), 53-58 (2013).
  3. Palmer, C. E., Long, M. W. Effects of infection with atypical mycobacteria on BCG vaccination and tuberculosis. The American Review of Respiratory Disease. 94 (4), 553-568 (1966).
  4. Brandt, L., et al. Failure of the Mycobacterium bovis BCG vaccine: some species of environmental mycobacteria block multiplication of BCG and induction of protective immunity to tuberculosis. Infection and Immunity. 70 (2), 672-678 (2002).
  5. Andersen, P., Doherty, T. M. The success and failure of BCG - implications for a novel tuberculosis vaccine. Nature Reviews. Microbiology. 3 (8), 656-662 (2005).
  6. Kumar, P. A perspective on the success and failure of BCG. Frontiers in Immunology. 12, 778028 (2021).
  7. Fine, P. E. Variation in protection by BCG: implications of and for heterologous immunity. Lancet. 346 (8986), 1339-1345 (1995).
  8. Triccas, J. A. Recombinant BCG as a vaccine vehicle to protect against tuberculosis. Bioengineered Bugs. 1 (2), 110-115 (2010).
  9. Dietrich, G., Viret, J. -F., Hess, J. Mycobacterium bovis BCG-based vaccines against tuberculosis: novel developments. Vaccine. 21 (7-8), 667-670 (2003).
  10. Singh, V. K., Srivastava, R., Srivastava, B. S. Manipulation of BCG vaccine: a double-edged sword. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 35 (4), 535-543 (2016).
  11. Bastos, R. G., Borsuk, S., Seixas, F. K., Dellagostin, O. A. Recombinant Mycobacterium bovis BCG. Vaccine. 27 (47), 6495-6503 (2009).
  12. Kaufmann, S. H. E., Gengenbacher, M. Recombinant live vaccine candidates against tuberculosis. Current Opinion in Biotechnology. 23 (6), 900-907 (2012).
  13. Yuan, X., et al. A live attenuated BCG vaccine overexpressing multistage antigens Ag85B and HspX provides superior protection against Mycobacterium tuberculosis infection. Applied Microbiology and Biotechnology. 99 (24), 10587-10595 (2015).
  14. Vartak, A., Sucheck, S. J. Recent advances in subunit vaccine carriers. Vaccines. 4 (2), 12 (2016).
  15. Lindenstrøm, T., et al. Tuberculosis subunit vaccination provides long-term protective immunity characterized by multifunctional CD4 memory T cells1. The Journal of Immunology. 182 (12), 8047-8055 (2009).
  16. Liu, Y., et al. A subunit vaccine based on rH-NS induces protection against Mycobacterium tuberculosis infection by inducing the Th1 immune response and activating macrophages. Acta Biochimica et Biophysica Sinica. 48 (10), 909-922 (2016).
  17. Ning, H., et al. Subunit vaccine ESAT-6:c-di-AMP delivered by intranasal route elicits immune responses and protects against Mycobacterium tuberculosis infection. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 11, 647220 (2021).
  18. Woodworth, J. S., et al. A Mycobacterium tuberculosis-specific subunit vaccine that provides synergistic immunity upon co-administration with Bacillus Calmette-Guérin. Nature Communications. 12 (1), 6658 (2021).
  19. Moyle, P. M., Toth, I. Modern subunit vaccines: development, components, and research opportunities. ChemMedChem. 8 (3), 360-376 (2013).
  20. Baxter, D. Active and passive immunity, vaccine types, excipients and licensing. Occupational Medicine. 57 (8), 552-556 (2007).
  21. Lee, W. -H., et al. Vaccination with Klebsiella pneumoniae-derived extracellular vesicles protects against bacteria-induced lethality via both humoral and cellular immunity. Experimental & Molecular Medicine. 47 (9), e183-e183 (2015).
  22. Micoli, F., et al. Comparative immunogenicity and efficacy of equivalent outer membrane vesicle and glycoconjugate vaccines against nontyphoidal Salmonella. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (41), 10428-10433 (2018).
  23. Obiero, C. W., et al. A phase 2a randomized study to evaluate the safety and immunogenicity of the 1790GAHB generalized modules for membrane antigen vaccine against Shigella sonnei administered intramuscularly to adults from a shigellosis-endemic country. Frontiers in Immunology. 8, 1884 (2017).
  24. Sedaghat, M., et al. Evaluation of antibody responses to outer membrane vesicles (OMVs) and killed whole cell of Vibrio cholerae O1 El Tor in immunized mice. Iranian Journal of Microbiology. 11 (3), 212-219 (2019).
  25. Adriani, R., Mousavi Gargari, S. L., Nazarian, S., Sarvary, S., Noroozi, N. Immunogenicity of Vibrio cholerae outer membrane vesicles secreted at various environmental conditions. Vaccine. 36 (2), 322-330 (2018).
  26. Roier, S., et al. Intranasal immunization with nontypeable Haemophilus influenzae outer membrane vesicles induces cross-protective immunity in mice. PLOS ONE. 7 (8), e42664 (2012).
  27. Furuyama, N., Sircili, M. P. Outer membrane vesicles (OMVs) produced by gram-negative bacteria: structure, functions, biogenesis, and vaccine application. BioMed Research International. 2021, e1490732 (2021).
  28. Buzas, E. I. The roles of extracellular vesicles in the immune system. Nature Reviews Immunology. 23 (4), 236-250 (2022).
  29. Cai, W., et al. Bacterial outer membrane vesicles, a potential vaccine candidate in interactions with host cells based. Diagnostic Pathology. 13 (1), 95 (2018).
  30. Prados-Rosales, R., et al. Mycobacteria release active membrane vesicles that modulate immune responses in a TLR2-dependent manner in mice. The Journal of Clinical Investigation. 121 (4), 1471-1483 (2011).
  31. Bai, X., Findlow, J., Borrow, R. Recombinant protein meningococcal serogroup B vaccine combined with outer membrane vesicles. Expert Opinion on Biological Therapy. 11 (7), 969-985 (2011).
  32. Nagaputra, J. C., et al. Neisseria meningitidis native outer membrane vesicles containing different lipopolysaccharide glycoforms as adjuvants for meningococcal and nonmeningococcal antigens. Clinical and Vaccine Immunology: CVI. 21 (2), 234-242 (2014).
  33. Echeverria-Valencia, G., Flores-Villalva, S., Espitia, C. I. Virulence factors and pathogenicity of Mycobacterium. Mycobacterium - Research and Development. IntechOpen. , (2017).
  34. Prados-Rosales, R., Brown, L., Casadevall, A., Montalvo-Quirós, S., Luque-Garcia, J. L. Isolation and identification of membrane vesicle-associated proteins in Gram-positive bacteria and mycobacteria. MethodsX. 1, 124-129 (2014).
  35. Lee, J., et al. Proteomic analysis of extracellular vesicles derived from Mycobacterium tuberculosis. Proteomics. 15 (19), 3331-3337 (2015).
  36. Das, S., et al. Development of DNA aptamers to visualize release of mycobacterial membrane-derived extracellular vesicles in infected macrophages. Pharmaceuticals. 15 (1), 45 (2022).
  37. Brandt, L., Elhay, M., Rosenkrands, I., Lindblad, E. B., Andersen, P. ESAT-6 subunit vaccination against Mycobacterium tuberculosis. Infection and Immunity. 68 (2), 791-795 (2000).
  38. Kim, W. S., Kim, H., Kwon, K. W., Cho, S. -N., Shin, S. J. Immunogenicity and vaccine potential of InsB, an ESAT-6-like antigen identified in the highly virulent Mycobacterium tuberculosis Beijing K strain. Frontiers in Microbiology. 10, 220 (2019).
  39. Valizadeh, A., et al. Evaluating the performance of PPE44, HSPX, ESAT-6 and CFP-10 factors in tuberculosis subunit vaccines. Current Microbiology. 79 (9), 260 (2022).
  40. Tang, Y., et al. Cryo-EM structure of Mycobacterium smegmatis DyP-loaded encapsulin. Proceedings of the National Academy of Sciences. 118 (16), (2021).
  41. Rosenkrands, I., et al. Identification and characterization of a 29-kilodalton protein from Mycobacterium tuberculosis culture filtrate recognized by mouse memory effector cells. Infection and Immunity. 66 (6), 2728-2735 (1998).
  42. Gu, S., et al. Comprehensive proteomic profiling of the membrane constituents of a Mycobacterium tuberculosis strain. Molecular & cellular proteomics: MCP. 2 (12), 1284-1296 (2003).
  43. Xiong, Y., Chalmers, M. J., Gao, F. P., Cross, T. A., Marshall, A. G. Identification of Mycobacterium tuberculosis H37Rv integral membrane proteins by one-dimensional gel electrophoresis and liquid chromatography electrospray ionization tandem mass spectrometry. Journal of Proteome Research. 4 (3), 855-861 (2005).
  44. Chen, X., Zaro, J. L., Shen, W. -C. Fusion protein linkers: property, design and functionality. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (10), 1357-1369 (2013).
  45. Klein, J. S., Jiang, S., Galimidi, R. P., Keeffe, J. R., Bjorkman, P. J. Design and characterization of structured protein linkers with differing flexibilities. Protein Engineering, Design and Selection. 27 (10), 325-330 (2014).
  46. Green, M. R., Sambrook, J. Molecular cloning, a laboratory manual, 4th Edition. , Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY. (2012).
  47. Atmakuri, K., Ding, Z., Christie, P. J. VirE2, a Type IV secretion substrate, interacts with the VirD4 transfer protein at cell poles of Agrobacterium tumefaciens. MolecularMicrobiology. 49 (6), 1699-1713 (2003).
  48. Woodworth, J. S., et al. A Mycobacterium tuberculosis-specific subunit vaccine that provides synergistic immunity upon co-administration with Bacillus Calmette-Guérin. Nature Communications. 12 (1), 6658 (2021).
  49. Khademi, F., Derakhshan, M., Yousefi-Avarvand, A., Tafaghodi, M., Soleimanpour, S. Multi-stage subunit vaccines against Mycobacterium tuberculosis: an alternative to the BCG vaccine or a BCG-prime boost. Expert Review of Vaccines. 17 (1), 31-44 (2018).
  50. Prior, J. T., et al. Bacterial-derived outer membrane vesicles are potent adjuvants that drive humoral and cellular immune responses. Pharmaceutics. 13 (2), 131 (2021).
  51. Tan, K., Li, R., Huang, X., Liu, Q. Outer membrane vesicles: current status and future direction of these novel vaccine adjuvants. Frontiers in Microbiology. 9, 783 (2018).

Tags

Иммунология и инфекции выпуск 202 Внеклеточные везикулы рекомбинантные везикулы Esat-6 микобактерии ExsA mCherry Cfp-29 бактерии

Erratum

Formal Correction: Erratum: Enrichment of Native and Recombinant Extracellular Vesicles of Mycobacteria
Posted by JoVE Editors on 02/01/2024. Citeable Link.

An erratum was issued for: Enrichment of Native and Recombinant Extracellular Vesicles of Mycobacteria. The Authors section was updated from:

Praapti Jayaswal1
Mohd Ilyas1
Kuljit Singh1,2
Saurabh Kumar1,3
Lovely Sisodiya1
Sapna Jain1
Rahul Mahlawat1
Nishant Sharma1
Vishal Gupta1
Krishnamohan Atmakuri1
1Bacterial Pathogenesis Laboratory, Infectious Diseases and Immunology Group, Translational Health Science and Technology Institute, NCR Biotech Science Cluster
2Clinical Microbiology Division, CSIR-Indian Institute of Integrative Medicine
3ICAR-Research Complex for Eastern Region
4Public Health Research Institute, Rutgers University

to:

Praapti Jayaswal1
Mohd Ilyas1
Kuljit Singh1,2
Saurabh Kumar1,3
Lovely Sisodiya1
Sapna Jain1
Rahul Mahlawat1
Nishant Sharma1,4
Vishal Gupta1
Krishnamohan Atmakuri1
1Bacterial Pathogenesis Laboratory, Infectious Diseases and Immunology Group, Translational Health Science and Technology Institute, NCR Biotech Science Cluster
2Clinical Microbiology Division, CSIR-Indian Institute of Integrative Medicine
3ICAR-Research Complex for Eastern Region
4Public Health Research Institute, Rutgers University

Обогащение нативных и рекомбинантных внеклеточных везикул микобактерий
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Jayaswal, P., Ilyas, M., Singh, K.,… More

Jayaswal, P., Ilyas, M., Singh, K., Kumar, S., Sisodiya, L., Jain, S., Mahlawat, R., Sharma, N., Gupta, V., Atmakuri, K. Enrichment of Native and Recombinant Extracellular Vesicles of Mycobacteria. J. Vis. Exp. (202), e65138, doi:10.3791/65138 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter