Name: STA-PUT Hız Sedimentasyon kullanma spermatogenic Hücre Tiplerinin Ayrılması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-09T21:20:00.000+00:00
Duration: 9 min 48 s
Description: Öğrenin fare testislerinden spermatojenik hücre tiplerini STA-PUT hız sedimentasyonu ile boyut ve yoğunluk farklarına göre ayırma yöntemini. Bu teknik yüksek saflıkta hücre izolasyonu sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu araştırma NIH hibe SLB için GM055360 ve RGM için U54HD068157 tarafından desteklenmiştir. JMB Pennsylvania Üniversitesi (GM008216) de T32 Genetik Eğitim Grant tarafından desteklenmiştir.

STA-PUT protokol üç aşamadan oluşur: 1) cihaz ve reaktiflerin Set up, bütün testis hücre süspansiyonu 2) hazırlanması, ve 3) Hücre yükleme, sedimantasyon ve fraksiyon toplama. İki araştırmacı bir ekip tarafından gerçekleştirildiğinde, protokol ortalama sekiz saat sürer. 1.. STA-PUT Aparatı ayarlama (Şekil 1) Toplama bu yöntem tercih edilir *** STA-PUT aygıtı olup, bir 4 ° C büyük buzdolabı ya da bir kısım toplayıcısı kalabileceği soğuk bir odaya yerleştirilir. <ol><li> Önce (ya da en azından bir kaç saat önce), yöntemini gerçekleştirmek gece, tüm ekipman (özellikle cam ve boru) yıkayın ve% 70 etanol ile sterilize. Tam olarak Şekil 1 &#39;de gösterildiği gibi, düzenek monte edilmeden önce ekipman kuru olsun. </li><li> İki 2 L silindiri (Şekil 1 B ve C) ve hücre yükleme odasının (edin <strong&gt; Şekil 1A) üst platforma ve boru kelepçeleri ile boru iki küçük parçalar ile tüm bağlayın. Kelepçe bütün tüpler kapalı. En sağdaki 2 L silindir üzerinde ağzı kapatılmalıdır. </li><li> Hücre yükleme odası içinde küçük bir karıştırma çubuğu (Şekil 1A) ve% 2 BSA içerir sol-en 2 L silindir daha büyük bir karıştırma çubuğu (Şekil 1 B) yerleştirin. </li><li> Platformu (Şekil 1D) 2 L sedimantasyon odasına yerleştirin. Doğrudan sedimantasyon odasının (Şekil 1D) altındaki açıklığın üstündeki metal bölmesini (Şekil 1F) yerleştirin. Bölme fraksiyon toplama sırasında hücre degrade sıvı ve bozulma vorteks engeller gibi bu önemlidir. Sedimantasyon odasının üst kapağı yerleştirin. </li><li> Üç yollu vana (Şekil 1G) buzlu cam eklemli vakum yağ çok az miktarda uygulandıktan sonra, se dibine musluğunu kelepçedimentation odası, vana ve sedimantasyon odasının buzlu cam eklem bağlantı. </li><li> Boru takımı ile birlikte vana doğru çıkışına hücre yükleme odası (Şekil 1A) takın. Musluğu kapatın. </li><li> Musluğu sol çıkışına hücre parçalanması boru takın. Fraksiyonlama boru açık olan ucuna bağlı bir cam Pasteur pipeti ile bir boru parçasını içerir. Daha küçük delik boru parçası cam pipet dar ucuna takılır. Dar pipet fraksiyon toplama sırasında hücre süspansiyonu akışını kısıtlar. Çok altındaki bu küçük tüp kelepçe. </li><li> 2 L Krebs hazırlayın (1x) deneyi (Tablo 1) gün tampon. Daha sonra, 1 x 550 ml Krebs 2% BSA, 1 x 550 ml Krebs% 4 BSA ve 1x Krebs 50 mi% 0.5 BSA hazırlar. Filtre edin ve 4 ° C&#39;ye kadar, bu çözüm soğuk </li><li> Doğru 2 L silindir (Şekil 1C) &#39;de% 4 BSA çözeltisi ve% 2 BSA dökünSol 2 L silindir (Şekil 1 B) çözelti. Emin bu silindirler bağlayan boru içinde hiçbir büyük baloncuklar olmadığından emin olun. </li><li> Bu degrade rahatsız olabilir gibi, hücre yükleme odasına Krebs tampon dökün ve emin hiçbir büyük kabarcıklar vardır yapma, sedimantasyon odasının bu odayı birbirine bağlayan boru doldurun. Sıkma veya boru flicking yavaşça kabarcıklarını çıkarmak için yardımcı olur. Krebs tampon her tüp içinde olup hücre odası içinde olduğundan emin olun. </li><li> Krebs tampon küçük bir miktar, sedimantasyon odasının içine akar ve daha sonra tüpün doldurulması ve herhangi bir büyük kabarcıklarını çıkarmak amacıyla hücre ayırma boru içine hemen hemen tüm tampon boşalmasına izin verin. </li><li> Doğrudan sedimantasyon odasının altında kısım toplayıcısı yerleştirin. Tüm fraksiyon tüpler yerdesiniz ve kirlenmesini önlemek için plastik örtü ile kaplı olduğundan emin olun. </li></ol> 2. Tüm Testislerin gelen spermatogenic Hücreleri Ayırma <ol&gt; <li> Ca 12 yetişkin farelerin (tercihen en az sekiz haftalık) ve oda sıcaklığında Krebs tampon yerinde herhangi bir kirlenmesine malzemeyi yıkayın Testisler ayır. Gösterilmediği Bu protokol laboratuvar farelerin kullanımını gerektirir ve Pennsylvania Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi Üniversitesi kurallarına uygun idam edildi. </li><li> Eğer seminifer tübüller eklemek niyetinde hemen önce konik bir tüp içinde 50 ml Krebs tampon 45 mg kollajenaz ekleyin. Bu çözelti bir kaç dakika boyunca 33 ° C&#39;ye kadar ısınmasına izin vermeyin. Iki adet 50 ml konik tüpler içine eşit olarak bölünür. </li><li> Tunika albuginea atarak ve seminifer tübüller bırakmadan, 8 ml Krebs tampon içeren ayrı bir tabak içinde testisler açarlar. Tunika albuginea seminifer tübüller çevreleyen ince bir zardır. Tübüller kolayca tunika albuginea ayırmak gerekir. Bunu yapmak için, tunika albuginea bir kesi yapmak, bir pai ile bu membran tutunforseps r ve uzak forseps başka bir çift ile zardan dışarı tübüllerini itin. </li><li> Kolajenaz çözeltisi 25 ml içeren, her konik tüp tübülleri içeren 4 ml Krebs tamponu ilave edin ve 10 dakika boyunca 33 ° C &#39;de, çalkalama, inkübe edilir. Sonunda, tübüllerin bir &quot;spagetti-benzeri&quot; bir görünüme sahip olmalıdır. </li><li> Tübüller tüpün altına ~ 5 dakika boyunca çökmesine izin verilmektedir. Süpernatantı dökerek tübüller tüpün dibine her oturuşmaya bırakılmış, (oda sıcaklığında) 25 ml Krebs tampon maddesi içinde 2 x yıkayın. Her bir tüp içinde ~ 5 ml Krebs tamponu bırakın. </li><li> Yıkama, sen seminifer tübüller eklemek niyetinde hemen önce bir şahin tüp 50 ml Krebs tampon 30 mg tripsin eklemek iken. Bu çözelti bir kaç dakika boyunca 33 ° C&#39;ye kadar ısınmasına izin vermeyin. Iki adet 50 ml konik tüpler içine eşit olarak bölünür. </li><li> 25 ml tübülleri içeren iki tüpün her birine tripsin solüsyonu ekleyin. Hücre önlemek için her bir tüpe 3 ug DNAz (1 μg/10ml) eklemetopaklanma s. 10 dakika boyunca 33 ° C &#39;de, çalkayalarak kuluçkalayın. </li><li> Yaklaşık 10x ve onları pipetleme, tübüllerini içeren çözümü kışkırtmak için geniş bir delik pipet kullanın. Çözüm daha tek bir hücre süspansiyonu gibi aramaya başlamalıdır. </li><li> Ilave bir 10 dakika boyunca 33 ° C &#39;de, çalkayalarak kuluçkalayın. Yaklaşık 25x ve onları pipetleme, tek bir hücre süspansiyonu içine tübülleri dağıtmak için, geniş bir delik pipet kullanın. Hala tübüller veya hücre kümeleri çok görürseniz, pipet ile daha dağıtmak ve / veya her bir tüpe başka 3 ug DNAz (çift başlangıç ​​konsantrasyon) ekleyin. </li><li> Bir 100 um gözenekli bir hücre süzgecinden (30 mi hücre süspansiyonu her bir tüp için bir tane) ile tek bir hücre süspansiyonu filtre. Hücre süspansiyonları birleştirin ve hücrelerin toplam sayısı (8 ila 10 x 7-8 arası hücre olmalıdır) sayılır. *** Degrade üzerine FAZLA 800000000 hücreleri yüklemeyin. </li><li> Adım 2.10 &#39;de elde edilen hücre sayısı göre, appropr peletiate 5 dakika boyunca 450 RCF süzüldü hücre ve 30 ml Krebs tamponu ile yıkayın. Tekrarlayın. *** Genellikle 22 testisler daha 800.000.000 hücreleri verecektir, ancak bu hücre sayısından daha fazla yük yok. </li><li> Dikkatle kabarcıklar yaratmadan (hücre topaklanma derecesine bağlı olarak) DNAse ug 2.5 ile 5 içeren 25 mi% 0.5 BSA içinde tekrar süspansiyon hücreleri. Hücreler kümelenir yok emin olun. 100 mikron gözenekli hücre süzgecinden tek bir hücre süspansiyonu filtre. Hücreler artık yüklemeye hazırız. Tüpü birkaç kez ters yüz edilerek yüklemeden önce iyice karıştırın. </li></ol> 3. Hücre Yükleme ve sedimantasyon <ol><li> Emin musluk kapalıdır, ancak sıvı, sedimantasyon odasının (Şekil 1D) içine hücre bölmesi (Şekil 1A) akmasını sağlayacak konumda yapın. </li><li> Düşük ayarda karıştırma çubukları sürekli hareket sağlamak için (yaklaşık 70 rpm) hem karıştırma çubuğu tabak kapatın, ama yavaş yavaş. </li><li> Hücre odası (Şekil 1A) içine hücre süspansiyonu dökün ve hücreler, 10 ml / dk (Şekil 1D) &#39;lik bir oranda, sedimantasyon odasının içine yavaş yavaş akması, böylece musluğunu açın. Musluğu kapatın. Akış hızı, sedimantasyon odasının üzerinde hacim aralıkları işaretleyerek belirlenebilir. </li><li> Hücre odasına% 0.5 BSA çözeltisi 5 ml dökün ve 10 ml / dak &#39;lık bir hızda, sedimantasyon odasının içine boşaltın. Musluğu kapatın. Bu adım, hücre odasından dışarı hücrelerini yıkar. 4x tekrarlayın. </li><li> Gradyan hazırlayın: hücre bölmesi (Şekil 1A) ve iki 2 L silindir (Şekil 1B, C) ​​arasındaki kelepçeler açın ve 40 ml / dk &#39;lık bir oranda (Şekil 1D) de sedimantasyon odasının içine sıvı drenaj başlar hemen. Bu sedimantasyon odasına BSA gradyanı yüklemek için yaklaşık 20-30 dakika sürer, böylece akış hızını ayarlayın. Üstüne yalan hücrelerin ince, rahatsız tabakaBSA degrade görünür olmalıdır. BSA en yüklendikten sonra, musluğunu kapatın ve sıvı ayırma tüpüne sedimantasyon odasından akmasını sağlayacak konuma çevirin. </li><li> Heyecan tabak kapatın. </li><li> Hücrelerin bir saat ve 45 dakika süre ile çöktürmek için izin verin. BU DÖNEMDE CİHAZI RAHATSIZ ETMEYİN. Herhangi bir mekanik ajitasyon degrade rahatsız olabilir. </li></ol> 4. Kesirler Fraksiyonu ve Analizi Eğer aşağıdaki adımları gerçekleştirmek gibi ***, degrade rahatsız etmemek için dikkatli olun. BSA degrade rahatsız edilirse, yordam çalışmaz! <ol><li> Hücreler çökeltilir sonra, yavaş yavaş 50 ml konik tüp içine sedimantasyon odasından 50 ml drenaj ve kenara. Bu fraksiyon genellikle hücreleri ve enkaz istenmeyen kümeleri içerir. </li><li> Fraksiyon toplayıcı için kesir tüp takın. *** Bu elle fraksiyonların toplanması da mümkündür, bir fraksiyon collector kullanılamaz. </li><li> Fraksiyonları toplamak: 10 ml (bir toplama tüpü doldurmak) her 45 san toplanır, böylece vana ile akış hızını ayarlayın. </li><li> Fraksiyon toplama tüpleri Cap ve 4 ° C&#39;de 450 RCF 5 dakika boyunca dönmeye , Yavaşça Süpernatantı dökün kalan sıvı süspansiyon hücrelerin, ve buz üzerinde hücre tutmak. </li><li> Tüm fraksiyonlar toplanır sonra, mikroskobik olarak farklı hücre popülasyonları için fraksiyonlar analiz. Farklı hücre tipleri, hücre boyutu ve nükleer morfolojisi 8,15 göre ayırt edilebilir. 2 (a) ve öz değişmesine ait somatik hücreleri ve spermatogonia için zenginleştirilmiş üç birleştirilmiş fraksiyonlardan için &quot;temsili sonuçlar&quot;, (b) yuvarlak spermatidler ve göstermektedir Şekil (c) uzatılması ve spermatidlerin yoğuşmalı. <ul><li> Bir spermatogonium Tip 12-14μm ca vardır. çapında ve kromatin kompozisyonunda homojen yuvarlak çekirdekleri var. </li><li> B Tipi spermatogonium 8-9μm ca vardır. çapı olan ve RounNükleer çevresi boyunca daha yoğun heterokromatine göstermek d çekirdekler. </li><li> Pre-leptoten spermatosit 7,5-8.2μm ca. çapı, B Tipi spermatogonia az sitoplazma ve B Tipi spermatogonyumlarda olanlara benzer çekirdekleri var. </li><li> Leptoten birincil spermatosit 8-10 mikron ca vardır. çapında ve ön leptoten spermatositlerin olanlara benzer, ancak nükleer membran daha yoğun kromatin kazanmak gibi çekirdekleri var. </li><li> Zigoten birincil spermatosit 10-12 mikron ca vardır. çaplı ve leptoten primer spermatositlerde kişilerce benzer çekirdeği vardır. </li><li> Pachytene spermatosit yerde 12-18 mikron ca vardır. çapı ve büyük bir çekirdeği çevreleyen sitoplazma ince bir kenar oluşur. Daha yoğun kromatin kümeleri çekirdeğinde görülebilir. </li><li> Yuvarlak Spermatidler 10 mikron ca vardır. çaplı ve ortasında bir yoğun-boyama chromocenter yuvarlak bir çekirdeği vardır. </li><li> Artıkorganları çapı 6.5 mikron, yuvarlak ve çekirdeği eksikliği ~ vardır. </li><li> Uzatma ve yoğuşmalı Spermatidler spermatidlerin yuvarlak boyutu benzer, ancak benzersiz, orak şeklinde çekirdek var. </li></ul><ol><li> Fraksiyonu 15 ile başlayın ve 85 kadar her beş kesirler analiz. Genellikle, altı 15 fraksiyonlar çok karışık ve clumpy olacak ve 85 yukarıda parçacıklar herhangi bir kullanılabilir hücrelere az içerir. </li><li> Fraksiyon toplama tüpü (hücreler, santrifüj işleminden sonra yeniden süspansiyon haline getirilmiş edilmiş bir defa) sıvının 5ul almak ve Krebs tamponu içinde% 8 formaldehit 5ul eklemek, bir fraksiyon analiz etmek. Sabit Hücreler, beş dakika boyunca oda sıcaklığında bekletin. </li><li> Sabit hücreleri% 0.1 Triton ve DAPI (5 μ / ml Krebs tampon) 5ul ekleyin. Hücreler, 5 dakika boyunca oda sıcaklığında bekletin. </li><li> , Bir slayt üzerine elde edilen solüsyon 10 ul koyun örtücü bir kılıfla kapak ve her bir fraksiyonun saflığı belirlemek için flöresanlı bir mikroskop ile analiz edin. </li><li> Mayotik ve somatik hücreler diploid, yuvarlak spermatidlerin ve uzatma / yoğuşmalı spermatidlerin: boyutu ve nükleer morfoloji benzer hücrelerin aşağıdaki popülasyonları oluşturmak için (&quot;Temsilci Sonuçları&quot; bakın) kesirler birleştirin. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Wistuba, J., Stukenborg, J., Luetjens, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+Spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Funct.+Dev.+Embryol%22%5BJournal%5D)">Mammalian Spermatogenesis.</a> Funct. Dev. Embryol. 1, 99-117 (2007).</li>
<li>Hess, R. A., Cooke, P. S., Hofmann, M. C., Murphy, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanistic+insights+into+the+regulation+of+the+spermatogonial+stem+cell+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Mechanistic insights into the regulation of the spermatogonial stem cell niche.</a> Cell Cycle. 5, 1164-1170 (2006).</li>
<li>Dores, C., Alpaugh, W., Dobrinski, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+in+vitro+culture+to+in+vivo+models+to+study+testis+development+and+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">From in vitro culture to in vivo models to study testis development and spermatogenesis.</a> Cell Tissue Res. 349, 691-702 (2012).</li>
<li>Hayashi, K., Ohta, H., Kurimoto, K., Aramaki, S., Saitou, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstitution+of+the+mouse+germ+cell+specification+pathway+in+culture+by+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Reconstitution of the mouse germ cell specification pathway in culture by pluripotent stem cells.</a> Cell. 146, 519-532 (2011).</li>
<li>Easley, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+differentiation+of+human+pluripotent+stem+cells+into+haploid+spermatogenic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Direct differentiation of human pluripotent stem cells into haploid spermatogenic cells.</a> Cell Rep. 2, 440-446 (2012).</li>
<li>Bellve, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification%2C+culture%2C+and+fractionation+of+spermatogenic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Purification, culture, and fractionation of spermatogenic cells.</a> Methods Enzymol. 225, 84-113 (1993).</li>
<li>Meistrich, M. L., Bruce, W. R., Clermont, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+composition+of+fractions+of+mouse+testis+cells+following+velocity+sedimentation+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular composition of fractions of mouse testis cells following velocity sedimentation separation.</a> Exp. Cell Res. 79, 213-227 (1973).</li>
<li>Romrell, L. J., Bellve, A. R., Fawcett, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+mouse+spermatogenic+cells+by+sedimentation+velocity.+A+morphological+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Separation of mouse spermatogenic cells by sedimentation velocity. A morphological characterization.</a> Dev. Biol. 49, 119-131 (1976).</li>
<li>Miller, R. G., Phillips, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+cells+by+velocity+sedimentation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Separation of cells by velocity sedimentation.</a> J. Cell Physiol. 73, 191-201 (1969).</li>
<li>Bastos, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometric+characterization+of+viable+meiotic+and+postmeiotic+cells+by+Hoechst+33342+in+mouse+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Flow cytometric characterization of viable meiotic and postmeiotic cells by Hoechst 33342 in mouse spermatogenesis.</a> Cytometry A. 65, 40-49 (2005).</li>
<li>Getun, I. V., Torres, B., Bois, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry+purification+of+mouse+meiotic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry purification of mouse meiotic cells.</a> J. Vis. Exp. (50), e2602(2011).</li>
<li>Grabske, R. J., Lake, S., Gledhill, B. L., Meistrich, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Centrifugal+elutriation%3A+separation+of+spermatogenic+cells+on+the+basis+of+sedimentation+velocity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Centrifugal elutriation: separation of spermatogenic cells on the basis of sedimentation velocity.</a> J. Cell Physiol. 86, 177-189 (1975).</li>
<li>Meistrich, M. L., Trostle, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+mouse+testis+cells+by+equilibrium+density+centrifugation+in+renografin+gradients%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Separation of mouse testis cells by equilibrium density centrifugation in renografin gradients.</a> Exp. Cell Res. 92, 231-244 (1975).</li>
<li>Gassei, K., Ehmcke, J., Schlatt, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+enrichment+of+undifferentiated+GFR+alpha+1%2B+spermatogonia+from+immature+rat+testis+by+magnetic+activated+cell+sorting%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">Efficient enrichment of undifferentiated GFR alpha 1+ spermatogonia from immature rat testis by magnetic activated cell sorting.</a> Cell Tissue Res. 337, 177-183 (2009).</li>
<li>Bellve, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spermatogenic+cells+of+the+prepuberal+mouse.+Isolation+and+morphological+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Spermatogenic cells of the prepuberal mouse. Isolation and morphological characterization.</a> J. Cell Biol. 74, 68-85 (1977).</li>
<li>Handel, M. A., Schimenti, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+of+mammalian+meiosis%3A+regulation%2C+dynamics+and+impact+on+fertility%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Genetics of mammalian meiosis: regulation, dynamics and impact on fertility.</a> Nat. Rev. Genet. 11, 124-136 (2010).</li>
<li>Zhao, M., Shirley, C. R., Mounsey, S., Meistrich, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nucleoprotein+transitions+during+spermiogenesis+in+mice+with+transition+nuclear+protein+Tnp1+and+Tnp2+mutations%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Nucleoprotein transitions during spermiogenesis in mice with transition nuclear protein Tnp1 and Tnp2 mutations.</a> Biol. Reprod. 71, 1016-1025 (2004).</li>
<li>Manku, G., Mazer, M., Culty, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neonatal+testicular+gonocytes+isolation+and+processing+for+immunocytochemical+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Neonatal testicular gonocytes isolation and processing for immunocytochemical analysis.</a> Methods Mol. Biol. 825, 17-29 (2012).</li>
<li>Dehnugara, T., Dhar, S., Rao, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro%2C+short-term+culture+method+for+mammalian+haploid+round+spermatids+amenable+for+molecular+manipulation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Reprod.+Dev%22%5BJournal%5D)">An in vitro, short-term culture method for mammalian haploid round spermatids amenable for molecular manipulation.</a> Mol. Reprod. Dev. 79, 19-30 (1002).</li>
</ol>

Yazarlar, hiçbir rakip mali çıkarlarını olmadığını beyan ederim. Gösterilmediği Bu protokol laboratuvar farelerin kullanımını içerir ve tüm ilgili kurallar, düzenlemeler ve düzenleyici kurumlar ile uyum içinde idam edildi. Bu protokolde kullanılan Hayvanlar Pennsylvania Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi Üniversitesi (IACUC protokolü # 804284) rehberliği ve onayı altında tutulur.

Güvenilir bir hücre kültür sistemi henüz tüm spermatogenik hücre tiplerini 3 üretmek için yok gibi spermetogenez çalışma yapanlar, spermatojenik hücre örnekleri için hayvan modellerinde güveniyor. Spermatojenik hücreleri kolayca bütün testis toplanan rağmen, sadece karışık bir nüfus sonuçlanır. Bu tür mayotik hücreleri, yuvarlak spermatidler ve yoğuşmalı spermatidler gibi bu hücrelerin belirli alt tipleri, incelemek isteyenler için bir sorun teşkil etmektedir. Üç farklı yöntemler şu anda spermatojenik hücrele...

Memeli spermatogenezis testislerin 1 seminifer tübüllerde çeşitli aşamalardan oluşan karmaşık bir farklılaşma süreçtir. Kısaca, seminifer tübül bölünmenin epiteli yakınında ikamet spermatogonium gibi-kök ve daha sonra mayozdaki bölünmeler geçmesi spermatositlerin, içine ayırt. Mayoz tamamlandıktan sonra, elde edilen haploid hücreleri ya da yuvarlak spermatid, Spermiyogenez, sitoplazma ile çekirdek kompaksiyon saçılmasını içeren bir farklılaşma sürecine tabi tutulur. Spermatidlere yavaş yavaş, sırasıyla, bir kamçılı geliştirmek ve çekirdeğin uzamasını ve yoğunlaşmasını geçmesi, uzatma ve ardından yoğuşmalı spermatidlerin üreten. Son ürünler seminiferous tübül ve sonuçta daha olgun epididimis lümeni içine salınır spermatozoa vardır. Spermatogenez süreci içinde özel hormonal ve moleküler koşullarına dayandığındantestisler, spermatogenez tüm süreç için güvenilir bir in vitro kültür sistemi henüz 2,3 geliştirilmiş değil. Kültür yöntemleri kök hücrelerden &quot;primordial germ hücresi benzeri hücreler&quot; ve haploid, &quot;yuvarlak spermatid-benzeri hücreler&quot; oluşturmak için geliştirilmiştir, ancak bu yöntemler henüz bu hücrelerin çok sayıda oluşturmak ve daha sonra spermatogenetik hücre üretmek için başarısız mümkün değildir türleri 4,5. Neyse ki, spermatojenik hücre tipleri, bir sıvı gradyanı ile ayrılması için bütün testisler elde edilen tek bir hücre süspansiyonu için izin veren, boyut olarak önemli ölçüde farklıdır. STA-PUT yöntemi, burada gösterdiği, büyüklüğü ve kitle 6-9 dayalı spermatojenik hücreleri ayırmak için bir doğrusal BSA degrade ve basit sedimantasyon kullanır. FACS ve sivili ayrıştırma 10-13: STA-PUT yöntem spermatojenik hücre tipleri ayırmak için diğer iki en yaygın olarak kullanılan yöntemlere göre bazı avantajları vardır. STA-PUT aparatı onl gerektirirözel cam y birkaç adet soğuk oda veya büyük buzdolabı monte. Bu nedenle, bir hücre ayırıcıyla ya da elutriatörü kullanarak daha az pahalıdır. Her bir hücre popülasyonunun saflığı FACS 11 ile elde edilen kadar yüksek olmasa da STA-PUT yöntem olup, hücre tipi ve karşılaştırılabilir bir zaman dilimi içinde FACS ile sıralanabilir daha testis başına hücre yüksek miktarda elde edilir. Hücre (manyetik aktif hücre sıralama, MACS) son zamanlarda başarılı bir karma testiküler hücre nüfus spermatogonyumlarda zenginleştirilmesi için istihdam edildiğini, ancak 14 işaretleyicileri uygun yüzeyinin bilgi eksikliği nedeniyle spermatositlerin veya spermatidlerin ayırmak için şu anda uygun olan manyetik boncuklar kullanarak sıralama. FACS ya da MACS fazla STA-PUT yönteminin ilave bir avantajı, FACS protokolleri aksine, herhangi bir DNA ya da boyama diğer türleri gerektirmez, çünkü daha sonra kültür için uygun olan canlı hücreleri izole etmek için yeteneğidir. L gerekli çalışmalar içinSpermatogenik hücreleri türleri arge verimleri ~% 90 saflıkta, STA-PUT ideal bir yöntemdir.

<table><tbody><tr><td>BSA</td><td>Affymetrix/USB</td><td>10857 100MG</td><td>Alternatif kullanılabilir.</td></tr><tr><td>% 0.5,% 2 ve% 4 BSA çözeltileri</td><td>Sırasıyla 50 ml, 550 ml ve 550 ml 1x KREBS (sırasıyla) toplam hacimlerinde 0.25 g, 11 g ve 22 g (sırasıyla) çözün.</td><td>STA-PUT prosedürünün yapıldığı gün yapılacak. Filtre sterilize eder.</td><td></td></tr><tr><td>KREBS (10x)</td><td>3.26 g KH<alt>2</alt>PO<alt>4</alt> + 139.5 g NaCl +5.89 g MgSO<alt>4</alt>/7H<alt>2</alt>0 + 40 g Dekstroz + 3.78 g CaCl<alt>2<>/alt/2H<alt>2</alt>0 + 7.12 g KCl, ddH20</td><td>Otoklav/filtre ile 2 L'ye getirin ve 4 ° C'de saklayın; Birkaç ay boyunca C.</td><td></td></tr><tr><td>KREBS (1x)</td><td>4.24 g NaHCO3 100 ml ddH20 içinde çözün. 200 ml 10x KREBS ekleyin. ddH20 ile 2 L'ye getirin.</td><td>STA-PUT prosedürünün yapıldığı gün yapılacak. Filtre sterilize eder.</td><td></td></tr><tr><td>Kollajenaz</td><td>Sigma</td><td>C9891-1G</td><td> </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNAse</td><td>Sigma</td><td>DNEP-5MG</td><td> </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Sigma</td><td>T9201-1G</td><td> </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td> Araştırmacı <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triton-X100'ün</td> <td>TercihiAraştırmacının</td><td></td><td></td>tercihi</tr><tr><td>Formaldehit (~%37)</td><td>Araştırmacının</td><td></td><td></td></tr><tr><td> </td><td></td><td></td><td></td></tr> tercihi <tr><td>TABLO 2: EKİPMAN</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ekipman</td><td></td><td>Firma Kataloğu #</td><td>Yorumlar</td></tr><tr><td>Komple STA-PUT aparatı</td><td>ProScience Cam Dükkanı</td><td>STA-PUT (bu prosedür standart çökeltme odasını kullanır: Cat. No. 56700-500)</td> <td>Aparat için tüm cam eşya ve ekipmanları içerir. Daha küçük hücre sayılarıyla STA-PUT gerçekleştirmek için alternatif cam eşyalar mevcuttur.</td></tr><tr><td>10 & mu; m örgü filtre</td><td>Fisherbrand</td><td>22363549</td><td> </td></tr><tr><td>Fare diseksiyon araçları</td><td>Araştırmacının</td><td></td><td></td>tercihi</tr><tr><td>14 ml kapaklı yuvarlak dip fraksiyon toplama tüpleri</td><td>Araştırmacının</td><td></td><td></td>tercihi</tr><tr><td>Yaklaşık 100 tüpe</td><td></td><td></td><td></td>ihtiyaç var</tr><tr><td>Fraksiyon toplayıcı</td><td>GE Healthcare Yaşam Bilimleri</td><td>Model: Frac-920, Ürün kodu: 18-1177-40</td><td>Alternatif kullanılabilir.</td></tr><tr><td>Mikroskop slaytları, kapak camı</td><td>Araştırmacının</td><td></td><td></td>tercihi</tr><tr><td>Işık/Floresan Mikroskop</td><td>Araştırmacının</td><td></td><td></td> tercihi</tr></tbody></table>

sta-put hız sedimentasyon kullanma spermatogenic hücre tiplerinin ayrılması

Separation of Spermatogenic Cell Types Using STA-PUT Velocity Sedimentation

Memeli spermatogenezis testislerin seminifer tübüllerde çeşitli aşamalardan oluşan karmaşık bir farklılaşma süreçtir. Şu anda, in vitro spermatojenik farklılaşması için izin veren güvenilir bir hücre kültür sistemi olup, spermatojenik hücrelerin çoğunun biyolojik çalışmalar, fare ve sıçan gibi hayvan modellerinde doku hasat gerektirir. Non-spermatojenik (Leydig, sertoli, miyeloid ve epitel hücreleri) ve spermatogenetik hem (spermatogonium spermatositler, yuvarlak spermatidlerin, spermatidlerin ve sperm yoğuşmalı) - - testis sayıda hücre tiplerini içerir çünkü spermatogenezde katılan biyolojik mekanizmaların çalışmalar izolasyonu gerektiren ve bu farklı hücre tiplerinin zenginleştirme. Bu durumda, testis - - lineer gradyan BSA ile STA-PUT yöntem hücre heterojen bir popülasyonunun ayrılması sağlar. Bireysel hücre tipleri ce göre farklı çökelme hızı ile tortull büyüklüğü ve farklı hücre tipleri için zenginleştirilmiş fraksiyonlar toplanmış ve daha fazla analizlerde kullanılabilir. STA-PUT yöntem, belirli hücre ayırma yöntemleri ile elde edilebilir, örneğin hücre tipleri son derece saf fraksiyonları, neden etmese de, bu, her bir parça halinde toplam hücrelerin çok daha yüksek bir verim sağlamaktadır (7-8 x 10 8, bir başlangıç ​​hücre popülasyonundan ~ 1 x 10 8 hücre / spermatojenik hücre tipi). Bu yüksek verim yöntem yalnızca uzman cam gerektirir ve bir floresan aktif hücre ayırıcı (FACS) veya elutriatörü gibi özel ekipmana sınırlı erişimi laboratuarları için ideal bir yöntem yapma, herhangi bir soğuk oda veya büyük buzdolabı yapılabilir.

STA-PUT prosedür ideal bir sonuç hücre boyutu ve yoğunluğuna bağlı olarak testis hücrelerinin oldukça fark ayrılıktır. Testis izole hücreler BSA gradyanı ile çöktürülmesi olsa da, hücrelerin birkaç farklı bantları gözlenebilir. Hücrelerin herhangi kümeleri degrade dibine çöker ve diğer fraksiyonların kontamine olmaz eğilimindedir. Biraz daha degrade kadar büyük somatik ve mayozdaki hücreler olacaktır. Uzak degrade kadar hala küçük yuvarlak Spermatidler olacaktır. Degrade üst spermatidlerin, sperm ve kırmızı kan hücreler...

STA-PUT yöntem büyüklüğü ve yoğunluğuna bağlı olarak spermatojenik farklı hücre popülasyonlarının ayrılması sağlar.

STA-PUT Hız Sedimentasyon kullanma spermatogenic Hücre Tiplerinin Ayrılması

Mammalian spermatogenesis is a complex  differentiation process that occurs in several stages in the seminiferous  tubules of the testes. Currently, there ...

Bu prosedürün genel amacı, testislerde bulunan farklı hücre tiplerini birbirinden ayırmaktır. İlk olarak, fareden karışık bir hücre popülasyonu toplayın. Hücreleri ve BSA gradyanını sabit tutma aparatına yükleyin.Şimdi hücrelerin BSA gradyanı boyunca çökelmesine izin verin. Ardından fraksiyonları toplayın ve hücre kompozisyonuna göre bunları birleştirin. Nihayetinde, "stay put" yöntemiyle hız çökelmesi, testislerdeki farklı hücre tiplerini boyut ve yoğunluk farklarına göre ayırmak için kullanılır.Bu tekniğin FACTS gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, basit cam malzemeler ve yerçekimi kullanarak oldukça yüksek saflıkta, farklı hücre tiplerinden büyük miktarlarda izole edilebilmesidir. İki adet iki litrelik silindiri ve hücre yükleme haznesini üst platforma sabitleyin ve hepsini tüp klempleriyle birlikte iki küçük hortum parçasıyla birbirine bağlayın. Tüm tüpleri klemplerle kapatın ve en sağdaki iki litrelik silindirin ağzını mühürleyin.Hücre yükleme haznesine küçük bir manyetik karıştırıcı çubuk ve en soldaki iki litrelik silindire daha büyük bir manyetik karıştırıcı çubuk yerleştirin. Ardından, iki litrelik sedimantasyon haznesini platformun üzerine yerleştirin. Fraksiyon toplama sırasında sıvının girdap oluşturmasını ve hücre gradyanının bozulmasını önlemek için metal separatörü, sedimantasyon haznesinin altındaki açıklığın tam üzerine konumlandırın.Şimdi çöktürme haznesinin kapağını kapatın. Üç yollu musluğun rodajlı cam eklemine çok küçük bir miktar vakum gresi sürün. Ardından, musluğun ve çöktürme haznesinin rodajlı cam eklemlerini birbirine bağlayarak musluğu çöktürme haznesinin altına sabitleyin.Ardından, hücre yükleme haznesini hortum aracılığıyla musluğun sağ çıkışına bağlayın. Musluğu kapatın, ardından hücre fraksiyonlama hortumunu musluğun sol çıkışına takın ve en alttaki küçük tüpü klempleyin. %2 BSA çözeltisini soldaki iki litrelik silindire boşaltın.%4 BSA çözeltisini sağdaki iki litrelik silindire dökün. Bu silindirleri birbirine bağlayan tüplerde büyük kabarcık kalmadığından emin olun. Hücre yükleme haznesine Krebs tamponu dökün ve bu hazneyi çöktürme haznesine bağlayan tüpleri doldurun.Gradyanı bozabilecek büyük hava kabarcığı olmadığından emin olun. Gerekiyorsa, kabarcıkları gidermek için tüpü nazikçe sıkın veya vurun. Tüm krebs çözeltisinin hücre haznesinde değil, tüpün içinde olduğunu onaylayın.Sedimentasyon odasına küçük bir miktar Krebs tamponu akmasına izin verin. Ardından, tamponun neredeyse tamamını hücre fraksiyonlama tüpüne boşaltın. Tüpü doldurmak ve büyük hava kabarcıklarını gidermek için fraksiyon toplayıcıyı doğrudan sedimentasyon odasının altına yerleştirin.Tüm fraksiyon tüplerinin yerinde olduğunu kontrol edin ve kontaminasyonu önlemek için plastik filmle kapatın. Testisleri, sekiz mililitre Krebs içeren ayrı bir plakada dekapsüle edin. Bir çift pens yardımıyla, seminifer tübülleri çevreleyen ince membranda bir insizyon yapın.Membranı şimdi başka bir pens ile tutun. Tübülleri membrandan dışarı ve uzağa doğru itin. Tübülleri içeren dört mililitre Krebs çözeltisini, 25 mililitre kollagenaz çözeltisi içeren her bir konik tüpe aktarın.Tübüller spagetti benzeri bir görünüm kazanana kadar 33 °C'de 10 dakika boyunca çalkalayın. Ardından, tübüllerin tüpün dibine çökmesi için beş dakika bekleyin. Süpernatanı dökün ve oda sıcaklığında 25 mL Krebs ile iki kez yıkayın; her yıkama işleminde tübüllerin tüpün dibine çökmesine izin verin.Her tüpte yaklaşık beş mililitre Krebs bırakın. Tübülleri tripsin ile inkübe ettikten sonra, tübülleri içeren çözeltiyi karıştırmak için geniş ağızlı bir pipet kullanın.Yaklaşık 10 kez pipetleyerek karıştırın. Solüsyon, tek hücreli süspansiyona daha çok benzemeye başlamalıdır. Şimdi, her 30 milliliter tek hücreli süspansiyonu 100 micron gözenekli bir hücre süzgecinden geçirin.Hücre süspansiyonlarını birleştirdikten sonra toplam hücre sayısını sayın. Musluğun, akışı hücre odasından çökelme odasına yönlendirecek şekilde konumlandırıldığından emin olun. Her iki manyetik karıştırıcı plakayı da düşük ayara getirin.Ardından hücre süspansiyonunu hücre haznesine dökün. Hücrelerin çöktürme haznesine dakikada 10 mililitre hızla yavaşça akması için musluğu açın. Daha sonra, hücreleri hücre haznesinden temizlemek için musluğu kapatın.Beş mililitre %0,5 BSA çözeltisi dökün ve dakikada 10 mililitre hızla sedimentasyon odasına boşaltın. Musluğu kapatın ve BSA yıkamasını dört kez daha tekrarlayın. Şimdi, sıvıyı dakikada 40 mililitre hızla hemen sedimentasyon odasına boşaltmak için hücre odası ile iki adet iki litrelik silindir arasındaki klempleri açın; BSA gradyanının sedimentasyon odasına yüklenmesi yaklaşık 20 ila 30 dakika sürecek şekilde akış hızını ayarlayın.BSA gradyanının üzerinde yatan, ince ve bozulmamış bir hücre tabakasını takip edin. BSA'nın çoğu yüklendikten sonra, durdurma musluğunu kapatın ve sıvının sedimentasyon odasından fraksiyonlama tüpüne akmasını sağlayacak konuma getirin. Şimdi manyetik karıştırıcıları kapatın ve hücrelerin bir saat 45 dakika boyunca çökelmesine izin verin.Sedimantasyon tamamlandıktan sonra, fraksiyon tüpünü fraksiyon toplayıcıya bağlayın. Akış hızını, her 45 saniyede her bir toplama tüpüne 10 mililitre gelecek şekilde muslukla ayarlayın. Tüm fraksiyonlar toplandıktan sonra, farklı hücre popülasyonları için fraksiyonları mikroskobik olarak analiz edin.Her bir fraksiyonun saflığını belirlemek için farklı hücre tipleri, hücre boyutu ve nükleer morfolojiye göre ayırt edilebilir. DPI ile boyanmış hücrelerden 10 µL'lik bir miktarı bir lama aktarın. Üzerine bir kapatma camı yerleştirin ve floresan mikroskobu ile analiz edin.Hücre popülasyonları oluşturmak için boyut ve nükleer morfoloji açısından benzer olan fraksiyonları çekin. Yaklaşık 22 testisin kullanıldığı tipik bir hazırlama işlemi, bu sabit tutma prosedürü ile yaklaşık 10⁸ hücre sağlar.Perper metagenik hücre tipi fraksiyonları, ışık ve floresan mikroskobinin kombinasyonu kullanılarak hızlıca analiz edilebilir. Miyotik hücreler, spermatogonyalar ve somatik diploid hücreler, testislerde bulunan en büyük hücrelerdir ve dpi ile nispeten homojen boyanan büyük çekirdekler içerirler. Yuvarlak spermatidler, genellikle parlak boyanan bir kromomer merkezi olan, daha küçük yuvarlak çekirdekli daha küçük hücrelerdir; uzayan spermatidler ise orak şeklinde çekirdeklere sahip küçük hücrelerdir.Hücre fraksiyonları birleştirildikten sonra, saflık, hücre lizatlarının western blot analizi ile daha detaylı belirlenebilir. Miyotik hücrelerin yaygın belirteçleri, Synaptonemal Complex 1 proteinleridir. Yoğunlaşan spermatidlerin yaygın belirteçleri ise geçiş proteinleri veya protaminlerdir.Bu teknik uzmanlaşıldığında, geliştirme aşamasından sonra uygun şekilde uygulandığı takdirde yedi saat içinde tamamlanabilir. Bu teknik, spermatogenez alanındaki araştırmacıların testislerdeki farklı hücre tiplerindeki hücresel süreçleri keşfetmelerine olanak sağlamıştır.

separation-spermatogenic-cell-types-using-sta-put-velocity

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Floresan aktif hücre sıralama (FACS) ile rafine bir hücre disosiasyon protokolü birleştirir fare testis yüksek derecede saflaştırılmış yaşayabilir mayotik kesirler elde etmek için etkili bir yöntem açıklanmıştır. Bu yöntem, DNA içeriği ve ayrık mayotik kesirler nükleer yoğunluğu farklılıkları yararlanır.

Fare Mayotik Hücreler Sitometrisi Arıtma

Bu video, testislerin bir bileşeni olan fare seminifer tübüllerinden Sertoli hücrelerinin izolasyon prosedürünü göstermektedir. Enzimatik sindirim ve tekrarlanan yıkamalar, Sertoli hücrelerinin çözeltiye salınmasını teşvik eder, bu da çoğalma ve büyüme için daha fazla kültürlenebilir.

Fare Seminifer Tübüllerinden İmmün Düzenleyici Sertoli Hücrelerinin İzolasyonu

Enzimler ve deterjan kaçınarak kemirgen malzemeden testis hücre süspansiyonları, mekanik hazırlanması için bir yeni protokol tarif edilmektedir. Yöntem çok basit, hızlı, tekrarlanabilir ve akış sıralama ve RNA ekstraksiyon için uygun kaliteli hücre süspansiyonları, vermektedir.

Testis Hücre Cezalı Hazırlanması için basit ve Verimli Tekniği

Akış sitometrisi kullanarak fare spermatidleri için bir sıralama stratejisi açıklıyoruz. Spermatidler, yuvarlak (spermiyogenez aşamaları 1-9), erken uzayan (spermiogenez aşamaları 10-12), geç uzayan (spermiyogenez aşamaları 13-14) ve uzun spermatidler (spermiyogenez aşamaları 15-16) dahil olmak üzere oldukça saf dört popülasyona ayrılır. Seçim parametreleri olarak DNA boyama, boyut ve granülozite kullanılır.

Adım özgü Fare spermatidlerin Sıralama&#39;yı Akışı Sitometrinin tarafından

Mayoz hangi gamet DNA ikileşmesi bir turu ve kromozom ayrışma birbirini izleyen iki tur üzerinden kurulan gelişimsel işlemidir. Memeli mayoz segregasyonun kromozom yayılır hazırlamak için bir teknik kullanarak incelenebilir. Burada, yüzey-yayılım çekirdeği fare spermatocytes üzerinden hazırlama yöntemi göstermektedir.

Fare Spermatocytes segregasyonun kromozom hazırlanması yayılır

Bu çalışma, farklı memeli türlerinin testiküler dokusundan saflaştırılmış germ hücresi popülasyonlarının elde edilmesi için bir yöntemin standartlaştırılmasını açıklamaktadır. Mekanik testis ayrışmasını, Hoechst-33342 ve propidyum iyodür ile boyamayı ve FACS sınıflandırmasını birleştiren basit bir protokoldür ve erkek üreme biyolojisi karşılaştırmalı çalışmalarında geniş uygulamalar yapılmıştır.

Memeli Erkek Germ Hücrelerinin Çok Denekli Saflaştırılmasında Standart Bir Yaklaşım, Mekanik Doku Ayrılma ve Akış Sitometrisi ile

Bu tübül squash teknik hızla hücresel bütünlüğünü koruyarak fare spermatocytes geliştirme saytolojik özellikleri değerlendirmek için hedeftir. Bu yöntem tüm aşamalarında spermatogenez çalışma için izin verir ve diğer biyokimyasal ve moleküler biyolojik yaklaşımlar için fare mayoz çalışmanın yanında kolayca uygulanabilir.

Seminifer tübül Squash tekniği fare modeli kullanarak sperma saytolojik analizi için

Bu yazıda, yoğunluk gradient Santrifüjü tekniği ve sperm Fizyoloji araştırma kendi uygulamasında performansını açıklayan hedefliyoruz.

Sperm yoğunluğu degrade Santrifüjü kullanarak fark kalitesini topluluğu

Burada sunulan pachytene spermatositler zenginleştirmek için bir protokol, yuvarlak spermatidler, ve yetişkin fare testislerinden uzayan spermatidler standart laboratuvar ekipmanları ile bir kesintili sığır serum albumin yoğunluğu gradyanı kullanarak.

Standart Laboratuvar Ekipmanları Kullanılarak Fare Testlerinden Pachytene Spermatosit ve Spermatidlerin Zenginleşmesi

Burada yetişkin fare testislerinden canlı meiotik ve post-meyotik mikrop hücrelerini izole etmek için basit ve etkili bir yöntem salıyoruz. Düşük sitotoksisite, menekşe heyecanlı DNA bağlayıcı boya ve floresan-aktive hücre sıralama kullanarak, bir birçok downstream uygulamaları için son derece zenginleştirilmiş spermatojenik hücre popülasyonları izole edebilirsiniz.

Mor-Heyecanlı Hücre-Geçirgen DNA Bağlayıcı Boya Kullanılarak Murine Spermatojenik Hücrelerin İzolasyon

Burada, farelerde yuvarlak spermatid enjeksiyonu (ROSI) gerçekleştirmek için bir yöntem sunuyoruz, umut verici klinik uygulamaları olan ve embriyonik gelişimin altında yatan mekanizmaları araştırmak için faydalı bir teknik.

Fare Yuvarlak Spermatid Enjeksiyonu

Öğrenin fare testislerinden spermatojenik hücre tiplerini STA-PUT hız sedimentasyonu ile boyut ve yoğunluk farklarına göre ayırma yöntemini. Bu teknik yüksek saflıkta hücre izolasyonu sağlar.

STA-PUT Hız Sedimentasyon kullanma spermatogenic Hücre Tiplerinin Ayrılması

Daha fazla video keşfet