Name: Gözlem ve telomer Niceleme ve Tekrarlayan Diziler kullanma Floresan In Situ ile hibridizasyon (FISH) Caenorhabditis elegans (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 1 s
Description: Öğrenin, Caenorhabditis elegans'ta FISH tekniği ile telomer uzunluğu ve sayısını 24 saatten kısa sürede görselleştirin ve nicelendirin. Bu yöntem kanser araştırmaları için hücresel yaşlanma ve tümör rejenerasyonu çalışmalarına katkı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Mutant solucan suşları, Caenorhabditis Genetik Merkezi tarafından nazikçe sağlandı. Bu araştırma, Kore Cumhuriyeti Sağlık ve Refah Bakanlığı tarafından finanse edilen Kore Sağlık Endüstrisi Geliştirme Enstitüsü (KHIDI) aracılığıyla Kore Sağlık Teknolojisi Ar-Ge Projesi'nin bir hibesi ile desteklenmiştir (hibe numarası: HI14C1277).

PCR ile, Digoksigenin-dUTP ile 1. etiketleme probları <ol><li> Daha önce tarif edildiği gibi 13 10x dNTP karışımı digoksijenin-dUTP ihtiva eden PCR etiketlenmesi. </li><li> üreticinin talimatlarına uygun olarak yan kolon kromatografisi ile PCR ürünü saflaştırılır. <ol><li> Prob daha kısa 200 bp takdirde, reaksiyon karışımından yan sütun kromatografisi yerine spin kolon saflaştırılması serbest digoksijenin-dUTP çıkarın. </li></ol></li></ol> 2. Hazırlama Polilisin Kaplı Slaytlar Not: Tüm işlem yaklaşık 2 saat sürer. adımların çoğu kurutma adımı hariç, oda sıcaklığında gerçekleştirilir. <ol><li> slaytlar temizlik <ol><li> plastik bir kap slaytlar yerleştirin ve kısaca damıtılmış su (DW) ile slaytlar durulayın. suyu çıkarmak ve DW% 1 cam temizleyici içeren kabı doldurun. </li><li> Oda sıcaklığında 50 rpm&#39;de (RT) 15 dakika boyunca slaytlar çalkalayın. DW 3 slaytlar yıkayınOda sıcaklığında her biri 5 dakika için süre. </li><li> çalkalama ile 15 dakika boyunca% 70 etanol ile slaytlar yıkayın. % 70 etanol atın ve 15 dakika için 65 ° C kuru blok ve kuru hava slaytlar yerleştirin. </li></ol></li><li> Çok iyi cam slaytların polilisin kaplama Not: boyama işlemi boyunca örnek yapışma sağlar çünkü slayt cam Polilisin kaplama, önemli bir adımdır. Kötü kaplanmış slayt örnek kaybına neden olacaktır. <ol><li> % 0.01 polilisin stok solüsyonu seyreltik (a / h), distile su içinde. seyreltilmiş,% 0.01 20 ul temiz bir cam slayt oyuklarına (ağırlık / hacim) polilisin ekleyin. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca cam slayt inkübe edin. </li><li> 1 saat için 65 ° C kuru blok ve kuru hava slaytlar yerleştirin. </li><li> tozsuz kutuya polilisin slaytlar saklayın. </li></ol></li></ol> Slayt Camına Worms 3. Sabitleme (Şekil 1) <ol><li> FISH için hazırlanıyor embriyolar Not: Hasat solucanlar tüm t önceO bakteriyel gıda mikroskop altında büyüme ortamı izleyerek tüketilmektedir. Açlık erişkin solucanlar yumurta üretimini azaltır ve yumurta taramayı artırır. Ayrıntılı yöntemler, 14,15 tarif edilmiştir. <ol><li> Standart yöntemlere 14 göre 50 mm Petri-çanak solucanlar büyütün. </li><li> tüm bakteriyel gıda tüketilen sonra spatula ile çeyrek agar ortamı kesti. bulaşmasını önlemek için kesmeden önce spatula sterilize edin. </li><li> 100 mm nematod büyüme ortamı (NGM) plaka üzerinde agar tüm parçası koyun. Taze bakteriyel gıda ulaşmak için solucanlar için baş aşağı agar parça çevirin. </li><li> 48 saat 72 sonra M9 tamponu ile solucanlar toplamak. NGM plaka üzerinde M9 tampon 5 ml - 3 ekleyin. NGM yüzeyinde Pipet M9 tampon solucanlar yıkayın. </li><li> solucanlar sıvıyı toplamak ve 15 ml&#39;lik bir tüpe ilave edin. Not:% 30 sukroz çözeltisi içinde hasat santrifüj solucanlar sonra agar bir pislik değilse. kalıntı pellet haline iken, solucanlar üzerinde yüzeryüzey. </li><li> 15 ml hacmi telafi etmek M9 tampon ekleyin. 3 dakika boyunca 300 x g&#39;de santrifüj ile solucanlar pelet ve M9 tampon en çıkarmak. Bu adımı 2 kez daha tekrarlayın. Not: Solucanlar hala santrifüj sonra yüzen ise, santrifüj fren seviyesi = 1 değerine ayarlayın. </li><li> Aspire M9 tampon. solucanlar ağartma çözüm ekleyin. solucanlar 0.5 ml başına 5 M KOH 6,5 DW ml, hipoklorit 2 mi, 1 ml ilave edilir. </li><li> 50 rpm&#39;de 3 dakika boyunca oda sıcaklığında çalkalanarak solucanlar inkübe edin. 15 saniye vorteks solucanlar mekanik solucanlar kesme ve yumurta ortaya çıkarmak. </li><li> beyazlatma sırasında bir diseksiyon mikroskobu altında tüp gözlemleyin. solucanlar yarıda kesilir ve yumurta serbest olduğundan emin olun. Yetişkin vücudunda en çözülür, 15 ml hacim oluşturan M9 tampon eklemek. </li><li> 3 dakika boyunca 300 x g&#39;de santrifüjleyin. Aspire M9 en ve 15 ml hacmi telafi etmek için taze M9 tampon ekleyin. Tekrarlayın yıkama adımı 3 kez. Not:Onlar ağartma sürecini engelleyen olarak, solucanlar aşırı miktarda kullanmaktan kaçının. az 8 dk yıkama kadar toplam reaksiyon süresini tutun. Aşırı ağartılmış yumurta güçlü otofloresans üretir. </li><li> 200 ul% 2 PFA yapmak için% 4 paraformaldehid (PFA), 200 ul kadar polisorbat-20 (PBST) ile fosfat tamponlu tuzlu su ekleyin. Dikkat: PFA kanserojen olduğundan, PFA kullanmadan önce koruyucu giysi, eldiven ve göz maskesi kullanınız. </li><li> polilizin kaplı slayt kuyusuna üzerine% 2 PFA yumurta 40 ul ekleyin. </li><li> nemli bir oda içinde slaytlar yerleştirin ve oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edilir. slaytlar içine yerleştirilir hemen sonra nemli odasına kapatın. Not: Sabit olurken yumurta slayt altına yerleşmek. </li></ol></li><li> FISH için disseke gonadlar hazırlanması <ol><li> Hasat yetişkin kurtlar M9 1 ml tampon pipetleme 50 mm NGM plaka üzerinde büyütülür. Bakteriyel gıda önce hasat solucanlar tükenmiş. </li><li> herhangi bir bakteri zekâ solucanlar yıkayınh M9 tampon, 2 kez. Not: Artık bakteri polilisin kaplı slaytlar yapışmasını disseke gonadlar ile etkileşime girebilir. </li><li> 300 x g santrifüj ile solucanlar Pelet. M9 çıkarın ve mikropipet ile boş NGM plaka solucanlar aktarın. </li><li> polilisin tedavi slayt bir kuyunun 2 mM levamizol içeren M9 tampon 30 ul ekleyin. </li><li> 1 ml tüp M9 tampon 500 ul ekle. ağız pipet ile solucanlar aktarmak için bu tampon kullanın. </li><li> M9 tampon içeren 1 ml tüp bir kılcal koyarak M9 tamponu ile ağız pipet ucu doldurun. </li><li> Solucanların kafa ağız pipet girer, böylece diseksiyon mikroskobu altında, sadece yetişkin solucan ve sürükleme ağız pipet başın önünde ağız pipet ucu koydu. Solucanların baş ucu girdiğinde, solucanın tüm vücut ucu içine çekilecektir. </li><li> ağız pipet kullanarak polilisin kaplı slayt solucanlar aktarın. </li><li> kesmek, bir jilet kullanarakkafa veya slaytta solucanlar kuyruk ucu f. solucan kesildiğinde, gonadlar dışarı çıkacaktır. Gonadlar slaytlar sopa olacak. <ol><li> bir kuyuda en az 30 solucanlar hazırlayın. Daha fazla kuyu bir 30 solucanlar için kullanılabilir. </li></ol></li><li> Nemli odasında slayt koymak ve ağız pipet ile M9 tampon aspire. </li><li> nemli odada 15 dakika boyunca oda sıcaklığında% 2 PFA 20 ul ekleyerek örnek sabitleyin. </li></ol></li></ol> 4. Sabitleme ve Permeabilization <ol><li> kuru buz üzerinde bir alüminyum blok yerleştirin ve derin dondurucuda saklayın (-80 ° C). -20 ° C&#39;de saklayın, metanol ve aseton. </li><li> PFA fiksasyon adımı 3.1.15 veya 3.2.11 sonra ~ sabitleştirici 5 ul mikropipet bırakarak kullanarak fiksatif kaldırın. </li><li> Örnek slaytta başka polilisin kaplı slayt koyun. çözüm aşırı ise kağıt havluyla Fiksatif çıkarın. Onlar araya sıkışmış bir kez slaytlar hareket ettirmeyin. </li><li> slaytlar FreezeEn az 15 dakika süreyle alüminyum bloğunun üzerine. Not: Örnekler, en az 2 saklanabilir - 3 gün. </li><li> slaytlar dondurulmuş edilirken, buz üzerinde soğuk metanol ve aseton içeren kavanoz koydu. </li><li> slaytlar almak ve örnek dondurarak çatlamak bükün. Üst slayt atın. Hemen 5 dakika boyunca buz soğukluğunda metanol içine slayt ıslatın. </li><li> 5 dakika boyunca buz soğukluğunda aseton slaytlar aktarın. </li><li> Kalıntı fiksatif kaldırmak için 5 dakika boyunca slaytlar PBST ile 3 kez yıkayın. Bir sonraki adıma geçin ya da 4 ° C&#39;de% 100 etanol slaytlar saklayın. Not: Örnekler, en az 2 saklanabilir - 3 gün. </li></ol> Sabit Hücre 5. Melezleme <ol><li> (PBST 10 ug / ml RNase A ihtiva eden) RNaz çözeltisi 20 ul ekle. 1 saat boyunca 37 ° C&#39;de nemli bir oda içinde slayt inkübe edin. </li><li> polisorbat-20 (2x SSCT) her biri 15 dakika için 2x tuzlu su ve sodyum sitrat iki slayt yıkayın. </li><li> 20 eklemelezleştirme çözeltisi ul ve 37 ° C inkübatör nemli odasına koyun. 1 saat sonra, pipetleme hibridizasyon çözeltisi çıkarın. </li><li> hibridizasyon çözüm çıkarmadan önce, probu hazırlamak. Prob, çift sarmallı DNA&#39;dır, kuru bir blok üzerinde 5 dakika boyunca 95 ° C&#39;de ısıtılarak probları denatüre. ısıtıldıktan sonra, buz kısaca probu serin. </li><li> örnek probları içeren hibridizasyon çözeltisi 10 ul ekle. 2,000 DIG etiketli prob için, 1 bir oranda kullanım kesafeti: 200 PNA probu, 1 oranında kullanımı konsantrasyonu için. cam kapak ile örnek örtün. </li><li> ısı bloğu (80 ° C) su ile ıslatılmış kağıt havlu koyun. nem ve sıcaklık korumak için ısı bloğu üzerinde plastik bir kutu kapağını takın. </li><li> ısıtma bloğu sıcaklığı (80 ° C) stabil hale sonra ısıtılmış bir kağıt havlu üzerine Örnek slayt yerleştirin ve plastik kutu kapağı örnekleri kapsamaktadır. 3 dakika boyunca numune denatüre. </li><li> incgece boyunca 37 ° C&#39;de nemli bir oda içinde slaytlar Ubate. </li></ol> 6. yıkar ve İmmünofloresan <ol><li> 37 ° C hibridizasyon yıkama solüsyonu (2X SSC,% 50 formamid) ısıtın. </li><li> 5 dakika boyunca oda sıcaklığında iki kez PBST içinde örnek yıkayın. cam kapak çıkarın. </li><li> 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de hibridizasyon yıkama çözeltisi içinde örnek yıkayın. </li><li> 3 kez oda sıcaklığında PBST içinde Örnek slayt yıkayın. Not: oda sıcaklığında nemli odasında sonraki tüm adımları uygulayın. </li><li> Bloke etme çözeltisinin 20 ul ekle ve nemli oda içinde oda sıcaklığında 1 saat inkübe edin. </li><li> bloke etme çözeltisi çıkarın ve FITC ile birleşik anti-digoksigenin antikor çözeltisi (1: 200) ekleyin, oda sıcaklığında ya da gece boyunca 4 ° C&#39;de 3 saat karıştırıldı. </li></ol> 7. Montaj ve Gözlem <ol><li> 15 dakika her biri için PBST ile 2 kez örnek slayt yıkayın. </li><li> DAPI ile montaj çözümü 10 ul ekle. nazikçe cam kapak ve basın koyun. herhangi bir fazla çözeltiyiBir kağıt havlu ile. </li><li> montaj çözümü buharlaşmasını önlemek için, oje ile kapak cam kenarları mühür. </li><li> konfokal mikroskop altında uyun. yüksek arka plan ile embriyolar hariç. 20 çekirdekleri - 4 sahip bir alan üzerinde odaklanın. </li><li> 100X objektif lens ile üreticinin talimatlarına göre fotoğraf çekmek. Not: FITC için 488 nm lazer ile Cy3 için 555 nm lazer ile, DAPI için 405 nm lazer ile örnek Excite. </li></ol> Telomer Sinyal 8. sayısallaştırılması Not: Daha önce 16 açıklandığı gibi Kantitasyonu yapıldı. karşılaştırılacak olan tüm resimler maruz kalma süresi ve ışık kaynağı içeren aynı ortamda alınmalıdır. <ol><li> tif formatında görüntü vermek. </li><li> Indirin ve görüntü analiz yazılımı yükleyin. </li><li> Görüntü analiz yazılımı çalıştırın ve düğmeyi katılıyorum tıklayın. </li><li> Açık düğmesine tıklayın. görüntü dosyasını çift tıklatarak telomer FISH ile görüntüleri açın. </li><li> tıklayın[Değiştir] - [select işleme bölge], sol-tıklayın ve sürükleyerek ilgi seçin bölgesi. Non-spesifik boyama hariç. </li><li> [Optik yoğunlukları nokta] telomer sinyali ile kanalı seçin ve .txt dosyasına sonuçları kaydetmek için dosya adını girin - [tedbiri] tıklayın. Not: sonuçların sütun aşağıdaki sırayla şunlardır: spot Floresan, spot ve nokta alanının arka plan yoğunluğu. </li><li> değerleri kopyalamak ve spot floresan gelen spot arka plan yoğunluğu çıkarın. değerleri artık istatistiksel analiz edilebilir. </li></ol>

<ol><li>Reddel, R. R., Bryan, T. M., Murnane, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immortalized+cells+with+no+detectable+telomerase+activity.+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry-Moscow%22%5BJournal%5D)">Immortalized cells with no detectable telomerase activity. A review.</a> Biochemistry-Moscow. 62, 1254-1262 (1997).</li>
<li>Seo, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telomere+maintenance+through+recruitment+of+internal+genomic+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Telomere maintenance through recruitment of internal genomic regions.</a> Nat Commun. 6, 8189(2015).</li>
<li>Cesare, A. J., Reddel, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternative+lengthening+of+telomeres%3A+models%2C+mechanisms+and+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Alternative lengthening of telomeres: models, mechanisms and implications.</a> Nat Rev Genet. 11, 319-330 (2010).</li>
<li>Meier, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((trt-1+is+the+Caenorhabditis+elegans+catalytic+subunit+of+telomerase%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+Genetics%22%5BJournal%5D)">trt-1 is the Caenorhabditis elegans catalytic subunit of telomerase.</a> Plos Genetics. 2, 187-197 (2006).</li>
<li>Cawthon, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telomere+measurement+by+quantitative+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Telomere measurement by quantitative PCR.</a> Nucleic Acids Res. 30, 47(2002).</li>
<li>Raices, M., Maruyama, H., Dillin, A., Karlseder, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uncoupling+of+longevity+and+telomere+length+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Uncoupling of longevity and telomere length in C. elegans.</a> PLoS Genet. 1, 30(2005).</li>
<li>Southern, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+Specific+Sequences+among+DNA+Fragments+Separated+by+Gel-Electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Detection of Specific Sequences among DNA Fragments Separated by Gel-Electrophoresis.</a> Journal of Molecular Biology. 98, 503(1975).</li>
<li>Lee, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telomere+extension+by+telomerase+and+ALT+generates+variant+repeats+by+mechanistically+distinct+processes%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Telomere extension by telomerase and ALT generates variant repeats by mechanistically distinct processes.</a> Nucleic Acids Res. 42, 1733-1746 (2014).</li>
<li>Cheung, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-specific+telomere+length+revealed+by+single+telomere+length+analysis+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Strain-specific telomere length revealed by single telomere length analysis in Caenorhabditis elegans.</a> Nucleic Acids Res. 32, 3383-3391 (2004).</li>
<li>Shtessel, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caenorhabditis+elegans+POT-1+and+POT-2+repress+telomere+maintenance+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22G3%22%5BJournal%5D)">Caenorhabditis elegans POT-1 and POT-2 repress telomere maintenance pathways.</a> G3. 3, Bethesda. 305-313 (2013).</li>
<li>Duerr, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook+%28The+C.+elegans+Research+Community%29%22%5BJournal%5D)">Immunohistochemistry.</a> WormBook (The C. elegans Research Community). , (2006).</li>
<li>Phillips, C. M., McDonald, K. L., Dernburg, A. F. Cytological analysis of meiosis in Caenorhabditis elegans. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPhillips%2C+CM+%22Meiosis%3A+Volume+2%2C+Cytological+Methods%22">Meiosis: Volume 2, Cytological Methods</a>. , Springer. 171-195 (2009).</li>
<li>Emanuel, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+efficient+system+for+synthesis+of+non-radioactive+nucleic+acid+hybridization+probes+using+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+acids+research%22%5BJournal%5D)">Simple and efficient system for synthesis of non-radioactive nucleic acid hybridization probes using PCR.</a> Nucleic acids research. 19, 2790(1991).</li>
<li>Stiernagle, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintenance+of+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">Maintenance of C. elegans.</a> WormBook. , 1-11 (2006).</li>
<li>Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Ceron, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+Caenorhabditis+elegans+methods%3A+synchronization+and+observation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Basic Caenorhabditis elegans methods: synchronization and observation.</a> J Vis Exp. , e4019(2012).</li>
<li>Poon, S. S. S., Martens, U. M., Ward, R. K., Lansdorp, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telomere+length+measurements+using+digital+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Telomere length measurements using digital fluorescence microscopy.</a> Cytometry. 36, 267-278 (1999).</li>
<li>Ferreira, H. C., Towbin, B. D., Jegou, T., Gasser, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+shelterin+protein+POT-1+anchors+Caenorhabditis+elegans+telomeres+through+SUN-1+at+the+nuclear+periphery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The shelterin protein POT-1 anchors Caenorhabditis elegans telomeres through SUN-1 at the nuclear periphery.</a> J Cell Biol. 203, 727-735 (2013).</li>
<li>Lee, M. H., Schedl, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+in+situ+hybridization+of+dissected+gonads%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">RNA in situ hybridization of dissected gonads.</a> WormBook. , 1-7 (2006).</li>
<li>Tabara, H., Motohashi, T., Kohara, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multi-well+version+of+in+situ+hybridization+on+whole+mount+embryos+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">A multi-well version of in situ hybridization on whole mount embryos of Caenorhabditis elegans.</a> Nucleic Acids Res. 24, 2119-2124 (1996).</li>
<li>Poon, S. S., Lansdorp, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fluorescence+in+situ+hybridization+%28Q-FISH%29%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Quantitative fluorescence in situ hybridization (Q-FISH).</a> Curr Protoc Cell Biol. 18, Unit 18 14(2001).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Protokolde ana avantajı, hücresel yapının morfolojisine fark zarar vermeden prosedür basitliğidir. Birkaç adım C için optimize edildi Bu protokolde elegans BALIK. Başarılı FISH için kritik adımlar probların etiketleme, embriyo ve penetrasyon tespit sayılabilir. Digoksigenin dUTP etiketleme yöntemi PCR ya da nik-çevirisi ile kolay kullanımlı etiketleme yöntemi temin etmektedir. Uzun hedef dizisi etiketlemek için, nick-çeviri tercih edilir. Bu durumda, sondalar sondaların sızmasını kolaylaştırmak için uy...

Telomer olarak anormal füzyon ve bozulma kromozomal uçları korur. Memeli telomer G bakımından zengin heksamerik tekrarlar, TTAGGG ve shelterin kompleksleri oluşur. nematodun telomer tekrar dizisi memelilerde (TTAGGC) benzer olan. Çoğu ökaryotlar kendi kromozom uçları telomer tekrarlar eklemek için telomeraz kullanmaktadır. Ancak, 10 - kanser hücrelerinin% 15 Telomerlerin (ALT) 3 Alternatif uzatma olarak bilinen telomeraz bağımsız bir mekanizma kullanmaktadır. Daha önce, telomer tekrarlar ve tAlt olarak adlandırılan ilişkili diziler, kritik sterilite 2 hayatta telomeraz mutant soylarının telomerlerin amplifiye bildirmiştir. Telomer uzunluğu kantitatif PCR veya toplam telomerlerin 4,5,6,7 ortalama uzunluğu içerir Southern blot ile ölçülmüştür. Tüm genom dizileme verileri telomer tekrarın Oku sayısı da toplam telomer içeriğinin 8 bir göstergesidir. Sin rağmengle telomer uzunluğunun Analizi (STELA) tek bir telomer uzunluğu, bu telomerlerin 9 mekansal bilgi sağlayamaz sağlayabilir. POT-1 :: MCherry muhabiri protein in vivo telomerlerin mekansal bilgi sağlarken POT-1 proteini 10 bağlayıcı tek iplikli telomer olduğu gibi, bu çift sarmallı telomer uzunluklarını temsil edemez. Yukarıda bahsedilen yöntemler dizilerin ortalama bilgi sağlar birlikte, in situ hibridizasyon (FISH) floresan kromozomal ölçekte miktarı ve ilgi duyulan tek tek dizilerin uzamsal desen gözlemlenebilir. Bunun yerine DNA saflaştırma, doku ya da hücre FISH nativ uzamsal bilgiler korumak için sabitlenir. Böylece, BALIK gibi telomer tekrarlar gibi bireysel tekrar dizilerinin, gözlem için bir nicel ve nitel bir araçtır. Bu protokol, hem Telo eş zamanlı saptanması için etkili bir yöntem sağlarsadece ve diğer tekrarlar daha önce açıklanan yöntemlerden 11,12 den iyileştirmeler dayalı. C. elegans larvaları veya yetişkin yüksek farklılaşmış hücreler ile çok hücreli organizma bulunmaktadır. hücrelerin heterojen telomer noktalar sayıda kantitatif analizi engellemektedir. analiz hücrelerin sayısını arttırmak için, embriyolar izole ve FISH için polilisin ile kaplanmış dilimlerin üzerine yayılırlar. Buna ek olarak, bu protokol, aynı zamanda, bağışıklık ile kombine edilebilir. protokol çalışan bir kanıtı olarak, biz gözlemlemek ve iki farklı tekrarlayan dizileri ölçmek mümkün olduğunu göstermektedir. TALT1 karşı DNA probu basit PCR digoksijenin-dUTP birleşmeyle ile üretilmiştir. Daha sonra, bu TALT1 probu ve floresan işaretli telomer PNA probu aynı zamanda hibridize edildi. Daha sonra, digoksigenin kanonik immünofloresan yöntem ile tespit edilmiştir. Biz burada TALT1 TRT-1&#39;de telomer ile kolokalize temsili görüntüler sunmak </em&gt; kurtulanlar.

<table><tbody><tr><td>PNA probu</td><td>PANAGENE</td><td>özel sipariş</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Digoxigenin-Fluorescein, Fab parçaları</td><td>Roche</td><td>11207741910</td> PBST Digoxigenin-dUTP Roche 11573152910 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sığır serum albümini</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>A-7906</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>P-6148'de</td> <td>seyreltilmiş 1:200 kullanınbirkaç damla NaOH ile DW'de ısıtarak% 4 paraformaldehit hazırlayın. 0.1 hacim 10x PBS ekleyin.</td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Vektör Laboratuvarları</td><td>H-1200</td><td></td></tr><tr><td>Hibridizasyon çözeltisi</td><td></td><td></td><td>3x SSC, %50 formamid, %10 (a/h) dekstran sülfat, 50 &# 956; g/ml heparin, 100 &# 956; g/ml maya tRNA'sı , 100 &# 956; g / ml sonikasyonlu somon sperm DNA</td></tr><tr><td>Hibridizasyon yıkama çözeltisi</td><td></td><td></td><td>2x SSC,% 50 formamid</td></tr><tr><td>Formamid</td><td>BIONEER</td><td>C-9012</td><td>toksik</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Carlo Erba</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aseton</td><td>Carlo Erba</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>H3393</td><td>stok çözeltisi için 10 mg / ml yapmak</td></tr><tr><td>Dekstran sülfat</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>67578</td><td></td></tr><tr><td>10x PBS</td><td></td><td></td><td>1 L DW için: 80 g NaCl, 2.0 g KCl, 27 g Na2HPO4&#8226; 7H2O, 2,4 g KH2PO</td></tr><tr><td>PBST</td><td></td><td></td><td>1x PBS, %0,1 ara-20</td></tr><tr><td>Polisorbat 20</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>P-2287</td><td>Ticari adı Tween-20'dir</td></tr>. <tr><td>Poli-L-Lizin çözeltisi (%0,1 a/h)</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>P-8920</td>, <td>kullanmadan önce %0,01 w/v solüsyon hazırlar</td></tr><tr><td>M9</td><td></td><td></td><td>3 g KH<alt>2PO4, 6 g Na2HPO4, 5 g NaCl, 1 ml 1 M MgSO4, H2O ila 1 L</td></tr><tr><td>Ağartma çözeltisi</td><td></td><td></td><td>% 20 sodyum hipoklorit, 0.5 M KOH</td></tr><tr><td>Antikor tamponu</td><td></td><td></td><td>1x PBST, 1 mM EDTA, %0.1 BSA, %0.05 Sodyum azid (toksik)</td></tr><tr><td>Bloke edici çözelti</td><td></td><td></td><td>%5 sığır serum albümini (BSA) içeren antikor tamponu)</td></tr><tr><td>illustra Microspin G-50</td><td>GE healthcare</td><td>27-53310-01</td><td></td></tr><tr><td>20x SSC</td><td></td><td></td><td>1 L, 175.3 g NaCl, 88.2 g sodyum sitrat, H2O ila 1 L yapmak için, pH'ı 7.0'a ayarlayın</td></tr><tr><td>2x SSCT</td><td></td><td></td><td>2x SSC, %0.1 ara-20</td></tr><tr><td>10x digoksigenin-dUTP karışımı</td><td></td><td></td><td>1 mM dATP, 1 mM dGTP, 1 mM dCTP, 0.65 mM dTTP, 0.35 mM DIG-11-dUTP</td></tr><tr><td>PCR saflaştırma kolonları</td><td>Cosmo genetech</td><td>CMR0112</td><td></td></tr><tr><td>Cam temizleyici / ULTRA CLEAN</td><td>Dukssan saf kimyasallar</td><td>8AV721</td><td></td></tr><tr><td>Çok kuyulu cam slayt</td><td>MP biyomedikal</td><td></td><td></td>96041205</tr><tr><td>Nematod büyüme ortamı</td><td></td><td></td><td>1 L, 3 g NaCl, 17 g agar, 2.5 g pepton, H2O ila 974 ml yapmak için. Şişeyi otoklavlayın ve soğutun. Etanolde 1 ml 1 M CaCl2, 1 ml 4 mg / ml kolesterol, 1 ml 1 M MgSO4, 25 ml 1 M KPO4 ekleyin.</td></tr>Objektif lens olarak <tr><td>levamisol</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>196142</td><td></td></tr><tr><td>Razor</td><td>Feather</td><td>bıçak No. 11</td><td></td></tr><tr><td>Rnase A</td><td>Enzimomik</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>Konfokal mikrosop,</td><td>Zeiss</td><td>LSM 510</td><td>EC Plan-Neofluar 100X kullanıldı.</td></tr><tr><td>Nem odası</td><td></td><td></td> DW Görüntü Analiz <td>Yazılımı'na batırılmış kağıt havluyla doldurulmuş plastik kutu</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Dr. Peter Landsdorp</td><td>TFL-telo</td><td><a href="http://www.flintbox.com/public/project/502">http://www.flintbox.com/public/project/502</a></td></tr></tbody></table>

gözlem ve telomer niceleme ve tekrarlayan diziler kullanma floresan<em&gt; in situ</empna sondalar&gt; ile hibridizasyon (fish)<em&gt; caenorhabditis elegans</em

Observation and Quantification of Telomere and Repetitive Sequences Using Fluorescence In Situ Hybridization (FISH) with PNA Probes in Caenorhabditis elegans

Telomer, kromozomal uçları anormal füzyon ve bozulmadan koruyan bir ribonükleoprotein yapısıdır. Telomer uzunluğu, telomeraz veya telomerlerin alternatif uzatılması (ALT)1 olarak bilinen alternatif bir yol ile korunur. Son zamanlarda, C. elegans, telomer ve ALT2 çalışmaları için çok hücreli bir model organizma olarak ortaya çıkmıştır. Genomdaki tekrarlayan dizilerin görselleştirilmesi, telomerlerin biyolojisini anlamada kritik öneme sahiptir. Telomer uzunluğu, telomer kısıtlama fragmanı testi veya kantitatif PCR ile ölçülebilirken, bu yöntemler yalnızca ortalama telomer uzunluğunu sağlar. Aksine, floresan in situ hibridizasyon (FISH), hücrelerdeki bireysel telomerlerin bilgisini sağlayabilir. Burada, floresan in situ hibridizasyon ile C. elegans'ın telomer uzunluğunu belirlemek için yöntemin protokollerini ve temsili sonuçlarını sunuyoruz. Bu yöntem, morfolojide gözle görülür bir hasara neden olmayan basit ama güçlü bir yerinde prosedür sağlar. Floresan etiketli peptit nükleik asit (PNA) ve digoksigenin-dUTP işaretli prob kullanarak, iki farklı tekrarlayan diziyi görselleştirebildik: telomer tekrarları ve C. elegans embriyolarında ve gonadlarında ALT (TALT) şablonu.

Daha önce ALT kurtulan içten &#39;ALT Şablon&#39; (tAlt) telomer bakım 2 dizileri lokalize çoğaltarak düşük frekansta, trt-1 (ok410), telomeraz eksikliği mutant ortaya çıkabileceği bildirildi. PNA probu kullanılarak, biz disseke gonadlar (Şekil 2A) &#39;de telomer görselleştirmek için başardık. Soluk telomer sinyali TRT-1 (ok410) ve ALT kurtulan hem de tespit edildi. Bulanık sinyal onlar otofloresans olmayabilir düşündüren, sadece DAPI ile üs...

Tekrarlayan dizileri gözlemlemek ve ölçmek için Caenorhabditis elegans'ın gonadında ve embriyolarında kısa bir floresan in situ hibridizasyon (FISH) prosedürü rapor ediyoruz. Telomer tekrarları ve telomerlerin alternatif uzama şablonu (TALT) olmak üzere iki farklı tekrarlayan diziyi başarıyla gözlemledik ve ölçtük.

Gözlem ve telomer Niceleme ve Tekrarlayan Diziler kullanma Floresan<em&gt; In Situ</emPNA Sondalar&gt; ile hibridizasyon (FISH)<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Telomere is a ribonucleoprotein structure that protects chromosomal ends from aberrant fusion and degradation. Telomere length is maintained by telomerase ...

Bu floresan in situ hibridizasyon tekniğinin genel amacı, C.Elegans'taki telomer sayısını ve uzunluğunu kısa sürede analiz etmektir. Bu yöntem; tümör rejenezi, telomerlerin alternatif uzaması ve hücresel yaşlanma hakkındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, prosedürlerin kısa olması ve telomerlerin 24 saatten kısa bir sürede görselleştirilip miktarının belirlenebilmesidir.Gravid yetişkin solucanları, kalıntı içermeyen az miktarda sıvı besiyeri ile birlikte 15 mililitrelik bir tüpe toplayın. Şimdi solucanları aşağıdaki şekilde üç kez yıkayın. Toplam hacim 15 mililitre olacak şekilde M9 tamponu ekleyin.Ardından tüpü 300 G'de üç dakika boyunca santrifüjleyin ve solucan peletinin üzerindeki solüsyonu atın. Sonra işlemi tekrarlayın. Eğer santrifüjasyon sonrası solucanlar yüzüyorsa, santrifüjün frenini hafifletin.Üçüncü yıkamadan sonra, solucanları 5 mililitre M9 içerisinde bırakın. Ardından 6,5 mililitre distile su, iki mililitre hipoklorit ve bir mililitre beş molar potasyum hidroksit ekleyin. Solucanları bu ağartma solüsyonunda, 50 RPM karıştırma ile üç dakika boyunca inkübe edin. Daha sonra, solucanları parçalayıp yumurtalarını serbest bırakmak için vorteksleyin.Bir diseksiyon mikroskobu altında, serbest kalan yumurtaları arayın. Eğer henüz serbest kalmadılarsa, inkübasyona sekiz dakikaya kadar devam edin. Solucanlar çoğunlukla çözünmüşse ve yumurtalar serbest kalmışsa, tüpü M9 ile 15 mililitreye tamamlayın ve yumurtaları, tıpkı solucanların daha önce yıkandığı gibi üç kez yıkayın.M9'un çoğunluğu uzaklaştırılmış yıkanmış yumurtaların hacmini PBST ile 500 microliter'e tamamlayın ve ardından 500 microliter %4 PFA ekleyin. Şimdi, %2 PFA içindeki 40 microliter'lik yumurta alikotlarını polilizin kaplı lamların kuyucuklarına yükleyin. Ardından lamları nemlendirilmiş bir hazneye aktarın ve oda sıcaklığında 15 dakika boyunca inkübe edin.Bu protokol için, kuru buz üzerinde 80 °C'de saklanan bir alüminyum blok hazırlayın. Ayrıca, metanol ve asetonu 20 °C'de saklayın. Fiksasyon adımı tamamlandıktan sonra, lamlar üzerindeki PFA solüsyonunun büyük kısmını uzaklaştırın ve yaklaşık 5 µL bırakın.Ardından, iki kaplı yüzey birbirine yapışacak ve dokuları kuyucukta hapsedecek şekilde, her örnek lamının üzerine ikinci bir polilizin kaplı lam yerleştirin. Eğer fazla fiksatif varsa, bir mendil yardımıyla temizleyin. Şimdi, lamları en az 15 dakika boyunca soğuk alüminyum blok üzerinde tutarak dondurun.Bu sırada, lamlar için buz üzerinde metanol ve aseton banyoları hazırlayın. Lamlar donduğunda, örneği dondurarak çatlatmak için lamlardan birini çevirin. Üstteki lamı atın ve alttaki lamı beş dakika boyunca buz soğukluğundaki metanolde bekletin.Bunu tüm örnekler için uygulayın. Dondurarak çatlatma işlemi, probların ve antikorların sert yumurta kabuğundan içeri sızmasını sağlar. Yumurtalar başarıyla dondurularak çatlatıldıysa, yumurtaları her iki lam üzerinde de görebilirsiniz.Metanolda en az beş dakika beklettikten sonra, lamları beş dakika boyunca soğuk asetona aktarın. Beş dakika sonra, örnekleri her bir yıkama beş dakika sürecek şekilde üç kez PBST içinde bekletin. PBST yıkamalarının ardından lamlar, dört derece celsius sıcaklıkta %100 etanol içinde birkaç gün boyunca saklanabilir.Devam etmek için, örnek kuyucuklarına 20 µL RNaz çözeltisi ekleyin ve bunları nemlendirilmiş bir bölmede 37 °C'de bir saat boyunca inkübe edin. Ardından, lamları 2x SSCT içerisinde, her yıkama 15 dakika sürecek şekilde iki kez yıkayın. İki yıkama işleminin ardından, örneklere 20 µL hibridizasyon çözeltisi ekleyin ve bunları nemlendirilmiş bir bölmede 37 °C'de bir saat boyunca inkübe edin.Bu sırada, çift zincirli bir DNA probu için probu hazırlayın. Probu 95 °C'de beş dakika boyunca denatüre edin ve ardından kısa bir süre buz üzerinde soğutun. Bir saat sonra, hibridizasyon solüsyonunu aspire edin ve prob solüsyonunu ekleyin.Bu adımdan itibaren örneği ışıktan koruyun. Probu ekledikten sonra örnekleri lamellerle kapatın. Ardından 80 °C'lik bir ısı bloğu üzerinde nemlendirilmiş bir hazne oluşturun.Isıtıcı blok tekrar 80 °C'ye sabitlendiğinde, örnek lamlarını ısıtılmış bölmeye yerleştirin ve üç dakika boyunca denatüre olmalarını bekleyin. Ardından, işlenmiş tüm lamları nemlendirilmiş bir bölmede 37 °C'de gece boyunca inkübe edin. Gece boyu süren inkübasyonun ardından, örnekleri oda sıcaklığında beş dakika boyunca PBST ile yıkayın.Hazırlık aşamasında, hibridizasyon çözeltisini yıkama işleminden bir saat önce 37 °C'ye ısıtın. Ardından lamları bir hibridizasyon yıkama çözeltisi kavanozuna yerleştirin ve 30 dakika boyunca 37 °C'de inkübe edin. Hibridizasyon çözeltisini uzaklaştırmak için örnekleri oda sıcaklığında 15 dakika boyunca PBST ile yıkayın.Bu işlemi üç kez tekrarlayın. Son PBST yıkamasını aspire ettikten sonra, her örneğe 20 µL bloklama çözeltisi ekleyin ve örnekleri nemlendirilmiş odacıklarda, oda sıcaklığında, karanlıkta bir saat boyunca inkübe edin. Ardından bloklama çözeltisini aspire edin ve yerine 1:200 oranında seyreltilmiş FITC konjugatlı anti-digoksinin antikor çözeltisi ekleyin.Slaytların üzerini kapatın ve oda sıcaklığında, karanlıkta üç saat boyunca inkübe edin. Antikor boyamasının ardından, örnekleri karanlıkta, her yıkama 15 dakika sürecek şekilde iki kez PBST ile yıkayın. Ardından PBST'yi aspire edin ve yerine DAPI içeren 10 µL montaj solüsyonu ekleyin.Bir lameli yerleştirin ve fazla solüsyonu emdirin. Son olarak, lamelin kenarlarını oje ile mühürleyin ve örnekleri floresan mikroskobu altında gözlemlemeye geçin. PNA probu kullanılarak, telomer-yeterli bir mutasyondan sağ kurtulan hayvanların telomerleri gözlemlenmiştir.Gonadlarda, çekirdek başına düşen telomer sayısı ölçülebilirdir. Telomer sinyalinin TALT1 sinyali ile aynı konumda olduğu görülmüş, bu da TALT1'in telomersiz hayatta kalmadan sorumlu olduğu düşüncesini desteklemiştir. Telomer sinyalinin yoğunluğu, yazılım kullanılarak karşılaştırılmıştır.Sinyal, telomer eksikliği olan mutantları oluşturmak için kullanılan ata suşlara kıyasla ALT sağkalanlarında daha güçlüydü. Paraformaldehit ve formamid ile çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini ve bu prosedür uygulanırken eldiven takmak gibi önlemlerin her zaman alınması gerektiğini unutmayın.

observation-quantification-telomere-repetitive-sequences-using

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Görüntüleme C. elegans Embriyolar Epifluorescent Mikroskop ve Açık Kaynak Yazılım

Temel<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Yöntem: Senkronizasyon ve Gözlem

Burada, sabit, bozulmamış nematodlarda genomik DNA'yı görselleştirmek için kullanılan bir tekniği açıklıyoruz. Video, döllenmemiş C. elegans oositlerindeki kromatini saymak için örnek bir protokol içerir.

Etanol Fiksasyonu ve DAPI Boyama: C. elegans'ta DNA'yı Görselleştirmek İçin Bir Yöntem

Kaynak: Pigazzini, M. L., et. al. Yaşlanmada Amiloid Yapıların Karakterizasyonu C. elegans{{}}. J. Vis. Uzm.  (2020). Bu video, C. elegans nöronlarında poliQ protein agregasyonunu değerlendirmek için floresan ömür boyu görüntüleme mikroskobunun (FLIM) kullanımını göstermektedir, kontrol ve şaperon protein eksikliği olan solucanları karşılaştırır. Şaperon eksikliği olan solucanlarda artan agregasyon, kümelenmiş floroforlar arasında enerji transferini teşvik ederek floresan ömrünü azaltır. FLIM...

Caenorhabditis elegans Nöronlarında PolyQ Protein Agregasyonunun Floresan Ömür Boyu Görüntülenmesi

Burada C. elegans'ta gelişimsel süreçlerin nasıl izleneceği ve nicelleştirileceği gösterilmektedir. Sunulan yöntemler, kolayca uygulanabilen açık kaynaklı araçlara dayanmaktadır. 3B hücre şekli modellerinin nasıl yeniden yapılandırılacağı, hücre altı yapıların manuel olarak nasıl izleneceği ve kortikal kasılma akışının nasıl analiz edileceği gösterilmiştir.

Gelişim Süreçleri İzleme ve nicel<em&gt; C. elegans</em&gt; Açık kaynak Araçlarını Kullanma

Burada, nematod Caenorhabditis elegans'ın embriyonik uzamasının erken ve geç aşamalarında meydana gelen morfojenik kusurları izlemek için özel olarak tasarlanmış protokolleri detaylandırıyoruz. Sonuç olarak, bu protokoller, bu fazları düzenleyen genleri tanımlamak ve embriyonun antero-arka ekseni boyunca diferansiyel gereksinimlerini karakterize etmek için tasarlanmıştır.

Roman Metrik Nematodu Embriyonik Uzama karakterize etmek<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Burada, de novo protein sentezini in vivo değerlendirmek için, fotobeyazrlama (FRAP) sonrası nematod Caenorhabditis elegans ve floresan kurtarma kullanan radyoaktif olmayan ve noninvaziv bir yöntem sınıyoruz ve tanımlıyoruz. Bu yöntem, protein sentezinin yeni modülatörlerini belirlemek için genetik ve/veya farmakolojik ekranlar ile kombine edilebilir.

Caenorhabditis elegans de novo Protein Sentez Oranlarının Değerlendirilmesi

Dinamik mikrotübüllerin floresan etiketli Uç bağlayıcı protein kullanılarak vivo olarak görüntülenmesi için bir protokol sunulmuştur. C. elegans'ınPosterior lateral mikrotübül (PLM) nöronunda dinamik mikrotübülleri etiketleme, görüntüleme ve analiz etme yöntemlerini açıkladık.

In vivo Caenorhabditis elegans Nöronlarında Mikrotübül Dinamiklerinin ve Oryantasyonunun Değerlendirilmesi

Hücre dışı bakteriler ve Orsay virüsü ve mikrosporidia (mantarlar) gibi hücre içi patojenler de dahil olmak üzere bağırsak mikropları genellikle vahşi Caenorhabditis nematodları ile ilişkilidir. Bu makalede, C. elegans nematodlarını kolonize eden ve/veya enfekte eden mikropların tespiti ve nicelleştirilmesi ve laboratuvarda kontrollü enfeksiyonlardan sonra patojen yükünün ölçülmesi için bir protokol sunulmaktadır.

Caenorhabditis elegans Bağırsaklarında Mikrobiyal Kolonizasyon ve Enfeksiyonu Görselleştirmek için RNA Floresan in situ Hibridizasyon (FISH)

Bu protokol, C. elegans'ta RNAi kaynaklı susturma ve ilişkili kromatin modifikasyonlarının epigenetik kalıtımını incelemek için bir RNA girişimini ve ChIP testini açıklar.

Nesiller Arası Epigenetik Kalıtımın Analizi C. elegans Floresan Raportör ve Kromatin İmmünopresipitasyon (ChIP) Kullanılarak

Burada, geniş alan mikroskobu görüntülerinde tek tek solucanların otomatik segmentasyonu için geliştirdiğimiz bir derin öğrenme sistemi olan SegElegans'ın daha sonra ImageJ gibi görüntü analiz yazılımlarında kullanılmak üzere etkin bir şekilde kullanılmasına ilişkin talimatlar sunuyoruz. Sistemi hem çevrimiçi hem de çevrimdışı kullanmanın yollarını sunuyoruz.

SegElegans Kullanarak C. elegans Floresan Görüntülerinin Otomatik Analizi

Öğrenin, Caenorhabditis elegans'ta FISH tekniği ile telomer uzunluğu ve sayısını 24 saatten kısa sürede görselleştirin ve nicelendirin. Bu yöntem kanser araştırmaları için hücresel yaşlanma ve tümör rejenerasyonu çalışmalarına katkı sağlar.

Gözlem ve telomer Niceleme ve Tekrarlayan Diziler kullanma Floresan

Daha fazla video keşfet