Name: Sıçan Cremasterın Muscle arteriyollerde Hücre-serbest Katman Görselleştirme ve (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 10 s
Description: Öğrenin sıçan cremaster kasında hücre-serbest katman görselleştirme ve ölçüm yöntemini. Bu teknik mikrohemodinamik araştırmalarda hücre-fili rolünü anlamak için tutarlı ve hızlı veri sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Ulusal Tıbbi Araştırma Konseyi (NMRC)/Kooperatif Temel Araştırma Hibesi (CBRG)/0078/2014 tarafından desteklenmiştir.

Bu çalışma Singapur Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (onaylanan protokole hayır. R15-0225) Ulusal Üniversitesi ile uyumludur. Hayvan Modeli 1. Cerrahi Hazırlık <ol><li> Gemi kanülasyonlar <ol><li> Erkek bir Sprague-Dawley sıçanları anestezi - ağırlığında (6 7 haftalık), (203 ± 20) intraperitonal yoluyla ketamin (37.5 mg / ml) ve ksilazin (5 mg / ml) kokteyli ile gr (ip) enjeksiyonu (2 ml / kg) . İğneyi tekrarlamak ya da enjeksiyondan sonra şırınga çıkarmayın. </li><li> hayvana anestezi yapıldıktan sonra (kıstırma ayak ile teyit), 37 ° C de vücut ısısını korumak için bir ısıtma pedi üzerine yerleştirin. Yavaşça skapula, ön serviks, alt karın, medial arka bacak ve skrotal kese saç tıraş. Yavaşça yapışkanlı kağıt bantlar kullanarak bacakları dizginlemek. </li><li> Mikrodiseksiyon makas ve açılı forseps ile izlerken kullanarak tüm cerrahi prosedürleri gerçekleştirinBir stereomikroskop. Ameliyat sırasında yaralanmayı önlemek için delinmeye karşı dayanıklı bir tepsiye tüm keskin cerrahi aletler yerleştirin. </li><li> kesi yapmadan önce tüm cerrahi siteleri alternatif iyot ve% 70 alkol ile 3 kez fırçalayın. 30 IU / ml heparin tuzlu su çözeltisi ile tüm kateterler yıkayın. </li><li> Sağ juguler ven üzerinde cerrahi makas kullanarak skapula üzerinde 1,5 cm orta hat cilt kesi - 1 yapın. juguler ven ortaya çıkarmak için künt diseksiyon ile fasya ayırın ve bir polietilen tüp (PE-50) 5-0 ipek sütür kullanılarak heparin tuzlu su ile dolu olan cannulate. Yan anestezi infüze gerektiğinde (1/3 başlangıç ​​dozunun 1/2, damar içine (IV)) cerrahi ve deney süresince. </li><li> havayolu açıklığını korumak için trakeostomi gerçekleştirin. anterior servikal bölgede 1,5 cm kesi - 1 yapın. yerine kateteri sabitlemek için 2-0 ipek dikişlerle bir polietilen tüp (PE-205) kullanılarak trakea cannulate. </li><li> Kan basıncını izlemekFemoral arter kanülasyonu yoluyla. arka bacak sol medial yüzeyi 1.5 cm&#39;lik kesi - 1 yapın. künt diseksiyon ile femoral arter ayırın. heparin tuz çözeltisi 5-0 ipek sütür kullanılarak doldurulmuş bir polietilen boru (PE-10), femoral arter kanüle. </li></ol></li><li> Cremaster kas Hazırlama ve Akış Görselleştirme <ol><li> bunu genişletmek için skrotal kese apeks yoluyla 5-0 ipek sütür yerleştirin. skrotal kese ventral yüzeyi boyunca bir kesi yapmak. maruz kas, düzenli sıcak izotonik solüsyonu (pH 7.4 37 ° C) uygulanır. </li><li> dikkatle ve iyice bağ dokuları çevreleyen pamuk uçlu aplikatör kullanarak kaldırın. </li><li> cremaster kas apeks yoluyla 5-0 ipek sütür yerleştirin. aynı uzunluktaki iki parçaya dikiş kesin ve her iki tarafta bir düğüm. İki düğüm arasındaki kas kesin ve hafifçe dikiş çekerek özelleştirilmiş şeffaf pleksiglas platformu üzerine germek. düzeltmekmavi yapışma ile platform üzerine sütür sonu. NOT: bağ dokuları çevreleyen iyice çıkarılması optimum görüntü kontrastını elde önemlidir. </li><li> 5 ila 6 tespitler yapılana kadar adımı tekrarlayın 1.2.3. Dikkatle yüksek sıcaklık koter kullanılarak Epididimden cremaster kasını çıkarın. doku kaybını önlemek için maruz kas sıcak izotonik Superfuse. <ol><li> gazlı katlanmış parçalar ile cremaster kasını Surround. polivinil film ile maruz kas örtün. Film ile gazlı bez parçaları su daldırma mikroskop objektif (Şekil 1A) için sıcak izotonik çözüm tutmak için sığ bir havza oluşturur. </li></ol></li><li> Intravital mikroskobu (Şekil 1C) hayvan sahneye hayvan aktarın. Sürekli basıncı izleme (Şekil 1E) için fizyolojik bir veri toplama sistemine arteriyel kanülasyon bağlayın. </li><li> kas temperat korumakHayvan platforma (Şekil 1B) altındaki bağlı bir ısıtma elemanı ile 35 ° C &#39;de ure. Isıtma elemanı (Şekil 1D) güç kontrolörü negatif geribildirim sağlamak için kas yanında bir sıcaklık probu yerleştirin. </li><li> 15 dk çevre ile dengelenmesi için sahnede hayvan bırakın. </li><li> 40X su daldırma objektif ve uzun çalışma kondansatör ile bir intravital mikroskop altında kan akışını gözünüzde canlandırın. </li><li> dallanmamış arteriolden RBC çekirdek arasında net bir görüntü odak ve kontrast dayalı (&lt;60 mikron) seçin, CFL ve damar duvarları, sırayla kan damarı çap düzleminde mikroskop odaklanmak. dikey damar duvarını hizalamak için mikroskop üzerine monte kamera döndürün. </li><li> 1 saniye 3000 / sn kare hızında yüksek hızlı video kamera kullanılarak kan akışını kaydedin. görüntü kalitesini korumak için sıkıştırılmamış 8-bit gri tonlama AVI biçimi olarak kaydedilen video kaydedin. NOT:<html> / Sn 3.000 kare en az kayıt hızı flüoresan ölçümü fizyolojik arteriolar akış koşulları altında en az bir defa her RBC ile gerçekleştirilebilir sağlamak için önerilir. </li><li> Eritrosit ve plazma arasındaki kontrastı arttırmak için 510 nm - 310 394 nm ve spektral bandpass dalga boyunda tepe şanzıman ile mavi filtre kullanın. NOT: mikroskobik ışık kaynağı (100 W halojen lamba) mavi filtreden geçen ışık spektrumu herhangi bir potansiyel doku hasarı önlemek için düşük ışık yoğunluğu olduğundan emin olun. </li><li> Deneyin sonunda, pentobarbital sodyum, aşırı dozda hayvan euthanize. </li></ol></li></ol> 2. Görüntü Analizi <ol><li> Flüoresan genişliği ölçümü için Ön işleme <ol><li> MATLAB açın ve &#39;CFL_pre.m&#39; dosyasını çalıştırın. (Bu ve diğer MATLAB dosyaları bulunabilirip &quot;&gt; Yan MATLAB Arşivi.) </li><li> analiz etmek, video dosyasını seçmek için &#39;Açık dosya&#39; tıklayın. </li><li> dikey damar duvarları hizalamak için &#39;rotasyon&#39; sürgüsünü ayarlayın. NOT: Kullanıcılar &#39;Izgara On&#39; radyo düğmesini seçerek damar uyum için yardımcı ızgara çizgileri görüntüler ve &#39;Zoom&#39; kaydırıcıyı kaydırarak görüntüyü yakınlaştırma düzeyini ayarlayabilirsiniz. </li><li> damar uyumu onaylamak için &#39;Onayla Düzenlenmesi&#39; butonuna tıklayın. </li><li> Faiz (ROI) bölgeyi tanımlamak için &#39;Set ROI ekine&#39; butonuna tıklayın. hizalanmış görüntü bir pop-up penceresi görüntülenir. görüntü üzerinde dikdörtgen hedefi ayarlayın ve çift ROI onaylamak için tıklayın. Görüntünün kırpma gerekli değilse bu adımı atlayın. NOT: Sadece gemiden CFL genişliği analiz etmek ROI tek bir gemi bulunmaktadır. Gerekirse, orijinal forma görüntüyü geri yüklemek için &#39;Reset Resim&#39; düğmesine tıklayın. </li><li> Tıkla9; &#39;(bmp&#39; biçiminde ardışık bit haritası görüntüleri 8-bit gri tonlama) içine tüm düzenlenmiş video kareleri ayıklamak için düğmeye &#39;Images ayıklayın. çıkarılan görüntüler seçilen video dosyası ile aynı adı taşıyan klasörde bulunabilir. </li></ol></li><li> Flüoresan genişliğinin ölçümü <ol><li> MATLAB açın ve &#39;CFL_measure.m&#39; dosyasını çalıştırın. </li><li> çıkarılan görüntüleri içeren klasörü seçmek için &#39;Klasör seç&#39; seçeneğini tıklayın. </li><li> görüntüleri içeren klasöre tıklayın ve &#39;Klasör seç&#39; seçeneğini tıklayın. klasördeki ilk görüntü karesi yüklenen ve &#39;Resim Histogram&#39; panelinde gri yoğunluk Histogram ile birlikte, &#39;Gri tonlama görüntü&#39; panelinde gösterilir. </li><li> analizi, aksi takdirde ilk görüntü karesi seçilecektir gerçekleştirmek için liste kutusundan istenen görüntü çerçevesini seçin. </li><li> yerde belirlenir görüntüde, iç damar duvarını tanımlamak için &#39;Gemi Duvarlar Bul&#39; tıklayın neredekaranlıktan ışık yoğunluğu profil tepe transit iki piksel üzerinde ışık. </li><li> &#39;Tuz ve biber&#39; gürültüyü azaltmak için görüntüye medyan filtre uygulamak için &#39;Medyan Filtre&#39; kontrol edin. </li><li> görüntü kontrastını arttırmak için dijital görüntü yoğunlukları ayarlamak için &#39;Otomatik Kontrast&#39; kontrol edin. </li><li> τ üzerinde gri düzeyleri (CFL) ve τ altında gri düzeyleri (RBC çekirdek) siyah pikseller beyaz piksel - iki sınıfa gri düzeyleri böler otomatik olarak bir eşik değeri (τ) belirleyen liste kutusunda bir eşik algoritmasını seçin. NOT: Otomatik-eşikleme algoritması hiçbiri uygun bir görüntü eşikleme sağlıyorsa alternatif bir yöntem olarak, manuel eşikleme kullanın. &#39;Elle&#39; radyo düğmesini tıklayın ve manuel eşikleme değeri tanımlamak için kaydırma çubuğunu ayarlayın. </li><li> (Çözünürlük, CFL genişlikleri mekansal değişimini ölçen &#39;piksel çözünürlük&#39; kutusuna piksel çözünürlüğünü girmek içinBu deney düzeneği ile 0.42 mm / piksel) idi. </li><li> CFL genişlikleri mekansal değişimi elde etmek için &#39;Hesapla&#39; düğmesine tıklayın. bir tablo formatında CFL genişliği veri vermek için &#39;İhracat .csv tıklayın. </li><li> kare hızı bilgilerini, geminin boyunca belirli bir analiz hattında CFL genişlikleri zamansal değişimini ölçen &#39;Temporal Varyasyonu&#39; radyo düğmesini tıklayın ve girmek için (bu deney düzeneği kullanılan kare hızını 3000 kare / sn idi). </li><li> sırasıyla, &#39;Frame başlat&#39; ve &#39;Son Frame&#39; kutulara ilk kareyi ve analiz için görüntülerin son karesini girin. </li><li> &#39;Analiz Line&#39; kaydırma çubuğunu kaydırarak geminin boyunca analiz hattının pozisyonunu seçin. &#39;Grayscale görüntü&#39; ve &#39;İkili görüntü&#39; hem gösterilmiştir analiz hattının, konumunu onaylayın. </li><li> CFL genişlikleri zamansal değişimini elde etmek için &#39;hesapla&#39; tıklayın. click &#39;İhracat .csv&#39; bir tablo formatında CFL genişliği veri vermek için. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Kim, S., Kong, R. L., Popel, A. S., Intaglietta, M., Johnson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+and+spatial+variations+of+cell-free+layer+width+in+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Temporal and spatial variations of cell-free layer width in arterioles.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 293 (3), H1526-H1535 (2007).</li>
<li>Ong, P. K., Namgung, B., Johnson, P. C., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+erythrocyte+aggregation+and+flow+rate+on+cell-free+layer+formation+in+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effect of erythrocyte aggregation and flow rate on cell-free layer formation in arterioles.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 298 (6), H1870-H1878 (2010).</li>
<li>Namgung, B., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+uneven+red+cell+influx+on+formation+of+cell-free+layer+in+small+venules%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">Effect of uneven red cell influx on formation of cell-free layer in small venules.</a> Microvasc Res. 92, 19-24 (2014).</li>
<li>Goldsmith, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Microcirculatory+Society%5BTitle%5D)+AND+%22Eugene+M.+Landis+Award+Lecture.+The+Microrheology+of+Human-Blood.+Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">The Microcirculatory Society.</a> Eugene M. Landis Award Lecture. The Microrheology of Human-Blood. Microvasc Res. 31 (2), 121-142 (1986).</li>
<li>Buerk, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Can+We+Model+Nitric+Oxide+Biotransport%3F+A+Survey+of+Mathematical+Models+for+a+Simple+Diatomic+Molecule+with+Surprisingly+Complex+Biological+Activities%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Can We Model Nitric Oxide Biotransport? A Survey of Mathematical Models for a Simple Diatomic Molecule with Surprisingly Complex Biological Activities.</a> Annu Rev Biomed Eng. 3 (1), 109-143 (2001).</li>
<li>Tateishi, N., Suzuki, Y., Soutani, M., Maeda, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+dynamics+of+erythrocytes+in+microvessels+of+isolated+rabbit+mesentery%3A+cell-free+layer+and+flow+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">Flow dynamics of erythrocytes in microvessels of isolated rabbit mesentery: cell-free layer and flow resistance.</a> J Biomech. 27 (9), 1119-1125 (1994).</li>
<li>Ong, P. K., Cho, S., Namgung, B., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+cell-free+layer+formation+on+NO%2FO2+bioavailability+in+small+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of cell-free layer formation on NO/O2 bioavailability in small arterioles.</a> Microvasc Res. 83 (2), 168-177 (2012).</li>
<li>Ong, P. K., Jain, S., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+NO+bioavailability+by+temporal+variation+of+the+cell-free+layer+width+in+small+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Modulation of NO bioavailability by temporal variation of the cell-free layer width in small arterioles.</a> Ann Biomed Eng. 39 (3), 1012-1023 (2011).</li>
<li>Park, S. W., Intaglietta, M., Tartakovsky, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+stochastic+fluctuations+in+the+cell+free+layer+on+nitric+oxide+bioavailability%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Comput+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Impact of stochastic fluctuations in the cell free layer on nitric oxide bioavailability.</a> Front Comput Neurosci. 9, 131(2015).</li>
<li>Ng, Y. C., Namgung, B., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-dimensional+transient+model+for+prediction+of+arteriolar+NO%2FO2+modulation+by+spatiotemporal+variations+in+cell-free+layer+width%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">Two-dimensional transient model for prediction of arteriolar NO/O2 modulation by spatiotemporal variations in cell-free layer width.</a> Microvasc Res. 97, 88-97 (2015).</li>
<li>Sriram, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+small+changes+in+hematocrit+on+nitric+oxide+transport+in+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxid+Redox+Sign%22%5BJournal%5D)">The effect of small changes in hematocrit on nitric oxide transport in arterioles.</a> Antioxid Redox Sign. 14 (2), 175-185 (2011).</li>
<li>Hightower, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+cardiovascular+regulation+by+the+blood%2Fendothelium+cell-free+layer%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip+Rev+Syst+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Integration of cardiovascular regulation by the blood/endothelium cell-free layer.</a> Wiley Interdiscip Rev Syst Biol Med. 3 (4), 458-470 (2011).</li>
<li>Ng, Y. C., Namgung, B., Leo, H. L., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythrocyte+aggregation+may+promote+uneven+spatial+distribution+of+NO%2FO+in+the+downstream+vessel+of+arteriolar+bifurcations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">Erythrocyte aggregation may promote uneven spatial distribution of NO/O in the downstream vessel of arteriolar bifurcations.</a> J Biomech. , (2015).</li>
<li>Ong, P. K., Jain, S., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+variations+of+the+cell-free+layer+width+may+enhance+NO+bioavailability+in+small+arterioles%3A+Effects+of+erythrocyte+aggregation%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">Temporal variations of the cell-free layer width may enhance NO bioavailability in small arterioles: Effects of erythrocyte aggregation.</a> Microvasc Res. 81 (3), 303-312 (2011).</li>
<li>Maeda, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythrocyte+rheology+in+microcirculation%5BTitle%5D)+AND+%22Jpn+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Erythrocyte rheology in microcirculation.</a> Jpn J Physiol. 46 (1), Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8743714">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8743714</a> 1-14 (1996).</li>
<li>Soutani, M., Suzuki, Y., Tateishi, N., Maeda, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Evaluation+of+Flow+Dynamics+of+Erythrocytes+in+Microvessels+-+Influence+of+Erythrocyte+Aggregation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Quantitative Evaluation of Flow Dynamics of Erythrocytes in Microvessels - Influence of Erythrocyte Aggregation.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 268 (5), Available from:
 <a target="_blank" href="http://ajpheart.physiology.org/content/268/5/H1959">http://ajpheart.physiology.org/content/268/5/H1959</a> H1959-H1965 (1995).</li>
<li>Kim, S., Kong, R. L., Popel, A. S., Intaglietta, M., Johnson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+computer-based+method+for+determination+of+the+cell-free+layer+width+in+microcirculation%5BTitle%5D)+AND+%22Microcirculation%22%5BJournal%5D)">A computer-based method for determination of the cell-free layer width in microcirculation.</a> Microcirculation. 13 (3), 199-207 (2006).</li>
<li>Soutani, M., Suzuki, Y., Tateishi, N., Maeda, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Evaluation+of+Flow+Dynamics+of+Erythrocytes+in+Microvessels%5BTitle%5D)+AND+%22Influence+of+Erythrocyte+Aggregation.+Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Quantitative Evaluation of Flow Dynamics of Erythrocytes in Microvessels.</a> Influence of Erythrocyte Aggregation. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 268 (5), H1959-H1965 (1995).</li>
<li>Namgung, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+of+histogram-based+thresholding+methods+for+the+determination+of+cell-free+layer+width+in+small+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Meas%22%5BJournal%5D)">A comparative study of histogram-based thresholding methods for the determination of cell-free layer width in small blood vessels.</a> Physiol Meas. 31 (9), N61-N70 (2010).</li>
<li>Ong, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+automated+method+for+cell-free+layer+width+determination+in+small+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Meas%22%5BJournal%5D)">An automated method for cell-free layer width determination in small arterioles.</a> Physiol Meas. 32 (3), N1-N12 (2011).</li>
<li>Otsu, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Threshold+Selection+Method+from+Gray-Level+Histograms%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans.+Syst.%2C+Man%2C+Cybern%22%5BJournal%5D)">A Threshold Selection Method from Gray-Level Histograms.</a> IEEE Trans. Syst., Man, Cybern. 9 (1), 62-66 (1979).</li>
<li>Prewitt, J. M., Mendelsohn, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+analysis+of+cell+images%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+N+Y+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">The analysis of cell images.</a> Ann N Y Acad Sci. 128 (3), 1035-1053 (1966).</li>
<li>Ridler, T. W., Calvard, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Picture+Thresholding+Using+an+Iterative+Selection+Method%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans.+Syst.%2C+Man%2C+Cybern%22%5BJournal%5D)">Picture Thresholding Using an Iterative Selection Method.</a> IEEE Trans. Syst., Man, Cybern. 8 (8), 630-632 (1978).</li>
<li>Shanbhag, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utilization+of+Information+Measure+as+a+Means+of+Image+Thresholding%5BTitle%5D)+AND+%22Cvgip-Graph+Model+Im%22%5BJournal%5D)">Utilization of Information Measure as a Means of Image Thresholding.</a> Cvgip-Graph Model Im. 56 (5), 414-419 (1994).</li>
<li>Bishop, J. J., Popel, A. S., Intaglietta, M., Johnson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+erythrocyte+aggregation+and+venous+network+geometry+on+red+blood+cell+axial+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of erythrocyte aggregation and venous network geometry on red blood cell axial migration.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 281 (2), H939-H950 (2001).</li>
<li>Yamaguchi, S., Yamakawa, T., Niimi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+plasma+layer+in+cerebral+microvessels%5BTitle%5D)+AND+%22Biorheology%22%5BJournal%5D)">Cell-free plasma layer in cerebral microvessels.</a> Biorheology. 29 (2-3), 251-260 (1992).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir rakip mali çıkar beyan etmemektedir.

CFL genişlik ölçüm mikrosirkülasyonun hemodinamik daha iyi anlaşılması için önemlidir. Özel olarak, flüoresan genişlikleri ölçümü mezenterik 6&#39;da gerçekleştirilmiştir, 24 ve serebral 25 mikrodolaşımını spinotrapezius. In vivo flüoresan genişlikleri geleneksel ölçüm kaydedilen video çerçevelerinin elle muayene ile tahminlerine sınırlandırılmıştır. Manuel ölçümler görsel RBC çekirdek ve damar duvarlarının 15,16 sınırlarını belirleme önce birkaç ardışık video kareler...

İn vivo hayvan çalışmaları, insan fizyolojisini ve patolojisini anlamak için temel bilime alet olur. Özellikle, in vivo mikrohemodinamik çalışmalar, kanın anormal reolojik koşulları tarafından değiştirilen mikro dolaşım fonksiyonlarının potansiyel bozulmasını aydınlatabilir. Daha önce yapılan bir dizi mikrohemodinamik çalışma1, mikrovasküler kan akışını görselleştirmek için sıçan cremaster kas modelini kullanmıştır. Cremaster kası, testisleri çevreleyen ince bir çizgili kas tabakasıdır. Böylece, kastaki kan akışı, cerrahi maruziyet yoluyla trans-aydınlatma mikroskobu ile görüntülenebilir. Bu, herhangi bir floresan veya kontrast madde kullanmadan in vivo kan akışı görüntülerini elde etmemizi sağlar. Ek olarak, abdominal aort tıkanıklığı2 ile yukarı akış kan akımı azaltılarak kas ağının tüm kan perfüzyonu kontrol edilebilir. Bu avantajlar nedeniyle, cremaster kas modeli, mikro damarlarda hücresiz tabaka (CFL) oluşumunu araştırmak için yaygın olarak kullanılmaktadır1,3. 
CFL genişliği, mikrodolaşım fonksiyonlarının düzenlenmesindeki önemli rolleri nedeniyle büyük ilgi gören mikrosirkülasyonda belirgin bir hemodinamik parametredir. CFL, kırmızı kan hücrelerinin (RBC'ler) akış merkezi4'e doğru kayma kaynaklı enine içe göçü ile oluşur. Sonuç olarak, bu göç, damar duvarlarının yakınındaki RBC'lerin tükenmesine yol açar ve sonunda hücresiz bir plazma tabakası ile sonuçlanır. Buna göre, parietal CFL doğal olarak RBC çekirdeğinden dokulara oksijen (O2) verilmesine ve RBC'ler5,6 tarafından nitrik oksidin (NO) temizlenmesine karşı bir difüzyon bariyeri haline gelir. Ek olarak, NO üretimi, CFL genişliği7,8'in dinamik varyasyonları ile de modüle edilebilir. Bu nedenle, mikrosirkülasyondaki kan akışını daha iyi anlamak için CFL'nin hem gaz taşınmasındaki hem de mikrosirkülasyondaki homeostazın düzenlenmesindeki rollerinin tam olarak tespit edilmesi gerekir. Son çalışmalar, CFL'nin mikrosirkülasyon9-12'deki hemodinamik ve gaz taşıma fonksiyonları arasında köprü kurmaya odaklanmıştır. Ayrıca, ayrı bir çalışma seti, RBC agregasyonundaki patolojik yükselmenin CFL oluşumunu nasıl modüle ettiğini ve bunun dokulardaO2 ve NO biyoyararlanımı üzerindeki etkisini de araştırmıştır13,14. 
CFL'nin rolleri, CFL genişliğinin damar çapına göreceli boyutunun belirgin olduğu mikrosirkülasyonda daha önemli hale gelir. Bu, in vivo kan akışında CFL'yi ölçmek için etkili bir yaklaşım gerektirir. Özellikle, görüntü elde etme ve görüntü analizi, CFL genişlik ölçümünün doğruluğunu belirleyen iki temel bileşendir. Doku kan akışının başarılı bir şekilde görselleştirilmesinden önce, hayvan modelinin uygun bir cerrahi hazırlığı yapılmalıdır. Ek olarak, çoğunlukla insan hatalarından kaynaklanan geleneksel manuel ölçümlerin sınırlamalarının üstesinden gelmek için uygun bir görüntü analiz tekniğine ihtiyaç vardır15,16. Optik enstrümantasyondaki gelişmeler ve dijital görüntü işleme için bilgi işlem gücüyle, CFL genişliği17-19'un daha doğru ve tutarlı bir ölçümünü elde etmek artık mümkün. Bununla birlikte, görüntü tabanlı olan bu ölçümlerin doğruluğu, yine de sonuçta görüntülerin kalitesine bağlıdır.
Bu nedenle, bu çalışma in vivo CFL genişliğinin ölçümünü etkileyen faktörleri araştırmaktadır. Özellikle, sıçan kremaster kasının arteriyollerindeki CFL genişliğinin ölçümleri için cerrahi hazırlığı ve dijital görüntü analizini göstermeye odaklandık.

<table><tbody><tr><td>İntravital mikroskop</td><td>Olympus</td><td>BX51WI</td><td>Ekipmanları</td></tr><tr><td>Yüksek hızlı kamera</td><td>Photron</td><td>1024PCI</td><td>Ekipmanları</td></tr><tr><td>Mavi filtre</td><td>HOYA</td><td>B390</td><td></td></tr><tr><td>Ekipmanları Basınç sensörü ve biopac sistemi</td><td>Biopac sistemi</td><td>TSD104A, MP100</td><td>Ekipmanı</td></tr><tr><td>Sıcaklık kontrolörü</td><td>Shimaden</td><td>SR 1</td><td>Ekipmanları</td></tr><tr><td>Plazma Lyte A</td><td>Baxter</td><td>NDC: 0338-0221</td><td>37 ° C'de sıcak; Kullanmadan önce C su banyosu</td></tr><tr><td>Tuzlu Suya %0.9</td> <td>Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heparin (5.000 IU/ml)</td> <td>LEO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PE-10 polietilen tüp</td><td>Becton Dickinson</td><td>427400.024</td> <td>"OD x .011" ID&nbsp;</td></tr><tr><td>PE-50 polietilen tüp</td><td>Becton Dickinson</td><td></td> <td>427411.038" OD x .023" ID</td></tr><tr><td>PE-205 polietilen tüp</td><td>Becton Dickinson</td><td></td> <td>427446.082" OD x .062" ID</td></tr><tr><td>2-0 emilmeyen ipek sütür</td><td>Deknatel</td><td>113-S</td><td></td></tr><tr><td>5-0 emilmeyen ipek sütür</td><td>Deknatel</td><td>106-S</td><td></td></tr><tr><td>Su sirkülasyonlu ısıtma yastığı</td><td>Gaymar</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Su banyosu</td><td>Fisher Scientific Isotemp</td><td>205</td><td></td></tr><tr><td>Ekipmanları Steril Pamuklu Gazlı Bez ve nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-415-468</td><td></td></tr><tr><td>Pamuk uçlu aplikatörler</td><td>Fisher Scientific</td><td>23-400-124</td><td></td></tr><tr><td>Dumont Forseps</td><td>Kent Scientific</td><td>INS14188</td><td>Cerrahi alet</td></tr><tr><td>Mikro Diseksiyon forseps</td><td>Kent Scientific</td><td>INS15915</td><td>Cerrahi alet</td></tr><tr><td>İris forseps 1 x 2 diş</td><td>Kent Scientific</td><td>INS15917</td><td>Cerrahi </td></tr><tr><td>Enstrüman Damar kanülasyon forseps</td><td>Kent Scientific</td><td>INS500377</td><td>Cerrahi alet</td></tr><tr><td>Mikro makas</td><td>Kent Scientific</td><td>INS14177</td><td>Cerrahi alet</td></tr><tr><td>İris makas</td><td>Kent Scientific</td><td>INS14225</td><td>Cerrahi alet</td></tr><tr><td>Damar klipsi</td><td>Kent Scientific</td><td>INS14120</td><td>Cerrahi alet</td></tr><tr><td>İkizler koter sistemi</td><td>Braintree Scientific</td><td>GEM 5917</td><td>Cerrahi alet</td></tr></tbody></table>

sıçan cremaster&#39;ın muscle arteriyollerde hücre-serbest katman görselleştirme ve

Visualization and Quantification of the Cell-free Layer in Arterioles of the Rat Cremaster Muscle

Hücresiz tabaka, mikrodamar akışında kırmızı kan hücrelerinden yoksun olan parietal plazma tabakası olarak tanımlanır. İn vivo hücresiz tabaka genişliğinin ve uzay-zamansal varyasyonlarının ölçümü, mikrosirkülasyondaki hemodinamiğin kapsamlı bir şekilde anlaşılmasını sağlayabilir. Bu çalışmada, in vivo olarak arteriyollerdeki hücresiz katman genişliklerini ölçmek için yüksek hızlı bir video kamera ile birleştirilmiş intravital mikroskobik bir sistem kullandık. Sprague-Dawley sıçanlarının kremaster kası, kan akışını görselleştirmek için cerrahi olarak dıştan çıkarıldı. Görüntü işlemeyi ve hücresiz katman genişliğinin analizini otomatikleştirmek için özel olarak oluşturulmuş bir görüntüleme komut dosyası da geliştirildi. Bu yaklaşım, uzay-zamansal varyasyonların önceki manuel ölçümlerden daha tutarlı bir şekilde ölçülmesini sağlar. Bununla birlikte, ölçümün doğruluğu kısmen mavi bir filtrenin kullanılmasına ve uygun bir eşikleme algoritmasının seçilmesine bağlıdır. Özellikle, mavi filtre kullanılarak ve kullanılmadan elde edilen görüntülerin kontrastını ve kalitesini değerlendirdik. Ek olarak, beş farklı görüntü histogram tabanlı eşikleme algoritmasını (Otsu, minimum, modlar arası, yinelemeli seçim ve bulanık entropik eşikleme) karşılaştırdık ve hücresiz katman genişliğinin belirlenmesindeki farklılıkları gösterdik.

In vivo CFL görselleştirme hayvanın cerrahi hazırlıkları büyük ölçüde bağlıdır. Aşırı kan kaybı ya da genişletilmiş cerrahi süresi şok ve kan akımı sapmaları hayvan tabi olabilir. bir ısıtma yastığı yanı sıra cerrahi ve deney sırasında özelleştirilmiş bir platformu kullanarak doku sıcaklığı bakım da sıçan fizyolojik koşulları sağlamak için önemlidir. mikroskop sistemi bir 100 W halojen lamba kullanarak, hiç bir farkedilebilir doku hasarı da deneyin sonunda gözlemlenmiştir. Ş...

Bu çalışma, in vivo hücresiz tabakanın görselleştirilmesi için sıçan kremaster kasının cerrahi hazırlığını göstermektedir. Bu çalışmada, hücresiz katman genişliği ölçümünün doğruluğunu etkileyen önemli faktörler tartışılmıştır.

Sıçan Cremaster&#39;ın Muscle arteriyollerde Hücre-serbest Katman Görselleştirme ve

The cell-free layer is defined as the parietal plasma layer in the microvessel flow, which is devoid of red blood cells. The measurement of the in vivo ...

Bu prosedürün genel amacı, in vivo hücreden arınmış tabaka genişliğindeki spatiotemporal varyasyonları nicel olarak belirlemektir. Bu yöntem, mikro hemodinamik alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir ve mikrosirkülasyonda hücre-filiya rolünün daha iyi anlaşılmasını sağlar. Bu yöntemin temel avantajı, in vivo hücre-filiya genişliğinin, çok zaman alıcı olan önceki manuel ölçüm tekniklerine kıyasla daha tutarlı ve kolay bir şekilde nicelendirilebilmesidir.Hücresiz tabaka genişliği ölçümüne başlamadan önce, hücresiz tabaka ön-MatLab betik dosyasını çalıştırın. Ardından, analiz edilecek video dosyasını seçmek için dosya aç'a tıklayın ve gerekirse yakınlaştırma kaydırıcısını kullanarak yakınlaştırma seviyesini ayarlayıp, tek damarın duvarlarını dikey olarak hizalamak için döndürme kaydırıcısını ayarlayın. Damar uygun konuma geldiğinde, düzenlemeyi onayla'ya tıklayın, ardından ilgi bölgesini tanımlamak için kırpmak amacıyla ROI ayarla'ya tıklayın.Hizalanmış görüntü bir açılır pencerede görüntülenecektir. Görüntü üzerindeki dikdörtgen hedefi gerektiği gibi ayarlayın ve ilgi alanını onaylamak için hedefe çift tıklayın. Ardından, düzenlenmiş tüm video karelerini ardışık bitmap görüntülerine dönüştürmek için Görüntüleri Çıkar'a tıklayın; bu görüntüler, seçilen video dosyasıyla aynı ada sahip klasörde bulunacaktır.Hücresiz tabaka genişliğini ölçmek için Klasör Seç'e tıklayın ve görüntülerin bulunduğu klasörü seçin. İlk görüntü karesi, görüntü histogramı panelindeki ilgili gri yoğunluk histogramı ile birlikte gri tonlamalı görüntü panelinde görünecektir. Analizi gerçekleştirmek için liste kutusundan istenen görüntü karesini seçin ve ışık yoğunluğu profili zirvesinin iki piksel boyunca koyudan açığa geçtiği konum olarak belirlenen iç damar duvarını tanımlamak için Damar Duvarlarını Bul'a tıklayın.Tuz ve biber gürültüsünü azaltmak için görüntüye medyan filtresi uygulamak üzere median filter seçeneğini işaretleyin. Görüntü kontrastını artırmak için görüntü yoğunluklarını dijital olarak ayarlayan auto-contrast seçeneğini işaretleyin. Ardından, gri seviyelerini iki sınıfa (eşik değerinin üzerindeki gri seviyelerle beyaz pikseller ve eşik değerinin altındaki gri seviyelerle siyah pikseller) ayıran eşikleme değerini otomatik olarak belirlemek için liste kutusundan bir eşikleme algoritması seçin.Hücresiz tabaka genişliklerinin uzaysal varyasyonunu ölçmek için, piksel çözünürlüğü kutusuna piksel çözünürlüğünü girin. Ardından, hücresiz tabaka genişliklerinin uzaysal varyasyonunu elde etmek için Hesapla'ya tıklayın ve hücresiz tabaka genişliği verilerini tablolaştırılmış bir formatta dışa aktarmak için Export.csv'ye tıklayın.Damar boyunca belirli bir analiz hattındaki hücreden arındırılmış tabaka genişliklerinin zamansal varyasyonunu ölçmek için Temporal Variation seçeneğine tıklayın ve kare hızı bilgilerini girin. Analiz edilecek görüntülerin ilk ve son karelerini sırasıyla start frame ve last frame kutularına girin. Analiz hattının damar üzerindeki konumunu seçmek için analiz hattı kaydırma çubuğunu ayarlayın ve analiz hattının konumunu hem gri tonlamalı hem de ikili görüntülerde gösterildiği şekilde onaylayın.Ardından, hücreden arındırılmış tabaka genişliklerinin zamansal varyasyonunu elde etmek için Calculate'e tıklayın ve hücreden arındırılmış tabaka genişliği verilerini tablolanmış bir formatta dışa aktarmak için Export.csv'ye tıklayın. Burada, hücreden arındırılmış tabakanın RBC çekirdeği ile iç damar duvarı arasında gözlemlenebildiği, sıçan kremaster kasındaki dallanmamış bir arterden geçen tipik bir alyuvar akışı gösterilmiştir.Hücresiz tabaka genişliği ölçümlerinin doğruluğunu sağlamak için bu bileşenler arasında iyi bir kontrast olması kritik öneme sahiptir. Görüntü analizinin ilk aşaması, damarın iç duvarının tespitini içermektedir. Damara dik olan analiz hattı boyunca ışık yoğunluğu profili elde edilerek, konum, iki piksel boyunca karanlıktan aydınlığa geçiş yapan tepe noktasında yaklaşık olarak belirlenir.Ardından, görüntü eşikleme algoritması kullanılarak RBC çekirdek sınırları tespit edilir ve böylece CFL genişlikleri hesaplanabilir. Hücre içermeyen tabakadaki kırmızı kan hücreleri farklı ışık geçirgenliklerine sahip olduğundan, gri seviyelerdeki fark iki sınıfa ayrılabilir. Ancak, görüntü histogramındaki iki pik arasında doğru bir eşik değerinin belirlenmesi, düşük görüntü kalitesi ve kontrast nedeniyle kısıtlanabilir.Kırmızı kan hücreleri ile hücreden arındırılmış tabaka arasındaki kontrastı artırmak için mavi bir filtre kullanılabilir. Bu durum, kırmızı kan hücresi çekirdeklerinin sınırlarının mavi bir filtre ile daha doğru şekilde belirlendiği bu görüntülerde daha belirgindir. Eşikleme algoritması da hücreden arındırılmış tabaka genişliği ölçümünü etkileyebilir; bu durum, farklı eşikleme algoritmalarının farklı kırmızı kan hücresi çekirdek sınırlarının ve dolayısıyla farklı hücreden arındırılmış tabaka genişliklerinin belirlenmesiyle sonuçlandığı bu görüntülerde görülmektedir.In vivo hücreden arındırılmış tabaka genişliğinin ölçümü, görüntü kalitesine karşı oldukça hassastır. Bu nedenle, cerrahi işlemi dikkatle gerçekleştirdiğinizden ve kaliteli görüntü elde etmek için uygun bir optik yardımcı kullandığınızdan emin olun. Ayrıca, doğru ve tutarlı bir hücreden arındırılmış tabaka genişliği ölçümü sağlamak için uygun görüntü eşikleme algoritmasını seçmek esastır.

visualization-quantification-cell-free-layer-arterioles-rat-cremaster

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bir doku hazırlanması, görselleştirme ve yaşam mikrosirkülasyon deneysel manipülasyon için tarif edilir. Anestezi erkek farelerde, ince, yüksek vaskülarize Cremaster'ın kas arteriol, kapiller ve venüllerde mikrovasküler ağları da dahil olmak üzere çalışma intravital mikroskopi için hazırlanmıştır. Bu preparat, sıçan ve hamster için kolayca adapte.

Mikrosirkülasyon intravital Görüntüleme Fare Cremaster&#39;ın kas Hazırlık

Bu makalenin amacı, dijital bir immunofluorescent mikroskop kullanılarak sıçan pial arteriyel dilim östrojen reseptör-α immunofluorescent algılama (ERα) optimize etmek için bir yöntem göstermektir.

Rat pial arteriollerde Östrojen Reseptör-α Dijital Immunofluorescent Mikroskobu kullanılarak görüntülenmesi

Kremasterik mikrosirkülasyonda postkapiller venüllerde Dijital intravital Epifloresans mikroskopi lökosit-endotel etkileşimi içgörü kazanmak için uygun bir...

Sıçan Cremaster&#39;ın kas iskemi-reperfüzyon Hasarı içinde Lökosit-endotelyal Etkileşim Gerçek zamanlı Dijital Görüntüleme (IRI)

Biz bir adım-adım prosedürü ve gerekli enstrümantasyon açıklaması dahil murin spinotrapezius kas bir roman arter ligasyonu modeli göstermektedir. Biz cerrahi ve intravital ve konfokal mikroskopi kullanılarak vasküler ağ şekillenmesi ve fonksiyonel vazodilatasyon ile ilgili, sonuç ölçümleri açıklayacağız.

Mikrovasküler Fonksiyon ve Tadilat üzerine Arteriolar Ligasyonu etkisini değerlendirmek için mürin Spinotrapezius Modeli

Burada vasküler inflamasyon ve canlı farelerde trombüs oluşumu sırasında aktive endotel üzerindeki heterotipik trombosit-nötrofil etkileşimleri görselleştirmek için floresan intravital mikroskobu deneysel bir tekniktir rapor. Bu mikroskobik teknoloji vasküler hastalığın moleküler mekanizmasını incelemek ve patofizyolojik durumlardaki farmakolojik ajanları test için değerli olacaktır.

Canlı Fare Damar İltihabı ve trombüs oluşumu sırasında Activated Endotel üzerinde heterotypic Trombosit nötrofil Etkileşimleri Gerçek zamanlı Görüntüleme

Fare M. Cremaster'ın mikro intravital mikroskopi eşsiz ve çevresel kemik iliği kök hücre göçü analizi için in vivo model yanı sıra standart sunmaktadır.

Periferik Kök Hücre Göç Analizi Fare Cremaster Muscle Mikrosirkülasyon Intravital Mikroskopi

Bu el yazması sıçan beyin direnç arterlerin vasküler işlevinde değerlendirilmesinde vitro video mikroskobu iletişim kurallarını açıklar. El yazması da microvessel yoğunluğu fluorescently etiketli lektin ve doku perfüzyon lazer Doppler Flowmetry kullanarak değerlendirmek için teknikler açıklanır.

Sıçan izole direnç arter Video mikroskobu kullanan vasküler kontrol mekanizmalarının değerlendirilmesi

Bu el yazması arteriyoller elektrofizyolojik, kalsiyum görüntüleme ve baskı myography çalışmalarda kullanılan fare retina üzerinden yalıtım için basit bir protokol açıklar.

Retina arteriyoller yalıtım Ex Vivo Hücre fizyolojisi çalışmaları için

Burada, fare cremaster kasının post-kılcal venüzlerinde intravital mikroskopinin nasıl yapılacağını gösteriyoruz. Yaygın olarak farklı inflamasyon ve sepsis modellerine, özellikle kemokinler ve sitokinler tarafından indüklenenlere uygulanan, abartılı kas lökosit infiltrasyonu içeren muscolopatilerin çalışmasında önemini vurguluyoruz.

İntravital Mikroskopi Ile Değerlendirilen Farelerde Cremaster Kasın Lökosit İnfiltrasyonu

Burada, septal arter kanüle edildiği ve basınçlandırıldığı için kılcal yataklar ve perisitler de dahil olmak üzere damar ağacı bileşenlerinin yanı sıra basıncı koruyan arteriyel perfüzyon basıncının ve akışının eks vivo izlenmesi ile canlı murine kalp dokusundaki koroner mikrositülasyonu incelemek için bir protokol sunulmaktadır.

Fare Kalbinde Kılcal Damarlar, Arterioles ve Perisitlerin Dinamik Ölçümü ve Görüntülenmesi

Serebral parankimal arteriollerden sağlam fare serebral endotelyal "tüplerinin" yoğun bir şekilde hazırlanması, serebral kan akışı regülasyonunu incelemek için gösterilmiştir. Ayrıca, bu endotel çalışma modelinin floresan görüntüleme ve anahtar hücresel sinyal yollarının elektrofizyoloji ölçümü için, hücre içi [Ca2+] ve membran potansiyelindeki değişiklikler de dahil olmak üzere deneysel güçlerini gösteriyoruz.

Fare Beyin Parankiminin Arteriyolar Endotelinin İzolasyonu ve Fonksiyonel Analizi

Öğrenin sıçan cremaster kasında hücre-serbest katman görselleştirme ve ölçüm yöntemini. Bu teknik mikrohemodinamik araştırmalarda hücre-fili rolünü anlamak için tutarlı ve hızlı veri sağlar.

Sıçan Cremaster'ın Muscle arteriyollerde Hücre-serbest Katman Görselleştirme ve

Daha fazla video keşfet