Name: Kütle Spektrometrisinden Önce Sağlam Proteom Saflaştırması için Organik Solvent Bazlı Protein Yağışı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-07T14:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 12 s
Description: Keşfedin organik solvent bazlı protein yağışı yöntemiyle kütle spektrometrisi öncesi hızlı ve güvenilir proteom saflaştırma. Bu protokol yüksek protein geri kazanımı ve saflık sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Kanada Doğa Bilimleri ve Mühendislik Araştırma Konseyi tarafından finanse edilmiştir. Yazarlar, MS verilerinin elde edilmesine katkılarından dolayı Hasta Çocuklar Hastanesi'ndeki (Toronto, Kanada) Bioinformatics Solutions Inc. (Waterloo, Kanada) ve SPARC BioCentre'a (Moleküler Analiz) teşekkür eder.

1. Malzeme hususları ve numune ön hazırlığı
<ol><li>Sadece yüksek saflıkta çözücüler (aseton, kloroform, metanol) (>% 99,5) ve aşırı nem içermeyen kimyasallar kullanın.</li>
	<li>Suda sodyum klorür ve çinko sülfat çözeltileri (1 M) hazırlayın. NOT: Tuz çözeltileri, kirletici madde veya mikrobiyal büyüme içermedikleri sürece oda sıcaklığında süresiz olarak saklanabilir.</li>
	<li>Yağışı indüklemek için gerekli numune hacmini ve çözücüleri korumak için yeterli olan en küçük polipropilen (PP) mikrosantrifüj şişesini kullanın.</li>
	<li>Çökeltilecek numunedeki SDS konsantrasyonunun %2'den (w/v) fazla olmadığından emin olun. SDS daha yüksekse, numuneyi suyla seyreltin.</li>
	<li>Optimum çökeltme verimliliği için 0,01 ila 10 g/L arasında bir protein konsantrasyonu sağlayın. NOT: Yağış için en uygun kütle 1-100 μg protein arasında değişmektedir.</li>
	<li>Kullanmadan önce tüm çözücülerin ve çözeltilerin partikül madde içermediğinden emin olun. Çözünmemiş partikülleri gidermek için bir filtreleme (<0,5 μm) veya santrifüjleme adımı (oda sıcaklığında 1 dakika boyunca 10.000 x g) gerçekleştirin.</li>
	<li>Disülfit bağının azaltılması ve alkilasyon gerekiyorsa, protein çökelmesinden önce bu adımları uygulayın. Aşırı indirgeyici ve alkilleyici reaktifler çökeltme işlemi ile uzaklaştırılacaktır.</li>
	<li>Protokollerden birini seçip uygulayarak proteinleri çökeltin (adım 2, 3, 4 veya 5).</li>
</ol>2. Aseton ile hızlı (şişe bazlı) protein çökeltmesi
<ol><li>Pipet 90 μL (partikülsüz) protein veya proteom çözeltisi PP mikrosantrifüj tüpüne dönüşür. Ardından, 10 μL 1 M sulu NaCl ekleyin. NOT: Proteom ekstraktının iyonik mukavemeti zaten 100 mM'yi aşarsa, ek tuz gerekmez.</li>
	<li>Pipet 400 μL aseton numunenin içine alınır. Şişeyi kapatın ve çözücüleri birleştirmek için şişeye hafifçe dokunun. Güçlü karıştırma gerekli değildir. NOT: Protein, tuz ve aseton hacmi, her birinin göreceli oranı korunduğu sürece arttırılabilir.</li>
	<li>Şişenin oda sıcaklığında, rahatsız edilmeden, en az 2 dakika boyunca inkübe edilmesine izin verin. NOT: Düşük sıcaklıktakiler de dahil olmak üzere daha uzun inkübasyonlar (örneğin, geleneksel aseton çökeltmesi, dondurucuda gece boyunca çökeltme kullanır), genellikle toplam protein geri kazanımını iyileştirmeyen daha büyük (görünür) agrega protein partiküllerinin (Şekil 1A) oluşumuna neden olabilir.</li>
	<li>Kuluçkayı takiben, numuneleri şişenin oryantasyonunu not ederek bir santrifüje yerleştirin. Oda sıcaklığında 10.000 x g veya daha yüksek bir sıcaklıkta en az 2 dakika boyunca döndürün.</li>
	<li>Şişenin kapağını açın ve şişeyi yavaşça bir atık kabına çevirerek süpernatantı yavaşça boşaltın. Şişeden artık çözücü çekmek için ters çevrilmiş şişeyi bir kağıt havluya dokunun. DİKKAT: Atık çözücüler uygun protokollere göre tutulmalı ve atılmalıdır.</li>
	<li>SDS içeren numuneler için, peleti rahatsız etmemeye dikkat ederek 400 μL taze aseton dağıtın. NOT: Adım 2.6 isteğe bağlıdır.<ol><li>Numuneyi derhal santrifüj edin (oda sıcaklığında 1 dakika boyunca 10.000 x g veya daha yüksek), şişeyi rotora ilk sıkma ile aynı yönde yerleştirin. Yıkama çözücüsünü adım 2.5'te açıklandığı gibi boşaltın.</li>
	</ol></li>
	<li>Numunenin kapak açıkken tamamen kurumasını bekleyin (~1 dakika). Şişeyi özetleyin ve pelet çözünürlüğü ile devam edin (adım 6).</li>
</ol>3. Düşük moleküler ağırlıklı (LMW) peptitlerin çökelmesi (ZnSO4 + aseton)
<ol><li>2 mL PP şişesine 54 μL proteom ekstraktı dağıtın ve ardından 6 μL 1 M ZnSO4 ekleyin. NOT: LMW peptitlerinin (≤5 kDa) optimum geri kazanımı, hacimce son %97'ye aseton eklenerek elde edilir. 2 mL'lik bir PP şişesi varsayarak, maksimum ilk numune hacmi 54 μL'dir.</li>
	<li>1940 μL asetonu, hacimce son %97'ye ekleyin. Karıştırmak için hafifçe döndürün ve tezgahın üstünde en az 2 dakika boyunca rahatsız edilmeden durun.</li>
	<li>Santrifüj (oda sıcaklığında 1 dakika boyunca 10.000 x g) ve şişeyi ters çevirerek ve ardından şişeyi bir kağıt havluya dokundurarak süpernatantı çıkarın.</li>
	<li>SDS içeren numuneler için, peleti rahatsız etmemeye dikkat ederek 400 μL taze aseton dağıtın. NOT: Adım 3.4 isteğe bağlıdır.<ol><li>Numuneyi adım 3.3'e göre derhal santrifüj edin ve şişeyi rotora ilk sıkma ile aynı yönde yerleştirin. Yıkama çözücüsünü adım 3.3'te açıklandığı gibi boşaltın.</li>
	</ol></li>
	<li>Elde edilen kuru peleti kısa vorteks veya sonikasyon (~ 5 dakika) ile sulu bir çözücü içinde yeniden çözündürün.</li>
</ol>4. Kloroform / metanol / su (CMW) ile protein çökeltme
<ol><li>100 μL protein veya proteom çözeltisini bir PP şişesine dağıtın. 400 μL metanol ekleyin, ardından 100 μL kloroform ekleyin. Şişeyi ve girdabı karıştırmak için kısaca kapatın. NOT: CMW çökeltme için, dar tabanlı 1,5 mL şişeler tercih edilir (Şekil 2A). DİKKAT: Kloroform çözücü uygun bir havalandırma başlığında kullanılmalıdır. Kloroformla temas eden tüm çözücüler, bertaraf edildiğinde halojenli atık olarak muamele görmelidir.</li>
	<li>300 μL suyu doğrudan şişenin merkezine hızlı bir şekilde dağıtın. Şişeyi kapatın. Numunenin tezgahta 1 dakika boyunca rahatsız edilmeden oturmasına izin verin. NOT: Çözüm hemen bulutlu beyaz görünecektir. Su ilavesini takiben şişeyi karıştırmaktan kaçının.</li>
	<li>PP şişesini bir santrifüje yerleştirin ve en az 5 dakika (oda sıcaklığında 10.000 x g veya daha yüksek) döndürün. NOT: Santrifüj edildikten sonra, iki görünür çözücü katmanı oluşacaktır (üst katman = metanol / su; alt = kloroform). Solvent arayüzünde katı bir protein peleti oluşur (Şekil 2A).</li>
	<li>Büyük (1 mL) bir mikropipet ucu kullanarak ve şişeyi ~45°'de tutarak, çözücünün ~700 μL'sini üst tabakadan eşit bir oranda çıkarın.</li>
	<li>Üst çözücü tabakasını ~45° eğimli şişeden çıkarmaya devam etmek için daha küçük (200 μL) bir mikropipet ucu kullanın. Pipet, üst çözücü tabakası şişede bir boncuk oluşturana kadar sürekli bir hareketle.</li>
	<li>Çözücüyü şişenin kenarından aşağı dağıtarak, peleti rahatsız etmeden numune şişesine 400 μL taze metanol ekleyin.</li>
	<li>Şişeyi kapatın. Solventleri bir araya getirmek için şişeyi hafifçe sallayarak çözücü katmanlarını birleştirin. NOT: Peletin bozulmasını önlemek önemlidir. Şişeyi vortekse etmeyin.</li>
	<li>Şişenin rotordaki oryantasyonuna dikkat ederek, en az 10 dakika (oda sıcaklığında 10.000 x g) santrifüj yapın. Protein peleti şişenin dibine yapışır (Şekil 2B).</li>
	<li>Şişeyi 45°'de, pelet aşağı bakacak şekilde devirin. Pipet ucunu şişenin üst kenarı boyunca yerleştirin ve süpernatantı 1 mL'lik bir mikropipet ucu ile yavaş ama sürekli bir hızda çıkarın. Şişede ~ 20 μL çözücü tutun.</li>
	<li>SDS içeren numuneler için protein peletini 400 μL taze metanolü yavaşça dağıtarak yıkayın. Şişeyi vortekse etmeyin.<ol><li>Doğrudan santrifüjleme ile devam edin (sıcaklıkta 2 dakika boyunca 10.000 x g), şişeyi rotora ilk spinle aynı yönde yerleştirin.</li>
	</ol></li>
	<li>Çözücüyü adım 4.9'a göre çıkarın. Artık çözücü buharlaşana kadar numunenin bir duman başlığı içinde hava ile kurumasına izin verin.</li>
	<li>6. adımda önerilen çözünürlük prosedürlerine başvurun.</li>
</ol>5. Tek kullanımlık bir filtrasyon kartuşu kullanarak protein çökeltme
NOT: Adım 2-5'te açıklanan her çözücü bazlı çökeltme protokolü, iki aşamalı bir filtreleme ve ekstraksiyon kartuşunda gerçekleştirilebilir (bkz.
<ol><li>Fiş üst filtreleme kartuşuna takılıyken (Şekil 3A), çıkarılan proteom, tuz ve çözücünün istenen hacmini aşağıdaki üç seçenekten birinde belirtildiği gibi dağıtın.<ol><li>(Seçenek 1) Aseton ile protein çökeltmesi için, 90 μL protein veya proteom çözeltisini, 10 μL 1 M sulu NaCl ve 400 μL asetonu birleştirin. Tezgahın üstünde en az 2 dakika kuluçkaya yatırın. NOT: Konsantre protein örnekleri (1 g / L) için görünür bir çökelti gelişecektir (Şekil 3B).</li>
		<li>(Seçenek 2) LMW peptid çökeltmesi için, numunenin 15 μL'sini, 1.5 μL'lik 1 M ZnSO4'ü ve 485 μL asetonunu birleştirin. Tezgahın üstünde en az 2 dakika kuluçkaya yatırın. NOT: Sulu numunedeki 90 mM'lik bir tuz konsantrasyonu, adım 3'te önerilen 100 mM'ye göre geri kazanımı etkilemeyecektir.</li>
		<li>(Seçenek 3) CMW çökeltmesi için 50 μL proteom ekstresi, 200 μL metanol ve 50 μL kloroform ekleyin. Şişeyi kapatın ve birleştirmek için kısaca vorteks.<ol><li>150 μL suyu doğrudan şişenin merkezine hızlı bir şekilde dağıtın. Tezgahın üstünde 1 dakika kuluçkaya yatırın.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>Oda sıcaklığında 2.500 x g'da 2 dakika boyunca santrifüj, fiş hala filtrasyon kartuşuna takılıyken.</li>
	<li>Kartuşu ters çevirin ve ardından fişi kartuş tabanından söküp çıkarın.</li>
	<li>Filtrasyon kartuşunu temiz bir şişeye yerleştirin ve santrifüje geri dönün. Oda sıcaklığında 500 x g'da 3 dakika döndürün. Akış çözücüsünü alt şişeden atın. NOT: Üst filtrasyon kartuşunda herhangi bir çözücü kalırsa, santrifüje geri dönün ve ek bir sıkma işlemi gerçekleştirin.</li>
	<li>Filtrasyon kartuşuna 400 μL aseton ekleyerek protein peletini yıkayın (CMW çökeltmesi için, adım 5.1.3, 400 μL metanol ekleyin).</li>
	<li>Oda sıcaklığında 500 x g'da 3 dakika boyunca veya üst kartuşta çözücü kalmayana kadar santrifüj yapın.</li>
	<li>Yağış peletini adım 6'da açıklandığı gibi yeniden çözündürün.</li>
</ol>6. Protein peletinin çözündürülmesi
<ol><li>Aşağıda açıklanan çözünürlük protokollerinden hemen önce 2-5 μL izopropanolü doğrudan membrana dağıtarak filtrasyon kartuşunun tabanındaki membranı ıslatın.</li>
	<li>Aşağıdaki çözümleme yöntemlerinden birini izleyin.<ol><li>(Seçenek 1) Filtreleme kartuşuna %≥2 SDS içeren en az 20 μL sulu tampon ekleyin. Cap ve vorteksi kuvvetlice (~1 dk.) Alternatif olarak, protein peletini dağıtmak için >10 dakika) sonikat yapın.<ol><li>Numuneyi 95 °C'de 5 dakika ısıtın). Isıtmadan sonra karıştırma adımını tekrarlayın. NOT: Laemmli jel yükleme tamponu, protein peletini yeniden çözündürebilir. Bununla birlikte, SDS içeren örnekler tripsin sindirimi ve ters fazlı LC ve MS ile uyumlu değildir.</li>
		</ol></li>
		<li>(Seçenek 2) Suda% 80 (v / v) formik asit çözeltisi hazırlayın. Asit çözeltisini (-20 ° C) ve çökeltilmiş protein içeren filtrasyon kartuşunu önceden soğutun.<ol><li>Kartuşa 50 μL soğuk formik asit dağıtın; 30 s için kapak ve vorteks. 10 dakika boyunca dondurucuya (-20 °C) geri dönün.</li>
			<li>Kartuşu 30 saniye boyunca tekrar vorteksleyin. Ardından, soğutma ve karıştırma döngüsünü bir kez daha tekrarlayın (10 dakika, -20 °C, 30 s girdap).</li>
			<li>Son 500 μL'ye su ekleyerek formik asidi% 8'e seyreltin. NOT: Soğuk formik asit protokolü sonraki tripsin sindirimi ile uyumlu değildir, ancak LC-MS ile uyumludur.</li>
		</ol></li>
		<li>(Seçenek 3) Filtrasyon kartuşuna suda 50 μL taze hazırlanmış 8 M üre ekleyin. 30 dakika boyunca sonikate.<ol><li>Kartuşun tezgah üstünde 1 saat boyunca (gece boyunca inkübe edilmesine izin verin).</li>
			<li>8 M üreyi su veya uygun tamponla en az 5 kat seyreltin. NOT: Seyreltildikten sonra, üre çözünürlük protokolü, sonraki tripsin sindirimi ve LC-MS ile uyumludur.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>7. Protein sindirimi
<ol><li>Aşağıdan yukarıya MS analizi için, aşağıda belirtilen iki yöntemden birini kullanarak yeniden çözünür proteinleri enzimatik sindirime tabi tutun.<ol><li>(Seçenek 1) Formik asit çözünürlüğü için, adım 6.2.2.1'de %80 formik asidin başlangıç hacmini 25 μL'ye düşürün. Adım 6.2.2.3'te, formik asidi% 5'e (v / v) seyreltmek için 375 μL su kullanın.</li>
		<li>Pepsini kartuşa yaklaşık 50:1 protein-enzim oranında dağıtın. Filtrasyon kartuşuna takılı bir fişle, numuneyi gece boyunca oda sıcaklığında inkübe edin.</li>
	</ol></li>
	<li>(Seçenek 2) Ürede çözündürme için, adım 6.2.3.2'de 100 mM Tris veya amonyum bikarbonat dahil edilerek 8 ila 8.3 arasında bir pH sağlayın.<ol><li>Yaklaşık 50: 1'lik bir protein-enzim kütle oranında tripsin ekleyin. Karbuğa takılı bir fiş ile, numuneyi gece boyunca 37 ° C'de ılık su banyosunda inkübe edin.</li>
		<li>Çözeltiyi% 10 TFA ile sonuncu% 1'e asitleştirerek sindirimi sonlandırın.</li>
	</ol></li>
	<li>Pepsin veya tripsin sindirilmiş proteini, fişi filtrenin tabanından çıkararak ve temiz bir şişede (2 dakika, 5000 x g, oda sıcaklığı) bulunan kartuşu santrifüj ederek geri kazanın.</li>
</ol>8. SPE temizliği
NOT: Çürütme veya çözücü değişimini takiben ilave numune tuzdan arındırma işlemi için, numune açıklandığı gibi ters fazlı temizlemeye tabi tutulabilir.
<ol><li>Bir SPE kartuşunu (bakınız Malzeme Tablosu) 300 μL metanol (2 dk, 400 x g) ve ardından 300 μL %5 asetonitril/%0,1 TFA (2 dk, 400 x g) geçirerek astarlayın.</li>
	<li>Astarlanmış SPE kartuşunu, yeniden çözünür veya sindirilmiş protein içeren filtreleme kartuşunun tabanına bağlayın.</li>
	<li>Proteini SPE kartuşundan döndürün (oda sıcaklığında 5 dakika, 800 x g). Çözücü üst kartuşta kalırsa, kartuşu santrifüje geri koyun ve sıkma işlemini tekrarlayın. NOT: Numunenin SPE kartuşundan ikinci kez geçirilmesi kurtarmayı iyileştirebilir.</li>
	<li>Karbuğa 300 μL %5 asetonitril/%0,1 TFA su ekleyin. Yıkamak için SPE kartuşundan geçirin (2 dk, 2000 x g). Akış akışını atın.</li>
	<li>LMW proteinleri veya sindirilmiş peptitler için, numuneyi 300 μL% 50 asetonitril / % 0.1 TFA (5 dakika, 2500 x g) akıtarak süzün.</li>
	<li>Bozulmamış proteinler için, 300 μL% 75 asetonitril / % 0.1 TFA kullanarak ek bir elüsyon adımı ile adım 8.5'i izleyin. Elde edilen iki özü birleştirin. NOT: Adım 8.6 isteğe bağlıdır.</li>
</ol>

Doucette laboratuvarı, bu çalışmada kullanılan ProTrap XG'yi tasarladı ve patentini aldı. AAD ayrıca numune hazırlama kartuşunu ticarileştiren Proteoform Scientific'in kurucu ortağıdır.

Optimal MS karakterizasyonu, artık SDS 10 ppm'nin altında tükendiğinde elde edilir. FASP ve boncuk üzerinde sindirim gibi alternatif yaklaşımlar, değişken geri kazanım31,32,33 ile kantitatif SDS tükenmesi sunarken, yağışın birincil amacı saflığı ve verimi aynı anda en üst düzeye çıkarmaktır. Bu, protein peletini rahatsız etmeden süpernatantın (SDS içeren) etkili bir şekilde izole edilmesine bağlıdır. Şişe bazlı çökeltme ile, süp...

Kütle spektrometresi ile proteom analizi, modern MS cihazlarının gelişmiş hassasiyeti, çözünürlüğü, tarama hızı ve çok yönlülüğü nedeniyle giderek daha titiz hale gelmiştir. MS ilerlemeleri, daha fazla protein tanımlama verimliliğine ve daha hassas kantitasyona katkıda bulunur 1,2,3,4,5. Geliştirilmiş MS enstrümantasyonu ile araştırmacılar, iş akışının tüm aşamalarında minimum sürede yüksek saflıkta proteinlerin kantitatif geri kazanımını sağlayabilen, buna karşılık gelen tutarlı bir ön uç numune hazırlama stratejisi talep etmektedirler 6,7,8,9,10,11 . Biyolojik bir sistemin proteom durumunu doğru bir şekilde yansıtmak için, proteinler doğal numune matrisinden verimli ve tarafsız bir şekilde izole edilmelidir. Bu amaçla, sodyum dodesil sülfat (SDS) gibi denatüre edici bir yüzey aktif madde de dahil olmak üzere, etkili protein ekstraksiyonu ve çözündürme sağlar12. Bununla birlikte, SDS, elektrosprey iyonizasyonuna güçlü bir şekilde müdahale eder ve uygun şekilde elimine edilmezse ciddi MS sinyal bastırmasına neden olur13.
Sonraki proteom analizi için, proteinlerin tek kullanımlık spin kartuşları14,15,16'da bulunan moleküler ağırlık kesme filtresinin üzerinde tutulması gibi çeşitli SDS tükenme stratejileri mevcuttur. Filtre destekli numune hazırlama yöntemi (FASP), SDS'yi 10 ppm'nin altında etkili bir şekilde tükettiği ve optimal MS'yi kolaylaştırdığı için tercih edilir. Bununla birlikte, FASP ile protein geri kazanımı değişkendir ve bu da diğer tekniklerin araştırılmasına neden olmuştur. Proteini (veya yüzey aktif maddeyi) seçici olarak yakalayan kromatografik yaklaşımlar, çeşitli uygun kartuşlara veya boncuk bazlı formatlara dönüşmüştür 17,18,19,20,21. Protein saflaştırmaya yönelik bu basit ve (ideal olarak) tutarlı stratejiler göz önüne alındığında, organik çözücülerle protein çökeltmesinin klasik yaklaşımı genellikle protein izolasyonuna umut verici bir yaklaşım olarak göz ardı edilir. Solvent çökeltmesinin SDS'yi kritik seviyelerin altına başarıyla tükettiği gösterilmiş olsa da, protein geri kazanımı bu yaklaşımın uzun süredir devam eden bir endişesi olmuştur. Birden fazla grup, protein konsantrasyonunun, moleküler ağırlığın ve hidrofobikliğin bir fonksiyonu olarak kabul edilemez derecede düşük yağış verimi ile bir protein geri kazanım önyargısı gözlemlemiştir22,23. Literatürde bildirilen yağış protokollerinin çeşitliliği nedeniyle standartlaştırılmış yağış koşulları geliştirilmiştir. 2013 yılında, Crowell ve ark. ilk olarak% 80 aseton24'teki proteinlerin çökeltme verimliliğine iyonik mukavemetin bağımlılığını bildirmiştir. İncelenen tüm proteinler için, 30 mM'ye kadar sodyum klorür ilavesinin, verimi en üst düzeye çıkarmak için gerekli olduğu gösterilmiştir (% 100'e kadar geri kazanım). Daha yakın zamanlarda, Nickerson ve ark., aseton yağışı sırasında daha yüksek iyonik mukavemetin (100 mM'ye kadar) yüksek sıcaklık (20 ° C) ile kombinasyonunun 2-5 dakika25'te neredeyse kantitatif iyileşme sağladığını göstermiştir. Düşük moleküler ağırlıklı (LMW) proteinlerin geri kazanımında hafif bir düşüş gözlendi. Bu nedenle, Baghalabadi ve ark. tarafından hazırlanan bir sonraki rapor, spesifik tuzları, özellikle çinko sülfatı, daha yüksek bir organik çözücü (% 97 aseton) ile birleştirerek LMW proteinlerinin ve peptitlerinin (≤5 kDa) başarılı bir şekilde geri kazanıldığını göstermiştir26.
Yağış protokolünün rafine edilmesi, MS bazlı proteomikler için daha güvenilir bir protein saflaştırma stratejisi sunarken, geleneksel çökeltmenin başarısı büyük ölçüde kullanıcı tekniğine dayanmaktadır. Bu çalışmanın birincil amacı, protein peletinin kirletici süpernatandan izolasyonunu kolaylaştıran sağlam bir çökeltme stratejisi sunmaktır. Gözenekli PTFE membran filtresi27 üzerinde agrega proteini izole ederek pipetlemeyi ortadan kaldırmak için tek kullanımlık bir filtreleme kartuşu geliştirilmiştir. Süpernatanttaki MS müdahale eden bileşenler, kısa, düşük hızlı bir santrifüjleme adımında etkili bir şekilde çıkarılır. Tek kullanımlık filtre kartuşu ayrıca, kütle spektrometrisinden önce, çözündürme ve isteğe bağlı protein sindiriminin ardından numunenin temizlenmesini kolaylaştıran değiştirilebilir bir SPE kartuşu sunar.
Modifiye aseton ve kloroform/metanol/su28 protokolleri de dahil olmak üzere bir dizi önerilen proteom çökeltme iş akışı, geleneksel (şişe bazlı) ve tek kullanımlık iki durumlu filtreleme ve ekstraksiyon kartuşunda yarı otomatik bir formatta sunulmaktadır. Elde edilen protein geri kazanımları ve SDS tükenme verimlilikleri, her protokolden beklenen sonucu göstermek için aşağıdan yukarıya LC-MS / MS proteom kapsamı ile birlikte vurgulanır. Her yaklaşımla ilişkili pratik faydalar ve dezavantajlar tartışılmaktadır.

<table><tbody><tr><td>Aseton</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC177170010</td><td>&le; 0,002 % aldehit</td></tr><tr><td>Asetonitril</td><td>Fisher Scientific</td><td>A998-4</td><td>HPLC derecesi</td></tr><tr><td>Amonyum Bikarbonat</td><td>Millipore Sigma</td><td>A6141-1KG</td><td>katı</td></tr><tr><td>Beta merkaptoetanol</td><td>Millipore Sigma</td><td>M3148-25ML</td><td>Moleküler biyoloji derecesi</td></tr><tr><td>Bromofenol mavisi</td><td>Millipore Sigma</td><td>B8026-5G</td><td>Bromofenol mavi sodyum tuzu</td></tr><tr><td>Kloroform</td><td>Fisher Scientific</td><td>C298-400</td><td>Kloroform</td></tr><tr><td>Formik Asit</td><td>Honeywell</td><td>56302</td><td>LC-MS için eluent ekleme</td></tr><tr><td>Fusion Lumos Kütle Spektrometresi</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td></td><td>Standart protein karışımının analizi için</td></tr><tr><td>Gliserol</td><td>Millipore Sigma</td><td>356352-1L-M</td><td>Moleküler biyoloji için ise %99 ></td></tr><tr><td>İzopropanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A4641</td><td>HPLC derecesi</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A452SK-4</td><td>HPLC derecesi</td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj</td><td>Fisher Scientific</td><td>75-400-102</td><td>21.000 XG'ye kadar</td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj Tüpü (1.5 mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-130</td><td>Konik taban</td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj Tüpü&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; (2 mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-681-321</td><td>yuvarlak taban</td></tr><tr><td>Mikropipet İpuçları&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; (0.1-10 &mu; L)</td><td>Fisher Scientific</td><td>21-197-28</td><td>Evrensel pipet ucu, steril olmayan</td></tr><tr><td>Mikropipet İpuçları&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; (1-200 &mu; L)</td><td>Fisher Scientific</td><td>07-200-302</td><td>Evrensel pipet ucu, steril olmayan</td></tr><tr><td>Mikropipet İpuçları&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; (200-1000 &mu; L)</td><td>Fisher Scientific</td><td>07-200-303</td><td>Evrensel pipet ucu, steril olmayan</td></tr><tr><td>Mikropipetler</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-710-903</td><td>Micropipet Trio paketi</td></tr><tr><td>Pepsin</td><td>Millipore Sigma</td><td>P0525000</td><td>Liyofilize toz,&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; >3200 birim/ mg</td></tr><tr><td>ProTrap XG</td><td>Proteoform Bilimsel</td><td>PXG-0002</td><td>Kutu başına 50 tam birim</td></tr><tr><td>Sodyum Klorür</td><td>Millipore Sigma</td><td>S9888-1KG</td><td>ACS reaktifi, >99 %</td></tr><tr><td>Sodyum Dodesil Sülfat</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>28312</td><td>Toz katı</td></tr><tr><td>timsTOF Pro Kütle Spektrometresi</td><td>Bruker</td><td></td><td>Karaciğer proteom ekstraktının analizi için</td></tr><tr><td>Trifluoroasetik Asit</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>L06374. AP</td><td>99%</td></tr><tr><td>Tris</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP152-500</td><td>Moleküler biyoloji derecesi</td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Millipore Sigma</td><td>9002-07-7</td><td>Sığır pankreasından, TPCK ile tedavi edilen</td></tr><tr><td>Urea</td><td>Bio-Rad</td><td>1610731</td><td>katı</td></tr><tr><td>Su (deionize)</td><td>Sartorius Arium Mini Su Arıtma Sistemi</td><td>76307-662</td><td>Tip 1 ultrasaf (18.2 M&Omega; cm)</td></tr><tr><td>Çinko Sülfat</td><td>Millipore Sigma</td><td>307491-100G</td><td>katı</td></tr></tbody></table>

kütle spektrometrisinden Önce sağlam proteom saflaştırması için organik solvent bazlı protein yağışı

Organic Solvent-Based Protein Precipitation for Robust Proteome Purification Ahead of Mass Spectrometry

Kütle spektrometresi (MS) cihazlarındaki çoklu ilerlemeler kalitatif ve kantitatif proteom analizini geliştirmiş olsa da, MS'ten önce proteinleri izole etmek, zenginleştirmek ve işlemek için daha güvenilir ön uç yaklaşımları başarılı proteom karakterizasyonu için kritik öneme sahiptir. Düşük, tutarsız protein geri kazanımı ve yüzey aktif maddeler gibi artık safsızlıklar MS analizine zararlıdır. Protein çökeltmesi genellikle diğer numune hazırlama stratejilerine kıyasla güvenilmez, zaman alıcı ve teknik olarak gerçekleştirilmesi zor olarak kabul edilir. Bu endişeler, optimal protein çökeltme protokolleri kullanılarak aşılır. Aseton çökeltmesi için, spesifik tuzların, sıcaklık kontrolünün, çözücü bileşiminin ve çökeltme süresinin kombinasyonu kritik öneme sahipken, kloroform/metanolün/su çökeltmesinin verimliliği uygun pipetleme ve şişe manipülasyonuna bağlıdır. Alternatif olarak, bu çökeltme protokolleri tek kullanımlık bir spin kartuşu içinde kolaylaştırılmış ve yarı otomatiktir. Geleneksel formatta ve tek kullanımlık, iki aşamalı bir filtreleme ve ekstraksiyon kartuşu kullanılarak solvent bazlı protein çökeltmesinin beklenen sonuçları bu çalışmada gösterilmiştir. Bu, proteomik karışımların aşağıdan yukarıya LC-MS / MS analizi ile ayrıntılı karakterizasyonunu içerir. SDS tabanlı iş akışlarının üstün performansı, kontamine olmayan proteinlere göre de gösterilmiştir.

Şekil 4 , proteinlerin aseton kullanılarak tek kullanımlık bir filtre kartuşunda şişe bazlı veya kartuş tarafından kolaylaştırılmış çökeltilmesini takiben beklenen SDS tükenmesini özetlemektedir. Aseton cinsinden geleneksel gece inkübasyonu (-20 ° C), oda sıcaklığında (adım 2) hızlı aseton çökeltme protokolü ve CMW çökeltmesi (adım 4) ile karşılaştırılır. Kalıntı SDS, metilen mavisi aktif maddeler (MBAS) testi29 ile ölçülmüştür. Kısaca, 100 μL numune 100 μL MBAS reakt...

Mevcut protokol, kütle spektrometrisinden önce proteom numunelerinin sağlam ve hızlı geri kazanımı ve saflaştırılması için kontrollü koşullar altında çözücü bazlı protein çökeltmesini açıklamaktadır.

Kütle Spektrometrisinden Önce Sağlam Proteom Saflaştırması için Organik Solvent Bazlı Protein Yağışı

While multiple advances in mass spectrometry (MS) instruments have improved qualitative and quantitative proteome analysis, more reliable front-end ...

Bu protokoller, solvent bazlı çökeltme yoluyla proteinlerin geri kazanımını ve saflığını en üst düzeye çıkarmak için tasarlanmıştır. Size şişelerde yağış yapmak için birkaç püf noktası ve ayrıca bir spin kartuşu formatında yarı otomatik bir yaklaşım göstereceğiz. Ayrıca yağış protokolünü tutarlı ve hızlı olacak şekilde optimize ettik.Tüm protokol sadece birkaç dakika sürer. Bu protokoller, proteinlerin çözücü çökeltilmesinin, kütle spektrometrisinden önce numune hazırlığı için ideal olduğunu göstermektedir. Protokoller, yukarıdan yukarıya ve yukarıdan aşağıya profesyonel iş akışlarına sorunsuz bir şekilde uyacaktır.Bugün bizim için gösterecek olan Ziheng Dang ve Victoria Miller, Halifax'taki Proteoform Scientific'te Kıdemli Bilim Adamı, Nova Scotia Pipet 90 mikrolitre partikülsüz protein çözeltisini bir polipropilen mikro santrifüj tüpüne dönüştürecek. Daha sonra numune çözeltisine 10 mikrolitre bir mol sulu sodyum klorür ve 400 mikrolitre aseton ekleyin, çözücüleri birleştirmek için şişeyi yavaşça kapatın ve dokunun. Şişenin kuluçkaya yatmasına izin verin.Kuluçkadan sonra oda sıcaklığı en az iki dakika boyunca bozulmadan, şişenin yönünü belirten numuneleri santrifüj edin ve oda sıcaklığında 10.000 RCF veya daha yüksek bir sıcaklıkta en az iki dakika boyunca döndürün. Santrifüjlemeden sonra, tüpün dibinde görünür beyaz bir pelet gözlenir. Bu noktada, tüpün kapağını açın ve tüpü ters çevirerek süpernatı bir atık kabına boşaltın.Şişeden kalan çözücüyü çekmek için bir kağıt havlu kullanın. SDS içeren numuneler için. Peleti rahatsız etmeden 400 mikrolitre taze aseton dağıtın.Numuneyi oda sıcaklığında 10.000 kez G veya daha yüksek bir sıcaklıkta bir dakika boyunca derhal merkezleyin ve şişeyi rotora ilk spinle aynı yönde yerleştirin. Yıkama çözücüsünü daha önce açıklandığı gibi sayın. Numuneyi kapak açıkken yaklaşık bir dakika kurulayın.Bir duman davlumbazında, bir pelet çözünürlüğünden önce. Protein çözeltisinin 100 mikrolitresini bir polipropilen şişeye dağıtın. Duman davlumbazında, 400 mikrolitre metanol ve ardından 100 mikrolitre kloroform ekleyin.Şişeyi ve girdabı karıştırmak için kısaca kapatın. 300 mikrolitre suyu doğrudan şişenin merkezine hızlı bir şekilde dağıtın. Şişeyi kapatın ve polipropilen şişeyi bir santrifüje yerleştirdikten sonra bir dakika boyunca rahatsız edilmeden tezgahın üstüne oturmasına izin verin ve oda sıcaklığında 10.000 kat G veya daha yüksek bir sıcaklıkta beş dakika boyunca döndürün.Flakonun, şişeye kadar yaklaşık 45 derecede iki çözücü tabakasına ve görünür beyaz bir pelet olduğu gözlenmiştir. Başlangıçta ve daha sonra şişede bir boncuk oluşturana kadar 200 mikrolitrelik bir pipet ucu ile bir mililitrelik büyük bir mikro pipet ucu kullanarak çözücüyü üst tabakadan eşit bir oranda çıkarın. Çözücüyü şişenin kenarından aşağı dağıtarak peleti rahatsız etmeden numune şişesine 400 mikrolitre taze metanol ekleyin.Şişeyi kapatın ve çözücüleri bir araya getirmek için şişeyi hafifçe sallayarak çözücü katmanlarını birleştirin. Rotor santrifüjündeki şişenin yönünü not eden beyaz protein peletini oda sıcaklığında 10.000 kez G veya daha yüksek bir sıcaklıkta en az 10 dakika boyunca gözlemlemek. Şişeyi pelet aşağı bakacak şekilde açın.Şişenin üst kenarı boyunca bir pipet ucu yerleştirin ve süpernatantı bir mililitrelik mikro pipet ucuyla yavaş ama eşit bir hızda çıkarın. Yaklaşık 20 mikrolitre çözücü tutar. Artık çözücünün duman davlumbazında kurumasına izin verin.Proteini çökeltmek için. Tek kullanımlık bir filtreleme kartuşu kullanarak fişi üst filtreleme kartuşuna takın. 90 mikrolitre protein çözeltisini 10 mikrolitre bir mol aquas, sodyum klorür ve 400 mikrolitre aseton birleştirin.Tezgah üstünde en az iki dakika inkübe edin, hazırlanan protein numunesini, oda sıcaklığının 2.500 katında iki dakika boyunca filtrasyon kartuşuna hala bağlı olan G.At santrifüj edin, kartuşu ters çevirin ve fişi kartuş tabanından sökün ve çıkarın. Filtrasyon kartuşunu temiz bir şişeye yerleştirin, protein numunesini oda sıcaklığında 500 kat G'de üç dakika boyunca santrifüj yapın. Çözücü yoluyla akışı alt şişeden atın.Protein peletini filtrasyon kartuşuna 400 mikrolitre aseton ekleyerek yıkayın, oda sıcaklığında 500 kat G'de veya üst kartuşta çözücü kalmayana kadar üç dakika boyunca santrifüj yapın. Daha önce gösterilen protein çökeltme protokollerini takiben. Protein peletinin yeniden çözündürülmesi için yeniden çözündürme protokolüne geçmeden hemen önce iki ila beş mikrolitre ISO propanolü, filtrasyon kartuşunun tabanındaki membranı ıslatarak proteini yeniden çözündürün, suda formik asidin hacimce çözeltisi olarak% 80 hacim hazırlayın.Bu asit çözeltisini eksi 20 santigrat derecede ve çökeltilmiş protein içeren filtrasyon kartuşunu önceden soğutun. 50 mikrolitre soğuk seyreltilmiş formik asidi soğutulmuş kartuş kapağına ve girdabına 30 saniye boyunca dağıtın. Filtreleme kartuşunu 10 dakika boyunca eksi 20 santigrat derecede dondurucuya geri koyun.Önceki vorteks ve inkübasyon adımlarını tekrarlayın. 500 mikrolitrelik son hacme 450 mikrolitre su ekleyin. Formik asidi %8'e kadar seyreltmek Kartuşun vidasını ters çevirin ve fişi kartuş tabanından çıkarın ve SPE kartuşunu şişeye takın.Proteini SPE kartuşundan oda sıcaklığında bir santrifüjde beş dakika boyunca 800 kez döndürün G.Üst kartuşta çözücü kalırsa, kartuşu santrifüje geri döndürün ve dönüşü tekrarlayın. SPE kartuşuna su içinde% 0.1 TFA ile% 300 mikrolitre% 5 asetonitril ekleyerek durulayın, SPE kartuşundan 2000 kez iki dakika boyunca akın G.Düşük moleküler ağırlıklı proteinler veya sindirilmiş peptitler için 300 mikrolitre akarak numuneyi süzün. Sağlam proteinler için 2.500 kez G.For beş dakika boyunca TFA'nın% 0.1'i ile% 50 asetonitril.% 0.1 Trifloro münzevi asit ile 300 mikrolitre% 75 asetonitril kullanarak ek bir elusion adımı ile takip edin. Elde edilen iki özü birleştirin. Şekil, tek kullanımlık bir filtre kartuşundaki proteinlerin şişe bazlı veya çökeltilmesini takiben SDS tükenmesini karşılaştırmaktadır.Geleneksel hızlı ve CMW protokolleri ile aseton kullanımı. Tüm yaklaşımlar, optimum kütle spektrometresi analizine izin vermek için SDS'yi azaltır. Bu şekil, işlenmiş bir maya toplam hücre lizatının SDS sayfa analizi yoluyla hızlı aseton çökeltmesini ve CMW çökelmesini izleyerek kantitatif protein geri kazanımını göstermektedir.Tüm yağış protokolleri ile tutarlı iyileşme sağlanmıştır. Tek kullanımlık bir filtrasyon kartuşundaki çöküntü, biriken proteinleri bir membran filtresinin üzerinde tutarken süpernatant içeren SDS'yi dikkatlice pipet etme ihtiyacını ortadan kaldırır. Böylece, üç bağımsız replikasyon boyunca süpernatant fraksiyonlarda görünür bantlar tespit edilmedi.Kartuş bazlı protein çökeltisi, Pepsin sindirilmiş sığır plazması örneğinin flakon bazlı çökelmeye göre üstün geri kazanımını gösterir. Kartuşta sodyum klorür kullanılırken verimdeki daha önemli farklılıklar görülürken, çinko çözücü kullanıldığında en yüksek verimle sonuçlanır. Bu şekil, her bir peptid örneğinden peptid tepe yoğunluğunu, tek kullanımlık filtre kartuşlarında işlenen numuneler için daha yüksek bir peptid bolluğunu yansıtan birin üzerinde bir oranla ölçer.Şekil, üç replikasyon numune preparatı boyunca protein başına tanımlanmış peptitlerin sayısını karşılaştırmaktadır. Bu grafiklerdeki 0,94 ila 0,95 arasındaki korelasyon katsayıları, aşağıdan yukarıya kütle spektrometresi analizi için numune hazırlama yaklaşımının yüksek tutarlılığını göstermektedir. Yani bu pelet bir kez oluştuğunda, onu rahatsız etmekten gerçekten kaçınmak istersiniz.Sağlam bir pelet olarak tutarsanız, daha yüksek bir verim elde edersiniz. Bu yüzden bu peleti ekstra asetonla yıkamayı unutmadığınızdan emin olun. Bu, numunemizi mümkün olduğunca temiz tutan SDS'den kurtulduğumuzdan emin olmamızı sağlıyor ve bu da bize en iyi kütle spektrometresi analizini veriyor.Bu nedenle, fazla çözücüyü ters çevirerek çıkarmanın, numuneyi pipetlemeye çalışmaktan çok daha basit olduğunu bulduk. Bu şekilde daha tutarlı verimler elde edersiniz. Oda sıcaklığında aseton çökeltme gerçekleştirmek, dondurucudaki geleneksel yağıştan daha tutarlı ve daha hızlı iyileşme ile sonuçlandı.

organic-solvent-based-protein-precipitation-for-robust-proteome

Research

JoVE Journal

Chemistry

Kimya

Elektrik alanların uygulama tarafından bir dizi elektrot - Dijital Mikroakiskan ayrık damlacıklar (ml ~ nL) manipülasyon ile karakterize bir tekniktir. Hızlı, sıralı, minyatür otomatik biyokimya testleri yürütmek için çok uygundur. Burada, birkaç proteomik işlem adımlarını otomatik olarak yetenekli bir platform raporu.

Otomatik Proteomik İşleme Dijital Mikroakiskan

Biz doğru ve yanlış protein-protein etkileşimleri ayırmak için önce tanıtıldı HIZLI (Nakavt ile birlikte kantitatif immünopresipitasyon) yaklaşımın bir çeşitleme sunuyor. Bizim yaklaşıma...

Dayanarak protein-protein etkileşimleri ve kimliği için bir protokol<sup&gt; 15</sup&gt; K Metabolik Etiketleme, immünopresipitasyon, Kantitatif Kütle Spektrometrisi ve Affinity Modülasyon

İnsan ve fare beyin dokusu için üre / tiyoüre / SDS tamponu kullanılarak ortak bir protein ekstraksiyon protokolü sağlar: 2D-dige ve mini 2DE immunoblotting kendi müteakip özellik tayini ile protein indentification. Bu yöntem, insan biyopsi ve deneysel modellerden gerçekleştirilen daha güvenilir ve tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek için bir olanak sağlar.

Konsensus Beyin kaynaklı protein, 2D-DIGE ve Mini 2DE İmmünoblotting Hem kullanma İnsan ve Kemirgen Beyin proteomun Çalışmaları Ekstraksiyon Protokolü

Indirgeyici dimetilasyonu (Redi etiketleme) tarafından peptidlerin kararlı izotop etiketleme doğru kütle spektrometresi tabanlı nicel Proteomikte için hızlı, ucuz bir stratejidir. Burada, hemen hemen her tür örnek uygulanabilir Redi yaklaşım kullanılarak protein karışımlarının hazırlanması ve analizi için güçlü bir yöntem ortaya koymaktadır.

Kararlı İzotop Etiketleme için indirgeyici dimetilasyonu kullanma Sayısal Proteomiks

Metabolomiks deneylerde sonuçların güvenilirliği numune hazırlama etkinliği ve yeniden üretilebilirlik bağlıdır. Daha sonra bileşikler bin kadar analiz, ya da ilgi sadece bileşik sınıfları seçeneği ile biyolojik sıvılardan metabolitlerin çıkarma sağlayan bir sıkı ve derinlemesine bir yöntem tarif edilmektedir.

Derinlemesine ve Bilgilendirici metabolomic Analizi Çoklu Metaboliti&#39;nin Bileşik Sınıfları Kurtar Multi-step Hazırlama Tekniği

Bu protokol, deniz suyundan toplanan mikrobiyal biyokütleden protein ve DNA'nın ekstraksiyonu ve konsantrasyonu ve ardından tandem kütle spektrometresi tabanlı proteomik analiz için uygun triptik peptitlerin üretilmesi içindir.

Bir Aquatic Mikrobiyal Metaproteomics İş Akışı: Tandem Kütle Spektrometre tabanlı analiz için uygun Triptik Peptitler için Hücreleri itibaren

Protein-protein ve protein-metaboliti etkileşimler tüm hücresel fonksiyonları için önemlidir. Burada, biz seçim bir protein ile bu etkileşimlerin paralel analiz sağlayan bir protokol tanımlamak. Bizim iletişim kuralı bitki hücre kültürleri için optimize edildi ve benzeşme arıtma kütle spektrometresi tabanlı protein ve metaboliti algılama ile birleştirir.

2 in 1: tek adımlı benzeşme arıtma paralel analizi için Protein-Protein ve Protein-metaboliti kompleksleri

Açıklanan ilgi ve etiket-free kütle spektrometresi belirli bir protein in immünafinite zenginleştirme kullanarak bir nükleer hücre altı fraksiyonu protein etkileşim ortakları tanımlamak için bir proteomik iş akışıdır. İş akışı hücre altı fraksiyonu, immünoprepitasyon, filtre destekli numune hazırlama, çevrimdışı temizleme, kütle spektrometresi ve aşağı akım biyoinformatik boru hattını içerir.

Büyük Ölçekli Nükleer Etkileşimom Profilleme için Etiketsiz İmmünoprekütle Spektrometresi İş Akışı

Bu protokol, sıvı kromatografisi-tandem kütle spektrometrisi kullanılarak analiz edilmeden önce trikloroasetik asit (TCA) protein çökeltmesi ve asit hidrolizi yoluyla biyolojik matrislerden protein olmayan amino asitlerin ekstraksiyonunu açıklamaktadır.

Sıvı Kromatografisi-Tandem Kütle Spektrometrisi Analizi için Siyanobakterilerden Protein Dışı Amino Asitlerin Ekstraksiyonu

Bu protokol, Schirmer şeritlerini kullanarak gözyaşı örneklerini toplamak için bir yöntemi ve non-invaziv gözyaşı proteini biyobelirteçlerini keşfetmek için entegre bir kantitatif iş akışını açıklar. Süspansiyon yakalama numunesi hazırlama iş akışı, hızlı ve sağlam gözyaşı numunesi hazırlama ve kütle spektrometrik analizine olanak tanıyarak standart çözelti içi prosedürlere göre daha yüksek peptit geri kazanım verimi ve protein tanımlaması sağlar.

Sıvı Kromatografisi-Tandem Kütle Spektrometrisi ile Gözyaşı Proteomiği için Bir Protein Süspansiyonu-Tutucu Numune Hazırlama

Burada, formalinle sabitlenmiş, parafine gömülü doku kesitlerinde izole edilmiş ilgi alanlarını kullanarak kütle spektrometresi tabanlı bir proteomik yöntem oluşturuyoruz. Bu protokol, arşivlenmiş formalinle sabitlenmiş, parafine gömülü doku kesitlerindeki belirli doku alanlarından proteomu analiz etmek için kullanılır.

Seçilmiş Doku Bölgelerini Kullanan Kütle Spektrometresi Tabanlı Proteomikler için Kolaylaştırılmış Bir Yaklaşım

Keşfedin organik solvent bazlı protein yağışı yöntemiyle kütle spektrometrisi öncesi hızlı ve güvenilir proteom saflaştırma. Bu protokol yüksek protein geri kazanımı ve saflık sağlar.

Kütle Spektrometrisinden Önce Sağlam Proteom Saflaştırması için Organik Solvent Bazlı Protein Yağışı

Daha fazla video keşfet