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Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

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마우스 실험에서의 물질 투여 방법

Overview

쥐(Mus musmusculus)에서수행된 많은 조사는 동물에 대한 실험제의 투여가 필요하다. 예를 들어, 특정 치료의 효능을 테스트하거나, 병리학적 상태를 유도하거나, 마취 또는 완화 치료를 투여하는 것이 어려울 수 있다. 안전하고 효율적인 전달을 보장하기 위해서는 치료 시행 전에 다양한 요인을 고려하는 것이 중요합니다.

이 비디오는 마우스에서 에이전트 관리를 검토하며, 실험에이전트의 투여를 계획할 때 점도, 용량 및 친창성과 같은 고려해야 할 특성을 강조하여 시작합니다. 후속 논의는 주사기와 바늘의 구조 성분의 묘사, 바늘 게이지를 해석하는 방법, 일반적인 주입 부위에 대한 안전한 마우스 구속 방법을 포함한 주입 방법에 초점을 맞추고 있습니다. 마우스에서 피하(SC/SubQ), 복막(IP), 꼬리 정맥(IV) 주사를 수행하기 위한 자세한 지침이 제공됩니다. 또한 이러한 기술의 응용 프로그램과 대체 관리 경로에 대해서도 설명합니다.

Procedure

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많은 실험은 마우스에 에이전트의 관리에 따라 달라집니다. 자주, 이러한 에이전트는 생물학적 과정에 미치는 영향을 테스트 하기 위해 도입. 에이전트는 또한 실험을 위한 동물을 준비하는 데 중요한 역할을 할 수 있습니다. 이 비디오에서는 실험 에이전트 관리, 에이전트 전달 도구, 일부 특정 관리 경로 및 이러한 필수 기술의 응용 프로그램에 대한 중요한 고려 사항에 대해 설명합니다.

그렇다면 실험제 의 투여를 계획할 때 고려해야 할 요인은 무엇일까요?

첫 번째는 적절한 용량입니다. 일반적으로 동물의 무게와 관련하여 계산되어 에이전트의 정확한 복용량을 제공하는 것이 중요합니다.

행정 경로도 고려해야 합니다. 에이전트의 궁전성, 점도, 투여되는 양, 표적 조직 및 원하는 보급 속도와 같은 특성은 선택해야 할 많은 투여 경로 중 어느 것을 결정합니다. 이 비디오에서 우리는 에이전트 납품의 가장 효율적인 방법 중 하나 인 주입에 초점을 맞출 것입니다.

주입을 수행하는 방법에 대해 논의하기 전에 이 기술에 대한 주요 도구에 익숙해지자.

우리는 주사기로 시작합니다. 액체는 정확한 부피 측정을 허용하도록 표시된 배럴 내에 보관됩니다. 플런저는 배럴 내에 적합하며 내용물의 움직임을 유도하는 데 사용됩니다. 마지막으로, 주사기 팁은 바늘 허브의 부착 부위입니다. 바늘 샤프트의 반대쪽 끝에는 베브레드 팁이 있습니다. 조심, 그것은 매우 날카로운!

바늘 허브는 크기 또는 "게이지"를 반영하도록 색상으로 코딩되며, 게이지 번호가 높을수록 바늘이 더 작아지게 됩니다. 게이지는 원하는 전달 경로에 따라 선택됩니다: 더 작거나 더 민감한 영역, 필요한 바늘이 작을수록.

실험에 적합한 바늘과 주사기를 선택한 후 플런저에서 다시 당겨서 에이전트를 배럴에 넣습니다. 에이전트와 함께 주입된 기포는 조직을 방해하고 실험적인 동물을 해칠 수 있습니다. 따라서 주사기를 반전시키고 배럴을 부드럽게 쓸어 넘기면 거품이 끝을 향해 움직이고 탈출합니다. 가능하면 거품이 완전히 제거되었는지 확인하기 위해 일부 초과 에이전트를 추방하십시오.

이제 주사기가 잠기고 로드되었으므로 주사를 거의 수행할 준비가 되었습니다!

시작하기 전에 장갑을 포함한 적절한 개인 보호 장비를 장착하는 것이 중요합니다. 적절한 동물 취급도 필수적이며, 사용되는 주사 부위에 따라 약간 다릅니다.

종종 동물의 목진피 아래 표적인 피하 주사의 경우, 마우스는 "스크러핑"에 의해 억제됩니다. 먼저 동물을 꼬리로 잡고 케이지 뚜껑을 잡을 수 있습니다. 그런 다음, 단단히 스크러프를 잡고 동물의 어깨너머로 피부 텐트를 들어 올린다.

바늘은 텐트 피부의 바닥에 삽입되어야하며, 에이전트는 플런저에 확고하고 일관된 압력으로 분배해야합니다. 주입된 액체는 천천히 혈류로 흡수될 것입니다.

신체 구멍내 의 주사는 섭취와 유사한 속도로 흡수됩니다. 복부에 접근하려면, 더듬거리는 동물을 뒤집어 서 핑키 아래에 꼬리를 단단히 넣습니다.

그런 다음 동물의 복부를 4 사분면으로 나누고 바늘을 왼쪽 또는 오른쪽 사분면에 삽입합니다. 플런저에 확고하고 일관된 압력을 적용하여 최대 수백 개의 마이크로리터의 에이전트를 제공합니다. 양자 택일로, 정맥 주사는 실험 에이전트의 보다 효율적이고 체계적인 전달을 허용합니다.

IV 주사는 꼬리 정맥에서 가장 일반적으로 수행됩니다. 첫째, 마우스는 몇 분 동안 열 램프 아래 따뜻하게되어 정맥이 팽창하고 바늘 삽입을 더 쉽게 만듭니다. 주입 하는 동안 마우스를 꾸준히 유지 하려면, 플라스틱 억제제에 배치, 뒷면에 특수 구멍을 통해 꼬리를 미끄러.

올바른 혈관을 식별하는 것은 성공적인 정맥 주사에 필수적입니다. 꼬리의 양쪽에 두 개의 caudal 정맥 중 하나를 찾아야합니다; 꼬리 밑면에 있는 동맥이 아닙니다.

바늘 벨 측면을 위로 잡고 정맥에 삽입하십시오. 바늘이 올바르게 놓이면, 주사로 인해 정맥이 진한 파란색에서 옅은 흰색으로 변하게 됩니다.

각 주사 후, 재래핑없이 생물 위험 날카로운 용기에 바늘을 폐기. 팁이 무디어지고 마우스에 부상을 일으킬 수 있으므로 바늘을 재사용하지 마십시오.

이제 일반적인 주입 방법에 익숙해졌으니 실험제 전달의 몇 가지 실용적인 응용 프로그램을 살펴보겠습니다.

많은 실험에서, 마우스는 질병 진행뿐만 아니라 숙주 병원체 상호 작용을 연구하기 위해 특정 병원체에 감염된다. 예를 들어, 항생제 내성 박테리아의 피하 주사는 병원균의 독성에 대한 판독인 병변을 유발합니다. 대안적으로, 풋 패드에 주사감염의 사이트에 면역 세포 모집의 라이브 이미징에 사용할 수 있습니다.

마우스 모델은 또한 암 진행 및 치료 연구에 유용하다. 이러한 모델을 생성하기 위해, 주사는 발암성 화합물의 전달과 암세포의 이식을 숙주 조직으로 전달하여 마우스의 악성 성장을 신속하고 효율적으로 유도하는 데 사용될 수 있다.

그러나 에이전트 납품에 항상 주사가 필요한 것은 아닙니다. 비강 내 접종은 예를 들어, 호흡기 질환 진행을 모방하고 연구하기 위해 폐에 관심있는 에이전트를 투여하는 데 사용할 수 있습니다. 또 다른 경로, gavage, 식품 또는 수성 처리를 통해 달성 할 수없는 정확하고 정확한 투약을 보장하기 위해 위장에 에이전트의 직접 투여할 수 있습니다.

실험 에이전트를 마우스에 도입하는 JoVE의 개요를 방금 시청했습니다. 이 비디오에서우리는 실험 에이전트, 마우스 주사를위한 도구 및 전략 및 이러한 중요한 기술의 일부 응용 프로그램을 선택할 때 고려해야 할 요인을 검토했습니다. 시청해 주셔서 감사합니다!

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