4,871 Views
•
07:27 min
•
February 11, 2021
DOI:
Этот метод может ответить на важные функциональные вопросы о нейронных реакциях на вкус в геникулятных ганглиях, важной части вкусового пути внутренней хорды tympani. Этот метод может быть использован для мониторинга реакций в реальном времени нескольких отдельных нейронов в одном экспериментальном испытании, поскольку клетки, зарегистрированные на животное, значительно выше, чем обычно наблюдается с помощью электрофизиологического метода. С помощью установленной на головном упоре мыши в положении лежа на спине на грелке сделайте двухсантиметровый разрез средней линии в коже над горлом, от грудины до подбородка.
И втянуть кожу и подчелюстные железы, чтобы полностью обнажить дигастрические мышцы. После размещения шва в паратрахеальной мускулатуре отделите шов тупым рассечением и втяните ткань, чтобы открыть его. Осторожно вырежьте отверстие в верхней части трахеи, достаточно большое, чтобы поместить кусок полиэтиленовой трубки, не разрезая более половины диаметра трахеи, и вставьте трубку в трахею по направлению к легким.
Перепозиционирование втягивателей, чтобы освободить паратрахеальную мускулатуру и втянуть подчелюстные железы. Затем используйте небольшое количество ветеринарного клея, чтобы запечатать паратрахеальную мускулатуру вместе над трубкой. Чтобы разорвать тимпаническую буллу, осторожно поддразнивайте нужную дигастрическую мышцу вверх и разтяните соединительную ткань.
Сделайте разрез на переднем конце мышцы, избегая кровеносных сосудов. И оттягивайтесь назад сзади, пока не очиститесь от тимпанической буллы. Слегка наклоните голову назад, чтобы приподнять тимпаническую буллу и найти ветвь сонной артерии с передней к задней точке введения дигастральной мышцы.
Пальпать только по отношению к этому кровеносному сосуду для выпуклой структуры тимпанической буллы и найти шов в мускулатуре. Используя два набора тонких щипцов, тупое рассечение по шву до тех пор, пока не будет видна кость тимпанической буллы, и используйте втягиваятели, чтобы сохранить четкий обзор кости. Найдите шов, идущий с передней на заднюю часть буллы, и используйте хирургический зонд, чтобы проткнуть отверстие в кости в центре шва, затем используйте набор тонких концевых ножниц, чтобы разрезать круглую область в кости, заботясь о том, чтобы не разрезать кровеносные сосуды с передней и задней стороны или ниже буллы.
Чтобы обнажить геникулят, найдите улитку. Перед улиткой находится тензорная мышца. Используйте пружинные ножницы, чтобы разрезать и удалить эту мышцу.
Используйте хирургический зонд, чтобы проткнуть отверстие в кохлеарном мысе и немедленно использовать всасывание, чтобы аспирировать любую жидкость, которая вытекает из отверстия. Увеличьте отверстие в улитке, заботясь о том, чтобы не повредить кровеносный сосуд, окружающий улитку, к заднему и боковому краю. И наклоните голову мыши вперед, чтобы найти отверстие в височной кости под бывшей кохлеарной структурой.
Обратите внимание на гребень, передний к отверстию, который находится непосредственно над седьмым нервом. И вставьте хирургический зонд в отверстие, чтобы позволить височной кости быть осторожно поднятой, чтобы обнажить седьмой нерв. Если геникулят не полностью виден, осторожно наклоните голову животного назад и попытайтесь подтянуть кость с передней части нерва.
Если ганглии все еще скрыты, вытяните больше кости снизу, заботясь о том, чтобы не поместить зонд глубоко под кость, так как это может повредить геникулят. Чтобы запустить панель tastant, используйте всасывание, чтобы удалить жидкость из-за геникулята и поместите мышь на абсорбирующую прокладку под рассекающим микроскопом. Используйте отверстие, оставленное в булле, отверстие в височной кости и седьмой нерв, чтобы найти геникулированный ганглий.
И используйте фильтр FITCGFP на эпифлуоресцентной области для проверки отдельных GCaMP-экспрессирующих геникулятных ганглийных нейронов. Поместите дозировочную иглу для одной линии вкуса крепко в рот животного и поместите чашку Петри под рот, чтобы поймать любую жидкость. Синхронизируйте начало видеозаписи с началом презентации, просматривая прямую трансляцию для ответов, дрейфа и просачивания во время записи.
Если происходит просачивание, всасывайте жидкость до тех пор, пока вид геникулята не будет ясным, и повторно доставляйте вкус. Если происходит дрейф, проверьте, что все части головного упора прочно затянуты. Если ответа не происходит, проверьте, что жидкость течет и что микроскоп и камера сфокусированы на правильном месте, не скрывая ничего, что заслоняет поле зрения.
Когда все желаемые эксперименты будут завершены, осторожно облегчите втягиватели и повторите экспозицию и вкусный анализ на противоположной стороне животного. Как уже отмечалось, вкусовые стимулы, применяемые к языку, должны приводить к быстрому преходящей увеличению флуоресценции GCaMP, вызывая заметное изменение яркости среди реагирующих нейронов. Анализ флуоресцентных видеоматериалов позволяет создавать следы, соответствующие изменениям флуоресценции по сравнению с исходным откликом в отдельных областях, представляющих интерес с течением времени.
Изменение интенсивности флуоресценции выше порогового уровня считается положительным ответом. Помимо повреждения ганглия, важно избегать кровотечений. Если происходит кровотечение, подождите, пока кровь сгустится, прежде чем применять физиологический раствор и всасывание, чтобы удалить кровь из поля зрения.
Визуализация геникулятных ганглиев позволила исследователям напрямую измерить реакцию нейронов на вкусовые стимулы и идентифицировать эти нейроны с помощью таких инструментов, как Cre-зависимый GCaMP.
Здесь мы представляем, как разоблачить геникулированный ганглий живой, анестезированной лабораторной мыши и как использовать кальциевую визуализацию для измерения реакций ансамблей этих нейронов на вкусовые стимулы, что позволяет проводить многочисленные испытания с различными стимуляторами. Это позволяет проводить глубокие сравнения того, какие нейроны реагируют на какие вкусности.
05:26
Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation
Related Videos
15421 Views
09:00
Calcium Imaging of Odor-evoked Responses in the Drosophila Antennal Lobe
Related Videos
25859 Views
11:26
Imaging Neuronal Responses in Slice Preparations of Vomeronasal Organ Expressing a Genetically Encoded Calcium Sensor
Related Videos
10759 Views
08:58
In vivo Calcium Imaging in Mouse Inferior Olive
Related Videos
5430 Views
07:53
µTongue: A Microfluidics-Based Functional Imaging Platform for the Tongue In Vivo
Related Videos
4171 Views
09:07
In Vivo Calcium Imaging of Neuronal Ensembles in Networks of Primary Sensory Neurons in Intact Dorsal Root Ganglia
Related Videos
2667 Views
04:39
In-Vivo Calcium Imaging of Sensory Neurons in the Rat Trigeminal Ganglion
Related Videos
1986 Views
06:06
In Vivo Calcium Imaging of Dorsal Root Ganglia Neurons' Response to Somatic and Visceral Stimuli
Related Videos
1384 Views
06:34
In Vivo Thoracic Dorsal Root Ganglia (DRG) Calcium Imaging and ECG Recording for Studying Peripheral Nerve Stimulation
Related Videos
687 Views
06:30
In Vivo Calcium Imaging of Taste-Induced Neural Responses in Adult Drosophila
Related Videos
359 Views
Read Article
Cite this Article
Fowler, B. E., Macpherson, L. J. In vivo Calcium Imaging of Mouse Geniculate Ganglion Neuron Responses to Taste Stimuli. J. Vis. Exp. (168), e62172, doi:10.3791/62172 (2021).
Copy