Les îlots de rongeurs évaluation de la réplication et la fonction des cellules bêta dans Adenovirally transduites isolées

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Summary

Ce protocole permet d'identifier les facteurs qui modulent fonctionnelle masse des cellules bêta de trouver des cibles thérapeutiques potentielles pour le traitement du diabète. Le protocole consiste en une méthode simplifiée pour évaluer la réplication des îlots et la fonction des cellules bêta des îlots de Langerhans isolés de rat après la manipulation de l'expression des gènes par des adénovirus.

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Fueger, P. T., Hernandez, A. M., Chen, Y. C., Colvin, E. S. Assessing Replication and Beta Cell Function in Adenovirally-transduced Isolated Rodent Islets. J. Vis. Exp. (64), e4080, doi:10.3791/4080 (2012).

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Abstract

L'homéostasie du glucose est principalement contrôlée par les hormones du système endocrinien de l'insuline et le glucagon, sécrété par la version bêta du pancréas et des cellules alpha, respectivement. Fonctionnelle masse des cellules bêta est déterminée par la masse des cellules bêta anatomique ainsi que la capacité des cellules bêta pour répondre à une charge en éléments nutritifs. Une perte de masse des cellules bêta fonctionnelles est au cœur de ces deux formes principales de diabète 1-3. Considérant que les résultats en déclin bêta fonctionnelles de masse de cellules à partir d'une attaque auto-immune de type 1 du diabète, dans le diabète de type 2, cette décroissance se développe à la fois une incapacité des cellules bêta à sécréter de l'insuline de façon appropriée et la destruction des cellules bêta à partir d'un cadre de mécanismes. Ainsi, les efforts visant à restaurer la fonctionnalité de masse des cellules bêta sont primordiaux pour un meilleur traitement des cures et potentiels pour le diabète.

Des efforts sont en cours pour identifier les voies moléculaires qui peuvent être exploitées afin de stimuler la réplication et d'améliorer la fonction des cellules bêta.Idéalement, les objectifs thérapeutiques permettrait d'améliorer à la fois la croissance des cellules bêta et la fonction. Peut-être plus important, cependant, c'est de déterminer si une stratégie qui stimule la croissance des cellules bêta se fait au prix de la fonction des cellules bêta atteinte (par exemple avec certains oncogènes) et vice-versa.

Par systématiquement la suppression ou la surexpression de l'expression de gènes cibles dans les îlots isolés de rat, on peut identifier des cibles thérapeutiques potentielles pour augmenter la masse des cellules bêta fonctionnelles 4-6. Des vecteurs adénoviraux peut être utilisé à des protéines efficacement surexpriment ou démontable en îlots isolés de rat 4,7-15. Ici, nous présentons une méthode pour manipuler l'expression des gènes en utilisant transduction adénovirale et d'évaluer la réplication des îlots et la fonction des cellules bêta des îlots de Langerhans isolés de rat (figure 1). Cette méthode a été utilisée précédemment pour identifier de nouvelles cibles qui modulent la réplication des cellules bêta ou la fonction 5,6,8,9,16,17.

Protocol

1. Transduction adénovirale et la culture d'îlots de rats

  1. Préparer une plaque à 6 puits de culture tissulaire non revêtu par addition de 2 ml de milieu (RPMI 1640 contenant 8 mM de glucose, 10% de sérum bovin foetal, de 50 unités / ml de pénicilline, et 50 mg / ml de streptomycine) au nombre requis de puits. Par exemple, une expérience typique peut exiger trois puits - un de chaque pour un contrôle sans virus, un contrôle du virus (par exemple, GFP-exprimer adénovirus), et le groupe expérimental.
  2. Chauffer la plaque à 37 ° C en le plaçant dans un incubateur de culture tissulaire pendant au moins 30 min.
  3. Immédiatement après isolement des îlots de rat 18,19, 100-200 îlots lieu dans des puits individuels de la plaque à 6 puits culture non-tissu enduit. Soixante îlots sont nécessaires pour la sécrétion d'insuline et des essais d'incorporation de thymidine. Les îlots restants peuvent être utilisés pour l'isolation de l'ARN pour les études d'expression génique ou l'isolement de protéines pour immunoblot.

[Note: De ce point de l'avant, s'il vous plaît suivre les protocoles institutionnels pour la manipulation, l'utilisation et l'élimination des matières infectieuses.]

  1. Agiter doucement la plaque pour amener les îlots au centre du puits.
  2. Pipeter l'adénovirus directement sur les îlots dans le centre du plat. Utilisez 100-500 multiplicités d'infection (MOI, le rapport des cellules cibles à virales unités formatrices de plages).
  3. Laisser reposer pendant 5 min îlots.
  4. Placer la plaque dans l'incubateur de culture tissulaire (37 ° C, 5% de CO 2).
  5. Après 24 h, agiter doucement la plaque pour amener les îlots aux centres des puits et transférer les îlots en utilisant une micropipette P200 à un nouveau puits contenant du milieu frais. Si les îlots sont attachés à la plaque, ils peuvent être délogés en douceur avec la pointe de la pipette.

[Remarque: Pour vérifier effi transduction adéquatecy, l'utilisation d'un virus de la GFP de commande exprimant est bénéfique, comme îlots peut alors être imagée par microscopie confocale à vérifier la pénétration de l'adénovirus dans le noyau îlot.]

  1. Culture des îlots pour un supplément de 24-72 heures, selon le rythme souhaité de l'expérience des études pilotes d'optimisation. Par exemple, l'induction d'une réponse proliférative peut exiger des durées allant de 24 à 72 h ou knockdown du gène d'intérêt peut exiger 48 ou 72 heures. Transfert des îlots sur des milieux frais chaque jour.
  2. Pour la finale 24 h de l'expérience, la culture des îlots dans un milieu contenant 1 pCi [méthyl-3 H] -thymidine/ml médias (généralement de 1 pl thymidine / ml les médias).

[Note: De ce point de l'avant, s'il vous plaît suivre les protocoles institutionnels pour la manipulation, l'utilisation et l'élimination des matières radioactives.]

2. Essai sécrétion d'insuline

  1. Préparer letampon de dosage sécrétion (SAB) solution stock 10X (1,14 M de NaCl, 47 mM de KCl, 12 mM KH 2 PO 4, 11,6 mM MgSO 4) et solution de CaCl 2 de stock 100X (0,25 M CaCl 2). Ces solutions mères peuvent être préparées à l'avance et conservé à température ambiante.
  2. Fraîchement préparer 50 ml de la RFA de travail (5 mL de SAB 10X, 1 ml de HEPES 1 M, 0,5 ml de CaCl 2, 100X 0,28 ml de 35% de BSA, 0,11 g de NaHCO 3, et de l'eau stérile à 50 ml) dans un conique de 50 ml tube et chaude à 37 ° C en plaçant dans un bain-marie à 37 ° C.
  3. Introduire à la pipette 10 ml de la SAB de travail dans un tube de 15 ml conique et ajouter 66,8 ul de 2,5 M de D-glucose pour préparer le taux élevé de glucose (16,7 mM) SAB.
  4. Ajouter 44,8 ul de 2,5 M de D-glucose à la tranche restante de 40 ml de la SAB travaille pour préparer le faible taux de glucose (2,8 mM) SAB.
  5. Étiquette trois microtubes de 1,7 ml pour chaque puits de la plaque à 6 puits et ajouter 1 ml de tampon phosphate salin (PBS).
  6. [Remarque: Comme les îlots sont radioactifs, s'il vous plaît suivre les protocoles institutionnels pour la manipulation, l'utilisation et l'élimination des matières radioactives.]

    1. Placez 20 îlots dans chaque microtube. Faites de chaque tentative d'ajout d'îlots de taille comparable à chaque microtube. Par exemple, chaque tube peut contenir 5 à petite, 10 moyennes et 5 de grande taille (îlots voir Figure 1).

    [Note: Les îlots peuvent être visualisées en utilisant soit un stéréoscope dissection ou d'un microscope standard.]

    1. Après les îlots se sont installés sur le fond du tube par gravité (~ 2 min), aspirer le PBS avec une micropipette et le jeter.

    [Remarque: Comme une alternative à la décantation par gravité, les tubes peuvent être centrifugés à 300 g pendant 1 min.]

    1. Pour la pré-incubation, ajouter 400 ul de la faible glucose SAB, placer les tubes (avec leurs bouchons ouvert) dans la incubateur de culture tissulaire (37 ° C, 5% de CO 2), et pré-incuber pendant 60 min. Aspirer le pré-incubation faible taux de glucose SAB et le jeter.
    2. Pour la sécrétion d'insuline basale, ajouter 400 ul de la faible concentration de glucose SAB, placer les tubes (avec leurs bouchons ouvert) dans la incubateur de culture tissulaire (37 ° C, 5% de CO 2), et incuber pendant 60 min. Recueillir le faible taux de glucose SAB et enregistrer pour le dosage radioimmunologique l'insuline.
    3. Pour la sécrétion d'insuline stimulée, ajouter 400 ul de la forte concentration de glucose SAB, placer les tubes (avec leurs bouchons ouvert) dans la incubateur de culture tissulaire (37 ° C, 5% de CO 2), et incuber pendant 60 min. Recueillir le taux élevé de glucose SAB et enregistrer pour le dosage radioimmunologique l'insuline.

    3. Essai d'incorporation de thymidine

    1. Ajouter 1 ml de PBS, après les îlots se sont installés sur le fond du tube par gravité, aspirer le PBS avec une micropipette, jeter, et répétez cettel'étape la fois.
    2. Ajouter 500 ul de la glace froide d'acide trichloracétique (TCA, 10% w / v) et incuber sur de la glace pendant 30 min.
    3. Centrifuger les tubes à 16 000 xg pendant 3 min à 4 ° C.
    4. Aspirer le TCA, ajouter 80 ul de NaOH 0,3 N, et incuber pendant 30 min à température ambiante. Pendant ce temps, vigoureusement vortex les échantillons pour 5-10 s toutes les 10 min.
    5. Ajouter 4 ml de cocktail de comptage Econo-sécuritaire de 7 ml de liquide à scintillation tubes de comptage.
    6. Ajouter 50 ml de l'échantillon dans le tube de comptage à scintillation, plafonner le tube, agiter brièvement, et compter dans un compteur à scintillation liquide.
    7. Mesurer la concentration de protéines en utilisant l'acide bicinchoninique (BCA) de dosage et 10 ul de l'échantillon selon le protocole du fabricant.

    4. Analyse des données

    1. Effectuer le dosage radioimmunologique l'insuline en suivant le protocole du fabricant.
    2. Normaliser la sécrétion d'insuline et des données d'incorporation de thymidine avec le concentré de protéineentration.

    5. Les résultats représentatifs

    Un exemple de l'expérience pour évaluer la réplication des îlots et la fonction des cellules bêta des îlots de Langerhans chez le rat est montré dans la figure 2. Cet exemple montre que la surexpression adénovirale de hypothétique "Gene # 6" stimule la réplication robuste îlot sans altérer la fonction des cellules bêta. Dans le panneau supérieur, les résultats du test d'incorporation de thymidine démontrer que l'augmentation de l'expression de "Gene # 6" augmente la synthèse d'ADN, telle que mesurée par l'incorporation de thymidine. Parce que la plupart des cellules de l'îlot de rat sont des cellules bêta, il est probable que cette augmentation de l'incorporation de thymidine indique une augmentation de la réplication des cellules bêta. Cependant, les expériences de confirmation doit être effectuée pour établir fermement cette. Dans le panneau du bas, les résultats du test la sécrétion d'insuline démontrer que la surexpression de "Gene # 6" ne modifie pas l'une des fonctions primaires de cellules bêta, c'est à dire, ila sécrétion de glucose nsulin à basse et haute. La qualité de l'isolement des îlots et la santé des îlots suivant le traitement avec des adénovirus est indiqué par la multiplication par la sécrétion d'insuline à des concentrations de glucose basse et haute. Si l'augmentation de l'expression de "Gene # 6" fonction des cellules bêta avec facultés affaiblies, ce serait probablement correspond à une diminution de l'insuline sécrétée à fortes concentrations de glucose (16,7 mM de stimulation). Une courbe dose-réponse pour différentes concentrations de glucose pourrait également être effectuée.

    Figure 1
    Figure 1. Vue d'ensemble du protocole pour évaluer la réplication des îlots et la fonction des cellules bêta des îlots de Langerhans isolés de rat après adéno-médiation des altérations dans l'expression des gènes. Îlots de rat fraîchement isolés sont exposés à des adénovirus pendant 24 h puis cultivées jusqu'à 96 h. L'incorporation de thymidine est évalué dans le dernier 24 h, suivi par la mesure de la sécrétion d'insuline àglucose basse et haute.

    Figure 2
    Figure 2. Les résultats d'une expérience en utilisant un adénovirus contrôle et un adénovirus un gène hypothétique étiquetés comme "Gene # 6" surexprimant. Le panneau supérieur montre l'incorporation de la thymidine et le panneau inférieur de la sécrétion d'insuline.

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Discussion

Établir des voies qui peuvent être modulés afin de stimuler la réplication et d'améliorer la fonction des cellules bêta sont pertinentes pour les deux principales formes de diabète. Parce que fonctionnelle masse des cellules bêta est tributaire de l'existence et la fonction de cellules sécrétrices d'insuline, l'évaluation de ces déterminants a simultanément ses avantages. Ce protocole décrit un protocole simplifié pour déterminer si la surexpression ou la suppression d'une protéine conduit à des changements dans la masse des cellules bêta fonctionnelles in vitro, qui peuvent ensuite être testés pour l'efficacité in vivo.

Une limitation de ce protocole est que l'îlot est un organe composé de micro-nombreux types cellulaires, y compris mais non limité à l'alpha, bêta, delta, epsilon, et les cellules PP. Un changement dans la réplication îlot peut pas complètement traduire à un changement dans la réplication des cellules bêta raison de 80-90% des cellules dans l'îlot de rat sont des cellules bêta. La possibilité qu'un changement observé dans les îlots de Langerhansla réplication est due à la réplication des cellules non-beta existe. Ainsi, une étape logique et de confirmation à côté de ce protocole pourrait être l'examen de la réplication des cellules bêta à l'utilisation d'analogues de la thymidine couplés à immunofluorescence ou d'analyse FACS 5,6. Cette analyse de confirmation peut aussi alléger le problème potentiel de l'incorporation de thymidine non spécifique en îlots indépendants de la prolifération.

Un autre inconvénient potentiel réside dans l'efficacité de transduction des adénovirus. Une efficacité de la transduction de 60-70% est raisonnable à atteindre, mais un facteur déterminant de l'efficacité est le moment de la transduction du adénoviral. Il est essentiel à la culture des îlots isolés dans les adénovirus dès que possible afin de maximiser l'efficacité de transduction. Dans quelques heures après l'isolement des îlots de l'îlot commence à se contracter, ce qui limite la capacité de l'adénovirus de pénétrer profondément dans le cœur de l'îlot. L'utilisation d'une construction rapporteur, tels queune adénovirus exprimant la GFP, couplée à la microscopie confocale peut être bénéfique pour évaluer l'efficacité de transduction.

Les principaux avantages de ce protocole sont les suivants: 1) l'efficacité des tests multiples déterminants de la masse des cellules bêta fonctionnelles sur le même bassin d'îlots et 2) les petits nombres d'îlots nécessaires pour effectuer le protocole (un isolement rat typique des îlots donne 400 îlots) . Ces avantages permettent à ce protocole pour être utilisé comme un outil de dépistage des gènes multiples à un rythme modéré.

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Disclosures

Pas de conflits d'intérêt déclarés.

Acknowledgments

Ce travail a été soutenu par des subventions du NIH DK078732 (à PTF).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
RPMI 1640 media Gibco 11879
Penicillin/streptomycin Gibco 15140
6-well plate BD-Falcon 35-1146 Non-TC treated
[methyl-3H]-thymidine Perkin Elmer NET027Z001MC 1 mCi/ml
Micro-centrifuge tubes Denville C2170 1.7 ml
NaCl Sigma 59888
KCl Acros 42409
KH2PO4 Acros 20592
MgSO4 Acros 41348
CaCl2 Acros 34961
HEPES Sigma H0887 1 M solution
35% BSA Sigma A7979
NaHCO3 Acros 42427
d-glucose Sigma G8769
TCA Fisher Scientific SA9410-1 10% w/v
NaOH Acros 12426
Scintillation counting tube Sarstedt 58.536 7 ml, PP
Scintillation counting tube cap Sarstedt 65.816
Econo-Safe counting cocktail RPI 111175
Insulin RIA Siemens TKIN2
BCA Assay Kit Thermo Scientific 23250
Equipment
Centrifuge Eppendorf 5415R
Scintillation counting tube rack Sarstedt 93.1431.001
Liquid scintillation counter Perkin Elmer Tri-Carb 2910TR

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References

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