Dissected Serebral Kortikal Eksplantlarından ile kullanım için Kemirgen Embriyolar arasından Beyin Omurilik Sıvısı İzolasyonu

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Ventrikül beyin omurilik sıvısı (BOS) embriyo erken beyin gelişimi sırasında nöroepitelyal ve serebral kortikal progenitör hücreler banyoları. Burada biyolojik işlevini araştırmak amacıyla farklı yaşlardaki kemirgen embriyolardan ventriküler BOS yalıtmak için geliştirilen yöntem açıklanmaktadır. Ayrıca, bizim serebral kortikal eksplant diseksiyonu ve kültür ortamı veya BOS minimum hacimlerde eksplant büyüme sağlar kültürü tekniği göstermek.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Zappaterra, M. W., LaMantia, A. S., Walsh, C. A., Lehtinen, M. K. Isolation of Cerebrospinal Fluid from Rodent Embryos for use with Dissected Cerebral Cortical Explants. J. Vis. Exp. (73), e50333, doi:10.3791/50333 (2013).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

BOS gelişimi boyunca ve yetişkinlikte dinamik değişen proteom karmaşık bir sıvıdır. Embriyonik gelişim sırasında, doğmakta olan BOS anterior nöral tüpün kapanması üzerine amniyotik sıvıdan ayırır. BOS hacmini sonra ventriküller ve koroid pleksus oluşturmak BOS astar nöroepitelyal progenitör hücreler olarak izleyen gün boyunca artar. Gelişmekte olan beyin ve omurilik nöral kök hücrelerin embriyonik BOS kişileri apikal, ventriküler yüzeyi. BOS gelişmekte olan beynin genişlemesi için hayati sıvı basıncı sağlar ve zamansal özgü şekilde nöral progenitör hücrelere faktörleri teşvik önemli bir büyüme dağıtır. BOS fonksiyonunu incelemek için, kan veya gelişmekte telencephalic dokudan kirlenme olmadan embriyonik BOS saf örnekleri izole etmek için önemlidir. Burada kullanılabilecek ventriküler embriyonik CSF nispeten saf örnekleri izole etmek için bir yöntem açıklanmaktadırkütle spektrometrisi, protein elektroforezi, ve birincil hücre ve eksplant kültürünü içeren deneysel testler geniş bir yelpazede. Biz medya veya BOS azaltılmış hacimli gelişen kortikal dokusunun büyümesi için gözenekli polikarbonat membran kortikal eksplantlar teşrih ve kültür nasıl gösterilmektedir. Bu yöntem ile, deneyler, hedef hücreler üzerindeki CSF proteom biyolojik aktivitesini incelemek için çeşitli yaşlardan itibaren CSF ya da koşullar kullanılarak gerçekleştirilebilir.

Introduction

BOS gelişmekte nöroepitelyumda 1-6 banyoları ve gelişmekte olan beyinde 8-12 için ipuçları teşvik gerekli basıncı 7 ve büyüme sağlayan karmaşık bir sıvıdır. Beyin gelişimi boyunca BOS incelenmesi, biz geliştirme 6,9 çeşitli aşamalarında sıçan veya fare embriyoları gelişmekte ventriküler BOS yalıtmak için teknikler geliştirildi. Izolasyon Önceki yöntemler cam mikro-iğne kullanarak ve bir mikro-enjektör 1,2 kullanarak BOS izole dahil. Bizim yöntem, ucu gelişmiş doku penetrasyonu için ultra ince noktası oluşturmak için çekilmiş olan bir cam mikro-kapiller pipet kullanır. Ventriküler CSF toplama basınç hafif değişiklikleri ile kontrol edilebilir, böylece cam mikro-kapiler pipet bir aspiratör ile bağlanır. BOS sinyal kök hücre etkilerini araştırmak için, biz, serebral kortikal eksplantlar teşrih polikarbonat membran üzerine koyun ve uygun cu bunları yüzenLTURE orta CSF numuneleri 9 ile desteklenmiş. Bu teknik sayesinde, medya hacimlerinde BOS 9 etkin kullanımı için izin, kültür dokusu için yeterlidir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Embriyo İzolasyon / Hazırlık

Bu teknik, fare ya da sıçan için de kullanılabilir. Bu protokolü biz BOS toplama tekniği ve fare embriyonik beyin kortikal eksplant diseksiyonu göstermektedir. Biz sıçanlarda karşı genel teknikler içinde var fareler için herhangi bir önemli farklar hakkında görüş bildirir. Embriyonik yaş evreleme sistemi için, E1 fareler için fiş günü olarak sınıflandırılır ve E0.5 fareler için fiş günü olarak sınıflandırılır.

  1. Sylgard Silikon Elastomer bir mikro-diseksiyon çanak hazırlayın. Sylgard 184 Silikon Elastomer A ve Bölüm B Kısım A ve Kısım B ağırlıkça veya hacimce 10:1 oranında karıştırılmaktadır iki bileşenli sıvı bileşen, Bölüm olarak verilir. Sıvı komponent karıştırıldıktan sonra, yemeğin tüm yüzeyini kapsayacak şekilde bir Petri kabı içine Sylgard elastomer dökün. Bazı hava kabarcıkları kür işlemi sırasında dağılacaktır mevcut olabilir. Üzerine Petri kabı kapağı yerleştirin ve elastom iziner tedavi. Elastomer 24 saat için oda sıcaklığında tedavi ya da daha hızlı sertleşmesi için daha yüksek bir sıcaklıkta (ör. 37 ° C). Edilebilir Bileşenlerin sıvı katılaşmaya sonra, diseksiyon çanak kullanıma hazırdır. Çanak prosedürü izleyerek de temizlenmiş olması koşuluyla, birden çok deneme için tekrar tekrar kullanılabilir.
  2. Mikro-kapiller pipet (iğne) hazırlanması. Mikro-kapiller pipetler ısı uygulanarak hazırlanmış ve aşağıdaki ayarları ile bir Narishige PC-10 dikey mikropipet çektirmenin kullanarak çekme vardır: Bir adım çekme; Isıtıcı # 2 58 olarak ayarlanır; 100 g çekme ağırlığı. Mikropipet ince ucu titizlikle 55. forseps kullanılarak kapalı tersledi edilmektedir. İğnenin edilen ortalama iç çapı 85 mikron.
  3. BOS aspirasyon için aspiratör montaj hazırlayın. Mikro-piston kılcal iğne içine mikro-kapiller pipetler ile sağlanan yerleştirin. Alternatif olarak, t bağlı aspiratör boru montaj sonuna kadar bir plastik tek kullanımlık filtre takınmikro-kapiller pipet o. Aspiratör montaj zıt ucunda pozisyon içine conta içerisinden iğne itin.
  4. Çöp gelen Sylgard hazırlanan mikro diseksiyon çanak izole embriyo transfer.
  5. Embriyo açıkça maruz böylece ekstra embriyonik membranlar ve dokuların çıkarın. Her doku tabakası-ilk rahim duvarına ve sonra desidua-can ince iridektomi makas (yani Güzel Bilim Araçları # 15000-02) ile disseke edilebilir. Her bir implantasyon yerinde, birinci rahim duvarına, daha sonra desidua rahim uzun eksenine paralel olarak çizilmiş edilebilir ve kesik sonra ince forseps kullanılarak daha fazla açılabilir. Desidua fetal membranlar açığa benzer bir insizyon sonrası kaldırılabilir. Bakım fetal membranlar kazınmış veya delinmiş değil böylece olunmalıdır.
  6. Steril Hanks dengeli tuz solüsyonu (HBSS) ile yıkayın ve bir pipet gibi bir Kimwipe veya filtre kullanarak çevreleyen embriyo aşırı sıvı kaldırmakkağıt üçgenler halinde doğrayın.

2. Ventriküler BOS Koleksiyonu

  1. Diseksiyon mikroskobu altında embriyo görselleştirin: fare, embriyo tek gelişen embriyonun sagittal bir görünümü vardır öyle ki, yan döşeme olmalıdır. Embriyonun sırtında yatıyor gibi sıçan embriyolarında E16 veya yaşlı ile, kaudal yönde bir kranial gelen, onun uzun düzlemsel boyut boyunca, onun dorsal spinal kolonda embriyo yerleştirin. Bu şekilde BOS sağ ve sol lateral ventrikül alınabilir.
  2. Mütemadiyen pipet takıldıktan sonra nöroepitelyal hücrelerin temas etmeyecek çalışırken, lateral ventrikül, mezensefalik ventrikül veya sisterna magna içine mikro-kapiller pipet takın. Fare embriyo E14.5 veya daha büyük için, CSF sağ ventrikül aspire ve sonra iğne çıkarılır ve sol ventrikül içine eklenebilir. Embriyolarında ventriküller ve nöral tüp açıklığı nedeniyle genç E14.5 daha,Tüm BOS hacmini genellikle tek bir iğne ile lateral ventriküllerin aspire edilebilir. Bağlantı ventriküllerin gelişim süresi ve açıklık değişebilir ve bu nedenle, mikro-kapiler pipet da azami CSF hacim toplamak için sisterna magna içine eklenebilir Ancak, bu her zaman bir durum değildir.
  3. Mikro-kapiller pipet dikkatle, lateral ventrikül, mezensefalik ventrikül veya sisterna magna içine yerleştirilir ve nazikçe negatif basınç oluşturmak ve BOS aspire ya mikro-piston kullanılarak, pipet içine BOS aspire başlar sonra, ya da bir sağlayarak BOS hafifçe yavaş ve kontrollü bir şekilde mikro-kapiller pipet akmaya başlar böyle ağız tarafından oluşturulan hafif negatif basınç. Biz izleyicinin bu yaklaşımlara kurumsal politikalar konusunda kendi yerel yetkililerle denetler öneririz.
  4. Negatif basınç uygulamak ve mikro-kapiller pipet içine BOS toplamak için devam edin.E16.5/E17 veya genç fare ve sıçan embriyolarında hem de, bu mikro-kapiller pipet Büyük embriyo içeri olduğu baş tarafında oluşturan bir çimen ve görünümünü biraz ventriküle çöküşü gözlemlemek mümkündür Beynin daha büyük bir boyuta bağlı olarak, başın çöken gözlemlemek mümkün olmayabilir.
  5. Basınç uygulayarak durdurun ve hafifçe lateral ventrikülden mikro-kapiller pipet çıkarın.
  6. Yavaşça buz üzerinde soğutulmuş olan bir Eppendorf tüp içine BOS örneği sınırdışı.
  7. Bütün bir hayvan çöp toplama dan CSF devam eder ve aynı tüp içine örnekleri havuzda.
  8. Kontamine hücreleri çıkarmak için 10 dakika süreyle 4 ° C'de 10,000 x g'de santrifüjleyin.
  9. Nöroepitelyal hücrelerin veya kırmızı kan hücreleri kirletici herhangi bir işaret için numuneler analiz. Kirlenme belirtileri genellikle bulanık ya da pembe / kırmızı görünen sıvı veya kan hafif boyanmış nokta ile bir pelet varlığı ile gösterilir. Santrifüjlemeden sonra, CSF hücreleri veya hücresel enkaz herhangi bir kanıt için mikroskopik analiz edilebilir. Kirlenme bulguları varsa akışkan atılmalıdır. İlave bir kontrol olarak, pelet içerik ayrıca hücreleri için kirlenmiş olabilir. Temiz bir CSF numune hücre kültürü, kortikal kültürü, spektrometresi, Western blot, ELISA, ve diğer deneyleri için de kullanılabilir. Açık CSF, yeni bir steril Eppendorf tüpüne aktarılmış olması gerekmektedir. Örnek hemen sıvı nitrojen ile dondurulmuş diğer örnekleri, veya ek ile toplanmış ve -80 ° C'de saklanır, analiz için kullanılabilir Sıvı küçük numunelerin dondurma ve çözme küçük bir hacim azalması ve protein konsantrasyonu değişikliklere neden olabilir. Bu örneklerin dondurarak kurutma ile önlenebilir.

3. Kortikal Eksplantasyon Diseksiyon

  1. Sylgard hazırlanan mikro diseksiyon çanak üzerine çöp izole E14.5 embriyo transfer.
  2. Adım 1.5 açıklandığı gibi ekstra embriyonik membranlar ve dokulardan embriyo çıkarın.
  3. <Steril Hanks dengeli tuz solüsyonu (HBSS) ve bir pipet kullanarak çevreleyen embriyo aşırı sıvı kaldırmak li> Yıkama.
  4. Embriyo geri kalanı (Şekil 1A) itibaren baş ayıran servikal bölgeye teşrih.
  5. Ince bir neşter (oftalmik bıçak) kullanarak, kafa derisi midline kısmak. Ince forseps ile bu kesi her iki tarafında tutun ve cilt kaldırmak. Sonraki, gelişmekte olan kafatası orta hat uzunluğu çalışan bir kesi yapmak için iridektomi makas kullanın. Daha sonra, gelişmekte olan kafatasının ön ve arka uçlarındaki iki ek kesiler, mesafe yaklaşık 1/3 yapmak. Kafatası "flap" kavramak için ince forseps kullanın diseksiyon bu bölümü sonucu ve korteks (Şekil 1B) açığa gelişmekte kafatası doku kaldırmak.
  6. Sağ ve sol kortikal hemisferlerin (Şekil ayıran, orta sagital düzlemde orta hat boyunca neşter kenarortay beyin kullanma1B, C). Pia ve araknoid korteks bağlı kalır ve dura gelişen kafatası ile birlikte uzaklaştırılır.
  7. Ayrı ayrı kortikal yarımkürede hazırlayın. Kadar böylece ganglionik eminens ve gelişmekte olan korteks (Şekil 1C, D) görebilirsiniz yarımkürede medial tarafı yerleştirin.
  8. Neşter kullanarak, gelişmekte olan koku ampul için kaudal kortikal nöroepitelyumda aracılığıyla bir koronal kesi yapmak. Bu kesi lateral ve medial ganglionik Efendiler ön sınırında başlar ve gelişmekte olan kortikal yitiren organ (Şekil 1E) ve anterior singulat bölge boyunca uzanmalıdır.
  9. Lateral ganglionik eminens (Şekil 1F) ve posterior sınırına sadece kaudal bir koronal kesi olun. Bu kesi aynı zamanda gelişmekte olan kortikal yitiren organ medial duvarına ganglionik eminens lateral sınır kadar uzanmalıdır.
  10. Kortikal "flap" Crea geri çekinkortekse mekanik hasar görmesini önlemek için 200 ul pipet ile teslim HBSS bir akışından bir neşter veya hafif basınç kullanarak, adımları 3.7 ve 3.8 'de yapılan iki kesiler ile ted. Daha sonra gelişen korteks (Şekil 1G, H) dan yanal ganglionik eminensinden ayıran sınır boyunca bir enine kesik yapmak. Daha sonra, yan yüzeyin kortikal duvar kürelerinin uygun neokorteks tepesinde, gelişmekte olan hipokampus ve medial telencephalon kortikal uzak kenar teşrih.
  11. Gelişmekte olan korteks (Şekil 1H) gelen yanal ganglionik eminens ayıran sınır boyunca bir transvers kesi olun.
  12. Disseke kortikal eksplant gelen Sylgard plaka üzerinde herhangi bir ekstra disseke doku çıkarın. Bir herhangi bir ekstra disseke doku uzakta Pipeti taze HBSS tamponu ile yumuşak pipetleme kullanabilirsiniz. Disseke korteks aşağı bakacak meningeal tarafında (Şekil 1I) ile şimdi.

  1. Bir cam pipet bağlı bir platin tel döngü hazırlayın. Cam pipet sonuna yerleştirilmiş, katlanmış bir platin tel ile cam pipet ısıtın. Platin tel döngü sonuna bükerek, döngünün boyutu artmış ya da azalmış ve döngü istenilen eksplant sığacak şekilde şekillendirilebilir edilebilir. (Bu önceden hazırlanmış ve yeniden kullanılabilir.)
  2. Döngü sterilize platin tel ucunu ısıtın.
  3. Disseke kortikal eksplant yalıtmak ve tel döngü ile kullanmak için küçük bir miktar bırakarak, yumuşak pipetleme tarafından ekstra HBSS ortamı çıkarın.
  4. 4 cm çapa görüntüleme tabak içinde bir 1 cm polikarbonat membran yerleştirin.
  5. Meningeal tarafı yukarı bakacak şekilde platin tel döngü tarafı kullanarak, yavaşça korteks çevirin.
  6. Döngünün ortasında eksplant yerleştirerek ve içsel hidrostatik kuvvetler kullanarak, diseksiyon çanak kapalı kortikal eksplant kaldırındüz bir düzlem üzerinde eksplant kaldırın.
  7. Yavaşça polikarbonat membran üzerindeki eksplant yerleştirin ve uzak eksplant ventriküler yüzeyi membran ile temas halindeyken düz bir düzlem üzerinde membran kalır böyle platin tel döngü kaldırın.
  8. Yavaşça membran kaldırın ve membran altında CSF veya diğer medya 50 ul Pipeti.
  9. Görüntüleme çanak Kapak, sürekli hücre çoğalması ve eksplant büyümeyi desteklemek için 24 saat süreyle% 5 CO 2 nemlendirilmiş bir ikincil bir kaba koyun ve 37 ° C'de inkübe edin. Şekil 2 final kortikal eksplant yemeğin hazırlanması şematik resmediyor.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

BOS koleksiyonu açık, şeffaf sıvı boyun eğmek zorundadır. Aspirasyon ve Eppendorf tüp bir kırmızı veya sarı renklendirilmiş akışkan tarafından gösterildiği gibi, kandan kirlenme hiçbir kanıt olmamalıdır. Ayrıca aspirat ve Eppendorf tüp dokusunun hiçbir kanıt olmamalıdır. BOS santrifüj edildiğinde, bir de herhangi bir kirlenme olduğunu sağlamak için mikroskobik BOS değerlendirir. Kontaminasyon belirtileri varsa, BOS atılmalıdır. Biri E14.5 fare çöp bakıldığında biri 10-15 ul BOS toplama tahmin edebilirsiniz. Tablo 1 çeşitli embriyonik yaşlardan itibaren hem farelerde hem de sıçanlarda ortalama çöp boyutları toplanan BOS ortalama hacimleri gösteriyor. Saf BOS örnekleri edildiğinde, BOS farklı bir takım teknikler kullanılarak analiz edilebilir. Şekil 3 fare E14.5 BOS 2UG kullanarak bir temsilci gümüş lekeli jel gösterir.

Serebral kortikal eksplantları zekâ yetiştirilen olabilirh CSF miktarlar ayrıca bir bazal ortam toplam hacim 50 ul olacak şekilde gerekirse değişmektedir. Şekil 4, 24 saat süre ile% 100 embriyonik CSF 50 ul ile yetiştirilen temsili eksplantlar göstermektedir. Eksplantları hayatta kalmak için gösterilen ve% 100 CSF ile çoğalır ve ventriküler boyunca olarak fosfo-histon H3 (PH3), hücre bölünmesi bir işaretleyici için immünreaktivite tarafından belirtilen aynı gebelik yaşı 9, az kemirgen embriyolar benzer doku histolojisi var oylandı yüzey, BrdU, gelişmekte olan kortikal plaka DNA sentezi, ventriküler zonunda kuruluş ve Tuj1, bir nöronal marker, bir belirteci.

Sprague Dawley çöp Embriyonik Yaş Çöp başına Hacim CD1 çöp Embriyonik Yaş Çöp başına Hacim
E13 30-50 ul E10.5 15-20 ul
E14 40-75 ul E12.5 15-20 ul
E16 50-90 ul E14.5 10-15 ul
E18 40-75 ul E16.5 5-10 ul

Tablo 1. Standart Ölçekli Artıklarının Elde Edilen BOS Ortalama Hacimleri.

Şekil 1
Şekil 1. Serebral Kortikal Eksplantasyon Diseksiyon Anahat şematik.

Şekil 2,
Şekil 2. Final Bulaşık Hazırlık şematik diyagramı.


Şekil 3,. Gümüş fare E14.5 BOS leke. Bu temsili bir gümüş Invitrogen Bis-Tris NuPAGE gradyan jel 4-12% çalışacak 2UG fare E14.5 BOS proteini leke. Silver 5 dk 40 sn için geliştirilen SilverQuest gümüş boyama kiti ile yapılan leke.

Şekil 4,
Şekil 4. 24 saat boyunca yetiştirilen E15 sıçan kortikal eksplantlar. Bu% 100 embriyonik BOS 24 saat için yetiştirilen serebral kortikal eksplant temsilcisi görüntülerdir. Bunlar eksplantları Carnoy yöntemi, kesitli parafin ile giderilen ve immünboyama için hazırlanmıştır. PH3 (kırmızı) ve Tuj1 (yeşil), BrdU (mavi).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Ventriküler CSF toplama için açıklanan yönteme hücresel analizler 9 Bir dizi protein kararlı kompozisyon ve etkinlik ile tutarlı embriyonik CSF nispeten saf örnekleri vermiştir. İyi bir toplama tekniği ve on E14.5 fare DKBKS ile, bir BOS 10-15 ul toplamak için bekleyebilirsiniz ve E16 sıçan bir çöp gelen bir BOS 50-90 ul hakkında toplamak için bekleyebilirsiniz. Bu toplama tekniği dikkatli gözlem, santrifüj, ve hücresel enkaz veya kan renklendirmek herhangi bir kanıt ile numunelerin atarak, kan ve doku kaynaklanan kontaminasyonu en aza indirir. Biz santrifüj sonrası BOS içinde hücresel enkaz veya hücreleri için değerlendirmek için mikroskobik sıvı analiz ve santrifüj sonra hiçbir pelet var örnekleri hücresel kirden arındırılmış olduğunu bulmuşlardır. Gelişmekte olan beyin dokusu proteom veya CSF ekstraksiyon Bu yöntem kullanılarak kirlenmiş CSF (veriler gösterilmemiştir) örnekleri, aksine,Bir kütle spektrometresi 6 ile analiz edildiğinde BOS proteom herhangi bir mitokondriyal protein içermiyordu.

Telencephalic veziküller ve nöral tüp içindeki ventriküler BOS fiziksel lokalizasyonu, izolasyon gelişmekte deri, kafatası ve telencephalon delip için bir tek yöntem esas alınmıştır. Bu nedenle, bu dokular vasıtasıyla iğnenin olası kontaminasyon için bir kaynaktır. İğne ucu, iğne ile ve doku ventrikül içine düzgün bir şekilde eklenebilir ki bu tür mümkün olduğu kadar ince olmalıdır. Mikro-kapiler pipet ventrikül içine iğne yerleştirilmesi sırasında iğne deliği içinde doku toplayabilir. Embriyonun yaşına bağlı olarak, ve koroid pleksus ventrikül içinde geliştirmiş olduğu takdirde, bu pipet içine koroid pleksus içeriğini aspire önemlidir. Bununla birlikte, CSF t içine toplayan böyle yeterli negatif basınç yaratmak için önemlidirO çevredeki gelişmekte olan beyin dokusu veya koroid pleksus bozmadan, Pipeti. Doku kontaminasyon varlığı bir cam kapak kayma ile bir cam slayt üzerine BOS pipetleme ve doğrudan hücresel enkaz için görselleştirme, diseksiyon mikroskobu altında görüntülenebilir.

Biz bugüne kadar tespit ettik biz BOS izolasyonu için tarif yöntemleri BOS nispeten saf örnekleri sağlar. Kontamine BOS örnekleri kütle spektrometresi ile analiz edilmiştir bilinen, onlar mitokondrial proteinler (veriler gösterilmemiştir) varlığını ortaya koymuştur. Teknik içinde içsel bir kusur CSF gelişen kafatası ve korteks delinmesiyle elde edilir, ve bu nedenle hücre ve doku CSF mevcut olabilir olmasıdır. , BOS santrifüj bir pelet için assaying ve mikroskobik mikroskop altında BOS analiz ederek, BOS nispeten saf örnekler verir BOS izolasyonu için bir yöntem optimize ettik.

Tekniği fveya ventriküler embriyonik BOS toplama ve serebral kortikal eksplantlar açıklanan ve embriyonik fare film gösterilmiştir. Bununla beraber, bu teknik, embriyonik kemirgenler ventriküler CSF toplama ve kortikal eksplantlar için kullanılabilir ve sıçan ve fareler her ikisi de uygulanmıştır. Bu protokolü açıklanan yöntemi ventriküler BOS izolasyonu için özel olarak tasarlanmış, ve subaraknoid BOS toplama amaçlı değildir.

Serebral kortikal eksplant tekniği, bireysel deneylerden kullanılabilir embriyonik BOS sınırlı miktarlarda verilen, medya azaltılmış hacmi ile eksplantlar büyümeye muktedir oluşturuldu. 24 saat için güvenilir bir şekilde eksplantları yetiştirmek için kullanılan ortamın en küçük hacim 50 mikrolitre olmuştur. Bazen, eksplantlar 72 saat olmanın en uzun süre ile, daha uzun 24 saat boyunca kültüre edildi. Uzun deneyler ile, büyüme ortamı her 24 saat tamamlamak için en iyisidir. Sonra eksplantlar are zaman, istenen süre boyunca kültüre, eksplantlar neurospheres, hücre ölümü ya da RNA ekstraksiyonu üreten, immunofluoresence dahil olmak üzere çeşitli testler arasında bir sayı için kullanılır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Acknowledgements

Biz NIH (Ödül numaraları MKL için R00 NS072192, CAW için AS.L. için HD029178 ve 2 RO1 NS032457) destek için müteşekkiriz. MKL Boston Çocuk Hastanesi'nden Kariyer Geliştirme Bursu / Harvard Tıp Okulu Shore Kardeşlik ve Alfred P. Sloan Vakfı Fellow of sahibidir. CAW Howard Hughes Tıp Enstitüsü Araştırmacısı.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Wiretrop II capillary needles Drummond Scientific #5-000-2020
Sylgard Ellsworth Adhesives #184 SIL ELAST kit
Aspirator tube assembly Sigma #A5177-5EA
Disposable filter Venturi or local pharmacy not available Standard cigarette filter
Roundstock opthalmic knife (15 degree stab knife) World Precision Instruments, Inc. #500250
35mm glass bottomed culture dish MatTek Corp. #P35G-1.5-14-C
Platinum-iridium wire Tritech Research #PT-9010-010-3FT
Nuclepore Track-Etch Membrane Whatman #09-300-57
Hanks Balanced Salt Solution Fisher Scientific #SH30031.FS
Iridectomy Scissors Fine Science Tools #15000-02

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Dziegielewska, K. M., Evans, C. A., Lai, P. C., Lorscheider, F. L., Malinowska, D. H., Mollgard, K., Saunders, N. R. Proteins in cerebrospinal fluid and plasma of fetal rats during development. Developmental Biology. 83, (1), 193-200 (1981).
  2. Gato, A., Martin, P., Alonso, M. I., Martin, C., Pulgar, M. A., Moro, J. A. Analysis of cerebro-spinal fluid protein composition in early developmental stages in chick embryos. Journal of Experimental Zoology. Part A, Comparative Experimental Biology. 301, (4), 280-289 (2004).
  3. Gato, A., Moro, J. A., Alonso, M. I., Bueno, D., Mano, D. L., Martin, C. Embryonic cerebrospinal fluid regulates neuroepithelial survival, proliferation, and neurogenesis in chick embryos. The Anatomical Record. Part A, Discoveries in Molecular, Cellular, and Evolutionary Biology. 284, (1), 475-484 (2005).
  4. Parada, C., Gato, A., Aparicio, M., Bueno, D. Proteome analysis of chick embryonic cerebrospinal fluid. Proteomics. 6, (1), 312-320 (2006).
  5. Parada, C., Gato, A., Bueno, D. Mammalian embryonic cerebrospinal fluid proteome has greater apolipoprotein and enzyme pattern complexity than the avian proteome. Journal of Proteome Research. 4, (6), 2420-2428 (2005).
  6. Zappaterra, M. D., Lisgo, S. N., Lindsay, S., Gygi, S. P., Walsh, C. A., Ballif, B. A. A comparative proteomic analysis of human and rat embryonic cerebrospinal fluid. Journal of Proteome Research. 6, (9), 3537-3548 (2007).
  7. Desmond, M. E., Jacobson, A. G. Embryonic brain enlargement requires cerebrospinal fluid pressure. Developmental Biology. 57, (1), 188-198 (1977).
  8. Lehtinen, M. K., Walsh, C. A. Neurogenesis at the brain-cerebrospinal fluid interface. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 27, 653-679 (2011).
  9. Lehtinen, M. K., Zappaterra, M. W., Chen, X., Yang, Y. J., Hill, A. D., Lun, M., Maynard, T., Gonzalez, D., Kim, S., Ye, P., et al. The cerebrospinal fluid provides a proliferative niche for neural progenitor cells. Neuron. 69, (5), 893-905 (2011).
  10. Martin, C., Alonso, M. I., Santiago, C., Moro, J. A., De la Mano, A., Carretero, R., Gato, A. Early embryonic brain development in rats requires the trophic influence of cerebrospinal fluid. International Journal of Developmental Neuroscience: The Official Journal of the International Society for Developmental Neuroscience. 27, (7), 733-7340 (2009).
  11. Martin, C., Bueno, D., Alonso, M. I., Moro, J. A., Callejo, S., Parada, C., Martin, P., Carnicero, E., Gato, A. FGF2 plays a key role in embryonic cerebrospinal fluid trophic properties over chick embryo neuroepithelial stem cells. Developmental Biology. 297, (2), 402-416 (2006).
  12. Zappaterra, M. W., Lehtinen, M. K. The cerebrospinal fluid: regulator of neurogenesis, behavior, and beyond. Cellular and Molecular Life Sciences: CMLS. 69, (17), 2863-2878 (2012).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics