유기 전기 트랜지스터와 장벽 조직 혼란의 감지

Bioengineering

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Summary

유기 전기 트랜지스터는 생균과 통합 위장관 상피 장벽을 가로 질러 이온 플럭스를 모니터링하는 데 사용된다. 본 연구에서, 칼슘 킬레이트 EGTA (에틸렌 글리콜 - 비스 (베타 - 아미노 에틸 에테르)-N, N, N ', N'-테트라 아세트산의 존재에 의해 유도 타이트 접합 중단, 관련된 이온 플럭스의 증가, 산)가 측정된다.

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Tria, S. A., Ramuz, M., Jimison, L. H., Hama, A., Owens, R. M. Sensing of Barrier Tissue Disruption with an Organic Electrochemical Transistor. J. Vis. Exp. (84), e51102, doi:10.3791/51102 (2014).

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Abstract

위장관 필요한 이온 및 분자의 통과를 허용하면서, 병원체 및 독소의 엔트리에 대해 물리적 장벽을 제공 장벽 조직의 일례이다. 이 장벽에 위반 세포 외 칼슘 농도의 감소가 발생할 수 있습니다. 칼슘 농도의 감소는 세포층의 플럭스의 증가로 이어지는, 장벽의 밀봉에 관련된 단백질의 구조적 변화가 발생합니다. 이 효과를 모방하는 칼슘 킬레이트 에틸렌 글리콜 - 비스 (베타 - 아미노 에틸 에테르)-N, N, N은 ', N'-테트라 아세트산 (EGTA)은 위장관의 대표적인 것으로 알려진 세포의 단층에 사용 하였다. 장벽 조직의 파괴를 검출하는 다른 방법은 이미 면역 분석법 및 투과성으로 존재한다. 그러나 이러한 방법은 시간과 비용이 많이 들고 동적 또는 높은 처리량 측정에 적합하지 않습니다. 장벽 조직을 측정하기위한 방법으로 전자무결성은 또한 transepithelial 저항 (TER)의 측정을 위해 존재한다, 그러나 이들은 종종 비용이 많이 들고 복잡하다. 장벽 조직의 무결성이 약물 발견 및 병원체 / 독소의 진단에 중요한 매개 변수로, 신속 저렴하고 민감한 방법의 개발이 절실히 필요합니다. 장벽 조직 형성 세포와 통합 유기 전기 트랜지스터 (OECT)는 동적으로 차단 티슈 무결성을 모니터링 할 수있는 새로운 장치로서 도시되었다. 장치는 장벽 조직 무결성 지표로, 실시간으로, 지금까지없는 시간 분해능과 감도와 이온 플럭스의 미세한 변화를 측정 할 수있다. 이 새로운 방법은 높은 처리량 검사 응용 프로그램과 호환 및 저렴한 비용으로 제조 할 수있는 간단한 장치를 기반으로합니다.

Introduction

위장관 상피는 신체의 다른 구획 간의 분자의 통과를 제어하는​​ 배리어 조직의 일례이다. 물과 몸을 유지하기 위해 필요한 영양소의 통과를 허용하면서 상피 세포는 병원체와 독소에 대한 물리적 장벽 1을 제공하는 단백질의 복합체에 의해 조인 긴 원주 세포로 구성되어 있습니다. 루멘과 하부 조직 2,3 정박 세포의 기저 측에 노출 된 세포의 정점 측이 선택은 두 개의 다른 멤브레인 도메인을 생성 상피 세포의 분극에 기인한다. 단단한 접합 (TJ)는 상피 세포의 꼭대기 부분에 존재하는 단백질의 복합체이며, 혀끝의 접합 4로 알려진 큰 단지의 일부입니다. 장벽 조직에서 이온의 흐름 (셀을 통해) 세포 횡단을 통해 또는 (두 개의 인접한 세포 사이) 세포층의 경로를 통해 갈 수도 있고. 화의두 경로를 통해 전송은 transepithelial 저항으로 알려져있다. 혀끝의 접합은 이온과 특정 열고 닫는 기능을 통해 장벽 5,6에 걸쳐 통과 분자의 규제에 대한 책임이 있습니다. 이 단백질 복합체의 기능 장애 또는 중단은 종종 질병 7-11에 관련되어 있습니다. 또한, 많은 장내 병원균 / 독소는 장벽 12-14에서 이온 / 물 흐름의 대규모 조절 장애의 결과로 대부분함으로써 몸을 입력하고 설사로 이어지는, 특히이 단지를 대상으로 알려져있다. 차단 티슈는 또한 세포 외 미세 환경을 변화시킴으로써 수정 될 수있다. 헤린은 세포 - 세포 접착에 중요한 단백질이며, 정점 접합의 형성에 관여한다. 칼슘 헤린의 정확한 구조적 형태를 위해 필요하며, 세포 외 칼슘의 감소는 세포 - 세포 접합의 파괴와의 후속 개구 초래할 것으로 나타났다셀 (15) 사이의 세포층의 통로. 그것이 갖는 한 본 연구에서는 EGTA (에틸렌 글리콜 - 비스 (베타 - 아미노 에틸 에테르)-N, N, N ', N'-테트라 아세트산), 특정 칼슘 킬 레이터는, 장벽 조직 위반을 유도하는 데 사용 된 이온은 16, 17 흐름 세포층에 신속하고 과감한 영향을 미치는 것으로 나타났다. 이 칼슘 킬레이트 화제가 된 Caco-2 세포 라인의 합류와 차별화 된 단층에 사용되었다. 세포 배양에서 배양 삽입물이 세포주는 위장관의 특성을 개발하는 것으로 알려져 있고 널리 18,19 약물의 흡수를 테스트하는 제약 산업에서 사용된다.

장벽 조직의 무결성을 모니터링하는 방법은 많다. 이러한 방법은 혀끝의 접합 (20)에있는 것으로 알려진 특정 단백질의 면역 형광 염색에 의존, 또는 장벽 조직에 일반적으로 불 투과성 형광 추적 분자의 정량화에 의존, 자주 광학 있습니다(21, 22). 라벨의 사용이 유물이 발생, 종종 비용과 분석 시간이 증가 할 수 있습니다 그러나, (즉, 형광 / 발색단없이) 라벨이없는 방법이 바람직하다. 장벽 조직의 전기, 레이블이없는 모니터링는 최근 동적 모니터링 방법 23로 떠오르고있다. 예를 들어 전기 임피던스 분광법 최근의 기술 진보는 transepithelial 저항 (TER), 전지 층에 걸쳐 이온 전도도의 측정을 측정 할 수있는 상업적으로 이용 가능한 주사 장치 (24, 25)의 개발을 허용했다.

유기 전자는 전자와 이온 캐리어를 모두 수행 할 수 전도성 고분자를 사용하여 전자 공학 및 생물학 (26, 27) (28, 29)의 세계를 인터페이스 할 수있는 독특한 기회를 만들었습니다. OECT 30 ~ 32을 사용하여 장벽 조직에서 위반을 탐지하는 새로운 기술은 최근에 도입되었다. 이 장치는 기존의 기술을 우리에 대해 유효성이 확인되었다Cellzscope를 사용하여 루시퍼 노란색 사용하여 면역, 침투성 분석 등의 장벽 조직 무결성 및 임피던스 분광을 평가하는 ED. 시험 된 모든 독성 화합물의 경우, OECT는 동일하거나 더 나은 감도로 작동하는 것으로 확인하고, 상기 기술에 비해 증가 된 시간 해상도와 하였다. 이 장치에서, PEDOT는 : PSS, 안정하고 생체 적합성 33,34 것으로 도시되어 전도성 중합체는 트랜지스터 채널의 활성 물질로서 사용된다. OECT은 전도성 고분자 채널의 양측에 소스 및 드레인 전극으로 구성된다. 이는이어서 장치의 필수적인 부분을 형성하고, 전해질과 접촉된다. 게이트 전극은 전해질 (도 1)에 침지하고, 양의 게이트 전압이 게이트에인가 될 때, 전해질에서 양이온 따라서 전도성 중합체를 탈 도핑와 소스 - 드레인의 변화의 결과로, 채널로 강제 현재. Device 따라서 인해 트랜지스터에 의해 증폭 이온 플럭스에 분 변화에 매우 민감합니다. 세포 배양 인서트상에서 성장한 세포 층은 게이트 전극과 전도성 고분자 채널 사이에 배치 하였다. 그대로 전지 층의 존재는, 드레인 전류 감소는 (: 영역에서 B로 전환 그림 2) 양이온 그대로 단층의 존재, 따라서 전도성 중합체로 입력하기위한 장벽으로서 작용한다. 독성 화합물의 존재하에, 장벽 조직 점진적 양이온 고분자 필름에 입력시키는와 (: 영역 (C)도 2)의 드레인 전류가 증가하고, 그 완전성을 잃을 것이다. 이 방법으로, 장벽 조직 위반은 단층 걸쳐 광속의 변조에 대응하는 드레인 전류의 변조에 의해 알 수있다. 이 장치는 실시간으로 전례가없는 시간 분해능과 감도와 이온 플럭스에 분 변화를 측정 할 수있다. 이 기술 줘야난 약물 검사, 질병의 진단 또는 장벽 모델을 쉽게 적용 할 수있는 기초 연구에 대한 독성의 도메인에 관심을. 이 방법은 또한 체외 모델의 유효성 검사가 생체 내 시험에서 대체 할 수 있습니다로, 동물 실험을 줄이기 위해 도움이 될 것입니다.

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Protocol

1. PEDOT : PSS 솔루션 준비

  1. PEDOT 50 ㎖ 행 (PEDOT로 에틸렌 글리콜 : PSS) PSS, 에틸렌 글리콜 (전도도를 증가) 1:4 부피비를 추가, 0.5 μL / 계면 활성제로서 도데 실 벤젠 설 폰산 (DBSA) ml의 10 ㎎ / ML 유리 슬라이드에 전도성 중합체의 부착을 촉진하기 위해 가교 결합제로서 3 - 글리시 독시 프로필 (GOPS).

2. OECT 제작 (그림 3)

  1. 리프트 오프 (lift-off) 리소그래피를 통해 열을 증발 금 소스와 드레인 접점을 정의
    1. 30 초 동안 3,000 rpm에서 정상 깨끗한 유리 슬라이드에 코트의 포토 레지스트를 스핀. 유리의 크기는 인치 x 1에서 3입니다
    2. 포토 리소그래피에 의해 패턴을 정의합니다. 치수는 그러나 여기에 나열된 크기가 최적의 감도로 이어질 것으로 나타났다, 변경 될 수있다. 그런 다음 개발자를 사용합니다.
    3. 각각 5 nm의 크롬과 골드의 100 nm의 증발.
    4. 리프트 오프 (lift-off) 포토 레지스트를 교류에소스와 드레인 만 금 접촉 면적 기판을 떠나 1 시간 동안 ETONE 목욕.
  2. PEDOT의 원하는 길이 : PSS 채널 1 mm이다. 이는 파릴 렌-C (PA-C) 박리 기술을 사용하여 패터닝함으로써 달성된다 :
    1. 코팅 설치, 펜실베이니아-C 3.5 g을로드합니다. 균일 오의 연락처와 기판 위에 파릴 렌-C의 2 μm의 증발.
    2. 패턴의 포토 리소그래피에 의한 채널 :
      1. 30 초 동안 3,000 rpm으로 코트의 포토 레지스트를 스핀.
      2. UV에 채널과 금색 접촉 20 초를 조명하기 위해 마스크를 사용하여 노출 된 포토 레지스트는 개발자에 용해 될 것이다.
      3. 포토 레지스트의 채널 영역을 엽니 개발자를 사용합니다.
    3. 채널과 금색 접촉을 열기 위해 15 분 플라즈마 단계 (O 2 (50 SCCM) 및 CHF 4 160 W에서 (3 SCCM) 플라즈마)에 의해 채널 영역에서 아빠-C 에칭.
  3. 스핀 코팅에 의해 PSS 혼합 용액 : PEDOT을 증착45 초 동안 500 rpm으로. 110 ℃에서 30 초 동안 구워
  4. 필 오프는 PA-C는 PEDOT를 공개합니다 : 아래 기판의 PSS 채널을. 이 채널은 약간 프로토콜 1에서 만든 오 연락처와 중복한다.
  5. 대기 상태에서 140 ° C에서 1 시간 동안 구워 샘플.

3. 장치 조립

  1. 기본 솔루션 솔루션을 치료의 비율이 1:10에 (일반적으로 키트에 함께 제공) 두 용액을 혼합하여 PDMS를 확인합니다. 120 ℃에서 1 시간 동안 굽는다
  2. 구멍 펀치를 사용하여 잘 디자인하고 원하는 영역 주위에 사각형을 잘라.
  3. 약 6mm 2의 채널 영역에서 발생하는, 채널의 상부에 잘 PDMS 접착제. 소스와 드레인 접점이 덮이지는 않았는지 확인하십시오.
  4. 그것에 구멍 (세포 배양 삽입물을위한 홀더를 사용할 수있다)와 함께 플라스틱지지를 확인 후 PDMS 상단에 접착제. 건조 하룻밤 보자.
  5. 와트와 prefilling에 의해 누출에 대해 잘 테스트어.
  6. 주석과 함께 소스와 드레인 접점에 전선을 납땜.

4. 세포 배양

  1. 다음과 같이 세포 배양 매체를 준비합니다
    1. DMEM에서 1 % 글루타민, 10 % 소 태아 혈청, 0.5 % 페니실린 - 스트렙토 마이신, 겐타 마이신 0.1 %를 추가합니다.
    2. 멸균 필터 장치를 이용하여 세포 배양 배지를 살균.
  2. 세포 배양 배지에서, 5 % CO 2의 습한 분위기에서 37 ° C에서 통로 (49)와 68 사이에 된 Caco-2 세포를 유지한다.
  3. × 104 세포 / 삽입 1.5에서 트립신과 씨앗을 사용하여 일주일에 한 번 세포를 나눈다.
  4. 3 주 이상 일주일에 두 번 세포 배양 매체를 변경합니다.

5. OECT와 측정

  1. 게이트 전극으로 사용하기 위해 소스 미터에 자세 / AgCl에 와이어를 연결합니다. 도 1a에 도시 된 바와 같이, 전해질로 사용되는 세포 배양 배지에서 팁을 담근다.
  2. t에 소스 및 드레인에서 전선을 연결합니다그는 (듀얼 채널 설정)을 소스 미터.
  3. 사각 펄스 양의 전압 (: 대지 기준 전극으로 사용) 게이트와 소스 사이 (V GS)를 적용합니다. 드레인 및 소스 (V DS) 간의 네거티브 정전압이인가되고, 대응하는 전류 (I DS)가 측정된다.
  4. PC의 실행중인 프로그램의 데이터 수집을 사용합니다. 다음과 같이 정의 취득 프로그램에 입력 OECT 매개 변수가 있어야한다 : V DS = -0.2 V, V GS = 0.3 V, V GS 시간에 = 2 초, 시간 꺼짐 = 28 초.
  5. 소스 - 드레인 전류 (I DS) 및 게이트 전류 (I GS)을 판독. 안정된 기준 신호를 확인하는 데 몇 분 정도의 측정을 수행하십시오.

6. 측정을 위해 OECT와 세포 통합

참고 : 실험 전에, 세포층의 무결성 임피던스 분광 장치 TER을 측정함으로써 확인 될 수있다. 각 3 주령 된 Caco-2 세포 INSE의 TERRT는 400 Ω 이상이어야합니다. cm 2.

  1. OECT 둘레의 오프 시간 동안 : 전해액으로부터 게이트 전극을 분리 세포 배양 삽입물을 통합하고, 세포 배양 인서트 안에 게이트 전극을 대체.
  2. 안정적인 신호를 확인하기 위해 몇 분 동안 세포와 기준 측정을 수행하십시오. 이 기준선은 그대로 단층 (0)에 대응하는 정규화 된 값의 계산으로 사용된다.

7. 준비 및 독성 화합물 소개

  1. 제 트리스 염기 7.4에 용액의 pH를 조정, DI 물에 EGTA의 1 M 용액을 제조 하였다.
  2. 계정에 볼륨을 복용 (예를 들면 5 ㎜, 100 ㎜ 사이) 원하는 농도를 얻기 위해 적절한 볼륨 EGTA 솔루션을 추가합니다. EGTA는 오프 시간 동안 기초 챔버에 추가해야합니다.
  3. 프로토콜 5와 90 분 동안 연속적으로 측정한다. 측정은 베이 있으면NG는 실온에서, 셀의 안정성을 90 분 후에 일정하게 유지되지 수행.
  4. 런의 ​​끝에서,이 시점은 제거 필터와 미디어 게이트 전극을 침지하여 수행 할 수있는 15 분 동안 장벽 층과 측정 값의 완전한 파괴를 초래하는 셀 층을 긁어. 이 기준선은 파괴 단층에 대응하는 정규화 된 값의 계산으로 사용된다.

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Representative Results

측정의 제 1 단계 동안, 드레인 전류는 약간 다를 수 있지만, 대부분의 경우에 (도 2 부) 안정적으로 유지한다. 신호가 안정되지 않으면, 트랜지스터는 폐기되고 교체되어야한다. 이 안정성 검사는 또한 장치의 도전율 어떤 초기 손실은 후속 측정에 영향을주지 않는 것을 보장한다. 측정의 몇 분 후, 세포 장벽 조직을 형성하는 인서트는 채널의 상단에 배치됩니다. 드레인 전류는 즉시 (그림 2, 섹션 B를.) 감소한다. 드레인 전류가 감소되지 않으면, 이것은 세포가 제대로 장벽을 형성하지 않았거나 조작 중에 손상되었고, 필터는 폐기되고 교체되어야한다는 것을 의미 있었다. 장벽 조직에 독성 화합물을 첨가함으로써, 드레인 전류의 변조는, 사용되는 화합물 및 농도 (도 2에 따라, 점진적 또는 즉시 증가해야C 항.).

데이터 소스 미터 및 커스터마이즈 획득 프로그램을 사용하여 수집되었다. 이 프로그램의 다른 매개 변수는 각각의 게이트 펄스에 대응하는 중간 변조를 구하는 데이터 분석 프로그램에서 실행되는, 수득 하였다. 중간 변조는 피크의 중간 (도 4)에서의 전류 값에 대응한다. 스크래치 후의 중간 변조가 1로 정규화 동안 그대로 단층의 센싱 동안 획득 미드 변조 값은 0으로 정규화 하였다. 정규화 된 결과는 다른 장치에서 데이터 (그림 5)를 비교하는 데 사용됩니다. 이 데이터로부터 시간에 따른 독성 화합물의 농도 차이의 용량 반응을 보일 수있다.

그림 1
그림 1. 유기 전기 트랜지스터의 회로도는 세포 배양 측면도에서 삽입) 채널의. B)의 상위 뷰) (회색과 접촉 6mm 1 ㎜의 채널 폭의 채널 길이의 유리 슬라이드에 (노란색) 치수와 통합 . 이 그림은 Jimison 30에서 수정되었습니다.

그림 2
.. 시간 평방 게이트 펄스에 드레인 전류 응답의 현장 측정에서의 그림 2 개요 측정 조건은 다음과 같습니다 : V DS는 = -0.2 V, V GS는 = 0.3 V, V GS 시간 = 2 초에, 오프 타임 = 28 초는.) OECT에 해당 장치의 안정성을 확보, 세포와의 통합 이전에 운영하고 있습니다. B)에 해당 총체셀을 형성하는 장벽 조직, 다시 독성 화합물의 시험. C)를 시작하기 전에 안정 신호를 확보 배급량은 장벽 조직 세포에 EGTA의 첨가에 해당 시간에 따른 신호의 변화를주의한다.

그림 3
그림 3. OECT의 제조 공정. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4
그림 4. OECT 하나의 사각형 게이트 펄스 전류 응답을 드레인. 측정 다음과 같이, 표준 조건은 다음과 같습니다 : V DS = -0.2 V, V GS는 = 0.3 V, V GS 시간 = 2 초에, 오프 시간 = 장벽 조직의 추가 (점선) 전에 (파란색 선) 후 28 초.) OECT 과도 응답 형성 세포 장벽 조직 (오렌지 라인)에 대한 독성 화합물의 첨가 후와 장벽 조직 (점선)이없는 필터에 성장합니다. B) OECT 과도 응답.

그림 5
그림 5. OECT에서 전형적인 표준화 된 결과입니다. 장치 (빈 원)의 도입에 OECT의 정규화 된 응답은 세포층 (블랙 크로스), 5 mM의 EGTA (어두운 파란색 원)과 10 mM의 EGTA (시안 원)에 소개 t = 0은, 50 분에 걸쳐 측정 하였다.om/files/ftp_upload/51102/51102fig5highres.jpg "대상 ="_blank "> 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

이 기법은 장벽 조직 무결성을 측정하는 생균과 유기 전기 화학 트랜지스터를 통합하는 새로운 방법을 제공한다. 이 기술의 주요 장점은 신속성과 감도, 또한 장벽 조직의 동적 모니터링 장치의 저비용이다.

이 방법은 살아있는 세포를 사용하기 때문에, 중요한 점은 그대로 장벽 층을 나타내는 단일 층을 사용해야하는 것입니다. 배리어의 파라미터는 세포주의 특성 중에 정의되어야한다. 이것은 게이트 전극이 전지 층의 상부에 전해액에 침지되었을 때 전지 층을 손상하지 않기 때문에 중요하다.

또 다른 중요한 점은 디바이스의 제조이다 리크 액량 변화를 방지하기 위해 PDMS의 가장자리와 플라스틱 홀더 사이에 발생하지 않는 것이다. 재현 가능한 결과를 달성하기 위해, 주목도로서, 와이어의 납땜에 부여해야금 전극 불타는 전도성 고분자 채널과 가난한 / 신호가 없으면 불량 /의 접촉에서 발생합니다.

분석을 용이하게하고 실험의 각 단계 사이의 몇 분의 지연이 단계 사이에 안정화시키는 장치에 대해 허용되어야 더 좋은 결과를 얻었다. 장치 대 장치로부터의 신호의 변화가 관찰 될 때, 결과의 정규화는 각 실험의 결과를 비교할 수있을 것이 요구된다. 그러나, 미래의 장치의 더 큰 규모의 생산은 더 큰 장치 디바이스 재현성을 허용 할 것이다.

기술의 주요 제한은 형식이고, 순간으로 오직 하나의 샘플이 측정 될 수있다. 이 96 - 웰 플레이트 포맷의 작성 multiacquisition 센서의 발달에 의해 앞으로 빨리 해결 될 것이다. 이 장벽 조직의 높은 처리량 검사에 사용하기 위해이 기술을위한 길을 열 것입니다. 병렬로, 평면 장치 개발 t에서도 있습니다O 동시 광학 및 전자 측정을 할 수 있습니다.

요약하면, 장벽 조직의 라벨없는 모니터링 할 수있는 저비용으로 제조 될 수있는 신규 한 장치가 개발되었다. 이 장치는 민감도와 기존의 방법보다 더 높은 시간 해상도를 보여줍니다. 같은 OECT 같은 장치와 체외 모델의 통합은 발견하고 독성 약물에 대한 동물 실험에 대한 좋은 대안이 될 수 있습니다.

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Disclosures

이 프로젝트는 FP7 - 사람-2009-RG, 마리 퀴리 프로젝트 번호 256367 (CELLTOX)과 유럽 연구위원회 ERC-2010-엑츄 제안 없음 258966 (IONOSENSE)뿐만 아니라, 헌법위원회 지역 드에서 공동 교부금에 의해 지원됩니다 ST에 대한 프로방스 알프 코트 다 쥐르와 CDL 제약. 우리는 OECT의 디자인과 기능에 관한 유용한 토론을위한 조지 Malliaras 감사합니다.

Acknowledgements

이 논문의 저자는 경쟁 금전적 이해 관계가 없습니다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Clevios pH 1000 Heraus Clevios
AZ9260 resin Cipec Specialties
Dodecylbenzenesulfonic acid (DBSA) Acros Organic
3-Glycidoxypropyltrimethoxysilane (GOPS) Sigma Aldrich
24-well Suspended cell Culture insert Millicell  PET 0.4 μm Millipore Dominique Dutscher 51705
24-well Cell culture plate BD Falcon Dominique Dutscher 51705
Stericup-GPT PES 0.22 μM Dominique Dutscher 51246
Advanced DMEM Marque GIBCO Fisher Scientific E3434T
FBS Heat Inact. Fisher Scientific E3387M
Penicillin Streptomycin Fisher Scientific E3470C
GlutaMAX Fisher Scientific E3524T
Trypsin 0.05% EDTA Fisher Scientific E3513N
EGTA (Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid) Sigma Aldrich E4378
Ethylene glycol, anhydrous, 99.8%, Sigma Aldrich
Caco-2 cells ATCC
PDMS Dow Corning SYLGARD 184 SILICONE ELASTOMER
Au (99.99%) NEYCO AU3X6
Chromium (99.95%) NEYCO
Parylene C Specialty Coating Systems
Ag/AgCl wire Harvard Apparatus
Photoresist Cipec Specialties

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References

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