Author Produced

Dérivation des cultures leptoméninge explants de Postmortem humaines donateurs cerveau

* These authors contributed equally
Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Le protocole de culture leptoméninge explant de post-mortem du cerveau humain est un moyen techniquement robuste et simple pour obtenir des fibroblastes méningées fibronectine positifs dans les 6-8 semaines et cryoconservation environ 20-30000000 cellules.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Lee, K., Saetern, O. C., Nguyen, A., Rodriguez, L., Schüle, B. Derivation of Leptomeninges Explant Cultures from Postmortem Human Brain Donors. J. Vis. Exp. (119), e55045, doi:10.3791/55045 (2017).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Même si des progrès considérables ont été accomplis dans la caractérisation clinique de la maladie de Parkinson, de nombreuses études indiquent que le diagnostic de la maladie de Parkinson n'a pas pathologiquement confirmé dans jusqu'à 25% de la maladie de Parkinson diagnostiquée cliniquement. Par conséquent, les tissus prélevés chez des patients cliniquement diagnostiqués avec la maladie de Parkinson idiopathique peut avoir un taux élevé d'erreur de diagnostic; par conséquent , des études in vitro à partir de ces tissus pour étudier la maladie de Parkinson comme un modèle pré - clinique peut devenir inutile.

En recueillant leptoméninge humains post - mortem avec un diagnostic neuropathologique confirmé de la maladie de Parkinson et caractérisé par la perte de cellules nigro et inclusions protéiques intracellulaires appelées corps de Lewy, on peut être certain que le parkinsonisme cliniquement observé est pas causée par un autre processus pathologique sous - jacent (par exemple , la tumeur, l' artériosclérose).

Ce protocole présents la dissection et la préparation des leptoméninge humains post-mortem pour la dérivation d'une culture de fibroblastes méningée. Cette procédure est robuste et a un taux de réussite élevé. Le défi de la culture est la stérilité que l'acquisition du cerveau est généralement pas réalisée dans des conditions stériles. Par conséquent, il est important de compléter le milieu de culture avec un cocktail de pénicilline, streptomycine et amphotéricine B.

La dérivation des fibroblastes méningées des cas d' autopsie confirmés de la maladie de Parkinson est la base pour la modélisation in vitro de la maladie de Parkinson. fibroblastes méningées apparaissent 3-9 jours après la préparation des échantillons et environ 20-30 millions de cellules peuvent être cryoconservés dans 6-8 semaines. La culture de fibroblastes méningée est homogène et les cellules expriment la fibronectine, un marqueur couramment utilisé pour identifier les méninges.

Introduction

Méninges se composent de trois membranes qui protègent le cerveau: la dure-mère-mère, arachnoïde et la pie. Plus récemment, il a été reconnu que les méninges jouent également un rôle important dans le développement du cerveau et du cerveau homéostasie 1. Méninges sont dérivées de cellules mésenchymateuses et dérivées de la crête neurale et de façon intéressante, il a été démontré que les cellules souches résidant dans les méninges peuvent donner naissance à des neurones in vitro et in vivo après transplantation 2, 3, 4. Les cultures méninges ont également été utilisées avec succès en tant que couches d'alimentation, car ils possèdent une activité inductrice dérivé des cellules stromales de la différenciation des cellules souches embryonnaires dans des neurones dopaminergiques 5. En outre, les leptoméninges ont le potentiel de se différencier en neurones directement, les astrocytes, les oligodendrocytes et dans des conditions ischémiques 6.

Pour ce protocole, les échantillons de meninges post-mortem humaines sont collectées à partir de l'arachnoïde et la pie, collectivement appelées les méninges, et sont achetés dans le cadre d'un don de cerveau humain à des fins de recherche. Dissection du cerveau est effectué dans les 24 h de la mort et l'échantillon de leptoméninge est placé dans un milieu de croissance à froid pour un traitement ultérieur dans le 6-8 suivant h comme illustré ici dans ce protocole.

Ce protocole décrit la dissection et la préparation d'échantillons de méninges humaines pour le développement de la culture de cellules de leptoméninge primaires patient. Le tissu est découpé en morceaux d'environ 25-30 3 mm x 3 mm carrés. Trois pièces sont placées dans chaque 6 puits revêtues de gélatine bien et maintient avec des lamelles de verre rondes. La dissection meninges prend environ 25-35 min. Le principal défi de cette culture est la stérilité comme le cerveau l'approvisionnement, le transport, et la dissection ne sont généralement pas réalisée dans des conditions stériles. Tonc, il est important de compléter le milieu de culture avec un cocktail de pénicilline, streptomycine et amphotéricine B et en utilisant des plats multi-puits pour la culture séparément des morceaux de tissu.

Excroissance des fibroblastes méningés se produit généralement dans la première semaine. Le support est changé tous les deux à trois jours jusqu'à ce que les cellules soient confluentes et les cellules sont repiquées par voie enzymatique. Les fibroblastes méningées sont cryoconservés à 1 million de cellules par mL / flacon dans les milieux de cryoconservation. Avec ce protocole, 20-30 millions de fibroblastes méningées peuvent être dérivées en 6-8 semaines pour la cryoconservation. Les applications en aval de ces fibroblastes méningées sont des cultures primaires pour la recherche sur la maladie, la différenciation neuronale directe ou dérivation de cellules souches pluripotentes induites à partir de la leptoméninge pour la compréhension des mécanismes de la maladie et pour le développement de médicaments.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

L'enregistrement cerveau don comprend la documentation par le déclarant de leur intention de faire un don. L'autorisation d'autopsie pour la récupération des tissus est fournie par le plus proche parent dans la mesure permise par la loi. Les études de recherche à l'aide de spécimens d'autopsie recueillies sont examinées par le comité d'examen institutionnel (IRB) pour assurer la conformité avec Health Insurance Portability and Accountability Act (HIPAA) règlements.

REMARQUE: Les échantillons sont collectés par leptoméninge le dissecteur cerveau ou neuropathologue au cours d'une dissection du cerveau et sont stockés dans des tubes de 50 ml contenant coniques 25-30 mL méningée milieu de croissance. L'échantillon est conservé à 4 ° C jusqu'à ce que la préparation des échantillons. Le traitement doit être effectué le plus tôt possible que la viabilité des cellules diminue avec le temps post-mortem.

1. Mise en place avant de lancer la leptoméninge Dissection

REMARQUE: Les étapes 01/01 à 01/03 sont à effectuer dans une enceinte de sécurité biologique.

  1. Préparer un milieu de croissance des méninges en combinant 375 ml de milieu Eagle modifié par Dulbecco, 100 ml de sérum bovin fœtal, 5 ml de 10 mM d'acides aminés non essentiels, 5 ml de 200 mM de L-alanyl-L-glutamine ml de pyruvate de sodium 5 à 100 mM, 5 ml 10 000 U / ml de pénicilline / streptomycine et 5 ml 250 pg / ml d'amphotéricine B dans 500 ml d'unité de filtration. Filtrer et mélanger. Utiliser les médias pour un maximum de quatre semaines.
  2. Placez tous les matériaux dans l'enceinte de sécurité biologique avant de commencer la dissection: plats 4x Petri, 2x plaques 6 puits, 2x scalpels, 15-20 stérilisés couverture feuillets 15 mm, tampon phosphate salin (PBS), pipettes sérologiques, aspiration pipettes.
  3. Ajouter 1 ml de solution stérile-autoclavé gélatine 0,1% à chaque puits d'une plaque à 6 puits. Placer la plaque de côté pour 30-60 min. 2x préparer des plaques à 6 puits.

2. Préparation de l'échantillon leptoméninge

REMARQUE: Les étapes 02.01 à 02.03 doivent être effectuées dans une enceinte de sécurité biologique.

  1. Ajouter environ 10 ml de PBS10 cm plat et de culture de tissu stérile placer l'échantillon meninges dans le plat. En utilisant des pinces, lavez doucement leptoméninge avec du PBS pour éliminer le sang.
  2. Transférer les méninges dans un nouveau 10 cm boîte de culture de tissu contenant 10 ml de PBS frais et continuer à laver. Répéter au besoin pour enlever autant de sang que possible.
  3. L'utilisation de deux scalpels, coupés leptoméninge tissu dans un environ 6 cm x 6 cm grande pièce.
  4. Placer le couvercle sur une boîte de culture et transfert à un microscope à dissection dans une hotte à flux laminaire horizontal.

3. Dissection de leptoméninge Tissue

REMARQUE: Les étapes 03.01 à 03.03 doivent être effectuées dans une hotte à flux laminaire horizontal à l'aide d'un microscope à dissection.

  1. Retirer les vaisseaux sanguins d'une région sur la pièce de leptoméninge (étape 2.3) assez grand pour créer au moins 20-25 3 mm x 3 mm pièces. Tenir la leptoméninge en place avec un scalpel et de l'autre, utiliser un mo raclage doux et peu profondetion pour séparer les vaisseaux.
  2. Couper des petits carrés de tissu de la zone préparée. Couper dans un processus par étapes en faisant d'abord les gros morceaux, puis couper les en sections plus petites.
  3. Utilisez un scalpel pour maintenir le tissu en place et un autre scalpel pour couper le tissu avec un mouvement de bascule. En raison de la consistance du tissu, il est difficile de faire coulisser les uns contre les autres scalpels. Cela ne fera que déchirer le tissu à part et se traduit par des bords irréguliers.
  4. Continuer à couper les morceaux de moitié jusqu'à ce qu'il y à environ 20-25 3 mm x 3 mm pièces.

4. Transfert de Dissected Méninges Pièces sur Tissue Culture Plaques

REMARQUE: L'étape 4 doit être effectuée dans une enceinte de sécurité biologique.

  1. Aspirer la gélatine de la plaque de 6 puits (de l'étape 1.3). Ajouter 1 ml de milieu de croissance meninges à chaque puits. En utilisant des pinces stériles, placer 3-4 pièces de biopsie dans chaque puits.

5. Mise en place de couverture glisse sur Meninges Pieces

REMARQUE: Les étapes 05.01 à 05.02 doivent être effectuées dans une hotte à flux laminaire horizontal à l'aide d'un microscope à dissection.

  1. Couvrir les morceaux avec 1-2 15 mm lamelles stériles circulaires par puits.
  2. Appuyez fermement avec une pince pour assurer les morceaux touchent le fond de la plaque. Ceci permet la fixation de pièces de tissu au fond du puits.
  3. Placer la plaque de 6 puits dans un 37 ° C, 5% de CO 2 incubateur.

Culture 6. Cellule Maintenance

REMARQUE: Les étapes 06.01 à 06.03 doivent être effectuées dans une enceinte de sécurité biologique. Manipuler des boîtes de culture avec soin que les lamelles ne doivent pas bouger et déloger les méninges pièces.

  1. Après 2 jours de culture, ajouter un 1 ml supplémentaires de milieu frais de croissance meninges à chaque puits.
  2. Au jour 7, aspirez soigneusement les médias et ajouter 2 mL de milieu frais dans chaque puits.
  3. Après 9 jours, continuer à changer de support de croissance tous lesautre jour jusqu'à ce que la culture devient confluentes.

7. repiquage

NOTE: Toutes les étapes doivent être effectuées dans une enceinte de sécurité biologique. Une fois que les fibroblastes méningées ont migré hors des morceaux de tissu méningées et commencer à se développer vers les bords du récipient de culture, développez des fibroblastes méningées en plus grande boîte de culture.

  1. Avant de commencer le repiquage, le manteau de la boîte de culture avec 1% de gélatine pendant 15-30 min.
  2. Aspirer le milieu de plat à 6 puits et laver les cellules avec 2 ml de PBS.
  3. Ajouter 1 ml de trypsine / EDTA à chaque puits et incuber à 37 ° C pendant 5 à 10 min. Il est nécessaire d'enlever les lamelles ou le tissu méningé pour cette étape.
  4. Lorsque les cellules sont arrondies et commencent à se détacher, ajouter 2 ml de milieux de culture.
  5. cellules haut et bas pour perturber complètement toutes les touffes et transférer la solution de cellules à une plus grande boîte de culture pipettes.
  6. Utiliser un rapport de 1: 3 à 1: 4 pour combiner des cellules de trois boîtes à 6 puits dansune boîte de culture T75.
  7. Une fois les cellules fibroblastes méningées sont confluentes dans des flacons de culture T75, trypsiniser les cellules et la cryoconservation dans les médias de cryoconservation à 1x10 6 cellules / mL par flacon. Un T75 flacon de culture avec des fibroblastes confluentes méningées contient environ 5-7 millions de cellules.

8. Caractérisation des fibroblastes méningés par immunocoloration

REMARQUE: Avant de commencer la procédure, préparer une solution de paraformaldehyde à 4%, 5% de sérum de chèvre normal dans du PBS (tampon de blocage), 0,3% de Triton X-100 dans du PBS (tampon de perméabilisation), les solutions d'anticorps primaires et secondaires, et 1 pg / ml de Hoechst 33342 dilué dans du PBS de 10 mg / mL stock.

  1. Seed 15.000 à 30.000 fibroblastes méningées dans 8 puits chambre diapo revêtues de gélatine à 0,1%.
  2. Après 24 h lorsque les cellules sont fixées, fixer les cellules dans 100 ul de paraformaldehyde à 4% par puits pendant 10 min à température ambiante. Laver les puits 3 fois avec PBS 1x.
  3. Perméabiliser les cellules avec 150 ul de 0,3% de Triton X-100 pendant 5 min à température ambiante. Laver les puits 3 fois avec PBS 1x.
  4. Ajouter 200 ul de solution de blocage (PBS + 5% de sérum de chèvre normal) pendant 1 h à température ambiante.
  5. Aspirer la solution de blocage et ajouter 150 ul d'anticorps primaires souhaités dilués dans une solution de blocage. Pour double coloration, préparer des dilutions de travail des anticorps primaires dans des tubes de centrifugation séparés sur la glace comme suit:
    1. Préparer dilution 1: 300 d'anticorps anti-fibronectine + dilution 1: 200 d'anticorps anti-nestine dans la solution de blocage. Préparer dilution 1: 250 d'anticorps anti-SERPINH1 + 1: 1000 dilution de l'anti-TUJ1 dans la solution de blocage. Préparer dilution 1: 250 d'anticorps anti-SERPINH1 + dilution 1: 100 d'anticorps anti-SOX2 dans une solution de blocage
  6. Incuber à 4 ° C jusqu'au lendemain.
  7. Laver les puits 3 fois avec PBS 1x.
  8. Préparer un travail 1: 400 dilution marqué par fluorescence des anticorps secondaires de chèvre anti-lapin (vert; Ex / Em 2 2 590/617 nm) dans une solution de blocage et ajouter 100 pi à chaque puits. Incuber pendant 1 h, à l'obscurité, à température ambiante. Puis, lavez les puits une fois avec PBS 1x.
  9. Ajouter 100 pi de 1 pg / ml Hoechst 33342 (bleu; Ex / Em 2 358/461 nm) solution à chaque puits et incuber dans l'obscurité pendant 3 min. Laver les puits 3 fois avec PBS 1x, laissant dans le lavage final 1x PBS dans le puits, et recouvrir la lame avec une feuille d'aluminium.
  10. Analyser les cellules sous microscope à fluorescence.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Lorsque le protocole de traitement de leptoméninge a réussi, l'excroissance des fibroblastes méningés est d'abord observé trois à neuf jours après la dissection, bien que cela peut dépendre de la durée de l'intervalle post-mortem du cerveau. La figure 1 montre des cultures de fibroblastes méningées de quatre donneurs différents. La figure 1A montre une pièce tenue par une lamelle de verre (diagonale sombre) et fibroblaste excroissance autour des tissus quatre jours après le traitement d'un 88-year-old donneur avec 10 h 20 min d' intervalle post-mortem leptoméninge. Figure 1B montre clairsemée fibroblaste excroissance sept jours post - traitement d'un donneur de 70 ans et 11 h 45 min d' intervalle post-mortem. Figure 1C montre fibroblaste excroissance 13 jours après la dissection d'un 88-year-old donneur et 24 h d' intervalle post-mortem. Figure 1D montre une culture confluente qui a été repiqué dans un vess T75el et les cellules peuvent être cryoconservés à ce stade.

Fibroblastes méningées sont bipolaires ou multipolaires et ont allongé ou des formes irrégulières (figure 2). Elles sont caractérisées par l'expression de la fibronectine et de glycoprotéine marqueur de fibroblastes SERPINH qui est localisée au niveau du réticulum endoplasmique (Figures 2A-2C). Fibroblastes méningés ne sont pas immunoréactive de facteur de transcription de SRY (région de détermination de sexe Y) -Box 2 (SOX2) qui est un marqueur pour des cellules souches non différenciées (figure 2A). Cependant, un sous - ensemble de fibroblastes leptoméningés est positif pour le type VI filament intermédiaire nestine, un neuronal marqueur de cellules souches (figure 2B), et la classe spécifique des neurones III bêta-tubuline (TUJ1) (figure 2C).

Figure 1
Figure 1.Des exemples de l' excroissance des fibroblastes méningées provenant de quatre donneurs différents. A) pièce de tissu leptoméninge est maintenu par une lamelle de verre (diagonale sombre) et fibroblaste excroissance autour du tissu a été observé quatre jours après le traitement d'un 88-year-old donneur avec 10 h 20 min d' intervalle post-mortem. B) fibroblaste Sparse excroissance sept jours après le traitement d'un donneur de 70 ans et 11 h 45 min d' intervalle post-mortem. C) méningée fibroblaste excroissance 13 jours après la dissection d'un 88-year-old donneur et 24 h d' intervalle post-mortem. D) confluentes culture de fibroblastes méningée repiqué dans un récipient T75. S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Figure 2
Figure 2. Immunost aining pour meninges, les cellules souches, les cellules souches neurales, et des marqueurs de neurones. A) coloration immunofluorescence pour les marqueurs de fibroblaste SERPINH1 (vert) et la tige marqueur de cellules SOX2 (rouge). SERPINH1 a été exprimée dans tous les noyaux cellulaires comptés. Tige marqueur cellulaire SOX2 n'a pas été détectée dans ces leptoméninge culture. B) coloration d'immunofluorescence pour spécifiques-meninges marqueur fibronectine (vert) et le marqueur de cellule souche neurale NESTIN (rouge). 52,1% des noyaux de cellules comptés étaient positifs pour les deux NESTIN et fibronectine. C) Immunofluorescence pour SERPINH1 (vert) et TUJ1 marqueur neuronal (rouge). 6,9% des noyaux comptés étaient positifs pour SERPINH1 et TUJ1. des données de comptage de cellules ont été déterminées en utilisant la cellule manuelle Compteur multi-outil de sélection sur ImageJ. les images colorées individuelles ont été évaluées en comptant le nombre de cellules DAPI positives par rapport au nombre de cellules positives pour chaque marqueur en pourcentage.décharné "> S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

journée Résultats attendus
3-9 Excroissance des premiers fibroblastes méningées.
7-18 fibroblastes méningés se développent, et la culture devient plus dense. Changement de média de 2 mL tous les autres jours.
18-25 plaque de 6 puits devient confluentes, une fois que les fibroblastes méningées sont confluentes combiner trois puits dans un flacon de culture T75 (passage de 1: 3 à 1: 4).
26-45 Un confluentes résultats du flacon de culture T75 à 5-7 millions de cellules. Cryoconservation fibroblastes méningées à 1 million de cellules / flacon.

Languettele 1: Chronologie de l'excroissance cellulaire.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Ce protocole décrit un protocole simple et robuste pour dériver une culture de fibroblastes méningée de leptoméninge post-mortem humains recueillies conjointement avec un don de cerveau. Il y a très peu de descriptions de protocoles pour dériver des cultures de cellules de matériel humain post-mortem. Deux études décrivent des cultures de fibroblastes 7, 8, peau dérivé 9, une étude décrit les échantillons 10 dura, et une autre décrit des échantillons non cryoconservés dura congelé 11.

On prépare deux plaques de 6 puits avec 2-3 morceaux de tissu (environ 3 mm x 3 mm) dans chaque puits pour assurer une excroissance et une expansion suffisante avant cryoconservation. Il est essentiel que les méninges pièces sont attachées à la boîte de culture par pressurage doux un couvercle en verre feuillet stérile sur les morceaux de tissu pour les maintenir en place. Sans une lamelle, les meninges pièces ne serontt attach au fond de la boîte de culture. excroissance réussie est observée uniquement lorsque les morceaux de tissu sont en contact direct avec le fond en plastique. Si les morceaux de tissu flottent dans le milieu de culture, aucune excroissance de cellules provenant du tissu est observé. Ceci doit être effectué avec environ 500 ul de milieu de croissance pour ne pas sécher les échantillons, puis ajouter 1 ml de milieu de croissance dans le récipient. Il ne faut pas utiliser plus de silicone pour maintenir les lamelles en place.

Si les pièces sont inférieures à 3 mm x 3 mm, l'excroissance est plus lente et, dans certains cas, aucune des cultures confluentes peut être établie. Il est essentiel de ne pas cultiver les cellules trop rares et nous recommandons un rapport de division de 1: 3 à 1: 4. petits puits individuels permettent de mieux gérer la contamination potentielle. Wells peuvent être alimentés individuellement et pipettes doivent être changés entre les puits.

Nous avons tiré avec succès des fibroblastes méningées de 9 échantillons post-mortem avec un postmortem intervalle entre 10 à 24 heures. Les donateurs étaient entre 70 et 88 ans et ont des durées de la maladie de la maladie de Parkinson entre 8-31 ans. Nous remarquons que les tissus avec un intervalle post-mortem plus prennent plus de temps avant que les premières cellules se développent sur (jusqu'à 9 jours). Dans les échantillons avec plus court intervalle post-mortem, on observe l'excroissance dès 3 jours après la préparation. On n'a pas remarqué une différence dans la croissance fondée sur l'âge du donneur, mais nous avons seulement eu des donateurs> 70 ans.

L'importance de la méthode est la dérivation d'une culture de cellules primaires pour une maladie neurodégénérative sporadique comme la maladie de Parkinson, qui ne peut actuellement être confirmée à l' autopsie 12, 13, 14 puisqu'il n'y définissent pas pleinement les caractéristiques cliniques, les techniques d'imagerie ou des biomarqueurs qui peuvent fournir un diagnostic précis pendant la vie 15. Nous avons déjà developpé un protocole pour la dérivation des fibroblastes provenant de biopsies de la peau surtout pour les cas génétiquement confirmés de la maladie de Parkinson 16 qui nous ont permis de générer des cellules souches pluripotentes induites et étudier les mécanismes de la maladie 17, 18, mais ce nouveau protocole sera crucial de comparer directement les changements neuropathologiques avec les résultats in vitro pour la maladie de Parkinson sporadique. À notre connaissance, ceci est le premier protocole découlant des fibroblastes méningées de leptoméninge humains post-mortem.

Cultures de fibroblastes méningés peuvent être directement utilisés pour l' étude des mécanismes moléculaires liés à la maladie ou d'une blessure ou comme source pour la reprogrammation nucléaire dans des cellules souches pluripotentes induites ou la conversion directe dans les cultures neuronales comme des modèles précliniques avancés pour la maladie de sporadique Parkinson ou d' autres troubles neurodégénératifs 19. Ces humodèles de patients dérivés homme constituent le fondement et d'accélérer les progrès de la médecine personnalisée et régénératrice.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Corning Petri dishes Fisher Scientific 351029
Nunc 6-well plate Fisher Scientific 14-832-11
15-mm cover slips Fisher Scientific 12-545-83 15CIR-1D
Scalpels, sterile blade, No. 15 Miltex 4-415
Curved precision tip forceps Fisher Scientific 16-100-122
Serological pipettes Fisher Scientific 13-678-11E
Pasteur pipettes Fisher Scientific 22-230490
Gelatin Sigma G1890-100G
Phosphate Buffer Saline Fisher Scientific SH30264.02
Corning 500 mL filter unit Fisher Scientific 430770 Combine media components and filter.
Nunc Cell Culture Treated Flasks with Filter Caps, T175 cm2  Thermo Scientific 178883
Name Company Catalog Number Comments
Growth Media
Hyclone DMEM Fisher Scientific SH30081.02
Hyclone FBS Fisher Scientific SH30910.03
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100x) Thermo Fisher 11140-050
GlutaMAX Supplement (100x) Thermo Fisher 35050-061
Sodium Pyruvate (100 mM) Thermo Fisher 11360-070
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Thermo Fisher 15140-122
Amphotericin B (Yellow Solution/250 µg/mL) Fisher Scientific BP264520
Bambanker Freeze 120 mL Fisher Scientific NC9582225
Name Company Catalog Number Comments
Fibronectin Staining
8 well chamber slides  Fisher Scientific 1256518
20% paraformaldehyde  Electron Microscopy Sciences 15713
Triton X-100  Sigma T8787
100% Glycerol  BioRad 9455
100% normal goat serum  Fisher Scientific 101098-382
Anti-Fibronectin antibody [F1] Abcam ab32419 1:300 dilution in blocking solution
Anti-SERPINH1 Sigma S5950-200ul 1:250 dilution in blocking solution
Anti-SOX2 Millipore MAB4343 1:100 dilution in blocking solution
Anti-Nestin Millipore MAB5326 1:200 dilution in blocking solution
Anti-TUJ1 Covance MMS-435P 1:1,000 dilution in blocking solution
Alexa Fluor 488 anti-rabbit Thermo Fisher A11029 1:400 dilution in blocking solution; (green channel; Ex/Em2 495/519 nm) 
Alexa Fluor 555 anti-mouse Thermo Fisher A21424 1:400 dilution in blocking solution; (red channel; Ex/Em2 590/617 nm) 
Hoechst 33342 stain Thermo Fisher H3570 dilute to a final concentration of 1.0 μg/mL; (blue channel; Ex/Em2 358/461 nm)
Suppliers are suggestions, similar products from alternative vendors can be used as well.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Decimo, I., Fumagalli, G., Berton, V., Krampera, M., Bifari, F. Meninges: from protective membrane to stem cell niche. Am J Stem Cells. 1, (2), 92-105 (2012).
  2. Bifari, F., et al. Novel stem/progenitor cells with neuronal differentiation potential reside in the leptomeningeal niche. J Cell Mol Med. 13, (9B), 3195-3208 (2009).
  3. Bifari, F., et al. Meninges harbor cells expressing neural precursor markers during development and adulthood. Front Cell Neurosci. 9, 383 (2015).
  4. Decimo, I., Bifari, F., Krampera, M., Fumagalli, G. Neural stem cell niches in health and diseases. Curr Pharm Des. 18, (13), 1755-1783 (2012).
  5. Hayashi, H., et al. Meningeal cells induce dopaminergic neurons from embryonic stem cells. Eur J Neurosci. 27, (2), 261-268 (2008).
  6. Nakagomi, T., et al. Leptomeningeal-derived doublecortin-expressing cells in poststroke brain. Stem Cells Dev. 21, (13), 2350-2354 (2012).
  7. Hjelm, B. E., et al. Induction of pluripotent stem cells from autopsy donor-derived somatic cells. Neurosci Lett. 502, (3), 219-224 (2011).
  8. Hjelm, B. E., et al. In vitro-differentiated neural cell cultures progress towards donor-identical brain tissue. Hum Mol Genet. 22, (17), 3534-3546 (2013).
  9. Meske, V., Albert, F., Wehser, R., Ohm, T. G. Culture of autopsy-derived fibroblasts as a tool to study systemic alterations in human neurodegenerative disorders such as Alzheimer's disease--methodological investigations. J Neural Transm (Vienna). 106, (5-6), 537-548 (1999).
  10. Bliss, L. A., et al. Use of postmortem human dura mater and scalp for deriving human fibroblast cultures. PLoS One. 7, (9), e45282 (2012).
  11. Sproul, A. A., et al. Generation of iPSC lines from archived non-cryoprotected biobanked dura mater. Acta Neuropathol Commun. 2, 4 (2014).
  12. Adler, C. H., et al. Low clinical diagnostic accuracy of early vs advanced Parkinson disease: clinicopathologic study. Neurology. 83, (5), 406-412 (2014).
  13. Hughes, A. J., Daniel, S. E., Kilford, L., Lees, A. J. Accuracy of clinical diagnosis of idiopathic Parkinson's disease: a clinico-pathological study of 100 cases. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 55, (3), 181-184 (1992).
  14. Hughes, A. J., Daniel, S. E., Lees, A. J. Improved accuracy of clinical diagnosis of Lewy body Parkinson's disease. Neurology. 57, (8), 1497-1499 (2001).
  15. Langston, J. W., Schüle, B., Rees, L., Nichols, R. J., Barlow, C. Multisystem Lewy body disease and the other parkinsonian disorders. Nature Genetics. 47, (12), 1378-1384 (2015).
  16. Vangipuram, M., Ting, D., Kim, S., Diaz, R., Schüle, B. Skin punch biopsy explant culture for derivation of primary human fibroblasts. J Vis Exp. (77), e3779 (2013).
  17. Byers, B., et al. SNCA triplication Parkinson's patient's iPSC-derived DA neurons accumulate alpha-synuclein and are susceptible to oxidative stress. PLoS One. 6, (11), e26159 (2011).
  18. Sanders, L. H., et al. LRRK2 mutations cause mitochondrial DNA damage in iPSC-derived neural cells from Parkinson's disease patients: reversal by gene correction. Neurobiol Dis. 62, 381-386 (2014).
  19. Beevers, J. E., Caffrey, T. M., Wade-Martins, R. Induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived dopaminergic models of Parkinson's disease. Biochem Soc Trans. 41, (6), 1503-1508 (2013).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics