Изометрические сократимости измерение верхней брыжеечной артерии мыши, с помощью проволоки миография

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Проволока myograph техника используется для изучения функций сосудистой гладкой мускулатуры и экран новых лекарств. Мы доклад подробный протокол для измерения Изометрические сократительную способность мыши верхней брыжеечной артерии и скрининга новых миорелаксанты гладких мышц сосудов.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Sun, J., Yang, G. M., Tao, T., Wei, L. S., Pan, Y., Zhu, M. S. Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography. J. Vis. Exp. (138), e58064, doi:10.3791/58064 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Проволока myograph техника используется для оценки сократимости сосудистой гладкой мускулатуры в ответ на depolarization, GPCR агонисты/ингибиторы и наркотики. Он широко используется во многих исследованиях на физиологические функции сосудистой гладкой мускулатуры, патогенеза сосудистых заболеваний, как гипертония и разработки лекарств релаксант гладких мышц. Мышь является широко используется модель животных с большим бассейном модели заболеванием и генетически модифицированных штаммов. Мы ввели этот метод измерения изометрического сокращения мыши верхней брыжеечной артерии в деталях. 1.4-мм сегмент мыши сопротивление верхней брыжеечной артерии был изолирован и установлен на камеру myograph, передав две стальные провода через ее просвета. После уравновешивания и нормализации шаги судно сегмент был потенцированные high-K+ раствором дважды перед сужением assay. В качестве примера применения этого метода в разработке лекарств мы измерили релаксант эффект Роман природное вещество, neoliensinine, изолированных от китайских трав, эмбрионы семян Лотос (Nelumbo nucifera (Gaertn.) на мыши брыжеечных артерии. Сегменты судна, установлен в myograph камере были стимулировали раствором high-K+ . Когда силы натяжения этап стабильного поступательного, накопленных доз neoliensinine были добавлены к камере. Мы обнаружили, что neoliensinine был эффект миорелаксантов дозозависимый на гладких мышц, таким образом, о том, что он несет потенциальной деятельности против гипертонии. Кроме того как судно сегмент может выжить по крайней мере 4 часа после монтажа и поддерживать сократимости, вызванных high-K+ решения для много раз, мы предполагаем, что провода myograph система может использоваться для трудоемкий процесс скрининга наркотиков.

Introduction

Система myograph небольшой сосуд, используемый здесь был для измерения Изометрические сужением сосудов малого сопротивления с внутренним диаметром от 100 до 400 мкм. изолированных малых судов (около 2 мм длиной) были вставлены два провода диаметром 40 мкм и затем были монтируется на челюсти микрометр стороне датчика и последовательно. Этот метод myograph был впервые предложил в 19721 и затем разработан прежде всего Mulvany и его коллеги2,3,4,5,6. Это теперь зрелый техника стабильной оборудованием, легко производительности и стандартный нормализации процедуры7,8,9. Мы использовали этот метод с некоторыми изменениями для измерений в мыши верхней брыжеечной артерии.

Гладких мышц сосудистой линии стены почти всех кровеносных сосудов. Их основная функция заключается в создании сил посредством сокращения в ответ на различные стимулы. Нормальный сократимости гладких мышц сосудов имеет важное значение для регулирования кровяного давления и дополнение питания10. Ненормальной регуляции артериального давления приводит к различных заболеваний, в том числе гипертонии, сердечной недостаточности и ишемия. Некоторые исследования показали, что ненормальное давление всегда связан с неблагополучной гладких мышц сосудистой сократимости7,11,12,13. Метод myograph позволяет расследования Изометрические сократимости мыши сосудов вызванных различные стимулы, включая сосудосуживающие средства, ингибиторы и наркотиков. Успешные измерения сжатия поможет нам понять механизмы поддержания давления крови и патогенезе сосудистых заболеваний, связанных с гладких мышц и исследовать новые терапевтические подходы.

Многие китайские травы широко использовались для клинического лечения сосудистых заболеваний; Однако их эффективные ингредиенты обычно остаются неизвестными. Таким образом изоляции и выявление эффективных компонентов является очень важным для разработки новых лекарств. Технология myograph Многопроволочная предлагает простой подход для отбора активных компонентов в лекарственных растениях. Мы сообщили ряд исследований с использованием системы myograph небольшой сосуд расследовать мыши верхней брыжеечной артерии сужением и определили природных соединений с борьбе с гипертонией активность12,,1314. Здесь, мы описываем подробный протокол для метода myograph и оценить эффект миорелаксантов neoliensinine, изолированных от эмбрионов семян Лотос (Nelumbo nucifera Gaertn.) 14.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Животных манипуляции были утверждены институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) модель животных исследовательский центр Нанкин университета.

1. решение подготовка

  1. Приготовляют раствор HEPES-Tyrode (H-T), используя 137.0 мм NaCl, 2,7 мм KCl, 1.8 мм CaCl2, 1 мм MgCl2∙6H2O, 5,6 мм D-глюкозы и 10 мм HEPES, рН 7,3-7,4.
  2. Приготовляют раствор HEPES-Tyrode без кальция (Ca2 +-свободной H-T) с помощью 140.6 мм NaCl, 2,7 мм KCl, 1 мм MgCl2∙6H2O, 5,6 мм D-глюкозы и 10 мм HEPES, рН 7,3-7,4.
  3. Приготовляют раствор HEPES-Tyrode, с помощью 124 мм KCl (высокая K+) с помощью 15.7 mM NaCl, 124.0 мм KCl, 1.8 мм CaCl2, 1 мм MgCl2∙6H2O, 5,6 мм D-глюкоза и 10 мм HEPES, pH 7,3-7.4.

2. эксперимент подготовка

  1. Разогрейте H-T и High-K+ решения с использованием ванну воды 37 ° C.
  2. Включите myograph системы, данных приобретение оборудования и компьютера.
  3. Внимательно заполните все myograph камеры с 5 мл раствора H-T.
  4. Заполнить две чашки Петри с 20 мл 4 ° C H-T и Ca2 +-свободные решения H-T, соответственно и хранить на льду.
  5. Заполнить с покрытием Петри 10 см с 20 мл раствора H-T и поддерживать его при комнатной температуре.

3. мыши верхней брыжеечной артерии рассечение

  1. Усыпить 8-12-недельных C57BL/6J женского или мужского пола мыши на шейки матки дислокации. Прикрепить мышь с его живота вверх.
  2. Смочите живота с 70% этиловом спирте. Затем вырезать кожу с ножницами вдоль вентральной midline от паха и сделать надрезы с самого начала первый разрез вниз на опорах с обеих сторон. Потяните кожу обратно с обеих сторон; Сделайте аналогичные разрезы для открытия брюшины.
  3. Использование ножницами, вырезать пищевода, толстой кишки и других соединительных тканей полностью изолировать желудочно-кишечного тракта с подачей сосудистую от тела.
  4. Пинцетом переместите изолированного сегмента в блюдо, содержащие холодной H-T в шаге 2.4 подготовлен и осторожно промыть ткань в растворе H-T несколько раз смывать кровь.
  5. Переноса изолированного сегмента в покрытые Петри блюдо, приготовленное в шаге 2.5 и выполнения диссекции верхней брыжеечной артерии при комнатной температуре.
  6. Сгладить желудка, тощей кишки, подвздошной кишки и caecum в направлении по часовой стрелке, и ПИН-код желудка и caecum на левой и правой стороне, соответственно.
  7. Растянуть брыжеечных сосудистую кровати и исправить intestine с булавками подвергать расчлененных верхней брыжеечной артерии.
    Примечание: В этих условиях, артерии находятся на вершине вен.
  8. Включите источник света передачи стереоскопического микроскопа и вскрыть артерии под микроскопом. Убедитесь, что весь ткань погружается в решении.
  9. Зажим в жировой ткани вокруг артерий с щипцами и изолировать артерии, отрезав все соединительной ткани с Рассечение ножницами. Избегайте, ранив артерии.

4. артериальная монтажа

  1. Передача и погрузиться в верхней брыжеечной артерии дерево холодной Ca2 +-бесплатное решение H-T (подготовленных на шаге 2.4) путем зажима избыток артерий с щипцами.
  2. Отрезать часть 1.4-мм артерии проксимальнее кишечной стенки верхней брыжеечной аркады и использовать два щипцами осторожно открыть обе стороны этого сегмента артерии.
  3. Подготовка двух сегментов из нержавеющей стальной проволоки 2,5 см в длину и поместите их в том же блюдо.
  4. Осторожно зажать один конец артерии, с помощью щипцов и осторожно вставьте два провода в просвет артерии по одному с помощью другой щипцов. Убедитесь, что провода хранятся прямо и не прикасайтесь эндотелия.
  5. С помощью двух щипцы, зажим два стальных проводов вне резьбовые судна одновременно и тщательно переводить судно от Петри в myograph камеру, ранее заполнены раствором H-T (шаг 2.3).
  6. Винт кулачки друг от друга сделать пространство для монтажа. Зажать обе стороны одной из двух вставленной провода, с использованием двух щипцами и судно в челюсть разрыв (рис. 1A).
  7. Оберните обе стороны из зажимается проволоку вокруг винта челюсти, подключенных к микрометра (рис. 1B).
  8. Прикрепите левый винт, поворачивая по часовой стрелке. Выпрямите проволоки с помощью правой щипцами, а затем исправить правый винт, поворачивая по часовой стрелке (рис. 1 c). Убедитесь, что судно всегда находится внутри челюсти разрыв, но не прикасайтесь челюсти, чтобы избежать повреждения.
  9. Закрываете две челюсти с помощью микрометра (рис. 1 d). Убедитесь, что две челюсти находятся достаточно близко, но что они не касаться друг друга и что незакрепленные провода на вершине фиксированной проволоки.
  10. С помощью правой щипцы, тщательно сложите отвинтил провод на углу челюсти, подключенных к силу датчика и оберните его по часовой стрелке вокруг правой стороны винт (рис. 1E). Затем исправьте винт. Повторите этот шаг на левой стороне провода и исправить левый винт (рис. 1F).
  11. Переместите челюсти слегка расставьте, осторожно поворачивая микрометра (рис. 1 g). Избегайте растяжения судна. Используйте щипцы для перемещения провода на стороне микрометра к горизонтальной плоскости провода на стороне датчика. Тщательно поверните микрометра, так, что разрыв между двумя челюсти могут разместиться только два провода.
  12. Повторите шаги 4.2 – 4.11 смонтировать артерий на других камер. Подключите все камеры к оборудованию, охватывают камер, приложите 100% кислородом и датчик температуры и начать нагрева до 37 ° C. Открыть графики программного обеспечения и нажмите кнопку Пуск в окне Диаграммы , чтобы начать запись.
  13. Сбалансировать для около 20 мин.

5. Нормализация

Примечание: Чтобы стандартизировать экспериментальных условий и получения надежных физиологические реакции сосудов, нормализации процедуры является необходимым15. Согласно отношения между активной силы и внутренней окружности судна система myograph провода имеет стандартный нормализации программу для оценки внутренней окружности (IC) монтируется сосуд5,8, 9. Кратко для вычисления IC (мкм), читать микрометра и входное значение как значение X и датчика выход силой, то есть, отдыхая стены натяжение (МН/мм), как значения Y. Программа будет возвращать гладкой кривой (X, Y) и рассчитать IC, соответствующий Трансмуральное давление 100 мм рт.ст. (100IC). Судно имеет значение для нормализованных внутренней окружности (IC1) когда активный отклик максимальна.

  1. Равным нулю для всех каналов силы на устройстве и сбалансировать для еще 1-2 мин.
  2. Выберите Параметры нормализации от «DMT менюи Настройка параметров следующим образом:
    Окуляр калибровка (мм/div): 0.36; Целевая давление (кПа): 13,3; IC1/IC100: 0.9; Онлайн в среднем время (в секундах): 2; Время (в секундах) задержки: 60. Нажмите кнопку ОК , чтобы закрыть окно Настройки нормализации DMT .
  3. Выберите канал интерес DMT меню , чтобы открыть окно нормализации DMT для соответствующего канала. Введите значения констант в окно следующим: ткани конечными точками a1: 0.1; Ткани конечными точками a2: 4; Диаметр проволоки (мкм): 40. Окно отображает длину вычисляемого судна как 1,40 мм.
  4. Читайте микрометра палаты соответствующие ткани. Введите значение в поле микрометра чтение и нажмите кнопку Добавить точку . Это значение является начальное значение X (X0). После 60 s время задержки окно отображает силу и эффективного давления (ERTP), соответствующее этому значению микрометра. Одновременно микрометра чтение поле становится активным.
  5. Растяните судна, нормированный, повернув микрометра в направлении против часовой стрелки. Введите значение микрометра в поле микрометра чтение и нажмите кнопку Добавить точку . Ждать время задержки 60 s снова.
  6. Повторите шаг 5.5, продолжать растянуть судна и добавить микрометра значения до тех пор, пока окно отображает значение «микрометр X1», которое является значением вычисляемых микрометра, требуется растянуть судна, его IC1.
  7. Установите микрометра с X значение1 .
    Примечание: Нормализованное напряжение обычно составляет 1-2 млн.

6. артерии сужением запись

Примечание: Все решения, включая H-T и High-K+ решения, используемые в этом разделе, были подготовлены в шаге 2.1.

  1. После нормализации сбалансировать судно в камере для 15-20 мин.
    Примечание: Это не нужно изменить решение в этом шаге.
  2. Вызов в сосуд с раствором High-K+ дважды.
    1. Бросить вызов корабля, замените решение H-T с 5 мл раствора High-K+ побудить сжатия 10 мин, после стирки с 5 мл раствора H-T 3 - 4 раза.
      Примечание: Типичный спад имеет максимальное усилие над 3 mN и постоянный устойчивый силой около 2,5 млн12. Если вторая задача создает гораздо меньше силы впервые дозы, чем первая задача создает максимальное усилие ниже 2,5 млн или постоянной силы уменьшается со временем, судно отбрасывается и не будет использоваться для дальнейшего расследования.
  3. Бросьте вызов корабля с 5 мл раствора High-K+ побудить сжатия. После 5 минут добавьте 0,5 мкл neoliensinine раствор (10 мм в ДМСО)14 в камеру для отдыха судна в конечной концентрации 1 мкм neoliensinine.
  4. Когда силы является стабильным (это обычно занимает несколько минут), добавьте еще 0,5 мкл neoliensinine раствор в камеру для увеличения концентрации до 2 мкм. Добавить 1 мкл Стоковый раствор каждый раз увеличить концентрацию для 4, 6, 8 и 10 мкм для генерации t Он доза ответ кривой.
    Примечание: Фондовых и рабочие концентрации варьироваться среди наркотиков.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Мы измеряется Изометрические сократимости верхней брыжеечной артерии мыши с помощью многопроволочной myograph системы и оценку релаксант эффект neoliensinine, очищенного от эмбрионов семян Лотос (Nelumbo nucifera Gaertn.) 14. мыши сопротивление верхней брыжеечной артерии был изолирован, очищены от соединительной ткани и нарезать сегменты 1.4-мм. В сегменте артерии был вставлен на два стальных проволок в Ca2 +-бесплатное решение H-T в чашке Петри, а затем сегмент был установлен на две челюсти myograph камеры (рис. 2A). После монтажа сегмента, два провода были скорректированы быть параллельный, близко, но не касаясь друг друга (рис. 2B). До измерения силы судно сегмент был нормализованы и потенцированные дважды решением High-K+ , с тем чтобы стабилизировать судна. Во время процедуры нормализации, судна протянулась несколько раз до достижения значения IC100, и каждый растянуть цикл включает надежные сужением, быстрой релаксации и сил поддержания в 60 s (Рисунок 3). Сужение сосудов гладких мышц, вызванных High-K+ решения обычно показал две фазы, надежные фазы и устойчивой этапа (рис. 3). Сегмент судна могут быть использованы для дальнейших экспериментов только если High-K+-вызвала сокращение появляется нормальное и воспроизводимость. Типичные измерения с neoliensinine представлена на рисунке 4. Когда силы натяжения индуцированных High-K+ этап устойчивого, мы добавили накопленных доз neoliensinine (1, 2, 4, 6, 8 и 10 мкм) через отверстия в крышке камеры. С увеличением дозы, сила уменьшена в зависимости от дозы. Результат указывается, что neoliensinine является сосудистая гладких мышц релаксант вещество, которое потенциально выступает в качестве кандидата против гипертонии наркотиков14.

Figure 1
Рисунок 1: схема монтажа процедура артериальной. Синие линии представляют собой провода, и красный прямоугольник представляет артерии. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2: сегмент верхней брыжеечной артерии мыши установлен на камеру myograph. (A) сегмент верхней брыжеечной артерии мыши установлен на две челюсти с помощью двух стальных проводов. Белая полоса = 2 mm. (B) A микроскопические изображения сегмента верхней брыжеечной артерии навесные мыши в панели (A). Черная полоса = 0.5 мм. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3: Представитель оригинальный Прориси показаны процедуры нормализации и потенцирование High-K+ раствором. После второго High-K+ стимуляции, очередной эксперимент может быть выполнена. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4: представитель отслеживание мыши верхней брыжеечной артерии, что контракт по высоким-K + решения и затем смягчены путем добавления накопительный доз neoliensinine. С увеличением дозы, сила уменьшена в зависимости от дозы пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Гипертония является задачей широкого общественного здравоохранения из-за тяжелых осложнений, в том числе сердечно-сосудистых и почечных заболеваний16. Понимания патогенеза гипертензии и изучения более антигипертензивные препараты стало насущной задачей в этой области. Артериальное давление создается и поддерживается периферическое сопротивление циркуляции. Согласно закону Пуазейля, которое в относительно малых артерий генерировать значительную долю кровообращения сопротивления и служить доминирующим производителем кровяного давления3,10. Таким образом измерение сопротивления малых артерий, вместо того, чтобы крупные артерии больше подходит для исследования артериального давления. Проволока myograph технология является одним из лучших способов изучения физиологических функций артерий малого сопротивления и патогенезе сосудистых заболеваний.

Система myograph провода малое судно хорошо задокументировано в других докладах и был использован для измерения сужением артерий крыса верхней брыжеечной артерии8 и мыши например аорты9. Воспользовавшись генетической манипуляции, различных болезней и наркотиков скрининг модели, мышь стала широко используется модель животных во многих областях. Поэтому здесь, мы предоставили измененный Протокол этого метода для измерения мыши сужение верхней брыжеечной артерии. В настоящем докладе мы успешно измеряется сократимости мыши верхней брыжеечной артерии с изменениями основных буферов и установки шаги. Многие исследования ex vivo vasocontractility измерения используются растворы, содержащие NaHCO3, например Кребс решения, чтобы имитировать физиологический раствор соли. Однако такие буферы нужно отрегулировать уровень рН на протяжении измерений, что приводит к производству СаСО3CO2 . Мы выбрали решение H-T в качестве буферной системы и обнаружил, что он работал хорошо. Поскольку температура мало влияет на pK значение HEPES, значение рН раствора удобно настраивается при комнатной температуре и неизменным при 37 ° C 17. Кроме того, мы используем Ca2 +-бесплатные решения H-T, когда руководящие провода через просвет судна таким образом, чтобы предотвратить сужения сосуда, Ca2 +. Еще одно изменение в этот протокол является процедура монтажа. Некоторые доклады8,9 и устройство ручной5 рекомендовать руководящие второй провод после фиксации первый провод на челюсти. Мы находим, что она работает лучше, когда два провода руководствуются через просвет сосуда до монтажа корабля, потому что этот метод может снизить возможные повреждения датчика из-за ограниченной Камерное пространство.

Несмотря на высокую воспроизводимость этого метода мы должны уделять больше внимания на некоторые ключевые шаги. Самое главное чтобы избежать повреждения сосудов, вызванных щипцы и ножницы. Во время судно рассечение оператор должен использовать щипцы осторожно при растягивании жировой ткани и бережно использовать ножницы, при резке соединительной ткани. Кроме того крепления судна для фиксации должно быть сделано аккуратно, и следует избегать повреждения эндотелия при руководстве провода, потому что повреждения эндотелия судно будет привести к ненормальной реакции, например. , поврежденного судна показывает очевидной силы натяжения после стимуляции с ацетилхолина, а нормальный судна показывает эффект миорелаксантов. Объяснение этого явления является, что повреждения эндотелия не может должным образом производства оксида азота. Обратите внимание, что в эксперименте с участием связанных с эндотелием сужением, состояние эндотелия должны быть проверены до измерения силы. Кроме того мы должны также внимательно смонтировать судна на челюсти потому что датчик легко повреждены, если применяется жесткий силой. Наконец мы обычно не использовать постоянный приращение на микрометра при выполнении нормализации. Значение приращения первоначально 30 или 20 мкм и 10 мкм после эффективное давление достигает 11-12 кПа. Этот метод может снизить время нормализации и может предотвратить распыления, таким образом смягчающие повреждения судна.

Хотя наше исследование сосредоточено на мыши верхней брыжеечной артерии, этот метод может также использоваться для аорты, бронхов и других небольших судов, включая почек, мозга и легочной артерии. Поскольку эта система включает в себя четыре канала, это удобно для измерения четырех параллельных образцов одновременно. Кроме того весь брыжеечных сосудов кровать может обеспечить по крайней мере четырех сегментов артерии, таким образом очень легко для разработки различных экспериментальных групп. Согласно нашему опыту каждый сегмент артерии выживает по крайней мере 4 часа и поддерживает хорошие ответы на решение High-K+ над по крайней мере 6 повторений. Это свойство является чрезвычайно полезным для измерения воздействия нескольких дополнений различных препаратов кандидата. Однако существуют также ограничения в системе myograph проволоки. Эксперимент myograph проволока ex vivo это только возможность измерить Изометрические vasocontractility, но она обычно должно сочетаться с другими измерениями, для комплексного анализа судна.

В целом мы описали метод измерения изомерных сократимости в верхней брыжеечной артерии мыши, с помощью системы myograph многопроволочная. Этот метод может использоваться для оценки функций сосудистой гладкой мускулатуры и миорелаксанты экрана гладких мышц.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Мы благодарим д-р Вэй ци он (Soochow университета, Сучжоу, Китай) и д-р Ян Ning Qiao (Шэньси педагогический университет, г. Сиань, Китай) для оказания технической помощи. Эта работа была поддержана Фонд национального естественных наук Китая (Грант 31272311, 81373295 и 81473420) и проекта, финансируемых приоритетных академические программы развития Цзянсу высших учебных заведений (Грант № ysxk-2016).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Multi wire myograph system DMT 610-M
Stainless steel wire DMT 400447
Geuder dissection scissor DMT 400431
Dumont forceps DMT 300413
PowerLab/8SP ADInstruments ML785
Software ADInstruments LabChart 5
NaCl SigmaAldrich S5886
KCl SigmaAldrich P5405
CaCl2 SigmaAldrich C4901
MgCl2·6H2O SigmaAldrich M2393
D-Glucose SigmaAldrich G6152
HEPES Sangon Biotech A100511-0250
NaOH SigmaAldrich S8045
DMSO SigmaAldrich D2650

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bevan, J. A., Osher, J. V. A direct method for recording tension changes in the wall of small blood vessels in vitro. Agents and Actions. 2, (5), 257-260 (1972).
  2. Mulvany, M. J., Halpern, W. Mechanical properties of vascular smooth muscle cells in situ. Nature. 260, (5552), 617-619 (1976).
  3. Mulvany, M. J., Halpern, W. Contractile Properties of Small Arterial Resistance Vessels in Spontaneously Hypertensive and Normotensive Rats. Circulation Research. 41, (1), 19-26 (1977).
  4. Mulvany, M. J., Nyborg, N. An increased calcium sensitivity of mesenteric resistance vessels in young and adult spontaneously hypertensive rats. British Journal of Pharmacology. 71, (2), 585-596 (1980).
  5. Mulvany, M. J. Procedures for investigation of small vessels using small vessel myograph. Danish Myo Technology. Denmark. (2004).
  6. Halpern, W., Mulvany, M. J., Warshaw, D. M. Mechanical properties of smooth muscle cells in the walls of arterial resistance vessels. The Journal of Physiology. 275, 88-101 (1978).
  7. Michael, S. K., et al. High blood pressure arising from a defect in vascular function. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, (18), 6702-6707 (2008).
  8. Bridges, L. E., Williams, C. L., Pointer, M. A., Awumey, E. M. Mesenteric artery contraction and relaxation studies using automated wire myography. Journal of Visualized Experiments. (55), (2011).
  9. del Campo, L., Ferrer, M. Wire Myography to Study Vascular Tone and Vascular Structure of Isolated Mouse Arteries. Springer. New York. (2015).
  10. Fisher, S. A. Vascular smooth muscle phenotypic diversity and function. Physiological Genomics. 42, (3), 169-187 (2010).
  11. Crowley, S. D., et al. Distinct roles for the kidney and systemic tissues in blood pressure regulation by the renin-angiotensin system. The Journal of Clinical Investigation. 115, (4), 1092-1099 (2005).
  12. Qiao, Y. N., et al. Myosin phosphatase target subunit 1 (MYPT1) regulates the contraction and relaxation of vascular smooth muscle and maintains blood pressure. The Journal of Biological Chemistry. 289, (32), 22512-22523 (2014).
  13. He, W. Q., et al. Role of myosin light chain kinase in regulation of basal blood pressure and maintenance of salt-induced hypertension. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 301, (2), H584-H591 (2011).
  14. Yang, G. M., et al. Isolation and identification of a tribenzylisoquinoline alkaloid from Nelumbo nucifera Gaertn, a novel potential smooth muscle relaxant. Fitoterapia. 124, 58-65 (2018).
  15. Slezák, P., Waczulíková, I., Bališ, P., Púzserová, A. Accurate Normalization Factor for Wire Myography of Rat Femoral Artery. Physiological Research. 59, (6), 1033-1036 (2010).
  16. Kearney, P. M., et al. Global burden of hypertension: analysis of worldwide data. The Lancet. 365, (9455), 217-223 (2005).
  17. Good, N. E., et al. Hydrogen Ion Buffers for Biological Research. Biochemistry. 5, (2), 467-477 (1966).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics