صورة موجهة عبرية Mitral صمام ثقب نموذج ثقب من حجم الزائد التحكم من الغرسال في الفئران

JoVE Journal
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

تم الإبلاغ عن نموذج القوارض من حجم القلب الأيسر الزائد من قلس الميترالي. يتم حث الغرسة التاجية للشدة الخاضعة للرقابة عن طريق إدخال إبرة ذات أبعاد محددة إلى النشرة المؤقتة للصمام التاجي ، في قلب ينبض ، مع توجيه الموجات فوق الصوتية.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Corporan, D., Kono, T., Onohara, D., Padala, M. An Image Guided Transapical Mitral Valve Leaflet Puncture Model of Controlled Volume Overload from Mitral Regurgitation in the Rat. J. Vis. Exp. (159), e61029, doi:10.3791/61029 (2020).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

قلس الميترال (MR) هو آفة صمام القلب المنتشرة على نطاق واسع، والتي تسبب إعادة عرض القلب ويؤدي إلى فشل القلب الاحتقاني. على الرغم من أن مخاطر التصوير بالرنين المغناطيسي غير المصححة وتشخيصه الضعيف معروفة ، إلا أن التغيرات الطولية في وظيفة القلب والهيكل وإعادة عرض هاهي غير مفهومة تمامًا. وقد حدت هذه الفجوة المعرفية فهمنا للتوقيت الأمثل لتصحيح MR، والفائدة التي قد يكون تصحيح MR في وقت مبكر مقابل وقت متأخر على البطين الأيسر. للتحقيق في الآليات الجزيئية التي تكمن وراء إعادة عرض البطين الأيسر في إعداد MR ، نماذج الحيوانات ضرورية. تقليديا، وقد استخدمت نموذج الناسور الأبهري الكافال للحث على حجم الزائد، والذي يختلف عن الآفات ذات الصلة سريريا مثل MR MR يمثل ضغط منخفض حجم الزائد الإجهاد الهيموديناميكي، الذي يتطلب نماذج الحيوانات التي تحاكي هذا الشرط. هنا، ونحن نصف نموذج القوارض من MR شديدة فيها يتم مغرفة نشرة aterior من الصمام التاجي الفئران مع إبرة 23G، في قلب ينبض، مع توجيه صورة صدى القلب. يتم تقييم شدة MR وتأكيدها باستخدام تخطيط صدى القلب ، ويتم الإبلاغ عن استنساخ النموذج.

Introduction

قلس الميترال (MR) هو آفة صمام القلب الشائعة ، التي تم تشخيصها في 1.7٪ من عموم سكان الولايات المتحدة وفي 9٪ من السكان المسنين الذين تزيد أعمارهم عن 65عامًا. في هذه الآفة صمام القلب، إغلاق غير لائق من منشورات الصمام التاجي في systole، يسبب قلس الدم من البطين الأيسر في الأذين الأيسر. يمكن أن يحدث MR بسبب العديد من المسببات. ومع ذلك ، يتم تشخيص الآفات الأولية للصمام التاجي (MR الأولية) وعلاجها بشكل أكثر تكرارًا مقارنة بـ MR2الثانوي. غالبًا ما يكون MR الأولي المعزول نتيجة لانحطاط النخاع في الصمام التاجي ، مما يؤدي إلى إسطالة المنشورات أو الوترتينين، أو تمزق بعض الوتر، وكلها تساهم في فقدان التمادير الانقباضي للصمام.

MR الناتجة عن مثل هذه الآفات صمام يرفع حجم الدم ملء البطين الأيسر في كل ضربات القلب، وزيادة الإجهاد الجدار الانبساطي نهاية وتوفير الإجهاد الهيموديناميكي الذي يحرض على التكيف القلب وإعادة عرض. غالباً ما تتميز إعادة عرض القلب في هذه الآفة بتكبير كبير للغرفة3،4، تضخم جدار معتدل ، مع وظيفة انقباض ية محفوظة لفترات طويلة من الزمن. نظرًا لأن كسر القذف غالبًا ما يتم الحفاظ عليه ، غالبًا ما يتأخر تصحيح MR باستخدام الوسائل الجراحية أو عبر القسطرة ، حتى ظهور أعراض مثل عسر التنفس وفشل القلب وعدم انتظام ضربات القلب. ومع ذلك ، يرتبط MR غير المصحح ة بمخاطر عالية للأحداث السلبية القلبية ، على الرغم من أن المعرفة الحالية بشأن التغييرات الهيكلية الفائقة الكامنة وراء هذه الأحداث غير معروفة.

نماذج الحيوانات من MR توفير نموذج قيم للتحقيق في مثل هذه التغيرات الهيكلية في القلب، ودراسة التقدم الطولي للمرض. سابقا، وقد تسبب الباحثون MR في الحيوانات الكبيرة بما في ذلك الخنازير والكلاب والأغنام، عن طريق خلق تحويلة خارجية البطين الأذينيتمزق وتري داخل القلبأو نشرة التشبك7. في حين أن التقنيات الجراحية أسهل في الحيوانات الكبيرة ، فقد اقتصرت هذه الدراسات على المتابعة دون المزمنة في حجم عينة صغيرة ، بسبب ارتفاع تكاليف إجراء مثل هذه الدراسات في الحيوانات الكبيرة. وعلاوة على ذلك، فإن التحليل الجزيئي للأنسجة من هذه النماذج غالباً ما يكون صعباً بسبب الأجسام المضادة المحدودة الخاصة بالأنواع ومكتبات الجينوم المشروحة للمحاذاة.

نماذج الحيوانات الصغيرة من MR يمكن أن توفر بديلا مناسبا لدراسة هذه الآفة صمام وتأثيرها على إعادة عرض القلب. تاريخيا، تم استخدام نموذج الفئران من الناسور الأبهري (ACF) من حجم القلب الزائد. وصف لأول مرة في عام 1973 من قبل Stumpe وآخرونيتم إنشاء الناسور الشرياني الوريدي جراحيا لتجاوز الدم الشرياني ارتفاع الضغط من الشريان الأورطا تنازلي إلى انخفاض الضغط أقل فينا كافا. يؤدي ارتفاع معدل التدفق في الناسور إلى زيادة حجم كبيرة على جانبي القلب ، مما يسبب تضخم ًا كبيرًا للالبطينين الأيمن والأيسر وخللًا وظيفيًا يحدث في غضون أيام من إنشاء ACF9. على الرغم من نجاحها، ACF لا يحاكي الديناميكا الدموية من MR، حمولة زائدة حجم الضغط المنخفض، الذي يرفع الحمل المسبق ولكن أيضا يقلل من الحمل بعد. بسبب مثل هذه القيود من نموذج ACF، سعينا لتطوير وتوصيف نموذج MR الذي يحاكي بشكل أفضل الزائد حجم الضغط المنخفض.

هنا، ونحن نصف بروتوكول لنموذج من ثقب منشور الصمام التاجي لخلق MR شديدة في الفئران10،11. تم إدخال إبرة تحت الجلد في قلب الفئران النابض ، وتقدمت إلى منشور الصمام التاجي الرعنى في الوقت الحقيقي تحت توجيه تخطيط صدى القلب في الوقت الحقيقي. هذه التقنية قابلة للاستنساخ للغاية ونموذج جيد نسبيا يحاكي MR كما رأينا في المرضى. يتم التحكم في شدة MR من خلال حجم الإبرة المستخدمة لترميز المنشور التاجي ويمكن تقييم شدة MR باستخدام تخطيط صدى المريء (TEE).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

تمت الموافقة على الإجراءات من قبل برنامج رعاية الحيوانات واستخدامها في جامعة إيموري بموجب البروتوكول رقم EM63Rr، تاريخ الموافقة 06/06/2017.

1. إعداد ما قبل الجراحة

  1. البخار تعقيم الأدوات الجراحية قبل العملية.
  2. في يوم الإجراء، نقل الفئران من السكن إلى الجراحة، ووزنها.
  3. رسم الأدوية قبل الجراحة وما بعد الجراحة وفقا للوزن: جرعتين من كاربروفين (2.5 ملغ/كغ لكل منهما)، وجرعة واحدة من جنتامايسين (6 ملغ/كغ)، وجرعة واحدة من بوبرينورفين (0.02 ملغم/كغ).
  4. ضمان حجم كاف من الإيزوفدران في خلاط الغاز، والأكسجين في خزانات متوفرة لعملية جراحية. خزان واحد كامل من الأكسجين (24 قدم3)غالبا ما يكون كافيا.

2. إعداد الحيوانات

ملاحظة: الفئران الذكور Sprague-Dawley الكبار وزنها 350-400 غرام استخدمت في هذه الدراسة. التقنيات الجراحية قابلة للحيوانات أصغر قليلا أو أكبر، إذا رغبت في ذلك.

  1. تخدير الفئران في غرفة التعريفي مع 5٪ isoflurane مختلطة في 1 LPM (لتر في الدقيقة) من الأكسجين 100٪. تحديد مستوى كاف من التأنيمن من معدل تنفسية أبطأ تحت المراقبة البصرية، وفقدان الارتعاش عند قرص إصبع قدم الجرذ.
  2. تبيد الجرذ بـ 16 G angiocath، المجهزة للاستخدام كأنبوب الإندوتراكفيل.
    1. تصور القصبة الهوائية والحبال الصوتية باستخدام منظار الشوفان، واستخدام قضيب طرف القطن لمسح إفرازات البلعوم.
    2. إدخال أنبوب endotracheal على سلك إرشادي 0.034 بوصة، في الحبال الصوتية. مرة واحدة يتم وضع الأنبوب بشكل مناسب في القصبة الهوائية، ودفع أنبوب إلى الداخل وسحب السلك(الشكل1).
  3. ضع الجرذ على وسادة جراحية ساخنة يتم صيانتها عند درجة حرارة 37 درجة مئوية وقم بتوصيل أنبوب الإنفوركترافيل بجهاز التنفس الصناعي الميكانيكي. إدخال وزن الجرذ في برنامج التحكم في جهاز التنفس الصناعي ، والذي يحسب معدل التهوية وحجم المد والجزر. 66 التنفس في الدقيقة الواحدة مع حجم المد والجزر من 1 مل/100 غرام وزن الجسم استخدمت في هذه الدراسة(الشكل 1D).
    1. استخدام الأكسجين 100٪ (1 LPM) مختلطة مع 2-2.5٪ isoflurane كما مخدر المستنشق وتأكيد مستوى التخدير مع فقدان لهجة الفك وفقدان الاستجابة لقرصة إصبع القدم.
    2. لاحظ أنه إذا تم تنبيببشكل صحيح، يجب مزامنة حركة الصدر مع جهاز التنفس الصناعي.
    3. إذا تم تنبيب بشكل غير صحيح، لن تتزامن حركة الصدر مع جهاز التنفس الصناعي. لاختبار التنبيب غير السليم، ضغط بطن الفئران، مما يخلق الضغط الخلفي على جهاز التنفس الصناعي، وتوليد إنذار الإفراط في الضغط. في هذا السيناريو، تراجع عن الأوعية بلطف، والعودة الفئران إلى غرفة التعريفي مع 5٪ isoflurane لبضع دقائق لضمان هو بالمناسب وبعملية تهيئة الفئران.
    4. مرة واحدة تنبيب بشكل صحيح، وتأمين أنبوب الإنفوركتعاال عن طريق خياطة الطرف القريب من الأنبوب إلى خد الجرذ مع خياطة الحرير 4-0 لتجنب الاستئصال أثناء الإجراء.
  4. أدخل مسبار درجة حرارة المستقيم لمراقبة درجة حرارة الجسم، ومخطط كهربي رباعي لمراقبة تخطيط القلب أثناء العملية بأكملها.
    1. استخدام مصباح التدفئة النفقات العامة إذا كانت الحرارة من منصة الجراحية غير كافية. إيقاف مصباح إذا ارتفعت درجة حرارة الجسم فوق 37 درجة مئوية.
    2. تقييم بصريا تخطيط القلب لأي عدم انتظام ضربات القلب أو علامات نقص التروية عضلة القلب. إذا لم يكن هناك أي شيء، قم بتسجيل مخطط كهربية القلب الأساسي.
  5. إجراء تخطيط صدى الصدر (TTE) لوظيفة القلب الأساسية(الشكل 2A).
    1. تحويل الفئران إلى موقف supine ويكون الأعلى من الصدر. للحصول على آراء واضحة صدى، وإزالة الشعر باستخدام كريم إزالة الرذاذ.
    2. استخدام أي نظام الموجات فوق الصوتية مع تردد كاف لتصوير معدل ضربات القلب عالية. في هذه الدراسة استخدمنا نظام Visualsonics 2100 مع مسبار 21 ميغاهرتز ، وهو مناسب لتصوير القلب في الفئران.
    3. الحصول على صور وضع B في المستوى المظلي ذات المحور الطويل، لحساب وحدات التخزين البطينية اليسرى. في نفس المستوى، احصل على صور M-Mode لقياس أبعاد الجدار.
    4. قم بتشغيل المسبار بمقدار 90 درجة، والحصول على طرق عرض قصيرة للوضع B وM-Mode على المستوى المتوسط الحليمي لقياس أبعاد الجدار المقطعي العرضي.
  6. إجراء تخطيط صدى المريء (TEE) للتصوير الأساسي(الشكل 2B).
    1. ضع الجرذ في وضع الديكوبية الأيمن وأدخل مسبار الموجات فوق الصوتية داخل القلب 8 Fr (8 ميغاهرتز) في مريء الجرذ مع كمية صغيرة من الجل المطبق على الطرف. تواتر ICE (تصوير صدى القلب) كافية للحصول على 4-6 إطارات لكل نبضة القلب، والتي هي كافية لتصور حركة صمام.
      ملاحظة: يمكن استخدام نظام جنرال إلكتريك حية I أو سيمنز SC2000 رئيس الوزراء للتصوير ICE.
    2. الحصول على عرض المريء عالية للحصول على وجهة نظر من غرفتين من الجانب الأيسر من القلب. هذا المنظر مثالي لتصور الأذين الأيسر والصمام التاجي والبطين الأيسر. وضع التحقيق بحيث يتم تصور المنشورات الأمامية والخلفية وcoaptation هو مركزي. تسمح هذه الزاوية أيضًا بقياسات دوبلر عبر الصمام التاجي ، دون تصحيح زاوية.
    3. غادر قياس منطقة الأذين والصمام التاجي أبعاد الإبطال في هذا الرأي.
    4. تنفيذ لون دوبلر التصوير لتأكيد كفاءة صمام وعدم وجود MR في خط الأساس. إجراء موجة نبضية وموجة مستمرة دوبلر التصوير لتحديد تدفق التاجي وتأكيد عدم وجود تدفق regurgitant.
    5. تنفيذ B-وضع ونبض موجة دوبلر التصوير من الأبهر لقياس قطر الجذر الأبهري وحساب تدفق الأبهر.
    6. إجراء تصوير دوبلر موجة نبضية من الوريد الرئوي لقياس تدفق وذم ة رئوية.
  7. حقن جرعة واحدة من Carprofen (2.5 ملغ / كجم، SQ، غير الستيرويدية المضادة للالتهابات)، جنتاماين (6 ملغ / كغ، SQ، المضادات الحيوية)، والمالحة المعقمة (1 مل، SQ) للتعويض بشكل استباقي عن فقدان الدم أثناء الإجراء.
  8. قم بحلاقة الجانب الأيسر من الصدر حسب الحاجة لإزالة أي شعر متبقي من المجال الجراحي. يجب أن يكون الحلاقة من منطقة الرقبة السفلية إلى xyphoid ، ومن الذراع الأيسر وصولاً إلى منتصف القص كافية لضمان حقل يخلو من الشعر ويقلل من خطر تلوث الموقع الجراحي.
  9. فرك المنطقة الجراحية مع شاش غارق ة في Betadine، تليها شاش غارقة في الإيثانول 70٪. فرك المنطقة في حركات دائرية على الجلد، بحيث لا تلامس الشاش منطقة تم تنظيفها سابقا.
  10. كرر هذه الخطوة ثلاث مرات لتحقيق حقل معقم بشكل كاف للجراحة.
  11. قم بثني الحيوان بأغطية معقمة، وفتح نافذة للوصول إلى المنطقة الجراحية المعقمة.

3- جراحة الصدر اليسرى

  1. إجراء العملية الجراحية بأكملها باستخدام تقنيات العقيم، مع الحفاظ على إيزوفران في 2-2.5٪ في 1 LPM من الأكسجين. ضع جميع الأدوات في صينية معقمة، ثم ضعها مرة أخرى في الدرج بعد كل استخدام.
  2. ارتداء قفازات معقمة وقناع وقبعة جراحية من قبل الجراح للإجراء بأكمله. يمكن ارتداء ثوب جراحي معقم أيضًا ، ولكنه اختياري ما لم يكن من المتوقع التلوث.
  3. استخدم مشرطًا جراحيًا بشفرة لا #15 لإجراء شق جلدي على الجانب الأيسر من الصدر، وتقريبًا 1 سم قريبًا من الإكسيفود. استخدم مقص ًا مُشرّحًا لفصل طبقة الجلد عن طبقة العضلات وإجراء شق طولي.
  4. تشريح طبقات العضلات بنفس الطريقة حتى يتم كشف الأضلاع.
  5. جعل بعناية شق طولي 2-3 سم في الفضاء الخامس بين التكاليف، كافية لإدراج المنتقدين وفضح القلب.
  6. استخدام ملقط يميل غرامة لرفع التامور، ومقص صغير لاستئصاله في المنطقة المحيطة قمة القلب. تساعد هذه الخطوة على تجنب التصاقات القلب بعد الجراحة بجدران الصدر والحجاب الحاجز.
    ملاحظة: تجنب الشقوق الجراحية بالقرب من القص لتقليل النزيف. قد يسبب تحويل الشرايين الثديية الداخلية التي تعمل على طول القص نزيفًا مفرطًا. إذا واجهت مع مثل هذا النزيف، وتحديد النزيف وcauterize ذلك.

4. صدى توجيه إجراءات MR(الشكل 3 والشكل 4)

  1. استخدم خياطة برولين 6-0 وحامل إبرة صغيرة، لوضع خياطة سلسلة محفظة على قمة البطين الأيسر. إذا لزم الأمر، استخدم ملقط صغيرة لتحقيق الاستقرار في القلب.
  2. ربط بلطف خياطة apical لتثبيت قمة وإدراج إبرة 23 G (مسح مع المالحة، ومع stopcock في نهايتها القاصية) في وسط غرزة سلسلة محفظة، في تجويف البطين الأيسر.
  3. استخدام يد واحدة لعقد وبتوجيه ثابت الإبرة، واليد الأخرى للتلاعب في وقت واحد التحقيق صدى عبر المريء لتحقيق عرض صدى الأمثل لتصور الإبرة، كما هو موضح أعلاه.
  4. مع التوجيه الموجات فوق الصوتية في الوقت الحقيقي، تقدم الإبرة نحو الجانب البطيني من نشرة التاجي ة أترتور. بمجرد تأكيد موضع الإبرة على الموجات فوق الصوتية ، تقدم الإبرة في حركة واحدة دقيقة من خلال منشور الصمام. إذا شعر مقاومة، وتحريف الإبرة كما هو المتقدم في النشرة لتبربها.
    ملاحظة: يمكن أن يؤدي تقدم الإبرة بعيداً جداً إلى الأذين الأيسر إلى حدوث ثقوب الأذين الأيسر، مما يسبب نزيفاً مفرطاً ووفاة الحيوانات. يجب تصور الإبرة على الموجات فوق الصوتية في جميع الأوقات.
  5. تراجع الإبرة في غرفة البطين الأيسر، بعيدا عن الصمام التاجي، وتأكيد MR عن طريق تشغيل لون دوبلر التصوير.
  6. إذا لم يتم مشاهدة MR على تصوير دوبلر اللون، كرر الخطوتين 4.4 و 4.5. ضبط مسبار الصدى إذا لزم الأمر للحصول على عرض أفضل. بعد الممارسة في عدد قليل من الفئران ، من الممكن الحث على ثقب منشور في حركة واحدة من الإبرة ، مما يؤدي إلى ثقب بحجم القطر الخارجي للإبرة. وقد تأكد هذا بعد تشريح قلوب الفئران.
  7. بمجرد تأكيد MR ، اسحب الإبرة من تجويف البطين الأيسر وربط خياطة سلسلة المحفظة بلطف.
  8. استخدام شاش معقم لامتصاص أي دم على قمة وفي تجويف الصدر.
    ملاحظة: قد يؤدي لمس مسبار الصدى بالقفازات الجراحية إلى تلوث البيئة المعقمة. رش قفازاتك بالإيثانول بنسبة 70% أو استبدل القفازات بقفازات جديدة، بشكل مناسب.

5- شفاء الحيوانات والرعاية بعد الجراحة

  1. بعد 5-10 دقائق من وظيفة القلب مستقرة (تخطيط القلب العادي ومعدل ضربات القلب)، وإغلاق فاحش الصدر في طبقات مع 4-0 vicryl، مع الحد من الايزوفوران في الخطوات.
  2. استخدام خياطة متقطعة لتقريب الأضلاع، مع الحفاظ على إيسوفلوران في 2٪. أدخل أنبوب الصدر في الفضاء السادس بين التكاليف وتأمينه إلى الستائر العقيمة لتجنب التقدم غير المقصود للأنبوب في تجويف الصدر.
  3. استخدام خياطة مستمرة لإغلاق طبقة العضلات مع إيسوفلوران الحفاظ على 1.5٪.
  4. استخدام خياطة مستمرة لإغلاق طبقة الجلد مع الإيسوفلوران الحفاظ على 1٪.
  5. قم بتوصيل حقنة صمام Luer-lock ذات 10 مل بالمقلوب بأنبوب الصدر واستنزاف 10-12 مل من الهواء من تجويف الصدر ثم قم بإزالة أنبوب الصدر.
  6. إعطاء جرعة نهائية من كاربروفين (2.5 ملغ / كجم, SQ) وإيقاف إيسوفلوران.
  7. مواصلة التهوية الميكانيكية في حين الفعن الفئران من التخدير، ورصد العلامات الحيوية (SpO2 ومعدل ضربات القلب). في بداية التنفس التلقائي، إيقاف التهوية لاختبار قدرة الفئران للحفاظ على مثل هذا التنفس وجيدة SpO2.
  8. إذا بدأت مستويات SpO2 في الانخفاض إلى أقل من 90٪، قم بتشغيل جهاز التنفس الصناعي. مرة واحدة الجرذ قادرة على الحفاظ على مستويات SpO2 دون تهوية، يتم قطع خياطة الرسو إلى أنبوب endotracheal، ويتم إعداد الحيوان لextubation.
  9. مرة واحدة يظهر الفئران علامات اليقظة بما في ذلك شعيرات أو حركات العين، extubate الحيوان.
  10. وضع مخروط الأنف مع الأكسجين 100٪ حتى الجرذ هو الإسعافية.
  11. نقل الفئران إلى قفص نظيف مع الحد الأدنى من الفراش والاستمرار في رصد العلامات الحيوية باستخدام جهاز عرض SpO2 محمول ، يوضع على قدم الجرذ أو الذيل ، حتى يكون الجرذ متنقلًا.
    ملاحظة: إذا لوحظت الآثار السلبية من الجراحة، قد يكون للحيوانات وقت أطول للتعافي وقد يستغرق وقتا أطول لعقد مستويات عالية SpO2. إذا حدث ذلك، يمكن تطبيق مخروط الأنف مع الأكسجين 100٪ حتى مستويات SpO2 مستقرة.
  12. للحد من خطر الإصابة في موقع الجراحة وتجنب خطر العدوى ، والجرذان منزل واحد بعد الجراحة.
  13. إدارة Buprenorphine في غضون 3 ح بعد أن يكون الجرذ مستيقظا والإسعافية بما فيه الكفاية. قد يسبب البوبرينورفين ضيقًا تنفسية عند إعطائه في وقت مبكر من فترة التعافي المحيطة، وبالتالي يؤخرها حتى يتنفس الجرذ دون صعوبة.
  14. بعد الجراحة ، تتلقى جميع الحيوانات الأدوية التالية: جنتاميسين (6 ملغ / كجم ، SQ ، SID POD 1-3) والريماديل (5 ملغ / كجم ، SQ ، SID POD 1-3). تتم ملاحظة جميع الحيوانات مرة واحدة يوميًا لمدة خمسة أيام بعد الجراحة لفحص مواقع الشقوق ، ومرة واحدة يوميًا لأول أسبوعين بعد الجراحة لتقييم الألم.

6. التحقق من صحة شدة MR مع تخطيط صدى القلب(الشكل 5)

  1. كرر TEE بعد أسبوعين من الجراحة، باستخدام نفس الخطوات المحددة في القسم 2.7. أسبوعين بعد الجراحة هو الوقت المناسب لديناميكية الهيموميكا لتحقيق الاستقرار.
  2. الحصول على لون دوبلر التصوير على عرض من غرفتين باستخدام التصوير بالموجات فوق الصوتية عبر المريء، وتصور البطين الأيسر والأذين الأيسر. قياس مساحة الأذين الأيسر وطائرة MR. حساب كسر منطقة الطائرة MR باستخدام
    (1)
    يتم تعريف السيد الشديد على أنه منطقة طائرة MR ≥ 30٪.
  3. تقريب مساحة الأورجيان المتربّج عن طريق حساب مساحة إبرة 23 G ، باستخدام القطر الخارجي للإبرة. تفترض هذه المعادلة أن مساحة الأوريفستان تساوي مساحة إبرة 23G.
    (2)
  4. الحصول على التصوير دوبلر الموجة المستمرة مع بوابة دوبلر عند فتحة الطائرة الرجيجة. تتبع الموجي لحساب VTI من الطائرة regurgitant. يمكن تقدير حجم MR باستخدام
    (3)
    يتم تعريف MR الشديد على أنه حجم MR ≥ 95 μL.
  5. الحصول على نبض موجة دوبلر التصوير من الوريد الرئوي عن طريق تدوير التحقيق صدى laterally, في اتجاه عقارب الساعة. قياس سرعات الموجة الانقباضي والانبساطي واستخدام المعادلة التالية لحساب النسبة.
    (4)
    تشير نسبة التدفق الرئوي السلبية إلى مرض الرنين المغناطيسي الحاد.

7. شام الجراحة

  1. تنفيذ المقاطع 1-3 كما هو موضح.
  2. تعديل القسم 4 تم تعديلها بحيث يتم إدخال إبرة 23 G في غرفة البطين الأيسر، من خلال غرزة سلسلة محفظة على قمة البطين الأيسر، ولكن لم تقدم في الصمام التاجي لإنشاء MR. إدراج الإبرة في غرفة البطين الأيسر والتراجع على الفور، تليها عن طريق تشديد وإغلاق قمة البطين.
  3. تنفيذ القسم 5 كما هو موضح.
  4. إجراء تقييم الصمام التاجي كما هو موضح في القسم 6. ومع ذلك ، لا ينبغي أن يكون MR موجودًا في أي من الحيوانات ، وبالتالي فإن التحديد الكمي كما هو موضح ليس ضروريًا.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

الجدوى والاستنساخ
نموذج MR المقترح قابل للاستنساخ للغاية ، مع ثقب محدد جيدًا في المنشور التاجي الذي تحقق في 100٪ من الفئران المستخدمة في هذه الدراسة. يصور الشكل 6A اتجاه الإبرة أثناء إدخالها في الصمام التاجي. يصور الشكل 6B ثقبًا في منشور الصمام التاجي من فأر تمثيلي تم زرعه في أسبوعين بعد العملية.

البقاء على قيد الحياة والأحداث السلبية
تم حث ستة عشر فئرانًا بالرنين المغناطيسي باستخدام الطرق الموصوفة. تم إنشاء MR شديدة في جميع الفئران. توفي فأر واحد في غضون ساعة من خلق MR من فشل الجهاز التنفسي الحاد. لذلك ، كان البقاء على قيد الحياة بشكل عام في 2 أسابيع بعد إنشاء MR 93.75٪. لم يلاحظ الوفيات أو الأحداث السلبية القلبية الكبرى، مثل النزيف أو عدم انتظام ضربات القلب أو السكتة الدماغية في أي من الحيوانات في الأسبوعين من المراقبة.

شدة قلس الغرسال التاجي
يلخص الجدول 1 الملامح الديناميكية الدموية للقلب الأيسر عند خط الأساس وفي أسبوعين بعد حث MR. تم استخدام اختبار t مقترن لتحديد الأهمية الإحصائية بين شدة خط الأساس وشدة MR في أسبوعين، مع تحديد أهمية إحصائية على أنها p < 0.05. كانت طائرة MR حية بعد أسبوعين من الجراحة ، بمتوسط مساحة 21.15 ± 8.11 مم2 (p < 0.0001 مقارنة بخط الأساس) ومتوسط وقت السرعة الذي لا يتجزأ من 39.72 ± 7.52 سم. تطبيع كسر MR في أسبوعين كان 41.91 ± 8.3 ٪ ، والذي يعتبر شديدًا وفقًا للمبادئ التوجيهية للجمعية الأمريكية لـ Echocardiography. وكانت شدة مرض نقص المناعة البشري كافية للحث على عكس اتجاه التدفق الرئوي، مع انخفاض نسبة S/D من 0.91 ± 0.17 عند خط الأساس إلى -0.69 ± 0.65 في أسبوعين (p < 0.0001).

إعادة عرض غرفة القلب
الشكل 7 يظهر التغيرات المورفولوجية في القلب التمثيلي بعد التصوير بالرنين المغناطيسي الشديد لمدة 2 أسابيع، مقارنة مع القلب من الفئران التي خضعت لعملية جراحية صورية. بعد أسبوعين بعد الجراحة، كان القلب من الفئران مع MR كروية ومتوسعة بشدة، مع زيادة 29.65٪ في حجم الانبساطي النهائي (خط الأساس EDV: 462.49 ± 39.62 μL؛ وبعد أسبوع 2 MR EDV: 599.79 ± 58.59 ميكرولتر، p < 0.0001). وزاد الحجم الانقباضي النهائي بنسبة 10.06 في المائة، من 153.90 ± 18.78 ميكرون في خط الأساس، إلى 169.36 ± 24.64 ميكرولتر (p = 0.01) بعد أسبوعين من تحريض MR. لوحظ فرط انقباض القلب في الأسبوعين الأولين كما هو متوقع، بسبب انخفاض الحمل بعد الحمل، كما يتضح من كسر طرد مرتفع (66.77 ± 2.02٪ عند خط الأساس إلى 71.82 ± 2.31٪ في 2 أسابيع (p < 0.0001)). التعرض للتصوير بالرنين المغناطيسي لمدة أسبوعين، زاد من منطقة الأذين الأيسر بنسبة 99.59٪ (p < 0.0001).

Figure 1
الشكل 1: تقنية التنبيب. (أ)A 16 G angiocath مع سلك إرشادي يستخدم لتنبيب الإنأوسترالفي في هذا النموذج الفئران; (ب)صورة للمنظر البلعوم باستخدام منظار الأوتوبوسكوب، والمنطقة المستهدفة لإدراج أنبوب الإنأوستراشف؛ (C)التكوين النهائي لأنبوب الإندوتراشف؛ (D)مرفق أنبوب الإندوتراكفيل إلى جهاز التنفس الصناعي الميكانيكي. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2: التصوير عبر الصدر ومغايري المريء. التصوير العابر للثور:(A1)الإعداد للتصوير عبر الصدر للفأر، الذي يصور زاوية مسبار التصوير؛ (A2) عرض محور طويل مشلول للقلب; (A3) عرض محور قصير للقلب. التصوير عبر المريء:(B1)8 Fr مسبار صدى داخل القلب مع مسبار يتم إدخاله في المريء أثناء تنبيب الحيوان؛ (B2) مناظر عالية من المريء للقلب الأيسر، تصور الأذين الأيسر والصمام التاجي والبطين الأيسر. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3: العملية الجراحية. (أ)تخطيط الجراحية تظهر استئصال الصدر الأيسر في الفضاء5 بين كوستي، وICE القسطرة في المريء من الفئران لتوجيه الصورة، وإبرة 23 G إدراجها في قمة LV حيث يتم وضع غرزة السلسلة محفظة الخاص بك. (ب)عرض الجراحية أثناء الصدى عبر المريء نشرة موجهة بعملية التعامس. (C)صدى القلب صورة غرز إبرة في البطين الأيسر في diastole. (D)صورة صدى القلب من غرز الإبرة في البطين الأيسر في systole. (E)صورة صدى القلب للإبرة مثقوبة من خلال نشرة مناتور. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 4
الشكل 4: تصوير الإجراء. (أ)خط الأساس صدى 2 طريقة عرض الغرفة قبل إنشاء MR؛ (B)23 G إبرة، تصور على صدى أثناء ضربات القلب النابض، المتقدمة في الأذين الأيسر من خلال نشرة الصمام التاجي ة الردورة؛ (C)لون دوبلر التصوير تظهر MR طائرة ينظر في systole. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 5
الشكل 5: صور صدى الممثل للتحقق من خطورة MR في أسبوعين بعد الجراحة. (أ)تركت منطقة الأذينين تتبعها في منطقة نفاثة بيضاء وMR تتبع باللون الأحمر؛ (ب)MR VTI تتبع باللون الأحمر؛ (C)تدفق رئوي يظهر انعكاس الانقباضي. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 6
الشكل 6: ثقب إبرة. (أ)اتجاه ثقب إبرة على القلب على الجسم الحي السابق. ثقب إبرة من خلال قمة LV في زاوية، مقطع طولي من LV مع إبرة موجهة نحو نشرة صمام التاجي، وإبرة ثقب من خلال نشرة الصمام التاجي في الفضاء الأذيني. (ب)صورة تمثيلية مُغرمة تصور حفرة في النشرة التاجية للأمام. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 7
الشكل 7: مورفولوجيا إجمالية من قلوب كاملة من الفئران السيطرة تعمل بصور (A) والجرذ الذي خضع لجراحة MR (B) 2 أسابيع بعد الجراحة. الجرذ مع MR شديدة لديها تمدد البطين الأيسر كبيرة وتوسيع الغرفة بالمقارنة مع السيطرة تعمل صور. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

خط الأساس (العدد = 15) 2wk MR (ن = 15) ع-القيمة
منطقة الأذين الأيسر (مم2) 25.03 ± 8.70 49.95 ± 14.78 p < 0.0001
MR منطقة طائرة (مم2) 0 21.15 ± 8.11 p < 0.0001
السيد كسر (٪ ) 0 41.91 ± 8.30 p < 0.0001
MR VTI (سم) 0 39.72 ± 7.52 p < 0.0001
S موجة (م / s) 0.39 ± 0.07 -0.51 ± 0.41 p < 0.0001
الموجة D (m/s) 0.44 ± 0.04 0.70 ± 0.17 p < 0.0001
نسبة موجة S/D 0.91 ± 0.17 -0.69 ± 0.65 p < 0.0001

الجدول 1: خصائص قلس ة الميترالي.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

يتم الإبلاغ عن نموذج القوارض القابلة للاستنساخ من MR الشديد مع بقاء جيد (93.75٪ البقاء على قيد الحياة بعد الجراحة) ودون مضاعفات كبيرة بعد الجراحة. التصوير في الوقت الحقيقي مع تخطيط صدى المريء وإدخال إبرة في القلب النابض لثقب المنشور التاجي ممكن ويمكن تدريسه. تم إنتاج MR شديدة مع حجم إبرة 23 G في هذه الدراسة, التي يمكن أن تختلف حسب الرغبة باستخدام إبرة أصغر أو أكبر. MR المستحثة في هذا النموذج يخلق الحمل الزائد حجم الضغط المنخفض على البطين الأيسر، وهو تمثيل أفضل من الآفات الصمام التاجي لوحظ سريريا. لوحظ تمدد الأذيني والبطيني الأيسر الشديد في غضون أسبوعين بعد ظهور MR في هذا النموذج ، ولكن دون خلل انقباض يقاس بجزء القذف. مماثلة لمثل هذه الحالة هي المرضى الذين يعانون من مرض ى، الذين لا تزال بدون أعراض دون فشل القلب لفترات طويلة، على الرغم من التوسع التدريجي من غرف القلب من جانب اليسار.

يختلف نموذج MR هذا للحمولة الزائدة للحجم بعدة طرق عن نموذج الناسور الأبهري المستخدم على نطاق واسع للحمولة الزائدة من الحجم. وقد شجعت السهولة الإجرائية لـ ACF ، والتي تتطلب عملية بسيطة من عملية التنظير دون الحاجة إلى التنبيب والتهوية الميكانيكية ، على اعتمادها من قبل المجتمع العلمي12. على الرغم من مزاياه الإجرائية الواضحة ، فإن الناسور الوريدي الشرياني يُنقل كمية كبيرة من الدم إلى الوريد البطني ، الذي يثقل الخزان الوريدي ، وكذلك البطين الأيمن. قد يؤدي الضغط وللوب المركزي المرتفع الناتج عن الاحتقان والإصابة بالالتهاب الكبدي والترشيح الكلوي دون المستوى الأمثل، مما قد يسبب تليف الكبد أو تنشيط نظام رينين-أنجيوتنسين-ألدوستيرون (RAAS). ومن المعروف أن التأثير المحير لنظام RAAS على اقتران البطين والشرايين ، وبالتالي يفشل نموذج ACF في تقديم حمولة زائدة من الحجم الحقيقي على البطين الأيسر كما رأينا في إعداد قلس المترية. بالمقارنة مع نموذج عيب الصمام التاجي، وعدم وجود الحد من الحمل اللاحقة يزيد من تباعد هذا النموذج من الوضع السريري للسيد تماما، وهو ضغط هيموديناميكي مختلف كبير على LV في نموذج ACF، ويدخل تغييرات سريعة مع تضخم وضوحا، تمدد، والخلل الوظيفي التي لم يلاحظ في نموذجنا13.

وراء حداثة إدخال MR مع عصا إبرة ، نموذجنا لديه تطبيقات متعددة في الإجابة على الأسئلة الهامة سريريا. المرضى الذين يعانون من مرض ى س الأولية التي تخرج من آفة الصمام التاجي غالبا ما تكون أعراض لفترات طويلة ويتلقون تصحيح MR بهم فقط في بداية أعراض فشل الرئة أو القلب. تشير البيانات السريرية الحديثة إلى أن مثل هذا التصحيح المتأخر للMR لا يمكّن الانتعاش الوظيفي للبطين الأيسر ، على الرغم من تخفيف التعب والأعراض14. في دراسة حديثة باستخدام هذا النموذج القوارض، أظهرنا أن MR يدخل إعادة عرض سريعة ومبكرة من مصفوفة القلب خارج الخلية، والتي هي مقدمة من التغيرات الهيكلية في البطين الأيسر10. يمكن تطوير هذه الرؤى الميكانيكية التي توفر أساسًا فسيولوجيًا للتدخل في الصمام التاجي باستخدام هذا النموذج. جنبا إلى جنب مع التصوير القلبي، فمن الممكن لتطوير المؤشرات الحيوية التي تمثل هذه التغيرات البطينية اليسرى في وقت مبكر لتوجيه توقيت التدخل. بالإضافة إلى ذلك، يمكن الجمع بين هذا النموذج من MR مع اعتلالات القلب البطينية مثل الإقفارية، غير الإقفارية وغيرها من مسببات، لفهم تأثير MR على إعادة عرض البطينين الأيسر المريضة. على سبيل المثال ، يعد MR الثانوي ، وهو حدث متكرر في البطينين النَوّاق ينوب بعد احتشاء أو مع نقص التروية المزمن ، آفة صعبة سريريًا لإدارتها. ما إذا كان MR هو متفرج في هذه الحالة المرضية ونتاج خلل LV ، أو إذا كان يساهم بنشاط في إعادة عرض القلب مثيرة للجدل. قمنا مؤخرا ً بتوسيع هذا النموذج من MR للتحقيق في ما إذا كانت قلوب ما بعد احتشاء مع MR تختلف في إمكاناتإعادة عرض القلب مقارنة بأولئك الذين لا يحملون MR11، وتوضيح الآليات المحتملة المشاركة في تفاقم فشل القلب في المرضى الذين يعانون من مرضى MR.

كما هو الحال مع أي نموذج تجريبي ، هناك بعض المزايا والقيود التي يجب مراعاتها عند تطبيق النتائج من الحيوانات إلى البشر. الميزة الواضحة لهذا النموذج هو شدة استنساخMR, مما يساعد في فهم غرفة القلب إعادة عرض في الحالات التي تم تشخيصها سريريا مثل السيد الأولية من تمزق وترية. الزيادة في أحجام غرفة القلب لوحظ في هذا النموذج وإعادة عرض مصفوفة خارج الخلية لوحظ في عضلة القلب تمثل التغيرات التي لوحظت سابقا في الحيوانات الكبيرة والبشر مع السيد الرئيسي14,15. الحد من هذا النموذج نشرة التشاب هو أن MR يتطور بشكل حاد، ويمثل فقط مجموعة فرعية من المرضى الذين يعانون من مرضى ما قبل التصوير من تمزق وتري حاد. على الرغم من القيود، فإن الظهور الحاد للرنين المغناطيسي يفسر عدد كبير من المرضى الذين يخضعون لتدخلات الصمام التاجي، وهذا النموذج وثيق الصلة بهذه الحالة. تقييد آخر لهذا النموذج هو أن MR ليست قابلة للعكس أو قابلة للإصلاح، والتي لا تمكن من إجراء دراسات حول تأثير أو توقيت التدخل على إعادة عرض القلب.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

M.P هو مستشار لتقنيات إصلاح القلب (HRT)، والتي حصل على رسوم استشارية. ولم يكن لإذاعة وتلفزيون كرواتيا أي دور في هذه الدراسة، كما أنها لم تقدم أي تمويل لدعم هذا العمل.

Acknowledgments

تم تمويل هذا العمل من خلال منحة 19PRE34380625 و 14SDG20380081 من جمعية القلب الأمريكية إلى D. كوركوران وM. بادالا على التوالي، يمنح HL135145، HL133667، وHL140325 من المعاهد الوطنية للصحة إلى M. بادالا، وتمويل البنية التحتية من مركز كارلايل فريزر للقلب في مستشفى جامعة إيموري ميدتاون إلى M. بادالا.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
23G needle Mckesson 16-N231
25G needle, 5/8 inch McKesson 1031797
4-0 vicryl Ethicon J496H
6-0 prolene Ethicon 8307H
70% ethanol McKesson 350600
ACE Light Source Schott A20500
ACUSON AcuNav Ultrasound probe Biosense Webster 10135936 8Fr Intracardiac echo probe
ACUSON PRIME Ultrasound System Siemens SC2000
Betadine McKesson 1073829
Blunted microdissecting scissors Roboz RS5990
Buprenorphine Patterson Veterinary 99628
Carprofen Patterson Veterinary 7847425
Chest tube (16G angiocath) Terumo SR-OX1651CA
Disposable Surgical drapes Med-Vet SMS40
Electric Razor Oster 78400-XXX
Gentamycin Patterson Veterinary 78057791
Heat lamp with table clamp Braintree Scientific HL-1 120V
Hemostatic forceps, curved Roboz RS7341
Hemostatic forceps, straight Roboz RS7110
Induction chamber Braintree Scientific EZ-1785
Injection Plug, Cap, Luer Lock Exel 26539
Isoflurane Patterson Veterinary 6679401725
Mechanical ventilator Harvard Apparatus Inspira ASV
Microdissecting forceps Roboz RS5135
Microdissecting spring scissors Roboz RS5603
Needle holder Roboz RS6417
No. 15 surgical blade McKesson 1642
Non-woven sponges McKesson 446036
Otoscope Welch Allyn 23862
Oxygen Airgas Healthcare UN1072
Pulse Oximeter Nonin Medical 2500A VET
Retractor, Blunt 4x4 Roboz RS6524
Rodent Surgical Monitor Indus Instruments 113970 The integrated platform allows for monitoring of vital signs and surgical warming
Scale Salter Brecknell LPS 150
Scalpel Handle Roboz RS9843
Silk suture 3-0 McKesson 220263
Small Animal Anesthesia System Ohio Medical AKDL03882
Sterile saline (0.9%) Baxter 281322
Sugical Mask McKesson 188696
Surgical cap McKesson 852952
Surgical gloves McKesson 854486
Syringe 10mL McKesson 1031801
Syringe 1mL McKesson 1031817
Ultra-high frequency probe Fujifilm Visualsonics MS250
Ultrasound gel McKesson 150690
VEVO Ultrasound System Fujifilm Visualsonics VEVO 2100

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Nkomo, V. T., et al. Burden of valvular heart diseases: a population-based study. Lancet. 368, (9540), 1005-1011 (2006).
  2. Zamorano, J. L., et al. Mechanism and Severity of Mitral Regurgitation: Are There any Differences Between Primary and Secondary Mitral Regurgitation? The Journal of Heart Valve Disease. 25, (6), 724-729 (2016).
  3. Grossman, W., Jones, D., McLaurin, L. P. Wall stress and patterns of hypertrophy in the human left ventricle. Journal of Clinical Investigation. 56, (1), 56-64 (1975).
  4. Carabello, B. A. Concentric versus eccentric remodeling. Journal of Cardiac Failure. 8, (6), S258-S263 (2002).
  5. Braunwald, E., Welch, G. H., Sarnoff, S. J. Hemodynamic effects of quantitatively varied experimental mitral regurgitation. Circulation Research. 5, (5), 539-545 (1957).
  6. Sasayama, S., Kubo, S., Kusukawa, R. Hemodynamic and angiocardiographic studies on cardiodynamics: experimental mitral insufficiency. Japanese Circulation Journal. 34, (6), 513-530 (1970).
  7. Hennein, H., Jones, M., Stone, C., Clark, R. Left ventricular function in experimental mitral regurgitation with intact chordae tendineae. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 105, (4), 624-632 (1993).
  8. Stumpe, K. O., Sölle, H., Klein, H., Krück, F. Mechanism of sodium and water retention in rats with experimental heart failure. Kidney International. 4, (5), 309-317 (1973).
  9. Abassi, Z., Goltsman, I., Karram, T., Winaver, J., Hoffman, A. Aortocaval fistula in rat: A unique model of volume-overload congestive heart failure and cardiac hypertrophy. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, (January), 1-13 (2011).
  10. Corporan, D., Onohara, D., Hernandez-Merlo, R., Sielicka, A., Padala, M. Temporal changes in myocardial collagen, matrix metalloproteinases, and their tissue inhibitors in the left ventricular myocardium in experimental chronic mitral regurgitation in rodents. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 315, (5), H1269-H1278 (2018).
  11. Onohara, D., Corporan, D., Hernandez-Merlo, R., Guyton, R. A., Padala, M. Mitral Regurgitation Worsens Cardiac Remodeling in Ischemic Cardiomyopathy in an Experimental Model. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. (2019).
  12. Garcia, R., Diebold, S. Simple, rapid, and effective method of producing aortocaval shunts in the rat. Cardiovascular Research. 24, (5), 430-432 (1990).
  13. Brower, G. L., Janicki, J. S. Contribution of ventricular remodeling to pathogenesis of heart failure in rats. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 280, (2), H674-H683 (2001).
  14. McCutcheon, K., et al. Dynamic changes in the molecular signature of adverse left ventricular remodeling in patients with compensated and decompensated chronic primary mitral regurgitation. Circulation Heart Failure. 12, (9), (2019).
  15. McCutcheon, K., Manga, P. Left ventricular remodeling in chronic primary mitral regurgitation. Cardiovascular Journal of Africa. 29, (1), 51-64 (2018).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.

    Usage Statistics