2010年8月25日
通过基于细胞的全基因组功能缺失RNA干扰筛选,可以鉴定出参与病毒感染的新型宿主因子。Drosophila 细胞培养模型特别适用于该方法,因为其RNA干扰操作简便且效率高。本文以痘苗病毒(vaccinia virus)为例,展示该技术的具体应用。
本实验的总体目标是利用高通量RNA干扰(RNAi)筛选,鉴定参与病毒感染的宿主因子。该目标通过以下步骤实现:首先在384孔板中利用RNAi技术敲低目的基因;随后,用目标病毒感染细胞,通过免疫荧光显微镜检测病毒蛋白的表达,从而评估病毒感染水平。
最后,通过自动化的图像分析来鉴定候选基因,以进行验证和进一步研究。最终,可通过免疫荧光显微镜定量感染细胞的百分比,获得显示感染变化的结果。这有助于发现参与病毒感染的新型细胞因子。
尽管该方法可用于研究病毒与宿主之间的相互作用,但也适用于任何需要通过可视化手段读取目标细胞过程的研究体系。初次使用该方法的研究人员应预期存在较陡峭的学习曲线,因为要在尽量减少变异性的前提下实现可重复的感染,需要进行大量优化。为确保结果的可重复性,关键是在整个筛选过程中对每种试剂均使用同一批号。在25摄氏度下,使用完全Schneider培养基培养S2DRSC果蝇细胞,细胞应处于对数生长期。
在超净台中进行实验时,通过剧烈吹打使半贴壁细胞从培养瓶中脱落。使用血细胞计数板计数后,将实验所需细胞数量的125%转移至50毫升锥形管中,在300 ×g离心5分钟。吸除上清液,将细胞沉淀重悬于无血清Schneider培养基中,最终浓度为每毫升1.7×10⁶个细胞。
使用已灭菌并预处理的自动化液体处理系统。此处采用矩阵孔匹配法以最大限度减少孔板间的变异性。将10 µL细胞悬液加入预先包被有每孔250 ng双链RNA的384孔板的每个孔中。以300 ×g离心1分钟使细胞沉降到孔板上。
将培养板在 25 摄氏度下孵育 45 分钟。向每孔加入 20 微升完全 Schneider 培养基。将培养基在 300 ×g 下离心 1 分钟,以尽量减少蒸发的影响。
将培养皿置于铺有浸水滤纸的加湿密封容器中保存。在生物安全二级柜中,于25摄氏度培养三天,以确保产生显著的基因敲低效果。在感染细胞前,使用0.8微米注射器滤器过滤粗制的痘苗病毒原液。
为了去除细胞碎片。用含2%血清的Schneider培养基稀释病毒,以获得感染复数(MOI)为2'的感染剂量。
将灭菌后的移液槽与稀释的病毒混合,直至管路中无气泡。使用带真空泵的灭菌多通道移液器,轻轻吸除经双链RNA处理的果蝇细胞培养板中的培养基。向每块培养板中加入30 µL稀释后的病毒。
将培养板在300 G条件下离心1分钟。将培养板放回湿化容器中,在25摄氏度下孵育48小时。在生物安全二级(BSL-2)生物安全柜中,从培养板中吸除培养基。
然后使用多通道移液器向每孔板中加入15 µL的4%多聚甲醛固定液。室温孵育15分钟。用多通道吸液器移除液体。
使用WELLMADE向每个孔中加入30 µL PBST。室温孵育10分钟。以相同方式再进行一次10分钟的PBST洗涤。
孵育步骤完成后,移除液体,加入30微升含2% VSA的PBST封闭液,室温孵育10分钟。使用多通道重复移液器将用封闭液稀释的一抗溶液15微升加入每个孔中。
将培养板在300 ×g离心1分钟。用透明封板膜密封各孔,于4°C孵育过夜。使用多通道移液器和洗板机,用PBST缓冲液洗涤细胞3次,每次10分钟。
使用多通道移液器向每个孔中加入15 µL带荧光标记的二抗及核染料。用铝箔覆盖孔板以避光,于室温孵育1小时。用PBST按之前方法洗涤细胞,每次10分钟,共洗三次。
向细胞中加入 30 微升 PBST,用透明封板膜密封,并用铝箔覆盖。将密封的板在 4 摄氏度下保存,最长可保存三周,之后在自动化显微镜下进行成像。
未感染的孔中未显示任何痘苗病毒蛋白的染色,而具有代表性的感染孔中含有细胞。通过免疫荧光显微镜检测,可见痘苗病毒表达的β-GCSE蛋白呈染色阳性。自动化图像分析软件根据用户设定的参数,对每张图像中的感染情况进行定量分析。
在代表性图像中,根据染色信号相对于局部背景的大小和强度,对细胞核总数以及表达病毒抗原的细胞数量进行计数。对 thread 基因的敲低作为靶基因有效 RNAi 耗竭的阳性对照。该抗凋亡因子的敲低会导致显著的细胞死亡。
荧光素酶的敲低作为双链RNA处理对感染影响的阴性对照。与未处理细胞相比,荧光素酶的耗竭对感染无影响。β-半乳糖苷酶蛋白的敲低作为感染减少的阳性对照。
由于该检测方法以β-半乳糖蛋白水平作为感染的读数,β-半乳糖蛋白的耗竭会导致感染细胞百分比下降。细胞因子RAB5的敲低也会导致感染细胞百分比下降。由于已知RAB5参与内吞作用,该因子可能在痘苗病毒进入过程中发挥作用。
观看本视频后,您应充分了解如何利用果蝇中的RNAi筛选来鉴定参与病毒感染的宿主因子,包括实施RNAi、接种痘苗病毒、染色成像以及对384孔板进行分析。请务必注意,操作活病毒具有极高危险性,进行该实验时必须采取防护措施,例如穿戴实验服和护目镜。活病毒只能在生物安全二级(BSL-2)生物安全柜中打开,任何接触过活病毒的物品在丢弃前均须用10%次氯酸钠溶液灭菌处理。
本研究展示了一种高通量RNAi筛选方法,利用果蝇细胞培养模型鉴定参与病毒感染的宿主因子。该技术通过以痘苗病毒攻击细胞进行示范,进而通过免疫荧光显微镜对感染程度进行定量分析。
鉴定促进病毒感染的宿主因子有助于揭示对病原体增殖至关重要的非病毒蛋白,从而在抗病毒药物研发中实现靶点的风险评估。该在果蝇细胞中开展的RNAi筛选方法提供了一个可扩展且遗传操作便捷的系统,可用于研究在宿主-病原体相互作用中保守的机制,并对人类细胞中的相关过程具有预测价值。该方法支持抗病毒治疗靶点的早期验证并提供作用机制方面的深入见解,有助于指导抗病毒药物研发项目的优先级排序。
该方法适用于从靶点鉴定到机制验证的整个发现流程,能够推动抗病毒项目从表型筛选向通路去风险化发展。