2016年4月4日
这里,我们表明分离的人血小板可以用作一个可访问的体外模型来研究的代谢适应响应于I抑制剂鱼藤酮的复合物。这种方法通过液相色谱 - 质谱法使用同位素示踪和相对定量,并且可以应用于各种研究设计的。
该程序的总体目标是确定外源性治疗或疾病状态如何改变细胞代谢。这种方法有可能揭示疾病状态或应用的毒素如何影响细胞代谢。一旦知道了这一点,我们的方法就有能力揭示某种干预是否可以纠正缺陷。
这项技术的主要优点是它不依赖于转化的细胞系,因此它更有可能提供与人类健康直接相关的答案。要开始此程序,请制备 10 毫摩尔的鱼藤酮二甲基亚砜储备溶液。对 10 毫摩尔鱼藤酮储备液进行连续稀释,以获得鱼藤酮浓度范围为 1 纳摩尔至 100 微摩尔的溶液。
接下来,将 50 微升每种储备溶液添加到 5 毫升先前制备的富集 Tyrode 缓冲溶液中,以制备鱼藤酮浓度范围为 10 皮摩尔至 1 微摩尔的溶液。向其中一个缓冲溶液样品中加入 50 μL DMSO 作为载体对照。要从全血中分离血小板,将全血样品以 175 x g 离心 15 分钟,不得间断。
完成后,将 1 毫升富含血小板的上层血浆层转移到 1.5 毫升微量离心管中。转移富含血小板的血浆时,注意不要干扰血沉棕黄层,以免血小板沉淀被淋巴细胞污染。以 400 x g 的离心速度离心富含血小板的血浆层 5 分钟。
然后,吸出 supernatent。对于每种情况,使用不少于 3 个生物学重复,将血小板沉淀重悬于 1 毫升先前制备的鱼藤酮溶液中。然后,将重悬的血小板在设置为 95% 湿度和 5% 二氧化碳的水套式二氧化碳培养箱中在 37 摄氏度下孵育 1 小时。
此时,通过以 3000 x g 的离心速度离心样品 3 分钟来沉淀血小板。吸出超天然垫后,加入适当的稳定同位素标记的内标。然后,将血小板重悬于 750 微升冰冷的 10% 三氯乙酸中。
用 0.5 秒脉冲对每个样品进行脉冲超声处理 30 次。离心后,将 C18 固相萃取柱贴在真空歧管上。用 1 mL 甲醇调节色谱柱。
然后,用 1 毫升双蒸水平衡色谱柱。将样品衍生的上清液穿过色谱柱。完成后,用 1 毫升水清洗色谱柱。
接下来,将 10 毫升玻璃离心管装入真空歧管中,以收集洗脱馏分。用 1 mL 25 mmol 乙酸铵和甲醇洗脱色谱柱。在氮气下干燥洗脱液后,将干燥的残留物重悬于 50 微升 5%5-磺基水杨酸中,并将样品转移到 HPLC 文件中进行分析。
正如先前在 SH-SY5Y 细胞中报道的那样,响应鱼藤酮的乙酰辅酶 A 硫酯相对水平的变化被认为是由复合物 1 的抑制引起的。具体来说,琥珀酰辅酶 A 呈剂量依赖性降低,同时 β-羟基丁酰辅酶 A 增加,而乙酰辅酶 A 水平保持不变。对鱼藤酮处理的人血小板的分析揭示了高度一致的结果,并提供了一组独特的实验数据。
值得注意的是,这一观察结果强调了对鱼藤酮反应的线粒体依赖性,因为血小板缺乏细胞核。按照此程序,可以执行其他方法(如代谢示踪)来回答其他问题,例如:这种治疗或疾病状态如何影响底物的利用?如果我们发现某些代谢物的水平发生了变化,为什么会发生变化?
通路中的哪些步骤受到影响,以何种方式受到影响?观看此视频后,您应该对如何从全血中分离血小板、进行受控离体激发和提取乙酰辅酶 A 硫酯用于 LCMS 分析有很好的了解。
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本研究展示了使用分离的人类血小板作为离体模型,以研究在复合体I抑制剂鱼藤酮作用下发生的代谢适应。该方法采用同位素示踪结合液相色谱-质谱法进行相对定量,适用于多种研究设计。
人血小板为研究线粒体代谢和异源物质效应提供了一种具有临床相关性的非转化模型,弥补了癌细胞系在代谢研究中的局限性。该平台可实现对代谢通路改变的可重复、供体特异性分析,支持早期发现阶段的靶点验证和机制性风险评估。通过血库来源实现的可扩展性,有助于从基础发现到临床前及临床研究的转化连续性。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物筛选直至临床前评价的整个发现流程,尤其适用于靶向线粒体的化合物及代谢调节剂的研究。