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DOI: 10.3791/52264-v
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Die In-vitro-Analyse der Klassenschalter-Rekombination bei Mäusen ist aufgrund zytophiler IgE-Moleküle, die an Fc-Rezeptoren auf der Oberfläche von B-Zellen gebunden sind, eine Herausforderung. Wir beschreiben eine Methode zur IgE-Detektion unter Verwendung der Trypsin-vermittelten Spaltung von oberflächengebundenem IgE vor der Fixierung und Permeabilisierung für die zytoplasmatische Fluoreszenzfärbung.
Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments ist es, echte IgE-exprimierende B-Zellen von B-Zellen zu unterscheiden, wobei andere IgE-Isotypen exprimierendes IgE exprimieren. Während des In-vitro-Klassenwechsels binden Assays an B-Zell-Oberflächenproteine, was die Fähigkeit verschleiert, den Klassenwechsel zu IgE zu messen. Das Ziel wird erreicht, indem zunächst rezeptorgebundene IgE-Moleküle vor der Analyse mit Hilfe von Trypsin entfernt werden, das Zelloberflächenproteine nicht spezifisch spaltet, während endogen produzierte intrazelluläre Immunglobulinmoleküle intakt bleiben.
Zweitens werden intrazelluläre Proteine freigelegt, indem die B-Zellen mit Formin fixiert und die Zellen mit Methanol permiert werden. Anschließend werden die Zellen mit fluoreszenzmarkierten Antikörpern gefärbt, um intrazelluläre Immunglobuline freizulegen. Die Ergebnisse zeigen eine ausgeprägte IgE-positive B-Zell-Population.
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