Schneller Nachweis der Virulenz und Typisierung von Helicobacter pylori mit der Quantenpunktmarkierungstechnologie

Unsere Forschung konzentriert sich auf die Entwicklung diagnostischer Reagenzien für die in vitro Immunchromatographie. Unser Ziel ist es, die Quantenpunktmarkierung zu nutzen, um eine spezifische Antigen-Antikörperbindung für einen präzisen HP-Nachweis zu ermöglichen. Wir haben herausgefunden, dass die Verwendung der Quantenpunkttechnologie zur Erkennung von HP-Typisierungen bei der präzisen Behandlung dieser Bakterien wirklich hilfreich sein kann.

Wir werden die Probleme der traditionellen Technologie lösen, da sie nicht in der Lage ist, die Virulenz von Helicobacter pylori zu unterscheiden, und komplizierte Operationen durch die Quantenpunkttechnologie haben. Bei der Beurteilung, ob Helicobacter pylori infiziert ist, können wir die Stärke der Virulenz unterscheiden und individuelle Behandlungspläne erstellen.

[Dozent] Sammeln Sie zunächst Blut in einem Trenngelröhrchen und achten Sie darauf, eine Hämolyse zu vermeiden. Wenn es nicht möglich ist, das Serum innerhalb von vier Stunden zu testen, lagern Sie die Probe bis zu drei Tage lang bei einer Temperatur zwischen zwei und acht Grad Celsius. Für die Langzeitlagerung versiegeln Sie die Probe und lagern Sie sie bis zu einem Jahr unter minus 20 Grad Celsius. Stellen Sie die Proben wieder auf Raumtemperatur ein und mischen Sie sie vor der Verwendung gründlich. Nehmen Sie das Reagenzienkit und die Qualitätskontrollmaterialien heraus und lassen Sie sie auf Raumtemperatur ausgleichen. Zentrifugieren Sie nun die Vollblutproben bei 1.467 g für 10 Minuten. Schalten Sie nun das Instrument und den Operationscomputer ein. Starten Sie die entsprechende Software und melden Sie sich bei der Software an. Stellen Sie sicher, dass die Chargennummer der Secure Digital- oder SD-Karte mit der des Reagenzien-Kits übereinstimmt. Legen Sie die SD-Karte in das Gerät ein und wählen Sie in der Anwendung ID-Chip lesen für den automatischen Abgleich. Wählen Sie in der Anwendung das Testmodul aus. Wählen Sie die Initialisierungseinstellungen, um das Gerät zu initialisieren, und warten Sie, bis der Vorgang abgeschlossen ist. Greifen Sie auf den Reagenzienbereich des Geräts zu und entfernen Sie den Steckplatz für die Testkarte. Öffnen Sie nun das Reagenzienkit und wählen Sie die gewünschte Anzahl an Testkarten aus. Öffnen Sie dann die Folienpflaster der Testkarten und legen Sie diese entsprechend der angegebenen Ausrichtung in den Schlitz. Setzen Sie den Kartensteckplatz wieder in den Reagenzbereich des Instruments ein. Wählen Sie im Testmodul bidirektionales LIS aus. Rufen Sie das Modul für die manuelle Eingabe auf, klicken Sie auf Informationseingabe und geben Sie die spezifischen Materialinformationen für die Qualitätskontrolle ein. Klicken Sie auf Generieren und platzieren Sie die Qualitätskontrollmaterialien in das dafür vorgesehene Probenrack, um die richtige Reihenfolge und Ausrichtung zu gewährleisten. Klicken Sie auf Test starten, um den QC-Test zu starten. Wählen Sie nun im Testmodul die manuelle Eingabe aus, um bidirektionales LIS anzuzeigen. Legen Sie die Testproben in das dafür vorgesehene Probenrack, wobei Sie auf die richtige Reihenfolge und Ausrichtung achten. Klicken Sie auf Test starten. Sobald der Test abgeschlossen ist, wirft das Gerät die gebrauchten Testkarten automatisch aus und der Bediener entsorgt sie als medizinischen Abfall. Die Peak-Diagramme von zwei negativen Proben zeigten keine signifikanten Signale an X1-Urease, X2-CagA oder X3-VacA, was die negativen Ergebnisse von Helicobacter pylori bestätigte, während der starke Peak an der X4-C-Linie auf gültige Testergebnisse hindeutete. Zwei Proben, die positiv auf Urease getestet wurden, zeigten starke Signalspitzen bei X1, was eine Infektion mit Helicobacter pylori Typ 2 bestätigte, während X2 und X3 zu Studienbeginn oder mit niedrigem Signal blieben, was auf negative Caga- und VacA-Antikörper hindeutet. Drei Proben, die positiv für Urease und auch positiv für CagA und/oder VacA waren, zeigten hohe Peaks bei X1, X2 und X3, was auf eine Helicobacter pylori Typ 1-Infektion hinweist. Die ROC-Kurven (Receiver Operating Characteristic) für einzelne Biomarker und kombinierte Indikatoren zeigten, dass die Kombination von fünf Indikatoren mit der Antikörpertypisierung von G17, PGI, PCI, PGR und Helicobacter pylori die diagnostische Leistung bei höchster Sensitivität und Spezifität verbesserte.