Techniques de microscopie

Cette vidéo décrit TIRF, une technique basée sur la microscopie à réflexion interne totale pour visualiser la dynamique de polymérisation de l’actine et des microtubules. La méthode permet l’imagerie à haute résolution de la dynamique de couplage de l’actine et des microtubules en temps réel, ce qui est essentiel pour comprendre les interactions cellulaires.

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique de microscopie à feuillet de lumière sur réseau pour visualiser les interactions entre les lymphocytes T vivants et les cellules présentatrices d’antigènes. Le procédé consiste à focaliser une feuille de lumière en réseau ultramince sur une paire de cellules en interaction pour obtenir une série d’images bidimensionnelles, qui sont combinées pour obtenir des images quadridimensionnelles à haute résolution qui révèlent la dynamique spatio-temporelle...

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique de microscopie à fond noir (DFM) combinée à l’analyse de suivi des particules uniques (SPT) pour surveiller l’interaction des nanotiges d’or plasmoniques avec la membrane cellulaire d’une lignée cellulaire d’intérêt spécifique. L’analyse combinée DFM et SPT permet de visualiser le mouvement des nanobâtonnets à travers la membrane cellulaire avec une résolution spatio-temporelle élevée.

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique de microscopie à réflexion interférentielle (IRM) pour visualiser la croissance des microtubules sur une surface de lamelle en présence d’un tampon approprié. Lors de l’éclairage avec la lumière incidente, l’interface lamelle-tampon et l’interface tampon-microtubule réfléchissent la lumière, qui se combine pour créer un motif d’interférence, permettant la visualisation des microtubules sous forme d’images à contraste élevé sur un fond clair.

Dans cette vidéo, nous faisons la démonstration de la microscopie statique à force atomique pour visualiser des nucléosomes assemblés. Cette technique d’imagerie à haute résolution permet d’étudier la structure des nucléosomes.

Dans cette vidéo, nous démontrons des techniques d’imagerie de microscopie à force atomique à haute vitesse, AFM, pour étudier la dynamique des complexes de nucléosomes. Lorsque l’extrémité de l’AFM balaie la surface du nucléosome, elle détecte les altérations de la hauteur du nucléosome et enregistre le déballage de l’ADN au fil du temps.

Dans cette vidéo, nous démontrons la préparation d’échantillons de tissu musculaire squelettique humain et sa coloration pour la microscopie électronique à transmission afin de visualiser et de quantifier la distribution du glycogène subcellulaire.

Cette vidéo montre la préparation d’échantillons, la fixation et l’imagerie d’une cellule de macrophage qui présente des volants membranaires à l’aide de la microscopie électronique à balayage, MEB. Des informations détaillées sur la morphologie et l’organisation des membranes sont cruciales pour comprendre l’état physiologique des cellules.

Cette vidéo montre la technique de microscopie à fluorescence intravitale pour étudier la formation de thrombus dans un modèle murin. La souris est injectée avec un polysaccharide marqué au fluorophore pour surveiller la circulation sanguine. Lors de l’éclairage avec une lumière de haute intensité, l’induction phototoxique d’une lésion dans la microvascularisation de l’oreille conduit à la formation d’un thrombus, qui est confirmé par la visualisation de l’obstruction de la circulation sanguine.

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique de microscopie par immunofluorescence pour détecter des protéines spécifiques de réponse aux dommages de l’ADN localisées sur les sites de cassures double brin de l’ADN dans les cellules mononucléées humaines. Les protéines sont reconnues par des anticorps primaires spécifiques, qui à leur tour se lient à des anticorps secondaires marqués au fluorophore qui deviennent fluorescents lors de la visualisation microscopique, permettant de visualiser les...