Name: Protocole optimisé pour une transfection efficace des cellules dendritiques, sans maturation cellulaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Apprenez une méthode de nucléofection optimisée pour transfecter efficacement les cellules dendritiques dérivées de monocytes humains avec de l'ARNsi ou de l'ADN plasmidique, sans induire leur maturation.

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Le projet a été soutenu par le NIH NIAID Marché n HHSN2662000500021C. Nous remercions Ming Chen pour son assistance technique.

1. Programme du 96 Amaxa ainsi Nucleofector navettes <ol><li> Ouvrez un nouveau fichier de paramètres. </li><li> Sélectionnez le nombre de puits que vous allez utiliser pour la transfection standards en faisant glisser le curseur sur le diagramme de plaque de 96 puits. Utiliser un minimum de trois puits à la piscine pour chaque échantillon expérimental. </li><li> Entrez le code du programme: en part1 sélectionnez 'FF' et choisissez part2 '168 'à partir des menus déroulants </li><li> De la boîte de solutions, sélectionnez 'monocytes, humaine » </li><li> Selon l'option de configuration, sélectionnez «standard». </li><li> Cliquez sur Appliquer. </li><li> Pour inclure un contrôle sans transfection, sélectionnez puits supplémentaires à partir du schéma tel que requis, puis choisissez «No Control Program 'de l'option de configuration et cliquez sur Appliquer. </li><li> Sélectionnez l'un des puits inutilisés sur le diagramme et cliquez sur la plaque undefine. </li></ol> 2. Préparer les PED pour la transfection <ol><li> Tout travail doit être effectué dans des conditions stériles sous une hotte de culture cellulaire lorsque cela est possible. Préparer la solution en ajoutant nucléofection de 96 puits complément de monocytes humains de 96 puits Solution Nucleofector dans le rapport de 450 à 2025. Mélanger et laisser réchauffer à température ambiante. Vous aurez besoin de 20 pi de solution nucléofection par puits. Faire un excès de 10% pour permettre de pipetage erreur. </li><li> Placez le nombre de modules nucleocuvette vous avez besoin dans la plaque nucleocuvette dans la bonne orientation à savoir insérer le premier pour les lignes 1 et 2. </li><li> Déterminer le nombre de PED nécessaire pour le calcul de votre expérience sur les 500 000 cellules par puits et de culot par centrifugation à 400g pendant 10min. Retirer délicatement le surnageant. </li><li> Resuspendre les cellules dans la solution par un léger pipetage nucléofection haut et en bas à quelques reprises. </li><li> Divisez le volume correct de cellules en suspension dans eppendorfs étiquetés pour le particulier par exemple le traitement GLO et RIG-I. </li><li> Ajouter siARN 0.25μg par 500.000 cellules et mélanger par pipetage. Non-utilisation de siRNA ciblant dans votre échantillon de contrôle sans-transfection. </li><li> Pipeter 20 pi du mélange ci-dessus dans les modules nucleocuvette, en fonction de votre configuration expérimentale, assurant que le liquide est livré au fond du puits. </li><li> Recouvrir la plaque nucleocuvette avec le couvercle et appuyez sur le plateau sur une surface dure une couple de fois pour aider à assurer l'élimination des bulles d'air. </li></ol> 3. Transfecter les PED <ol><li> Insérer la plaque dans le bac de navette de 96 puits Nucleofector, cliquez sur Télécharger et puis démarrer. </li><li> Suivez les progrès des processus de transfection sur l'écran du lap top, une croix noire sur un fond vert signifie une transfection réussie dans ce puits, tandis qu'une barre noire sur un fond rouge signifie qu'il a échoué. </li><li> A l'issue du processus de transfection, enlever la plaque et ajouter 80μl de milieu de croissance DC à chaque puits en utilisant une pipette multicanaux. </li><li> Incuber la plaque pendant 10 min à 37 ° C et 5% de CO 2. </li><li> Transférer le volume 100 ul de la nucleocuvettes dans des tubes contenant 100 pi de la matrice pré-chauffé milieu de croissance DC, le maintien de l'orientation correcte. </li><li> Retirez et jetez les tubes où la transfection n'a pas eu lieu. </li><li> Incuber à 37 ° C et 5% de CO 2 pour l'intervalle de temps ou d'autres 24h désiré. </li></ol> 4. Infecter les cellules avec NDV <ol><li> Retirer les tubes de matrice de l'incubateur de la hotte de culture cellulaire et piscine tubes pour chaque échantillon expérimental dans eppendorfs </li><li> Pellet les cellules doucement par rotation dans une centrifugeuse de bureau pendant 5 min et retirez surnageant. </li><li> Resuspendre les cellules dans un milieu de croissance sans sérum contenant NDV à une MOI de 1 et incuber à 37 ° C et 5% de CO 2 pendant 45 min, avec eppendorfs vaguement recouverte d'une manière stérile. </li><li> Ajouter 900μl de milieu de croissance DC, et re-incuber pendant 8-10 h. </li></ol> 5. Récolte des cellules <ol><li> Cellules Pellet en faisant tourner eppendorfs dans une centrifugeuse de bureau et retirer le surnageant. </li><li> Cellules de récolte pour l'ARN ou de l'extraction des protéines en fonction de votre protocole. </li></ol> 6. Les résultats représentatifs: En utilisant notre protocole optimisé, nous transfectées avec les PED RIGI ciblage siRNA pour 24 h et ensuite infecté les cellules avec NDV (un paramyxovirus détecté par RIG-I) pour stimuler la voie de réponse interféron. Par QRT-PCR, nous avons démontré renverser du gène de 75% au niveau de la transcription. Nous avons également observé une réduction similaire de l'expression de IFNβ, qui est un effecteur en aval de RIG-I dans la cascade de signalisation IFN. Par ailleurs, nous avons observé que l'expression de IFNβ chez les non-infectés, le contrôle de cellules transfectées n'était pas détectable alors que celle de MxA, un gène de réponse IFNβ aval, a été minime (figure 1A). Une seconde transfection des PED avec RIGI ciblage siRNA a été réalisée en utilisant suffisamment de cellules pour y inclure une analyse Western blot. Lorsque leRT-PCR résultats étaient semblables à ce que nous avons vu précédemment (62% et 66% d'abattre RIG-I et d'expression IFNβ respectivement) (figure 1B), le Western blot sondé pour la RIG-I a révélé que l'expression de ce gène avait été complètement bloqué (figure 1C). <img src="/files/ftp_upload/2766/2766fig1.jpg" alt="Figure 1A" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1A"> Figure 1. (A) ont été transfectées avec MoDCs soit siRNA ciblant RIG-I ou siRNA GLO non spécifique et l'effet sur ​​l'expression de la RIG-I, IFNβ et MxA déterminée par qRT-PCR. Le protocole de transfection utilisé un tampon de monocytes spécifiques et FF168 programme nucleoporation (Lonza Walkersville Inc) Après incubation pendant 24 h, les cellules transfectées ont été soit infectés par le NDV (+) ou vers la gauche non infectées (-). Après une incubation de 10 h, les cellules ont été récoltées et les niveaux d'ARN extrait Transcription représentent les résultats de deux expériences répétées. Tiré de Bowles et al 16 (B). MoDCs obtenu à partir d'un pelage différent de Buffy que celles utilisées pour la figure 1A ont de nouveau été transfectées avec RIG-I-ciblage siRNA ou siARN GLO non spécifiques en utilisant le protocole de transfection même que ci-dessus. Un contrôle supplémentaire à l'aide MoDCs non transfectées a été incorporé dans l'expérience. Après une incubation de 24 h toutes les cellules ont été infectées par le NDV et incubé pendant encore 10 h avant d'être récolté à la fois pour l'ARN et l'extraction des protéines. Niveaux Transcription de RIG-I, IFNβ et MxA tel que déterminé par qRT PCR représentent les résultats de deux expériences répétées. Tiré de Bowles et al 16. (C) des lysats de cellules décrit dans la figure 1B ci-dessus ont été analysés par Western blot. Les pistes 1 et 2, des lysats de cellules non transfectées; pistes 3 et 4, des lysats de cellules transfectées siARN GLO; voies 5 et 6, des lysats de cellules transfectées avec RIG-I-ciblage siRNA. Les échantillons ont été sondées pour RIG-I et aussi GAPDH (comme un contrôle du chargement) et ont été analysés en double. Tiré de Bowles et al 16.

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</ol>

Transfection efficace des cellules dendritiques naïves primaire est importante pour l&#39;analyse à haut débit et l&#39;ingénierie inverse des voies cellulaires inflammatoires dans cette cellule clé de la médiation de la transition innée-immune adaptative. Cependant, la plupart des chercheurs estiment que ces cellules sont difficiles à transfecter fois efficace et sans la maturation de transfection de cellules induisant la procédure lors de l&#39;utilisation des techniques de transfection standard. Nous avons recherché ...

<table border="1"><tbody><tr><th> Equipement / Réactif </th><th> Société </th><th> Catalogue # </th><th> Commentaires </th></tr><tr><td> Amaxa Nucleofector de 96 puits navette </td><td> Lonza </td><td> 108S0109 </td><td> Numéro de série </td></tr><tr><td> Amaxa monocytes humains de 96 puits Kit Nucleofector </td><td> Lonza </td><td> VHPA-2007 </td><td> Contient les monocytes humains de 96 puits Solution Nucleofector, le Supplément de 96 puits et l&#39;Nucleocuvettes et plaques </td></tr><tr><td> RIG-I siARN </td><td> Dharmacon </td><td> L-012511-00 </td><td></td></tr><tr><td> SiARN GLO </td><td> Dharmacon </td><td> D-001600-01-20 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Invitrogen </td><td> 11875 </td><td> Complété avec 10% de SVF, 2 mM de L-glutamine, 100 U / ml de pénicilline et 100 pg / ml de streptomycine pour rendre le milieu de croissance DC </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 11965 </td><td></td></tr><tr><td> L-glutamine </td><td> Invitrogen </td><td> 25030081 </td><td></td></tr><tr><td> Pénicilline / streptomycine </td><td> Invitrogen </td><td> 15070063 </td><td></td></tr><tr><td> Sérum de veau foetal </td><td> HyClone </td><td> 3070.03 </td><td></td></tr><tr><td> Cellules dendritiques </td><td> New York Blood Centre </td><td></td><td> PED sont purifiés à partir de couches leuco-en utilisant une procédure standard </td></tr></tbody></table>

protocole optimisé pour une transfection efficace des cellules dendritiques, sans maturation cellulaire

Optimized Protocol for Efficient Transfection of Dendritic Cells without Cell Maturation

Cellules dendritiques (CD) peuvent être considérés comme des sentinelles du système immunitaire qui jouent un rôle critique dans son initiation et une réponse à l&#39;infection. Détection de l&#39;antigène pathogènes par les CD naïve est à travers des récepteurs de reconnaissance des motifs (PRR) qui sont capables de reconnaître des structures spécifiques conservé appelé pathogène motifs moléculaires associés (PAMPS). Détection des PAMPs par les CD déclenche une cascade de signalisation intracellulaire entraîne leur activation et de transformation pour les PED matures. Ce processus est généralement caractérisé par une production d&#39;interféron de type 1 avec d&#39;autres cytokines pro-inflammatoires, la régulation positive des marqueurs de surface cellulaire, comme CMHII et CD86 et la migration des DC matures dans les ganglions lymphatiques drainant, où l&#39;interaction avec les cellules T initie la réponse immunitaire adaptative 2, 3. Ainsi, les PED relier les systèmes immunitaire innée et adaptative. La capacité à disséquer les réseaux moléculaires qui sous-tendent la réponse à divers pathogènes DC est cruciale pour une meilleure compréhension de la régulation de ces voies de signalisation et de leurs gènes induits. Il devrait également aider à faciliter le développement de vaccins à base de DC contre les maladies infectieuses et les tumeurs. Cependant, cette ligne de recherche a été gravement entravée par la difficulté de transfecter des primaires PED 4. Méthodes de transduction virus, tels que le système lentiviral, sont généralement utilisés, mais portent de nombreuses limitations telles que la complexité et de la bio-dangereux risque (avec les coûts associés) 5,6,7,8. En outre, la livraison de produits de gènes viraux augmente l&#39;immunogénicité de ces transduites PED 9,10,11,12. L&#39;électroporation a été utilisée avec des résultats mitigés 13,14,15, mais nous sommes les premiers à signaler l&#39;utilisation d&#39;un protocole de transfection à haut débit et de manière concluante démontrer son utilité. Dans ce rapport, nous résumons un protocole optimisé commerciale pour la transfection à haut débit des humains PED primaire, avec une toxicité cellulaire limitée et une absence de maturation des DC 16. Efficacité de la transfection (de plasmide GFP) et la viabilité des cellules ont été plus de 50% et 70% respectivement. FACS analyse a établi l&#39;absence d&#39;augmentation de l&#39;expression des marqueurs de la maturation du CD86 et CMH II dans des cellules transfectées, tandis qRT-PCR n&#39;a démontré aucune régulation à la hausse des IFNβ. En utilisant ce protocole d&#39;électroporation, nous fournir des preuves pour la transfection réussie des PED avec le siRNA et efficace abattre des gènes ciblés RIG-I, un récepteur de reconnaissance clés virale 16,17, à la fois l&#39;ARNm et de protéine.

Nous présentons notre protocole optimisé nucléofection à haut débit comme un moyen efficace de transfection humaines primaires dérivées de monocytes des cellules dendritiques avec soit l&#39;ADN plasmidique ou siRNA sans causer la maturation des cellules. En outre, nous fournir des preuves pour faire taire les siARN réussie de gène ciblé RIG-I à la fois au niveau ARNm et des protéines.

Protocole optimisé pour une transfection efficace des cellules dendritiques, sans maturation cellulaire

Les cellules dendritiques (CD) peuvent être considérées comme les sentinelles du système immunitaire, jouant un rôle critique dans son initiation et sa réponse à l'infection1. La détection...

L'objectif général de cette procédure est d'abaisser l'expression du gène cible dans les DCS par transfection avec un ARNsi. Cela est réalisé en programmant d'abord l'effecteur AM Maxin Nucleo. La deuxième étape de la procédure consiste à mélanger les DCS et l'ARNsi, puis à pipeter la solution cellulaire obtenue dans des modules Nucleo QVE.La troisième étape de la procédure consiste à placer la plaque dans le plateau du dispositif Amaxa pour commencer le processus de transfection. La dernière étape de la procédure est d'infester les cellules avec le virus afin d'activer la réponse interféron. En fin de compte, des résultats peuvent être obtenus qui montrent une inhibition génique par RT-PCR quantitative et immunotransfert (Western blotting).Cette technique est utile pour caractériser les voies de signalisation dans les cellules dendritiques et pourrait contribuer au développement de thérapies immunitaires basées sur les cellules dendritiques. Pour programmer le Maxon 96 well shuttle nucleo factor pour la transfection des cellules dendritiques, ouvrez un nouveau fichier de paramètres. Sélectionnez le nombre de puits que vous utiliserez pour la transfection standard en déplaçant le c

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Immunologie et infection

Cette vidéo montre une technique basée sur un petit ARN interférent (siRNA) pour interférer avec le flux autophagique. Un siRNA ciblant l’ARNm FIP200 est introduit dans des cellules dendritiques immatures (iDC) dérivées de monocytes par électroporation, provoquant l’inhibition de l’expression de FIP200 et conduisant à l’inhibition de la rupture de la lamine nucléaire par autophagie. Lors de l’ajout du virus de l’herpès simplex (HSV), la sortie nucléaire de la descendance virale est inhibée en...

Inhibition de l’autophagie par siRNA dans des cellules dendritiques immatures infectées par le virus de l’herpès simplex

La méthode la plus couramment utilisée pour générer un grand nombre de cellules dendritiques autologues (CD) pour l'utilisation dans l'immunothérapie tumorale est décrite. La méthode utilise IL-4 et GM-CSF pour différencier les PED à partir de monocytes. Les DC immatures sont stimulées à maturité, puis chargé avec des antigènes avant qu'ils ne soient réinjectées au patient.

Préparation de la tumeur cellules dendritiques matures antigène chargées pour l&#39;immunothérapie

Ici, nous utilisons transduction rétrovirale et transfection concatémérique pour créer une lignée cellulaire qui peut exprimer les composantes d'un vecteur lentivirus (LV) en l'absence de tétracycline. Ce LV code pour la GFP et est pseudotypé avec une glycoprotéine, SVGmu, qui est spécifique d'un récepteur sur les cellules dendritiques.

Un régulée par la tetracycline lignée cellulaire produit vecteurs lentiviraux titre élevé qui ciblent spécifiquement les cellules dendritiques

Ce protocole présente une méthode efficace et fiable pour la transfection humains THP-1 macrophages avec siRNA ou de l'ADN plasmidique par électroporation à haut rendement de transfection tout en maintenant la vitalité des cellules haute capacité et des macrophages plein de différenciation et polarisation.

La transfection très efficace des droits de THP-1 par les macrophages nucléofection

Des sous-ensembles distincts de cellules dendritiques existent en tant que populations rares dans les organes lymphoïdes, et sont donc difficiles à isoler en nombre suffisant et en pureté suffisante pour des expériences immunologiques. Nous décrivons ici une méthode à haute efficacité et à haut rendement pour l’isolement de tous les principaux sous-ensembles actuellement connus de cellules dendritiques spléniques de souris.

Une méthode de rendement efficace et haute pour l&#39;isolement des souris dendritiques sous-ensembles cellulaires

Les cellules dendritiques immatures peuvent être différenciées sélectivement en cellules dendritiques tolérogènes ou matures pour réguler l’équilibre entre l’immunité et la tolérance. Ce travail présente un moyen de générer à partir de cellules dendritiques (moDC) dérivées de monocytes immatures, des moDC tolérogènes in vitro et matures qui diffèrent par leurs phénotypes métaboliques.

Génération de Immature, d&#39;âge mûr et tolérogène cellules dendritiques avec Metabolic Différentes phénotypes

L’électroporation de nouvelle génération est une méthode efficace pour transfecter des cellules Th17 humaines avec de petits ARN afin de modifier l’expression des gènes et le comportement cellulaire.

Petit ARN primaire dans Transfection Th17 cellules humaines par électroporation Next Generation

Dans cet article, nous fournissons qu'un protocole détaillé pour l’expression des protéines de fusion fluorescent murin de moelle osseuse provenant des macrophages et les cellules dendritiques. La méthode est basée sur la transduction de la moelle osseuse progéniteurs avec constructions retroviral suivies de différenciation en macrophages et dendritiques des cellules in vitro.

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