Name: High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR test per la determinazione di espressione Profili di tipo I e III interferone sottotipi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-24T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min
Description: Scopri il metodo qRT-PCR ad alto rendimento per analizzare i sottotipi di interferone di tipo I e III. Questa tecnica automatizzata discrimina differenze di singoli nucleotidi tra trascritti altamente simili, garantendo risultati riproducibili in campioni clinici e modelli di coltura tissutale.

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Questo lavoro è stato sostenuto da CBER / FDA-NIAID / NIH Interagency accordo YI-AI-6153-01, FDA / CBER fondi intramurali, e la FDA contromisure mediche Initiative. TCT, MNB, VPM, LMS, e KDK sono stati sostenuti da un appuntamento al Programma Partecipazione di ricerca presso il Centro di Valutazione e Ricerca Biologics amministrato dal Ridge Institute Oak per l&#39;educazione scientifica attraverso un accordo tra gli Stati Uniti Interagency Departmen dell&#39;Energia e degli Stati Uniti Food and Drug Administration.

1. Preparazione delle Diluizioni Seriali standard (Figura 3A) NOTA: Serie Serial diluizione dei plasmidi linearizzati contenenti le sequenze mirate da un insieme Pr / Pb sono utilizzati come standard quantitativi per l&#39;analisi qRT-PCR. Ogni set di diluizione seriale standard per i sottotipi IFN contiene un volume sufficiente per eseguire 90 piastre test. I quattro punti della curva di diluizione standard utilizzato per il saggio sono selezionati per coprire valori Ct da una gamma da 20 a 32 (Tabella 3). <ol><li> Thaw, vortex e centrifugare brevemente la standard (50 pm) e il salmone DNA dello sperma (ssDNA, 10 mg / ml) soluzioni stock. </li><li> Preparare la miscela ssDNA / acqua per 17 insiemi diluizione standard miscelando 51 ml di ssDNA con 20,3 ml di acqua. </li><li> Etichettare un 8-tubo PCR strip per un set diluizione standard. NOTA: La preparazione delle diluizioni seriali standard delle soluzioni madre avrà 2-3 ore. </li><li> Dispensare 190 microlitri della miscela ssDNA / acqua alla ftubo IRST nella striscia e 180 ml di ssDNA mix / acqua ai cinque tubi rimanenti. </li><li> Eseguire una diluizione 1:20 trasferendo 10 ml dal ceppo standard di 50 PM per il tubo con 190 ml di ssDNA / acqua, mescolare; vortex e rapidamente si centrifuga la striscia PCR. </li><li> Eseguire una diluizione 1:10 trasferendo 20 microlitri dal tubo più recente diluito al successivo tubo nella serie; vortex e rapidamente si centrifuga la striscia PCR. </li><li> Ripetere il punto 1.6 fino all&#39;ultimo tubo nella serie di diluizioni ha ricevuto lo standard. </li><li> Ripetere i passaggi 1,3-1,7 per ogni standard. </li></ol> Vedere tabella 3 2. Preparazione di Primer / Probe (Pr / Pb) e No Control Template (NTC) di funzionamento Stock Mixes (Figura 3B) NOTA: ogni 1,7 ml Pr / Pb set stock e 128,6 ml nessun controllo Template (NTC) che lavorano magazzino mix farà 30 piastre saggio lavorare. <ol><li> Preparare il Pr / Pb set mix azionari di lavoro. NONE: Preparazione del set Pr / Pb e NTC lavoro stock mescola dalle soluzioni madre avrà 2-3 ore. <ol><li> Risospendere i primer e le sonde a 100 micron con acqua ultra-pura per la preparazione delle soluzioni madre. </li><li> Etichetta fino a diciassette 2 tubi ml; uno per ogni set Pr / Pb inclusi nel test. </li><li> Thaw, vortex e centrifugare brevemente i primer (100 micron), sonde (100 micron), e ssDNA (10 mg / ml) soluzioni stock. </li><li> Aggiungere 2 ml di ssDNA ad ogni tubo con il 12,5 microlitri pipetta multicanale elettronica. Aggiungere il primer in avanti del caso, indietro primer e sonda per ogni Pr / Pb set di lavoro stock tubo. Vedi Tabella 1 per i set di Pr / Pb di targeting sottotipi IFN umani e Tabella 2 per il macaco rhesus insiemi Pr / Pb. Aggiungere acqua per portare il volume di ogni Pr / Pb set di lavoro stock tubo di 200 ml. NOTA: Il volume di primer, sonde e acqua da aggiungere dipende dalla concentrazione di reazione finale richiesto un Pr / Pbset. </li></ol></li><li> Preparare le miscele azionari NTC di lavoro. <ol><li> Label due strisce PCR 5 tubi per gli stock di lavoro NTC mescola. </li><li> Trasferimento 14.3 ml di ogni Pr / Pb impostati al tubo di lavoro stock adeguato mix NTC. Vedere la Tabella 4 per i set di combinazioni di Pr / Pb per pozzi NTC. Aggiungere acqua a ciascuna delle azioni di lavoro NTC mescola per portare il volume finale a 128,6 ml. </li><li> Vortex, centrifugare brevemente, e posizionare i tubi al buio in ghiaccio oa -20 ° C per la conservazione a lungo termine. </li></ol></li></ol> Vedere tabella 4 <ol start="3"><li> Diluire il Pr / Pb set scorte di lavoro. <ol><li> Dopo la rimozione di una aliquota dei set Pr / Pb necessari per le miscele Stock Working NTC, aggiungere 1,5 ml di acqua per portare il volume finale di ogni Pr / Pb set di lavoro stock tubo di 1,7 ml. </li><li> Vortex, centrifugare brevemente, e posizionare i tubi al buio in ghiaccio oa -20 ° C per la conservazione a lungo termine. </li></ol></li></ol><pclass = &quot;jove_title&quot;&gt; 3. Preparazione delle lastre test 384 e utilizzando la pipetta multicanale automatizzata <ol><li> Preparare un piatto di origine a 96 pozzetti dei set Pr / Pb e miscele NTC per aliquotando a 384 pozzetti piastre test. NOTA: La preparazione del piatto di origine dalle Pr / Pb mix funzionamento azionari avrà meno di 1 ora. Ogni piatto fonte 96-bene è abbastanza per fare sei piastre test 384 pozzetti (Figura 3C). <ol><li> Vortex e centrifugare brevemente il Pr / Pb set scorte di lavoro e NTC mix azionari di lavoro. </li><li> Posizionare una nuova piastra a 96 pozzetti in un blocco a 96 pozzetti di raffreddamento refrigerati e designare i pozzetti per ogni set Pr / Pb o NTC mescolare i pozzetti ricevono (vedi figura 2). </li><li> Aggiungere acqua alla piastra a 96 pozzetti con una pipetta multicanale 250 microlitri elettronica: Versare 66 ml di acqua per ogni Pr / Pb impostato bene (tranne i 4 pozzi per Target 17). Dispensare 82,5 ml di acqua per i 4 target 17 pozzi. Dispensare 27,5 ml di acqua per ogni mix NTC bene. </li&gt; <li> Aggiungere il corretto Pr / Pb set stock lavorando ai pozzetti designate della piastra a 96 pozzetti: Dispensare 54 ml di corretta Pr / Pb set stock lavorando al set designati pozzi Pr / Pb (tranne i 4 pozzi per Target 17). Dispensare 67,5 ml di destinazione 17 Pr / Pb set stock di lavoro per i designati target 17 Pr / Pb set pozzi. Aggiungere 22,5 ml di corretta NTC lavoro stock mix nei pozzetti designati. </li><li> Sigillare la piastra a 96 pozzetti con una guarnizione adesiva piastra e centrifugare per 1 min a 700 xg per garantire i contenuti sono al fondo dei pozzetti. </li><li> Posizionare la piastra a 96 pozzetti nel vortex con un adattatore piastra a 96 pozzetti e mescolare per 1 min a 1.000 giri al minuto. Centrifugare la piastra a 96 pozzetti per 5 min a 700 x g. </li><li> Conservare la piastra a 96 pozzetti fonte al buio a 4 ° C se si utilizza lo stesso giorno, altrimenti conservare a -20 ° C fino al momento dell&#39;uso. </li></ol></li><li> Preparare le piastre test 384-bene aggiungendo il Pr / Pb insiemi utilizzando la pipetta multicanale automatizzata. NOTA: La preparazione di sei piatti test dalla piastra sorgente a 96 pozzetti avrà 3-4 ore. <ol><li> Prima di effettuare piastre, pre-raffreddare il nido raffreddamento a 4 ° C e pre-riscaldare la piastra evaporatore a 125 ° C e il blocco di calore inferiore a 80 ° C con un flusso d&#39;aria che soffia tra 20-25 litri al minuto (LPM). </li><li> Accendere la pipetta multicanale automatizzata e aprire il protocollo per la fabbricazione di piastre test IFN facendo doppio clic sull&#39;icona del software. </li><li> Per impostare la piattaforma, posizionare una scatola completamente pieno puntale in posizione piattaforma 1, la piastra di fonte a 96 pozzetti in posizione 4, e una nuova piastra a 384 pozzetti in posizione 6. Inizia la corsa premendo il tasto play. NOTA: Al termine di un percorso, ogni pozzetto conterrà 5 ml di mix Pr / Pb. NOTA: L&#39;importo finale di ssDNA aggiunto per pozzetto della piastra a 384 pozzetti test è 0.025 mg. </li><li> Agitare gentilmente la piastra di dosaggio 384 pozzetti su una superficie piana per assicurare fluidi sono in fondo dei pozzetti e applicare un adesivoguarnizione della piastra. </li><li> Centrifugare la piastra per 1 min a 700 x g. Rimuovere la guarnizione della piastra adesiva, posizionare la piastra a 384 pozzetti test in asciugatrice piastra e posizionare il collettore 384 pozzetti direttamente sopra i pozzi. </li><li> Quando il contenuto del piatto 384 pozzetti test asciutto, applicare una nuova guarnizione piastra adesiva, avvolgere in un foglio, etichetta, e conservare al buio a 4 ° C fino al momento dell&#39;uso. NOTA: Le piastre possono essere conservati a 4 ° C per almeno 6 mesi. </li><li> Ripetere 3.2.3-3.2.6 fino 6 x 384 pozzetti piastre test sono preparati o il liquido nella piastra sorgente a 96 pozzetti è esaurito. </li><li> Spegnere il nido di raffreddamento, chiudere il software, e spegnere la pipetta multicanale automatizzata. Spegnere l&#39;asciugatrice piatto. </li></ol></li></ol> 4. Caricamento ed esecuzione di un piatto 384 pozzetti Assay <ol><li> Preparare due gene housekeeping (HKG) e miscele, che consistono del set Pr / Pb di HKG, ssDNA, PCR master mix, e acqua, da aggiungere ad una piastra a 384 pozzetti test essiccati ( <strong&gt; Figura 3D). NOTA: La preparazione delle miscele e caricare la piastra test avrà 1-2 ore. L&#39;esecuzione del piatto test richiederà meno di 2 ore. <ol><li> Etichettare una provetta da 1,5 ml per ogni mix HKG. </li><li> Diluire 2 ml di ssDNA (10 mg / ml), con 84,9 ml di acqua. Aggiungere 2 ml di ssDNA diluito, 11.8 ml di acqua, 23 ml di master mix, e 9.2 ml di corretta 20x HKG Pr / Pr impostato ogni provetta, vortice, e centrifugare brevemente. </li><li> Utilizzare deidrogenasi gliceraldeide-3-fosfato (GAPDH) e ubiquitina C (UBC) come HKG per il dosaggio umana (vedi Materiali Tabella). Utilizzare GAPDH e 18S ribosomiale RNA come HKG per il saggio rhesus. NOTA: Il HKG utilizzato per eseguire il test sono flessibili e dovrebbe riflettere i geni appropriati per il tipo di cellule in fase di test GAPDH, UBC, e 18S sono esempi di uso comune HKG;. altro HKG può essere più appropriato. </li></ol></li><li> Preparare il campione e positive controllare ben miscele, che consistono di campione o di cDNA di controllo positivo, master mix e acqua, da aggiungere ad una piastra a 384 pozzetti test essiccato. Preparare il campione e le miscele di controllo positivi in quantità sufficiente a dispensare a 21 pozzetti della piastra (Figura 3D). <ol><li> Prima della sintesi del DNA, seguire le istruzioni del produttore per preparare i campioni di RNA con un passo DNasi digestione. </li><li> Preparare i campioni e controllo positivo in anticipo dalla sintesi cDNA di almeno 500 ng di RNA seguita da trattamento con RNasi H (volume finale di 24 microlitri di ciascun campione) seguendo le istruzioni del produttore. Conservare il cDNA preparata a -20 ° C fino al momento dell&#39;uso. Thaw, vortex e centrifugare brevemente il cDNA campione. </li><li> Aggiungere 78,8 ml di master mix e 54,8 ml di acqua per ogni campione 24 ml e tubo controllo positivo. </li><li> Vortex e centrifugare brevemente le provette. </li></ol></li><li> Preparare gli standard e NTC mescola bene, conCONSISTONO di master mix e acqua, da aggiungere a una 384-pozzetti test secchi (Figura 3D). Per gli standard ben mescolare, aggiungere 165 ml di acqua a 275 ml di master mix in una provetta da 1,5 ml. Per la NTC bene mescolare, aggiungere 52,5 ml di acqua per 52,5 ml di master mix in una provetta da 1,5 ml. Vortex e centrifugare brevemente le provette. </li><li> Preparare una piastra test 384 pozzetti secchi per il caricamento delle miscele e campioni. <ol><li> Rimuovere un essiccata piastra a 384 pozzetti dosaggio da 4 ° C e centrifugare per 1 min a 700 x g. </li><li> Posizionare la piastra su un blocco di 384 pozzetti di raffreddamento raffreddato, rimuovere la guarnizione della piastra adesiva e delineare i pozzetti della piastra per designare dove le varie miscele e campioni verranno pipettati (Figura 1). </li></ol></li><li> Caricare la piastra a 384 pozzetti test con mix ben standard standard, NTC ben mescolare, campioni, controllo positivo, e mix HKG (Figura 3E). Vortex e centrifugare brevemente tutte le soluzioni prima di dispensare al piatto. <ol><li> Dispensare 6 ml degli standard ben si mescolano in ogni pozzetto standard con 30 microlitri elettronica pipetta multicanale. Dispensare 1,5 ml di diluizione seriale standard corretto e designato con il 12,5 microlitri pipetta multicanale elettronica. </li><li> Dispensare 7,5 ml di NTC ben si mescolano a ciascun NTC bene con il 30 microlitri elettronica pipetta multicanale. Dispensare 7,5 ml di campioni nei pozzetti designati con 30 microlitri pipetta multicanale elettronica. Dispensare 2,5 ml di HKG Pr / Pb mescola ai pozzetti designati con il 12,5 microlitri pipetta multicanale elettronica. </li><li> Riempire i pozzetti vuoti con 7,5 ml di acqua e di master mix miscela rimasto con il 30 microlitri multicanale elettronica pipetta; 7,5 ml di acqua da sola anche lavorare. </li><li> Sigillare la piastra a 384 pozzetti test con la pellicola adesiva ottica e centrifugare per 1 min a 700 x g. Vortex la piastra a 384 pozzetti sigillati nel vortex per 2 min a 2.600 rpme centrifugare per 5 min a 700 x g. </li><li> Posizionare la piastra di test 384-ben chiuso nella macchina qRT-PCR, aprire il modello per il layout del test e iniziare la corsa. NOTA: I risultati possono essere esportati come un foglio di calcolo o come file di testo per l&#39;analisi. </li><li> Utilizzare le seguenti condizioni ottimali di reazione termociclatore per il test: i) 50 ° C per 2 min, ii) 95 ° C per 10 min, iii) 95 ° C per 25 s, iv) 59 ° C per 1 min. Ripetere i punti iii e iv per 40 cicli. </li><li> Esportare i dati grezzi dalla piattaforma qRT-PCR in un software foglio di calcolo. Tracciare ogni standard 4 set point come una curva standard per osservare linearità. Eseguire l&#39;analisi calcolando il ΔCq o per numero di copie in base ai quattro punti di curve standard 27. </li></ol></li></ol> Vedi Figura 3 Sotto

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VPM e RLR sono co-inventori della tecnologia per misurare l'espressione dei sottotipi di IFN e IFN e ricavarne i proventi delle royalties. Gli altri autori dichiarano di non avere conflitti di interesse.

Tale relazione descrive la progettazione, produzione in lotti, e un approccio verso l&#39;analisi di un test per misurare la trascrizione di una serie di geni molto simili in laboratorio di ricerca. Il test high-throughput qRT-PCR qui riportato misura la IFN-e - sottotipi λ con alta specificità. Questo metodo comporta due aspetti fondamentali, la progettazione di insiemi Pr / Pb che discriminano tra i membri di una famiglia di geni omologhi e lo sviluppo di una piattaforma di produzione per la realizzazione di lastre test 384 e affidabili e coerenti precaricati con i set di Pr / Pb. Le sonde qRT-PCR incorporano un (MB) o chimica (LNA) approccio strutturale verso il rafforzamento della loro specificità 29. Per due dei set di primer nel test rhesus (Tabella 2), il sistema di amplificazione mutazione refrattaria (ARMS) è stato incorporato nelle sequenze dei primer per migliorare ulteriormente la specificità 30. Mentre è generalmente meglio indirizzare giunzioni esone-esone a li esalta con gnce la specificità di una reazione qRT-PCR, questo non era possibile, perché il tipo di IFN geni mancano introni. Pertanto, il DNA genomico sarà amplificato nella reazione PCR, e deve essere degradata mediante trattamento DNasi dopo l&#39;estrazione di RNA. La regione di destinazione per i set di Pr / Pb è stata limitata alle regioni codificanti del peptide maturo per ogni IFN. A causa della alta somiglianza di sequenza tra i sottotipi di IFN-α, in particolare la regione peptide maturo, a volte era necessario compromettere sensibilità per garantire la specificità. Ciò è avvenuto in particolare con IFN-α17, dove il peptide trascrizione matura ha solo quattro basi uniche quando confrontato con gli altri sottotipi IFN-α. Targeting IFN-α17 richiede primer che legano le trascrizioni delle più sottotipi, limitando la specificità alla sonda. Di conseguenza, la reazione PCR amplifica sottotipi diversi IFN-α17, consumando quindi una percentuale sostanziale dei reagenti PCR e lowering l&#39;ampiezza del segnale di fluorescenza della sonda specifica per IFN-α17. Un&#39;ulteriore sfida verso la progettazione di insiemi Pr / Pb sensibili e specifici per i geni molto simili, come l&#39;IFN è la possibilità che le sequenze annotati nel database GenBank potrebbero non essere completa o completa al momento della progettazione. Ancora una volta, questo era una sfida per IFN-α17, in cui le sequenze di recente annotati non si allineano perfettamente con la versione della sequenza del database al momento della progettazione. Pertanto, quando si progetta Pr / Pb imposta per i geni che non sono state intensamente studiate, è consigliabile controllare periodicamente l&#39;ultima sequenza ragionata di un gene bersaglio. Infine, è necessario garantire che gli insiemi Pr / Pb non amplificano pseudogenes che possono essere trascritti ma non tradotte. Dopo aver disegnato i set Pr / Pb, la prossima sfida è l&#39;ottimizzazione delle condizioni di PCR di diciassette diverse Pr / Pb imposta su una piastra a 384 pozzetti. Norme Transcript sono important a testare la specificità di un insieme Pr / Pb e diventare indispensabile per armonizzare le condizioni qRT-PCR delle numerose reazioni PCR diverse. Test di un set Pr / Pb contro le norme di trascrizione stabilisce la sua efficienza e la sensibilità; plasmidi che esprimono pseudogeni molto simili possono essere necessarie per assicurare che il Pr / Pb set misura selettivamente la trascrizione del gene funzionale. Gli standard trascrizione fornisce anche un mezzo di analisi quantitativi (numero di trascritti), in aggiunta all&#39;analisi semi-quantitativa rispetto ad un gene housekeeping (ΔCq). Robotic pipettaggio multicanale da una piastra di fonte a 96 pozzetti in più 384 pozzetti piastre test migliora la precisione e la coerenza dei risultati tra le piastre. DNA di sperma di salmone (ssDNA) viene utilizzato come vettore che stabilizza e conserva i set Pr / Pb di stoccaggio a lungo termine, come fa essiccamento dei reagenti erogate nelle piastre. Essiccazione le piastre diminuisce anche il volume della reazionenecessaria per ottenere risultati riproducibili, che a sua volta conserva preziosi campioni e diminuisce l&#39;uso di reagenti costosi. Attraverso questi passaggi, lotti di piastre sono montate che forniscono precisione e coerenza per più di sei mesi. Dopo la preparazione piatto, le misure di controllo di qualità sono fondamentali per verificare la coerenza di un lotto di piastre. A questo scopo, un ulteriore quattro serie di norme vengono eseguiti su una piastra. La piastra &quot;standard 5x&quot; tiene traccia delle prestazioni e crea un set di dati a cui gli standard di un piatto individuale vengono confrontati. Mentre dieci diluizioni di 10 volte di ciascuno standard vengono utilizzati durante la progettazione dosaggio, considerazioni di spazio richiedono che quattro punti sono usati per la curva standard su ciascuna piastra di dosaggio e per la piastra standard 5x. Inoltre, un controllo positivo dovrebbe essere inclusa su ciascuna piastra per garantire la validità della piastra. In genere, ci vogliono 3-4 ore per preparare sei piastre test da un Pr / Pb sPiastra ource; è fattibile preparare dodici piastre in un solo giorno in un laboratorio di ricerca. Poiché ogni piastra di dosaggio sottotipo IFN umano esamina diciassette insiemi Pr / Pb e può ospitare quindici campioni sperimentali, un giorno di assemblaggio produce un lotto di piastre con la capacità di generare fino a 3.060 punti dati sperimentali. I dati grezzi dalla piattaforma qRT-PCR possono essere elaborati e assemblati utilizzando script di programmazione in un software foglio di calcolo per compilare automaticamente un modello di analisi predefinito. Questo metodo riduce hands-on di inserimento dati, impedendo in tal modo errori di copiatura e consente al ricercatore di concentrarsi sull&#39;analisi dei dati piuttosto che l&#39;assemblaggio dei dati. Come descritto qui, questa alta produttività assay qRT-PCR può essere applicato per misurare l&#39;espressione di sottotipi di interferone in campioni macaco rhesus e umana o potrebbe essere adattato da utilizzare per altre specie o insiemi di geni omologhi. La flessibilità del layout di piastra permette all&#39;utente di cambiare fondo / probe imposta per adattare i geni diinteresse verso un particolare tipo di cellula o sistema modello. Questo test può essere applicato per misurare IFN firme di espressione in modelli di coltura cellulare che studiano agenti patogeni o nei campioni di pazienti nel contesto di modelli di malattia per chiarire i meccanismi di segnalazione coinvolti nella risposta immunitaria.

Tipo I e III interferoni (IFN) sono fondamentali per la risposta immunitaria al virus e altri stimoli patogeni e presente in tutti i vertebrati 1. Le cellule immunitarie e non immune esprimono e secernono, oltre che rispondere a, IFN 2. Sensori immunitarie innate, come i recettori Toll-like (TLR), Sting, e RIG-I, inducono tipo I e di espressione III IFN al rilevamento dei modelli molecolari patogeni associati (PAMP) 3,4. Negli esseri umani, di tipo I IFN includono IFN-β, -ω, -κ, e 12 sottotipi di IFN-α, e si legano al recettore IFNAR1 / IFNAR2 complesso 2,5. Tipo IFN III includono IFN-λ1, -λ2, e -λ3 e legano al complesso recettoriale IL10RB / IL28RA 2. Classicamente, tipo I e III IFN legano ai rispettivi complessi recettoriali che poi reclutano STAT1 / eterodimeri STAT2 e iniziare la trascrizione di interferone stimolato geni (ISG) 6. ISG sono coinvolti in una vasta gamma di funzioni, dalla antivirali e antiattività proliferativa di attivazione della risposta immunitaria adattativa 7. I numerosi meccanismi patogeni si sono evoluti di eludere, sovvertire, e dirottare elementi della via di segnalazione IFN dimostrano l&#39;importanza di IFN nella risposta immunitaria innata 8. Ad esempio, il virus vaccinia esprime un recettore decoy con IFNAR1 omologia che sequestra tipo I IFN 9, mentre un virus della malattia Yaba-come secerne una glicoproteina che inibisce I e III IFN proteine ​​10 tipo. Oltre al loro ruolo nella difesa dell&#39;ospite, IFN sono anche implicati nella sorveglianza cancro e un certo numero di malattie auto-infiammatoria: silenziamento dell&#39;espressione IFN in cellule di carcinoma mammario limita immunosorveglianza 11, sovrapproduzione di IFN-α è un meccanismo per lo sviluppo di sistemica lupus eritematoso 12, e l&#39;attivazione errante di STING porta a infiammazione sistemica causata da una quantità eccessiva di IFN a vasculopatia STING-associato13. Terapeutico, IFN sono usati per trattare la sclerosi multipla 14, infezioni virali croniche come HBV e HCV 15 16,17, e tumori come leucemia a cellule capellute 18 e leucemia mieloide cronica 19. Domande sulla rilevanza di IFN in un particolare processo fisiologico rivelano continuamente il carattere ubiquitario di questa famiglia delle citochine. Tipo I IFN, soprattutto i sottotipi IFN-α, sono spesso considerati come un&#39;unica entità 20-23, piuttosto che come un gruppo di strettamente correlati, ma distinti, le proteine. L&#39;esistenza e la persistenza di molteplici specie IFN inclusi i sottotipi IFN-α, nel corso dell&#39;evoluzione dei vertebrati 24 suggerisce che almeno un sottoinsieme di questi sottotipi hanno funzioni specifiche o esclusive. È possibile che definiscono pattern di espressione IFN saranno decifrare e contribuire caratterizzano le funzioni specifiche di uno o più dei sottotipi 17. La sfida di studiare tegli tipo sottotipi I e III IFN si basa sulla loro identità sequenza condivisa: i dodici sottotipi IFN-α condividono&gt; 50% 25 e sottotipi IFN-λ condividono 81-96% 26 delle loro sequenze di aminoacidi. Nel descritto test qRT-PCR, faro molecolare (MB) e l&#39;acido nucleico bloccato (LNA) sonde fluorescenti discriminano singole differenze coppie di basi tra le sequenze molto simili IFN sottotipo e consentono la caratterizzazione della firma espressione IFN. 384-ben formato piatto del test comprende sia gli standard (trascrizione) e quantitativi (i geni housekeeping (HKG)) semi-quantitative misure, consentendo l&#39;analisi in base al numero di copia e trascrizione ΔCq rispettivamente. Montaggio Batch, facilitato pipettando automatizzati multicanale, e la conservazione a lungo termine, possibile attraverso l&#39;asciugatura del primer / sonda (Pr / Pb) imposta sulle piastre, migliorare la riproducibilità, utilità e la praticità del test. Questo protocollo descrive il processoper la preparazione di piatti a 384 pozzetti test qRT-PCR (Figura 1) con un massimo di diciassette diversi set Pr / Pb di targeting sottotipi IFN umani (Tabella 1). Pr / Pb set di lavoro piastre stock di origine (Figura 2) vengono utilizzati per la preparazione di più 384 pozzetti piastre saggio in un processo che può essere automatizzato usando una pipetta multicanale robotico. Mentre l&#39;attenzione iniziale era sulla creazione di un protocollo per studiare firme espressione IFN umani, questo metodo è stato applicato a macachi rhesus pure. Sebbene i layout piastra sono leggermente diverse e gli insiemi Pr / Pb (Tabella 2) sono distinti, il metodo di preparazione complessivo per creare le piastre umani e rhesus è identico. Con modifiche minime del protocollo, il metodo può essere eseguito per consentire lo sviluppo di saggi per studiare altri gruppi di geni strettamente correlati. Vedi figure 1 e 2 qui sotto Vedi tabelle 1 e 2 Below

<table><tbody><tr><td>Strisce per provette PCR da 0,2 ml&nbsp;</td><td>Eppendorf (Westbury, NY, USA)</td><td>E0030 124 286</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta elettronica equalizzatore 384 a 12 canali, 0,5-12,5 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-139</td><td>*Fuori produzione</td></tr><tr><td>Pipetta elettronica equalizzatore 384 a 12 canali, 1-30 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-137</td><td>*Fuori produzione</td></tr><tr><td>Pipetta elettronica a 12 canali, 5-250 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-118</td><td>*Fuori produzione</td></tr><tr><td>Provetta per microcentrifuga da 2,0 ml, sterile</td><td>Celltreat Scientific Products (Shirley, MA, USA)</td><td>229446</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta elettronica a 8 canali, 15-1250 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-115</td><td>*</td></tr><tr><td>Serbatoi di reagenti monouso fuori produzione&nbsp;</td><td>VWR International (Radnor, PA, USA)</td><td>89094-668</td><td>Serbatoi da 25 ml con 2 divisori</td></tr><tr><td>E-Centrifuge</td><td>Wealtec Corp. (Sparks, NV, USA)</td><td>1090003</td><td></td></tr><tr><td>Eukaryotic 18S rRNA (18S)</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>Hs99999901_s1</td><td>Rhesus HKG Set di primer/sonda</td></tr><tr><td>Mini Vortexer a velocità fissa</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>02-215-360</td><td></td></tr><tr><td>Guarnizione adesiva per piastre permeabile ai gas</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>AB-0580</td><td>Guarnizione per piastre monouso utilizzata durante il processo di preparazione delle piastre&nbsp;</td></tr><tr><td>Gliceraldeide-3-fosfato deidrogenasi (GAPDH)</td><td>FBR (Silver Spring, MD, USA)</td><td>Custom Order</td><td>Human HKG Primer/set di sonde</td></tr><tr><td>Gliceraldeide-3-fosfato deidrogenasi (GAPDH)</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>Rh02621745_g1</td><td>Rhesus HKG Set di primer/sonde</td></tr><tr><td>Hudson Solo pipettatore multicanale automatizzato&nbsp;</td><td>Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA)</td><td>800200</td><td>Modificato con un nido di raffreddamento a 384 pozzetti</td></tr><tr><td>Plasmidi linearizzati (geni IFN)</td><td>Aldevron (Fargo, ND, USA)</td><td>Articolo di ordine personalizzato</td><td>3000, 3580; utilizzato per gli standard di analisi&nbsp;</td></tr><tr><td>Inibitori LNA</td><td>Exiqon (Woburn, MA, USA)</td><td>Articolo dell'ordine personalizzato</td><td>500100</td></tr><tr><td>Sonde LNA</td><td>Sigma-Proligo (St. Louis, MO, USA)</td>Numero <td>di materiale</td> <td>dell'ordine personalizzato</td> VC00023</tr><tr><td>Punte per pipette filtrate a matrice, 12,5 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-193</td><td></td></tr><tr><td>Punte per pipette filtrate a matrice, 30 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-196</td><td></td></tr><tr><td>Punte per pipette a lunghezza estesa Matrix TallTip, 1.250 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-160</td><td></td></tr><tr><td>Punte per pipette a lunghezza estesa Matrix TallTip, 250 ul</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>14-387-152</td><td></td></tr><tr><td>MicroAmp Piastra di reazione ottica a 384 pozzetti con codici a barre</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>4309849</td><td></td></tr><tr><td>MicroAmp Optical 96-Well Reaction Plate</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>N8010560</td><td></td></tr><tr><td>MicroAmp Optical Adhesive Film</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>4311971</td><td>Pellicola adesiva utilizzata per sigillare la piastra prima dell'esecuzione della qRT-PCR&nbsp;</td></tr><tr><td>Foglio di calcolo Microsoft Excel 2010</td><td>Microsoft (Redmond, WA, USA)&nbsp;</td><td>Linguaggio di programmazione Visual Basic</td> <td>di Office 2010</td>&nbsp;</tr><tr><td>MixMate Vortex Mixer</td><td>Eppendorf (Westbury, NY, USA)</td><td>5353 000.014</td><td>Apparato a vortice a piastre a 2 dimensioni</td></tr><tr><td>Molecular Beacon Probes</td><td>FBR (Silver Spring, MD, USA)</td><td>Custom Order</td><td></td></tr><tr><td>PCR Cooler, sistema di conservazione a freddo senza ghiaccio per piastre da 96 pozzetti e provette</td><td>PCR Eppendorf (Westbury, NY, USA)</td><td>Z606634-1EA</td><td></td></tr><tr><td>Plate Dryer (collettore)</td><td>Costruzioni di progettazione meccanica ed elettrica, Ufficio NIH dei servizi di ricerca (Bethesda, MD, USA)Set di</td> primer <td>per ordini</td><td></td>personalizzati</tr><tr><td></td><td>FBR (Silver Spring, MD, USA)</td><td>Ordine</td><td></td>personalizzato</tr><tr><td>pUC57 plasmidi DNA</td><td>Genescript (Piscataway, NJ, USA)</td><td>SD1176</td><td></td></tr><tr><td>Provette per microfughe da 1,5 ml senza RNasi</td><td>Life Technologies (Grand Island, NY, USA)</td><td>AM12400</td><td></td></tr><tr><td>DNasi senza RNasi Set (50)</td><td>Qiagen (Valencia, CA, USA)</td><td>79254</td><td></td></tr><tr><td>RNase H</td><td>New England Biolabs (ipswitch, MA, USA)</td><td>M0297L</td><td></td></tr><tr><td>RNeasy Mini Kit (250)</td><td>Qiagen (Valencia, CA, USA)</td><td>74106</td><td></td></tr><tr><td>Robot Tips (puntali per pipette pre-sterilizzati con punta trasparente)</td><td>Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA)</td><td>800350-S</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di DNA sperma di salmone</td><td>Invitrogen (Carlsbad, CA, USA)</td><td>15632-011</td><td></td></tr><tr><td>SoftLinx Versione V</td><td>Hudson Robotics (Springfield, NJ, USA)</td><td>Software per ordini personalizzati</td><td>per la programmazione delle fasi di pipettaggio</td></tr><tr><td>TaqMan Fast Universal PCR Master Mix (2x), no AmpErase UNG</td><td>Life Technologies (Grand Island, NY, USA)</td><td>4352042</td><td></td></tr><tr><td>Guarnizioni per piastre adesive ABgene&nbsp; &nbsp;</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>AB0580</td><td></td></tr><tr><td>Ubiquitina C (UBC)</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>Hs01871556_s1</td><td>Human HKG Set di primer/sonde</td></tr><tr><td>Kit di sintesi Verso cDNA</td><td>Thermo-Fisher Scientific (Waltham, MA, USA)</td><td>AB1453B</td><td></td></tr><tr><td>ViiA 7 Real-Time PCR System</td><td>Applied Biosystems (Foster City, CA, USA)</td><td>4453536</td><td></td></tr><tr><td>Acqua-Ultra Pura</td><td>Qualità Biologica, INC. (Gaithersburg, MD, USA)</td><td>351-029-101</td><td></td></tr><tr><td>Zipvap 384 (elemento riscaldante essiccatore a piastre)</td><td>Glas-Col LLC (Terre Haute, IN, USA)</td><td>384-109A</td><td>Essiccatore a piastre</td></tr></tbody></table>

high-throughput quantitative real-time rt-pcr test per la determinazione di espressione profili di tipo i e iii interferone sottotipi

High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR Assay for Determining Expression Profiles of Types I and III Interferon Subtypes

Descritto in questo rapporto è un test qRT-PCR per l'analisi di diciassette sottotipi di IFN umano in un formato di piastra a 384 pozzetti che incorpora sonde di acido nucleico bloccato (LNA) e beacon molecolare (MB) altamente specifiche, standard di trascrizione, pipettaggio multicanale automatizzato ed essiccazione su piastra. L'espressione determinante tra gli interferoni di tipo I (IFN), in particolare i dodici sottotipi IFN-α, è limitata dalla loro identità di sequenza condivisa; allo stesso modo, le sequenze dell'IFN di tipo III, in particolare IFN-λ2 e -λ3, sono molto simili. Questo test fornisce un mezzo affidabile, riproducibile e relativamente economico per analizzare l'espressione dei diciassette trascritti del sottotipo di interferone.

Il saggio qRT-PCR descritto può essere implementato per analizzare pattern di espressione di tipo I e III IFN in una varietà di tipi di cellule e contesti. Ad esempio, di tipo I umano e III IFN firme di espressione sono stati analizzati nelle cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) da 6 donatori stimolate con ligandi TLR; poli I: C (25 mcg / ml), LPS (10 ng / ml), imiquimod (10 mM), e oligonucleotidi CpG (1 mM) (Figura 4). I dati sono stati analizzati utilizzando un software foglio di calcolo e presentati come grafici radar con i sottotipi IFN-α disposte in senso orario secondo l&#39;albero filogenetico della loro sequenza proteica 27. I grafici radar di espressione IFN umano sono presentati in una scala logaritmica calcolato utilizzando i due diversi metodi di analisi incorporato nel design dosaggio: valore assoluto Cq normalizzato a HKG (ΔCq), e copiare il numero di template per microgrammo (mcg) di RNA totale . I valori del numero di copie sono calcolati dai risultati o<html> curva standard di trascrizione fa. I dati mostrano che le firme di espressione IFN umani indotte da agonisti TLR sono ligando specifico. Vedere la Figura 4 Sotto Come dimostrato per le firme di espressione IFN umani, le firme di espressione di tipo I e III IFN in macachi rhesus erano anche TLR ligando specifico. PBMC da 3 donatori sono state stimolate con poli I: C (50 mcg / ml), LPS (10 mg / ml), e imiquimod (10 ug / ml) per 3 ore (Figura 5). Espressione sottotipo IFN in cellule non stimolate al basale è stata bassa. Un numero limitato di IFN sottotipi sono state espresse in risposta a LPS e poli I: C. In contrasto, l&#39;espressione di IFN in risposta a imiquimod era alta e l&#39;espressione sottotipo era ampia. L&#39;espressione di IFN-β e IFN-λ1 si arricchisce di tutti e tre TLR agonisti 28. Vedere la Figura 5 Sotto sempre &quot;&gt; <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig1.jpg" /> Figura 1:. Il layout per un piatto 384 pozzetti test con diciassette insiemi Pr / Pb Obiettivo numero si riferisce a un insieme Pr / Pb. Le curve standard a quattro punti (triangolo grigio scuro) vengono aggiunti alle colonne 1-5. I set HKG Pr / Pb (sfondo bianco) si aggiungono alle colonne 6 e 7. Le colonne, 8-24, sono specifici per una delle diciassette insiemi Pr / Pb. I campioni vengono aggiunti alle righe AP, da colonne 6-24 (frecce nere). I due pozzi (O5, P5) nella parte inferiore della colonna 5 ricevono solo acqua e master mix. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650fig1highres.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig2.jpg" /> Figura 2:. Il layout per un piatto di origine a 96 pozzetti con diciassette insiemi Pr / Pb numero di destinazione si riferisce ad un Pr / Pbset. Frecce nere rappresentano quando si aggiunge un insieme Pr / Pb a più pozzi. Miscele NTC sono aggiunti ai pozzetti designati (sfondo grigio scuro). I due pozzi (F3, G3) con linee diagonali sono inutilizzati. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650fig2highres.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig3.jpg" /> Figura 3: Schema di interventi specifici nel protocollo del test qRT-PCR schema AE selezionano parti del protocollo.. (A) Fase 1: Preparazione di diluizioni seriali standard. (B) Fase 2: Preparazione di Pr / Pb e NTC mix azionari di lavoro. (C) Fase 3.1: Preparazione di un scorte piastra a 96 pozzetti di lavoro degli insiemi Pr / Pb e miscele NTC. (D) Fase 4,1-3: Preparazione delle miscele per caricare la piastra a 384 pozzetti test. (Estep 4.5: Caricare la piastra a 384 pozzetti test. I diagrammi sono lette dall&#39;alto a sinistra verso l&#39;angolo in basso a destra. Reagenti per l&#39;interferone (IFN) test vengono conservati a -20 ° C e sono elencati nella colonna di sinistra; Linee azioni distinte nel protocollo. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650fig3highres.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig4.jpg" /> Figura 4: La firma espressione IFN umano in cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) differisce in risposta ai ligandi TLR utilizzati per la stimolazione PBMC sono state stimolate con ligandi TLR e RNA è stato raccolto per l&#39;analisi qRT-PCR.. Le medie geometriche delle risposte di picco Poly I: C (25 mg / ml) a 8 ore (quadrati rossi), LPS (10 ng / ml) a 4 ore (triangoli verdi), Imiquimod (10 micron) a 16 ore ( diamanti viola), CpG (1 um) a16 ore (cerchi neri), e controllo non stimolata a 16 ore (cerchi blu) da 6 donatori sono mostrati in scala logaritmica 10 in funzione di espressione del HKG UBC ΔCq (sinistra) o come numero di copie per ogni mg di RNA (a destra) . Sottotipi IFN-α sono ordinate in base alla trama filogenetica della sequenza aminoacidica somiglianza. Questo dato è stato originariamente pubblicato in Immunology and Cell Biology 27. <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/52650/52650fig5.jpg" /> Figura 5:. Il macaco rhesus IFN firma espressione nelle cellule mononucleari del sangue periferico (PBMC) è diversa in risposta ai ligandi TLR utilizzati per la stimolazione PBMC da tre macachi Rhesus (designati dalla piazza, il diamante, e il triangolo) sono stati isolati dal sangue intero e stimolati con lipopolisaccaride (LPS) (10 mcg / ml), poli I: C (50 mcg / ml) o imiquimod (10 mcg / ml). Le cellule sono state raccolte a 0 ore (OPEn forme) o dopo 3 ore di stimolazione TLR (forme chiuse) per la misura dell&#39;espressione IFN. Livelli di trascritto di tipo I, II, e III IFN sono visualizzate in scala logaritmica 10 in funzione di espressione del HKG GAPDH ΔCq (sinistra) o come numero di copia / mg RNA (a destra). Questo dato è stato originariamente pubblicato nel Journal of Interferon e citochine ricerca 28. <img alt="Tabella 1" fo:content-="" fo:content-width="7in" src="/files/ftp_upload/52650/52650table1.jpg" width="700" /> Tabella 1:. IFN umano Primer / sonda sequenze set e la reazione informazioni <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650table1.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa tabella.</a> <img alt="Tabella 2" fo:content-="" fo:content-width="7in" src="/files/ftp_upload/52650/52650table2.jpg" width="700" /> Tabella 2:. Macaco Rhesus IFN Primer / sonda sequenze set e la reazione informazioni <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52650/52650table2.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa tabella.</a> <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td></td><td colspan="4"> Concentrazione plasmidi (FM) </td></tr><tr><td></td><td> La </td><td> B </td><td> C </td><td> D </td></tr><tr><td> IFN-α1 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α2 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α4 </td><td> 2500 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td></tr><tr><td> IFN-α5 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α6 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td>0.25 </td></tr><tr><td> IFN-α7 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> IFN-α8 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> IFN-α10 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α14 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α16 </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> IFN-α17 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-α21 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-λ1 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-λ2 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-λ3 </td><td>250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> IFN-β </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td><td> 0,025 </td></tr><tr><td> IFN-ω </td><td> 250 </td><td> 25 </td><td> 2.5 </td><td> 0.25 </td></tr></tbody></table> Tabella 3: Standard set diluizione informazioni concentrazione. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td></td><td> IFN Pr / Pb Sets aggiunti </td><td> Volume dell&#39;acqua aggiunta (ml) </td></tr><tr><td> NTC 1 </td><td> IFN-β, -ω, -λ3 </td><td> 85,7 </td></tr><tr><td> NTC 2 </td><td> IFN-α1, -α5 </td><td> 100.0 </td></tr><tr><td> NTC 3 </td><td> IFN-α2 </td><td> 114.3 </td></tr><tr><td> NTC 4 </td><td> IFN-α4 </td><td> 114.3 </td></tr><tr><td> NTC 5 </td><td> IFN-α7 </td><td> 114.3 </td></tr><tr><td>NTC 6 </td><td> IFN-α6, -α8, -α10 </td><td> 85,7 </td></tr><tr><td> NTC 7 </td><td> IFN-α14, -α16 </td><td> 100.0 </td></tr><tr><td> NTC 8 </td><td> IFN-α17 </td><td> 114.3 </td></tr><tr><td> NTC 9 </td><td> IFN-α21, -λ1 </td><td> 100.0 </td></tr><tr><td> NTC 10 </td><td> IFN-λ2 </td><td> 114.3 </td></tr></tbody></table> Tabella 4: NTC magazzino lavora mescola informazioni.

Questo protocollo descrive un test qRT-PCR ad alto rendimento per l'analisi delle firme di espressione dell'IFN di tipo I e III. Il test discrimina le differenze di una singola coppia di basi tra i trascritti altamente simili di questi geni. Grazie all'assemblaggio in batch e al pipettaggio robotizzato, i saggi sono coerenti e riproducibili.

High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR test per la determinazione di espressione Profili di tipo I e III interferone sottotipi

Described in this report is a qRT-PCR assay for the analysis of seventeen human IFN subtypes in a 384-well plate format that incorporates highly specific ...

L'obiettivo generale di questa procedura è preparare ed eseguire piastre saggio a 384 pozzetti per l'analisi ad alto rendimento di un gruppo di geni altamente omologhi, come i sottotipi di interferone di tipo uno e tre. Questo viene ottenuto innanzitutto preparando una diluizione seriale standard utilizzata per eseguire le piastre saggio. Successivamente, vengono preparate le miscele di lavoro di primer, sonda e controllo senza stampo utilizzate per la preparazione delle piastre.Successivamente, le piastre per saggio a 384 pozzetti vengono preparate utilizzando una pipetta multicanale automatizzata e sono essiccate per la conservazione. Infine, le piastre per saggio a 384 pozzetti vengono eseguite e analizzate. In definitiva, il saggio quantitativo ad alta capacità di RT-PCR in tempo reale viene utilizzato per definire le firme di espressione dell'interferone in modelli di coltura cellulare, nello studio di agenti patogeni o in campioni clinici nel contesto di malattie infettive o autoinfiammatorie.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la PCR quantitativa in tempo reale con sonde lineari standard o con SYBR Green, è che le sonde fluorescenti a spia molecolare e a acido nucleico bloccato possono essere utilizzate per discriminare differenze di una singola coppia di basi tra sequenze altamente simili. Dopo lo scongelamento, vortexare e centrifugare brevemente uno standard e il DNA di sperma di salmone o S-S-D-N-A. Preparare la miscela di DNA-S e acqua per i 17 set di diluizione standard mescolando 51 microlitri di S-S-D-N-A con 20,3 millilitri di acqua. Distribuire 190 microlitri della miscela di DNA-S e acqua nel primo tubo di una striscia PCR da otto tubi e 180 microlitri nei successivi cinque tubi.Eseguire una diluizione da uno a 20 trasferendo 10 microlitri dalla soluzione standard di 50 picomolari al tubo contenente 190 microlitri di miscela di acqua S-S-D-N-A, vorticare e centrifugare rapidamente. Nella striscia PCR eseguire una diluizione da uno a 10 trasferendo 20 microlitri dal tubo più recentemente diluito al tubo successivo della serie, vorticare e centrifugare rapidamente la striscia PCR. Ripetere la diluizione da uno a 10 finché l'ultimo tubo della serie non avrà ricevuto lo standard.Dopo aver etichettato fino a 17 provette da due millilitri, utilizzare una pipetta elettronica multicanale da 12,5 microlitri per aggiungere due microlitri di S-S-D-N-A in ogni provetta, usando primer e sonde preparati secondo il protocollo descritto nel testo. Aggiungere il primer forward, il primer reverse e la sonda appropriati a ciascun primer. Aggiungere al tubo della soluzione working stock del set di sonde per preparare le miscele working stock del controllo senza stampo o NTC.Trasferire 14,3 microlitri di ogni set di primer e sonda nel rispettivo tubo del mix di lavoro NTC secondo questa tabella. Dopo il prelievo degli Eloqua dei set di primer e sonda necessari per i mix di lavoro NTC, aggiungere 1,5 millilitri di acqua per portare il volume finale di ciascun tubo del set di lavoro di primer e sonda a 1,7 millilitri. Per preparare una piastra sorgente da 96 pozzetti contenente i set di primer e sonda e i mix NTC.Posizionare una nuova piastra a 96 pozzetti in un blocco raffreddante a 96 pozzetti refrigerato e assegnare ai pozzetti il corretto mix di primer e sonda o il mix NTC utilizzando una pipetta elettronica multicanale da 250 microlitri. Aggiungere 66 microlitri di acqua a ogni mix di primer e sonda. Distribuire accuratamente 82,5 microlitri di acqua nei quattro pozzetti bersaglio 17.Dispensare 27,5 microlitri di acqua in ogni mix anti C. Successivamente, aggiungere 54 microlitri dei primer probe corretti al loro stock di lavoro nei pozzetti designati per il dispensamento dei primer probe. Dispensare 67,5 microlitri dello stock di lavoro del set di primer probe bersaglio 17 nei pozzetti designati per i primer probe bersaglio 17.Aggiungere 22,5 microlitri della corretta miscela working stock NTC alle pozzette designate. Quindi sigillare la piastra a 96 pozzette con un sigillo adesivo e centrifugare per un minuto a 700 G per assicurarsi che il contenuto sia in fondo alle pozzette utilizzando l'adattatore per piastra a 96 pozzette. Posizionare la piastra sul miscelatore vortex e mescolare a 1000 giri al minuto per un minuto.Quindi centrifugare la piastra a 700 G per cinque minuti. Per preparare le piastre saggio da 384 pozzetti, accendere il pipettatore multicanale automatico e fare doppio clic sull'icona del software per aprire il protocollo per la preparazione delle piastre saggio per l'interferone, necessarie per configurare la piattaforma. Posizionare una scatola di punte per pipetta completamente piena nella posizione uno della piattaforma, la piastra sorgente da 96 pozzetti nella posizione quattro e una nuova piastra da 384 pozzetti nella posizione sei.Avviare la corsa premendo il pulsante di riproduzione quando la corsa è completata. Toccare leggermente la piastra saggio a 384 pozzetti su una superficie piana per assicurarsi che i liquidi siano in fondo ai pozzetti ed applicare un sigillo adesivo per piastre dopo aver fatto ruotare la piastra a 700 G per un minuto. Rimuovere il sigillo adesivo per piastre.Posizionare la piastra saggio a 384 pozzetti nel dispositivo di essiccazione e posizionare il manifold a 384 pozzetti direttamente sopra i pozzetti. Una volta che il contenuto della piastra saggio a 384 pozzetti è completamente secco, applicare un nuovo sigillo adesivo per piastre, un'etichetta in foglio di alluminio rapido e conservare al buio a quattro gradi Celsius fino al momento dell'utilizzo per caricare ed eseguire la piastra saggio.Preparare due miscele per i pozzetti dei geni di controllo (HKG) diluendo due microlitri di S-S-D-N-A in 84,9 microlitri di acqua. Successivamente, aggiungere a ciascun tubo etichettato HKG due microlitri della S-S-D-N-A diluita, 11,8 microlitri di acqua, 23 microlitri di mix master e 9,2 microlitri del corretto set di primer e sonda 20 XHKG, quindi vortexare e centrifugare brevemente. Dopo aver preparato i campioni e il controllo positivo di cDNA, aggiungere a ciascun tubo del campione e del controllo positivo da 24 microlitri 78,8 microlitri di mix master e 54,8 microlitri di acqua. Per preparare le miscele per i pozzetti degli standard e per il controllo senza template (NTC) da aggiungere a una piastra per saggio a 384 pozzetti pre-essiccata, aggiungere 165 microlitri di acqua a 275 microlitri di mix master in un tubo da 1,5 millilitro per la miscela del pozzetto NTC e 52,5 microlitri di acqua a 52,5 microlitri di mix master in un tubo da 1,5 millilitro.Rimuovere una piastra per saggi a 384 pozzetti precedentemente preparata e essiccata dal refrigeratore a quattro gradi Celsius e centrifugare a 700 ×g per un minuto. Con la pipetta elettronica multicanale da 30 microlitri, dispensare 7,5 microlitri di NTC. Mescolare bene in ogni pozzetto contenente NTC.Dispensare sei microlitri della miscela di standard nel pozzetto e 1,5 microlitri dello standard in ciascun pozzetto di standard. Successivamente, dispensare 7,5 microlitri del campione nei pozzetti designati utilizzando una pipetta multicanale elettronica da 12,5 microlitri. Dopo aver sigillato la piastra con pellicola adesiva ottica e averla centrifugata a 700 ×g per un minuto, dispensare 2,5 microlitri delle miscele di primer e sonda HKG nei pozzetti designati; quindi, agitare la piastra sigillata da 384 pozzetti nel mescolatore vortex a 2.600 giri/min per due minuti e centrifugare a 700 ×g per cinque minuti.Infine, posizionare la piastra sigillata nella macchina Q-R-T-P-C-R. Aprire il modello per la disposizione del saggio e utilizzare le seguenti condizioni di reazione. Avviare il ciclo, esportare e analizzare i dati secondo il protocollo descritto nel testo; come mostrato in questa figura, le firme di espressione dell'interferone di tipo umano uno e tre sono state analizzate in cellule mononucleate del sangue periferico o pBMC provenienti da sei donatori stimolati con ligandi dei recettori di tipo Toll.I dati sono presentati come grafici radar in scala logaritmica utilizzando due metodi di analisi, inclusi il valore CQ assoluto normalizzato rispetto al gene di controllo e il numero di copie del template per microgrammo di RNA totale. I dati mostrano che le firme di espressione dell'interferone umano indotte da agonisti del TLR sono firme di espressione specifiche per ligando degli interferoni di tipo uno e tre in Resus Maccas. Erano inoltre specifiche per il ligando del TLR in questo esperimento; PBMC provenienti da tre donatori sono stati stimolati con tre ligandi per tre ore.L'espressione dei sottotipi di interferone nelle cellule non stimolate al basale era bassa, come mostrato qui. Un numero limitato di sottotipi di interferone alfa è stato espresso in risposta a LPS e poly ic. Al contrario, l'espressione di interferone in risposta all'imiquimod era elevata e l'espressione dei sottotipi era ampia, comprendendo interferone beta e interferone.Lambda uno è stato potenziato da tutti e tre gli agonisti del TLR. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come preparare, eseguire e analizzare piastre saggio 3D a quattro pozzetti per l'analisi ad alto rendimento di un gruppo di geni altamente simili, come i sottotipi di interferone di tipo uno e tre.

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