Name: 고처리량/고함량 스크리닝에 적용된 세포내 진균의 정량화를 위한 현미경 표티픽 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-17T13:45:00.000+00:00
Duration: 15 min 28 s
Description: 배우세요 고처리량 스크리닝을 위한 표현형 분석법으로 Mycobacterium tuberculosis의 세포내 복제를 정량화하는 방법입니다. 자동화된 공초점 현미경을 활용하여 형광 표지된 병원균을 검출하고 치료제 후보 물질을 선별할 수 있습니다.

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이 작업에 대한 재정 지원은 유럽 공동체 (ERC-STG INTRACELLTB 그랜트 n ° 260901, MM4TB 그랜트 n ° 260872), 기관 국립 드 레체쉬, 페더 (12001407 (D-AL) Equipex Imaginex BioMed), 및 지역 노르드 파스 칼레에 의해 제공되었다. 우리는 플랫폼 BICeL에서 가스파드 딜로이슨, 엘리자베스 베르크마이스터, 안토니노 본지오반니, 프랭크 라폰트의 기술적 도움을 감사하게 인정합니다.

1. 높은 처리량 게놈 와이드 siRNA 스크리닝
인간 유형-II 폐렴구체 모델 A549 세포주에서 수행된 스크리닝은 Mtb H37Rv를 통해 바이러스 성형 단백질(GFP)을 발현하는 감염 시 수행하였다. 이 절차는 그림 1A에설명되어 있습니다.
<ol><li>4 μM의 농도에 도달하기 위해 1 x siRNA 버퍼로 어머니 판 (96 웰 플레이트)에 저장된 말린 siRNA 라이브러리를 다시 중단한 다음 혼합물의 10 μl을 384 웰 딸 플레이트 (딸 플레이트 1)로 옮길 수 있습니다.</li>
	<li>딸 플레이트 1에 1x siRNA 버퍼 10 μl을 추가하여 siRNA를 2배 희석시 합니다. siRNA 재서스펜션 후, 플레이트는 벗겨질 수 있는 알루미늄 씰로 밀봉되어 -20°C이상 에서 최소 6개월 및 최대 2-3년까지 보관할 수 있지만, 저장 시간은 siRNA 라이브러리 제조업체의 권장 사항에 따라 달라질 수 있습니다.</li>
	<li>딸 접시 1에 siRNAs를 희석하여 딸 플레이트 2에 넣고 500 nM의 농도에 도달하십시오. siRNA 재서스펜션 후, 플레이트는 벗겨질 수 있는 알루미늄 씰로 밀봉되어 -20°C이상 에서 최소 6개월 및 최대 2-3년까지 보관할 수 있지만, 저장 시간은 siRNA 라이브러리 제조업체의 권장 사항에 따라 달라질 수 있습니다.</li>
	<li>사용하기 전에 실온에서 딸 플레이트 2를 해동하십시오.</li>
	<li>딸 플레이트 2에서 siRNA2.5 μl을 가져 와서 384 웰 분석 플레이트에 넣습니다.</li>
	<li>1.5단계에서 동일한 384-음분석 플레이트에서 각각의 우물에 2.5 μl 음수 및 양수 제어 siRNA를 추가합니다.</li>
	<li>1x D-PBS에서 트랜스페션 시약을 희석하여 각 우물에서 0.1 μl 형질 전환 시약을 제공하고 5분 동안 실온에서 희석된 형질 방출 용액을 미리 배양할 수 있는 충분한 용액을 산출합니다.</li>
	<li>형질 전환 시약/PBS 용액 혼합물의 7.5 μl을 분석 판에 각각 잘 넣고 실온에서 30분 동안 배양합니다.</li>
	<li>10% 태아 소 혈청(FBS)으로 보충된 RPMI 1640 배지에서 중단된 A549 세포(1,500세포/웰)의 40μl을 추가합니다. 5%CO2를함유하는 대기에서 37°C에서 3일 배양 기간 동안 세포를 유지한다. 이 세포는 매 24 시간 마다 분할, 따라서 대략 12,000 세포는 경질 후에 3 일 우물에 있습니다.</li>
	<li>2주 된 GFP 표현 Mtb H37Rv 문화를 D-PBS(MgCl2 및 CaCl2무료)로 씻어 내고 원심분리를 5분 동안 4,000 x g로 씻어 내고 세척을 폐기합니다. 이 단계를 3배 반복합니다(GFP-Mtb H37Rv 문화 조건의 경우 프로토콜 3참조).</li>
	<li>세균성 골을 10 ml의 RPMI 1640 배지에 10% FBS로 보충하고 세균성 골체가 퇴적물을 허용하도록 실온에서 1 시간 동안 데캔트를 보충합니다.</li>
	<li>세균성 상체를 수집하고 OD600(OD 600은 0.6-0.8 사이여야 함)과 GFP-형광(RFU 값) 및 마이크로플레이트 판독기를 사용하여 세균 농도를 결정한다. 동일한 조건에서 제조된 다른 배양에 대한 실험 전에 생성된 RFU 값 = f(CFU 값)를 표시하는 참조 회귀 선을 사용하여 서스펜션의 티터를 계산한다. 감염(MOI)의 복합성에 해당하는 2.4 x 106 박테리아/ml를 함유한 세균현탁액을 준비한다.</li>
	<li>384-음 분석 플레이트의 배지를 제거하고 갓 준비된 세균 현탁액 25 μl을 추가합니다.</li>
	<li>384-음분석 플레이트를 37°C에서 5%CO2를함유한 대기시 5시간 동안 배양한다.</li>
	<li>매체를 제거하고 10% FBS 3x로 보충된 RPMI 배지로 세포를 부드럽게 세척합니다.</li>
	<li>남은 세포외 세균을 죽이기 위해, 5%CO2를함유한 대기시 37°C에서 37°C에서 50 μg/ml를 함유한 신선한 RPMI-FBS 배지50 μl로 세포를 치료한다.</li>
	<li>중간 함유 아미카신을 제거하고 10% FBS로 보충된 신선한 RPMI 배지 50 μl을 추가합니다. 384-잘 분석 플레이트를 37°C에서 5일 동안 5%CO2를함유한 대기권에서 배양한다.</li>
	<li>이미지 수집 에 앞서 PBS (최종 농도 5 μg /ml)에 갓 준비 된 30 μg /ml의 10 μl을 추가하고 37 ° C에서 10 분 동안 배양하십시오.</li>
	<li>플레이트를 자동 공초점 현미경으로 로드합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>노출 매개 변수를 설정합니다. 방출 필터 450 nm및 GFP 형광을 이용한 발산 레이저 405 nm를 사용하여 DAPI 형광을 기록하여 방출 필터 520 nm를 가진 엑아시 레이저 488 nm를 사용한다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-2highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>획득할 각 웰의 우물과 필드를 선택하여 레이아웃 및 하위 레이아웃 매개 변수라고 합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-2highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>1.20 및 1.21 단계의 매개 변수를 사용하여 실험 파일을 생성하고 자동 수집을 실행합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-2highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>이미지를 원격 서버로 전송합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_5.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_5highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 이미지를 평가합니다. 픽셀 강도 특성알고리즘(도 4A)을사용하여 GFP 채널로부터 핵 검출 알고리즘 및 세균 영역을 사용하여 DAPI 채널에서 세포 핵을 검출한다.</li>
</ol>참고: 이 프로토콜은 세포 내 Mtb 성장에 대한 유전자 침묵의 효과를 연구하도록 최적화되어 있습니다. Mtb는 최적의 조건에서 매 20 시간마다 분할 느린 성장 박테리아입니다. 감염 후 5 일 후 세포 외 Mtb의 양은 세포 용해가 없는 상태에서 여전히 낮으며 분석의 품질에 영향을 미치지 않았습니다. 이 프로토콜은 광범위하게 방출되고 새로운 세포를 감염시킬 수 있는 Mycobacteria smegmatis 및 Escherichia coli 같이 급속한 성장 박테리아를 사용하여 siRNA 스크린에 적응하기 위하여 항생제 처리 및 잠복기 시간의 기간에, 최적화되어야 합니다.
2. 높은 처리량 화합물 스크리닝
Mtb H37Rv 감염 호스트 세포에 수행 된 스크리닝. 이 절차는 그림 1B에설명되어 있습니다.
<ol><li>DMSO 100%에서 용해된 화합물 라이브러리를 포함하는 384웰의 어머니 판을 해동한다. 10% FBS로 보충된 RPMI 1640 배지의 10 μl을 포함하는 384웰 딸 플레이트에서 화합물의 0.5 μl을 전송한다.</li>
	<li>2주 된 GFP 표현 Mtb H37Rv 문화를 D-PBS(MgCl2 및 CaCl2무료)로 씻어 내고 원심분리를 5분 동안 4,000 x g로 씻어 내고 세척을 폐기합니다. 이 단계를 3배 반복합니다(GFP-Mtb H37Rv 문화 조건의 경우 프로토콜 3참조).</li>
	<li>세균성 골을 10 ml의 RPMI 1640 배지에 10% FBS로 보충하고 세균성 골체가 퇴적물을 허용하도록 실온에서 1 시간 동안 데캔트를 보충합니다.</li>
	<li>세균상수체를 수집하고 마이크로플레이트 판독기를 사용하여 OD600(OD 600 은 0.6-0.8 사이여야 함)과 GFP 형광(RFU 값) 측정한다. 실험 전에 생성된 RFU 값 = f(CFU 값)를 표시하는 참조 회귀 선을 사용하여 서스펜션의 티터를 계산합니다. 일반적인 농도는 1 x 108 박테리아/ml입니다.</li>
	<li>수확 6 일 된 기본 인간 대식세포에서 4 x 105 세포/ml RPMI 1640 배지10% 태아 소 혈청 (FBS) 및 50 ng/ml 재조합 인간 M-CSF (인간 말초 혈액 모노사이클 세포 정화 및 대식세포 분화의 경우 프로토콜 4 참조).</li>
	<li>1-5에 이르는 다른 MOI에서 원액1차 세포를 37°C에서 2시간 동안 90rpm에서 가벼운 흔들림으로 현탁액하여 다른 MOI에서 바실리로 배양한다.</li>
	<li>감염된 세포를 350 x g에서 원심분리로 세척하여 세포외 박테리아를 제거합니다. 각 원심 분리 단계 후, 10% FBS로 보충된 RPMI 1640 배지에서 펠릿을 다시 놓습니다. 이 단계를 2배 반복합니다.</li>
	<li>50 μg/ml에서 10% FBS 및 아키카신으로 보충된 RPMI 1640 배지에서 감염된 세포를 중단하고 37°C에서 1시간 동안 가벼운 흔들림으로 현탁액을 배양한다.</li>
	<li>350 x g에서 원심분리에 의해 아키카신을 함유하는 세포 배양 배지를 제거하고 10% FBS 및 50 ng/ml 재조합 인간 M-CSF로 보충된 완전한 RPMI 1640 배지로 감염된 세포를 세척한다. 한 번 반복합니다.</li>
	<li>감염된 대식세포 현탁액의 40 μl을 2.1단계에서 동일한 분석 플레이트에 추가하여 이미 화합물 희석제의 10 μl을 함유하고 있습니다. 각 우물에서 DMSO의 최종 농도는 이제 1 %에 도달했습니다.</li>
	<li>5%CO2를함유한 대기에서 37°C에서 5일간 분석플레이트를 배양한다.</li>
	<li>세포가 구형극홍형염으로 살아있는 세포를 얼룩지게 합니다.</li>
	<li>플레이트를 자동 공초점 현미경으로 로드합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>노출 매개 변수를 설정합니다. 방출 필터 690 nm와 GFP 형광을 사용하여 방출 필터 640 nm와 GFP 형광을 사용하여 광적 형광을 기록 520 nm. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_2-2highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>획득할 각 웰의 우물과 필드를 선택하여 레이아웃 및 하위 레이아웃 매개 변수라고 합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_3-2highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>2.14 및 2.15 단계의 매개 변수를 사용하여 실험 파일을 생성하고 자동 수집을 실행합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-1.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-1highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-2.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_4-2highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>이미지를 원격 서버로 전송합니다. <img fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51114/screenshot_5.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51114/screenshot_5highres.jpg" target="_blank">큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.</a></li>
	<li>이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 이미지를 평가합니다. 픽셀 강도 속성알고리즘(그림 4B)을사용하여 GFP 채널에서 픽셀 강도 특성 알고리즘 및 세균 영역을 사용하여 극적 채널에서 셀 영역을 감지합니다.</li>
</ol>참고: 이 프로토콜은 형광 단백질(1개 우물/1 돌연변이)을 표현하는 돌연변이체에 의한 화합물을 대체하여 Mtb 돌연변이 라이브러리 스크리닝에 적용될 수있다(도 1C,브로딘 외 참조) 4).형광 돌연변이는 우물에서 먼저 시드된다 (잘 당 세균 현탁액의 20 μl). 박테리아는 그 때 세포 현탁액의 30 μl에 의해 복구됩니다. 원심분리후 350 x g에서 1분 동안, 플레이트는 5%CO2를함유하는 대기에서 37°C로 배양된다. 인큐베이션 시간 및 MOI는 분석에 의존합니다. 예를 들어, phagosome 산성화와 같은 초기 세포 이벤트의 시각화를 위해, 세포는 1-20에서 배열하는 MOI를 가진 2 시간 동안 감염될 수 있다. 리소솜은 리소트래커 염료를 2μM에서 1.5시간 동안 37°C에서 37°C로염색한 후 10% 포름알린 또는 4%의 파라포름데히드(PFA)로 고정된다. 공초점 이미지는 리소좀 검출 및 세포극 지역화4에적합한 알고리즘을 특징으로 하는 이미지 분석 스크립트를 사용하여 획득및 최종 적으로 분석된다.
3. 진균 결핵 H37Rv (GFP-H37Rv) 문화 조건을 표현하는 녹색 형광 단백질
장기 보관을 위해 GFP-H37Rv는 D-PBS(유리병당 약 1 x 108 균주)로 동결되었습니다.
<ol><li>미들브룩 OADC 농축 10%, 글리세롤 0.5%, 트웬-80 0.05%, 하이그로마이신 B(50 μg/ml)로 보충된 7H9 국물 중형 50ml를 함유한 Erlenmeyer 플라스크에서 GFP-H37Rv의 냉동 육수 바이알 1개를 재차 중단합니다.</li>
	<li>37 °C에서 8 일 동안 배양하십시오.</li>
	<li>GFP-H37Rv 배양의 OD600을 측정합니다.</li>
	<li>GFP-H37Rv 배양을 희석하여 미들브룩 OADC 농축10%, 글리세롤 0.5%, 트위엔-80 0.05%, 하이그로미신 B(50 μg/ml)로 보충된 신선한 7H9 국물 배지에서 OD 600 = 0.1을 얻습니다.</li>
	<li>GFP-H37Rv를 37°C에서 37°C에서 8일 더 배양한 후 분석에 사용한다.</li>
</ol>4. 전신 혈액 또는 버피 코트 준비에서 인간의 말초 혈액 단화 세포 정화
<ol><li>1%의 FBS를 함유한 1x D-PBS(MgCl 2 및 CaCl2에서 무료)로 혈액 파우치2x를희석시합니다.</li>
	<li>Ficoll 밀도 그라데이션 원심분리에 의해 단핵구를 400 x g에서 20분 동안 분리합니다.</li>
	<li>격리된 단핵구를 수집합니다.</li>
	<li>1x D-PBS(MgCl2 및 CaCl2에서무료)로 모노사이클 3x를 세척하여 실온에서 10분 동안 400 x g에서 원심분리로 1% FBS를 함유하고 있습니다.</li>
	<li>세포를 최대 1 x 107 셀/ml로 농축합니다.</li>
	<li>제조업체의 프로토콜에 따라 CD14 자성 구슬을 사용하여 단백구를 정화합니다(재료 참조).</li>
	<li>CD14-단핵구 정제 후, RPMI 1640에서 1.5 x 106 셀/ml의 세포를 종자 10% FBS와 40 ng/ml의 인간 대식세포 콜로니 자극 인자(hM-CSF)를 보완하고 5%CO2를함유한 대기 중 37°C에서 4일 동안 배양하였다.</li>
	<li>4일 후 신선한 RPMI 1640으로 배지를 10% FBS와 40 ng/mlhM-CSF로 보완하고 5%CO2를함유한 대기 중 37°C에서 2일간 배양하였다.</li>
	<li>6 일 후, 세포는 분석에 사용할 수 있습니다.</li>
</ol>

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<li>Carralot, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+high-throughput+siRNA+transfection+in+raw+264.7+macrophages%3A+a+case+study+for+optimization+procedure%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">Automated high-throughput siRNA transfection in raw 264.7 macrophages: a case study for optimization procedure.</a> J. Biomol. Screen. 14, 151-160 (2009).</li>
<li>Zhang, X. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Illustration+of+SSMD%2C+z+score%2C+SSMD%2A%2C+z%2A+score%2C+and+t+statistic+for+hit+selection+in+RNAi+high-throughput+screens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">Illustration of SSMD, z score, SSMD*, z* score, and t statistic for hit selection in RNAi high-throughput screens.</a> J. Biomol. Screen. 16, 775-785 (2011).</li>
<li>Song, O. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confocal-based+method+for+quantification+of+diffusion+kinetics+in+microwell+plates+and+its+application+for+identifying+a+rapid+mixing+method+for+high-content%2Fthroughput+screening%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">Confocal-based method for quantification of diffusion kinetics in microwell plates and its application for identifying a rapid mixing method for high-content/throughput screening.</a> J. Biomol. Screen. 15, 138-147 (2010).</li>
</ol>

이해 상충이 선언되지 않았습니다.

우리는 여기에 GFP 표현 Mtb H37Rv 균주를 사용하여 표현 형광 숙주 세포를 감염시키는 표현적 분석에 필요한 방법을 설명, 이는 높은 함량 / 높은 처리량 스크린에 적합하게. 이 프로토콜은 광범위한 화합물, 형광 프로브 및 Mtb 돌연변이체에 적용될 수 있습니다. 위에서 설명한 각 프로토콜에 대해 이미지 수집 전에 고정 및 면역 라벨링 단계를 수행할 수 있습니다. 우리는 이미지를 얻기 위해 20X (NA 0.70) 또는 60X (NA 1.2) 물 렌즈가 장착 된 자동 형광 공초점 현미경을 사용합니다. 공초점 현미경에는 405, 488, 561 및 640 nm 흥분 레이저가 장착되어 있습니다. 방출된 형광은 450-690 nm에 이르는 검출 파장을 덮는 필터 세트와 관련된 3대의 카메라를 사용하여 캡처됩니다. 현미경 흥분 및 방출 설정의 조정은 각 실험에 사용된 염료 또는 불소크롬의 모형에 달려 있다는 것을 주의하는 것이 중요합니다. 페노티픽 어세스의 경우, DAPI 또는 Hoechst는 일...

지난 몇 년 동안 보고된 신흥 및 재발하는 전염하는 병원균 중, 진균 결핵(Mtb)은 2011년에 140만 명의 사망자와 870만 건의 새로운 감염을 담당하는 두드러진 장소를 보유하고 있습니다(글로벌 결핵 보고서 2012, www.who.int/topics/tuberculosis/en/). 다약물 치료의 가용성에도 불구하고, 감염된 사람들의 수는 여전히 증가하고 다중 약물 내성 (MDR) 뿐만 아니라 광범위하게 약물 내성 (XDR) Mtb는 빠르게 전 세계적으로확산1. 더욱이, Mtb 항원의 존재를 고려할 때, 전 세계 인구의 3분의 1이 Mtb에 의해 잠잠하게 감염된 것으로 간주된다는 것이 분명합니다. 따라서 Mtb과 싸우는 새로운 수단이 절실히 필요합니다. 이러한 맥락에서, 우리는 자동화된 공초점 형광 현미경3에의하여 숙주 세포로 Mtb 침입 및 곱셈을 감시에 의존하는 체외 시각적 표현체 분석법을 개발하였다. 384웰 마이크로티터 플레이트에서 자동 이미지 수집 및 분석과 결합하여 분석체의 적응은 화합물, siRNAs 및 세균 돌연변이의 중간 규모의 라이브러리의 고함량/고처리량 스크리닝(HC/HTS)을 허용했습니다. 이 표현성 분석에 게놈 넓은 RNAi 라이브러리의 검사는 따라서 Mtb 인신 매매 및 세포 내 복제에 관련된 주요 호스트 요인뿐만 아니라 결핵 바실러스에 의해 악용 호스트 경로의 용해를 가능하게했다. 이 특정 현상 분석의 또 다른 적응은 Mtb 내 phagosomal 지속성에 필수적인 세균인의 식별을 위한 것이었습니다. 예를 들어, phagosome 성숙의 체포는 대식세포에서 Mtb의 생존 그리고 복제를 용이하게 하는 주요 기계장치 의 한으로 간주됩니다. 형광 표지산산구획에서 Mtb 녹아웃 돌연변이체의 세포외 국소화 모니터링은 생존 과정에 관여하는 세균 유전자의 식별을허용4. 마지막으로, Mtb의 고함량 이미징은 세포내 세균 성장3과같은 다양한 현상을 억제하기 위한 약물 효율을 정량화하는 우수한 방법을 제공한다. 전부, 높은 처리량 표현분석의 이 모형은 결핵에 대하여 약 발견을 가속화하고 이러한 다른 접근에 의해 집합된 데이터는 Mtb에의해 발휘된 호스트 조작의 더 나은 이해에 기여합니다.

<table><tbody><tr><td>&마이크로; clear-plate black, 384-well</td><td>Greiner Bio-One</td><td>781091</td><td>127.8/86/15 MM with Lid, TC treated</td></tr><tr><td>CellCarrier 384-well plate</td><td>PerkinElmer</td><td>6007550</td><td>Black, Clear Bottom, with Lid, TC treated</td></tr><tr><td>V-bottom white, 384-well plate</td><td>Greiner Bio-One</td><td>781280</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>밀봉 테이프, 통기성, 멸균</td><td>Corning</td><td>3345</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Lipofectamine RNAiMax</td><td>Life Technologies</td><td>13778150</td><td>Transfection 시약</td></tr><tr><td>Dimethyl sulfoxide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34943</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>RPMI 1640 + GlutaMAX-I</td><td>Life Technologies</td><td>61870-010</td><td>세포 배양 매체</td></tr><tr><td>D-PBS 1x [-]MgCl2/[-]CaCl2</td><td>Life Technologies</td><td>14190-094</td><td>Dulbecco&#039; s 인산염 살린 완충액</td></tr><tr><td>D-PBS 1x [+]MgCl2/[+]CaCl2</td><td>Life Technologies</td><td>14190-091</td><td>Dulbecco&#039; s 인산염 살린 완충액</td></tr><tr><td>태아 소 혈청</td><td>Life Technologies</td><td>2610040-79</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Ficoll Paque PLUS</td><td>Dutscher</td><td>17-1440-03</td><td>Ficoll for Peripherical Blood Monocyte Cells Purification</td></tr><tr><td>CD14 MicroBeads, human</td><td>Miltenyi</td><td>130-050-201</td><td>CD14+ monocytes</td></tr><tr><td>human M-CSF의 정제, premium gr. (1000 &mu; g)</td><td>Miltenyi</td><td>130-096-493</td><td>대식세포 콜로니 자극 인자</td></tr><tr><td>LS 컬럼</td><td>Miltenyi</td><td>130-042-401</td><td>CD14+ 단핵구 격리용 컬럼</td></tr><tr><td>Tween 80</td><td>Euromedex</td><td>2002-A</td><td>Mycobacteria 배양</td></tr><tr><td>글리세롤 고순도&nbsp;</td><td>Euromedex</td><td>50405-EX</td><td>마이코박테리아 배양</td></tr><tr><td>&nbsp; Middlebrook OADC 농축</td><td>Becton-Dickinson</td><td>211886</td><td>Mycobacteria 배양</td></tr><tr><td>7H9</td><td>Becton-Dickinson</td><td>W1701P</td><td>Mycobacteria 배양</td></tr><tr><td>Versene 1x</td><td>Life Technologies</td><td>15040033</td><td>비효소 세포 해리 용액</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Life Technologies</td><td>D1306</td><td>핵 염료</td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Life Technologies</td><td>H3570</td><td>핵 염료</td></tr><tr><td>Syto60</td><td>Life Technologies</td><td>S11342</td><td>핵/세포질 염료</td></tr><tr><td>포르말린</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT5014</td><td>세포 고정 용액</td></tr><tr><td>siRNA 표적 Dectin-1</td><td>Santa-Cruz</td><td>sc-63276</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>*siGenome* 비표적 siRNA 풀&nbsp;</td><td>다르마콘</td><td>D-001206-14</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>리팜피신</td><td>시그마-알드리치</td><td>R3501</td><td>항생제</td></tr><tr><td>이소니아지드(INH)</td><td>시그마-알드리치</td><td>I3377-50G</td><td>항생제</td></tr><tr><td>하이그로마이신 B</td><td>Life Technologies</td><td>10687-010</td><td>항생제</td></tr><tr><td>아미카신</td><td>시그마-알드리치</td><td>A1774</td><td>항생제</td></tr><tr><td>자동 컨포칼 현미경 OPERA</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>이미지 획득</td></tr><tr><td>콜럼버스 2.3.1 서버 데이터베이스</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>데이터 전송, 저장 및 분석</td></tr><tr><td>Acapella 2.6 소프트웨어</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>이미지 기반 분석</td></tr><tr><td>GraphPad Prism5 소프트웨어</td><td>GraphPad</td><td></td><td>통계 분석</td></tr><tr><td>Excel 2010</td><td>Microsoft</td><td></td><td>통계 분석</td></tr></tbody></table>

고처리량/고함량 스크리닝에 적용된 세포내 진균의 정량화를 위한 현미경 표티픽 분석

A Microscopic Phenotypic Assay for the Quantification of Intracellular Mycobacteria Adapted for High-throughput/High-content Screening

치료와 백신의 가용성에도 불구하고 결핵 (TB)은 세계에서 가장 치명적이고 광범위한 세균 감염 중 하나입니다. 수십 년 이후, 다중 및 광범위 하 게 약물 저항 하는 긴장의 갑작스런 버스트는 결핵의 제어에 대 한 심각한 위협. 따라서 결핵, 진균 결핵(Mtb)의 원인제에 중요한 새로운 표적과 경로를 식별하고 결핵 치료제가 될 수있는 새로운 화학물질을 찾는 것이 필수적이다. 한 가지 접근법은 건초 더미에서 바늘을 검색 할 수 있도록 대규모 라이브러리의 유전 및 화학 적 스크린에 적합한 방법을 설정하는 것입니다. 이를 위해, 우리는 자동 공초점 현미경 검사를 사용하여 형광 표지 숙주 세포 내에서 형광 표지 Mtb의 검출에 의존하는 phenotypic 분석법을 개발했습니다. 이러한 시험관 내 분석법은 Mtb의 식민지화 공정을 숙주로 정량화할 수 있으며, siRNA-, 화학 화합물 또는 Mtb 돌연변이 라이브러리의 스크린에 적합한 384웰 마이크로플레이트 포맷에 최적화되었다. 그런 다음 이미지는 다중 파라메트릭 분석을 위해 처리되며, 이는 숙주 세포 내의 Mtb의 발병기에서 추론을 제공합니다.

높은 처리량 게놈 와이드 siRNA 스크리닝
Mtb는 체외뿐만 아니라 여러 가지 다른 폐 상피 세포에서 면역 세포를 식민지화 할 수 있습니다. 예를 들어, Mtb는인간 형 II 폐렴구균5-7의모델로 일반적으로 사용되는 A549 상피 세포를 감염시키고 손상시킬 수 있다. Dectin-1은 A549 세포에서 세포 내 진균 성장에 Mtb uptake, 프로염증 반응 및 항균 효과에 관여하는 숙주 세포 수용체로 보고되었다8. 프로토콜 1에 기술된 siRNA 상태는 침묵 효율의 85%를 이끌어 냈습니다 (데이터는 도시되지 않음). siRNA를 가진 침묵 Dectin-1 발현은 A549 세포에 있는 세포내 진균 량의 감소로 이끌어 냈습니다. 실제로, 3일간의 침묵과 5일간의 감염 후, 감염된 세포의 백분율은 비표적 스크램블 siRNA(그림2A 및 2...

여기서는 작은 간섭 합성 RNA(siRNA), 화학 화합물 및 진균 결핵 돌연변이 라이브러리의 고처리량/고함량 스크린에 적용되는 표현성 분석을 설명합니다. 이 방법은 자동 공초점 현미경 검사를 사용하여 형광으로 표지된 숙주 세포 내의 형광표지 진균 결핵의 검출에 의존합니다.

Despite the availability of therapy and vaccine, tuberculosis (TB) remains one of the most deadly and widespread bacterial infections in the world. Since ...

본 실험 절차의 전반적인 목적은 호스트 유전자 사이런싱과 같은 표현형 조절제나 소분자가 mycobacterium tuberculosis의 세포 내 복제에 미치는 영향을 측정하는 것입니다. 이를 위해 먼저 384-웰 플레이트에 소분자를 분주하거나, siRNA를 세포와 트랜스펙션하여 복합체를 형성합니다. 다음 단계로 녹색 형광 단백질을 발현하는 mycobacterium tuberculosis(GFP-Mtb)를 세포에 감염시킨 후, 해당 세포를 소분자가 포함된 웰에 첨가하고 마이크로플레이트를 5일 동안 배양합니다.RNAi 접근법의 경우, RNAi 형질전환 복합체가 포함된 웰에 세포를 추가합니다. 마이크로플레이트를 3일 동안 배양한 후, G-F-P-M-T-B를 발현하는 mycobacterium tuberculosis로 세포를 감염시킵니다. 세포를 염색한 후, 마지막 단계로 자동 공초점 현미경을 사용하여 플레이트를 판독합니다.최종적으로 자동 형광 현미경 관찰 후 이미지 기반 분석을 통해 G-F-P-M-T-V의 세포 내 성장 변화를 측정합니다. 기존의 콜로니 형성 단위(colony forming unit) 측정법과 같은 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 긴 배양 기간을 단축하고 처리량을 높일 수 있다는 점입니다. 이 절차의 시연은 Christophe Keval 또는 SONG과 제 연구팀의 박사후 연구원 3명이 진행합니다.siRNA 라이브러리 스크리닝 및 화합물 라이브러리 스크리닝 프로토콜에는 2주 된 GFP 발현 MYCOBACTERIUM tuberculosis H 37 RV 배양액을 사용합니다. GFP-MTB 세균 현탁액을 준비하려면 먼저 배양액을 4,000 ×g에서 5분 동안 원심 분리하고 상층액을 제거합니다. 배양액을 DPBS에 재현탁하고 이와 동일한 방식으로 다시 원심 분리합니다. DPBS로 배양액을 3회 세척합니다.세 번째 세척 후, 상층액을 버리고 세균 펠렛을 10% FBS가 포함된 10 mL의 RPMI 1640 배지에 다시 현탁합니다. 세균 응집체가 침전될 수 있도록 현탁액을 실온에서 1시간 동안 둡니다. 세균 상층액을 수집하고 600 nm에서 OD 및 GFP 형광을 측정합니다.마이크로플레이트 리더를 사용하여 박테리아 농도를 측정했을 때, 600 nm에서의 OD 값은 0.6에서 0.8 사이여야 합니다. 동일한 조건으로 준비된 다른 배양액을 사용하여 실험 전 작성한 CFU 값에 따른 RFU 값의 기준 회귀선을 이용하여 현탁액의 역가를 계산하십시오. 일반적인 농도는 mL당 1×10⁸ CFU입니다.96-well 마더 플레이트에 보관된 건조된 siRNA 라이브러리를 1X siRNA 버퍼를 사용하여 2 µM 농도로 재현탁하여 이 절차를 시작합니다. 이 혼합액 10 µL를 384-well 도터 플레이트의 각 웰로 옮깁니다. 도터 플레이트의 각 웰에서 2.5 µL의 siRNA를 384-well 분석 플레이트의 동일한 분석 플레이트로 옮깁니다.음성 및 양성 대조군 iRNA를 각각의 웰에 2.5 µL씩 첨가합니다. 딸 플레이트를 즉시 사용하지 않을 경우, 박리가 가능한 알루미늄 씰로 밀봉하십시오. 밀봉된 플레이트는 iRNA의 종류에 따라 최소 6개월에서 최대 2~3년까지 -20 °C에서 보관할 수 있습니다.라이브러리 제조사의 권장 사항입니다. 트랜스펙션 시약을 1X DPBS에 희석하여 각 웰당 0.1 µL씩 제공할 수 있는 충분한 양의 용액을 준비하십시오. 희석된 트랜스펙션 용액을 실온에서 5분 동안 사전 배양하십시오.희석된 transfection 용액 7.5 µL를 384-well assay plate의 각 웰에 추가하고, 10% fetal bovine serum이 보충된 RPMI 1640 배지에 부유된 인간 2형 폐포세포인 A549 세포 40 µL가 담긴 각 웰에서 실온으로 30분 동안 배양합니다. 세포를 5% carbon dioxide가 포함된 분위기의 37 °C에서 3일 동안 배양하며 유지합니다. 이 세포들은 24시간마다 분열하므로, transfection 3일 후에는 각 웰에 약 12,000개의 세포가 존재하게 됩니다.5 49 세포에 si. RNA를 트랜스펙션한 3일 후에, 이전에 설명한 바와 같이 MTBH 37 RV GFP 박테리아 현탁액을 준비합니다.현탁액은 mL당 2.4 × 10⁶마리의 세균을 포함해야 하며, 이는 감염 다중도(MOI) 5에 해당합니다. 384웰 분석 플레이트의 배지를 제거하고 웰당 25 µL의 세균 현탁액을 첨가합니다. 384웰 분석 플레이트를 5% CO2가 포함된 분위기의 37 °C에서 5시간 동안 배양합니다.5시간 후, 배지를 제거하고 10% FBS가 첨가된 RPMI 배지로 세포를 3회 부드럽게 세척하여 남아있는 세포 외 박테리아를 제거합니다. 각 웰의 세포에 50 microliters를 처리합니다.50 µg/mL의 Amikacin이 포함된 신선한 R-P-M-I-F-B-S 배지를 준비합니다. 5% CO2 분위기의 37 °C 배양기에서 1시간 동안 배양합니다. 마지막으로 Amikacin이 포함된 배지를 제거하고, 10% FBS가 보충된 신선한 RPMI 배지 50 µL를 웰당 추가합니다.공초점 현미경으로 스크리닝하기 전, 어세이 플레이트를 5% carbon dioxide가 포함된 대기 조건의 37 °C에서 5일 동안 배양합니다. 이 절차를 시작하려면 100% DMSO에 용해된 화합물 라이브러리가 들어 있는 384-well 마더 플레이트를 실온에서 해동하십시오. 마더 플레이트에서 화합물 0.5 µL를 웰당 10 µL의 10% FPS가 보충된 RPMI 1640 배지가 들어 있는 384-well 도터 플레이트로 옮깁니다. 그 다음, 6일 된 일차 인간 대식세포를 RPMI 1640에서 4 × 10⁵ cells/mL 농도로 수확합니다.10% FPS와 50 ng/mL의 재조합 인간 MCSF가 보충된 배지를 사용합니다. 희석된 일차 세포를 1에서 5 사이의 다양한 MOI 농도의 박테리아와 함께 현탁액 상태로, 37 °C에서 90 RPM으로 가볍게 흔들어주며 2시간 동안 배양합니다. 원심분리기를 이용해 350 ×g에서 5분간 감염된 세포를 세척하여 세포 외 박테리아를 제거합니다.펠릿을 10% FPS가 첨가된 RPMI 1640 배지에 재현탁한 후 원심분리합니다. 이 과정을 반복하며, 최종 세척 후 두 번 더 세척합니다.10% FBS와 50 µg/mL Amikacin이 첨가된 RPMI 1640 배지에 감염된 세포를 재현탁합니다. 현탁액을 37 °C에서 약하게 흔들어주며 1시간 동안 배양한 후, 350 ×g에서 5분간 원심분리합니다. Amikacin이 포함된 배지를 제거하고 감염된 세포를 완전 RPMI 1640으로 세척합니다.10% FBS와 50 ng/mL의 재조합 인간 MCSF가 첨가된 배지입니다. 이 세척 과정을 한 번 더 반복하십시오.이전에 준비한 384-웰 분석 플레이트(이미 화합물 희석액 10 µL가 포함되어 있음)의 각 웰에 감염된 대식세포 현탁액 40 µL를 첨가합니다. 이제 각 웰 내 DMSO의 최종 농도는 1%가 됩니다. SI RNA 라이브러리에 대한 공초점 현미경 스크리닝 전, 분석 플레이트를 5% CO₂ 분위기의 37 °C에서 5일 동안 배양합니다. 이미지 획득 전 스크리닝 단계에서, 분석 플레이트의 각 웰에 PBS로 조제한 30 µg/mL DPI 신선 용액 10 µL를 첨가하고 37 °C에서 10분 동안 배양합니다.화합물 스크리닝을 위해, 이미지 획득 전 살아있는 세포를 세포 투과성 원적색 형광 염료로 37 °C에서 30분 동안 염색합니다. 분석 플레이트를 자동 공초점 현미경에 로드합니다. 노출 파라미터를 설정하고, 405 nm의 여기 레이저와 450 nm의 방출 필터를 사용하여 DPI 형광을 기록합니다.488 nanometers의 들뜸 레이저와 520 nanometers의 방출 필터를 사용하여 GFP 형광을 기록합니다. 획득할 웰과 각 웰 내의 시야를 선택하며, 이를 각각 레이아웃 및 서브 레이아웃이라고 합니다. 설정된 파라미터를 사용하여 실험 파일을 생성하고 자동 획득을 실행합니다.이 사례에서는 동일한 웰과 시야의 서로 다른 이미지 4장을 기록하여 원격 서버로 전송합니다. 그 후, SI RNA 스크리닝을 위해 acapella 2.6 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 이미지를 평가합니다. 각 시야는 두 개의 채널 또는 색상을 포함합니다.박테리아는 녹색으로, 세포는 청색으로 표시됩니다. Nuclei는 핵 검출 알고리즘을 사용하여 DAPI 채널에서 세포핵을 검출하고, 픽셀 강도 특성 알고리즘을 사용하여 GFP 채널에서 박테리아 영역을 검출합니다. 채널을 병합하고 박테리아와 세포가 공유하는 픽셀 수를 계산함으로써 세포 내 박테리아의 양을 정량화합니다.4개 시야의 평균으로 산출된 최종 결과는 총 세균 면적, 총 세포 수, 감염 세포 백분율 및 세포당 세균 면적입니다. 화합물 스크리닝을 위해 각 시야는 세균을 나타내는 녹색과 세포를 나타내는 원적색의 두 가지 채널 또는 색상을 포함합니다. 픽셀 강도 특성 알고리즘을 사용하여 원적색 채널에서는 핵과 세포질로부터 세포 면적을, GFP 채널에서는 세균 면적을 검출합니다.채널을 병합하고 박테리아와 핵이 공통으로 차지하는 픽셀 수를 계산하여 세포 내 박테리아 양을 정량화합니다. 4개 구역의 평균으로 표시되는 최종 결과는 총 박테리아 면적, 총 세포 면적, 세포 내 박테리아의 총 면적, 그리고 총 세포 면적 대비 세포 내 박테리아 면적의 비율입니다. 고처리량 전유전체 siRNA 스크리닝의 대표적인 결과가 여기에 제시되어 있으며, siRNA를 통해 din1의 발현을 억제하면 5.49 세포 내 마이코박테리아 양이 감소하는 것으로 나타났습니다.비표적 siRNA 또는 din1 특이적 siRNA를 transfection하고 GFP를 발현하는 MTB를 5일 동안 감염시킨 5 49 세포의 대표적인 공초점 이미지에서 보는 바와 같이, GFP MTB H37Rv는 녹색으로, 세포는 적색으로 시각화되었습니다. 세포 수와 세포 내 GFP MTB H37Rv 부하량은 이미지 기반 분석 소프트웨어를 사용하여 결정되었습니다.이 그래프는 파란색 원으로 표시된 scramble siRNA의 5회 반복 실험군과 빨간색 원으로 표시된 din one siRNA 군에서 감염된 a 5 49 세포의 백분율을 보여줍니다. 3일간의 유전자 억제와 5일간의 감염 후, din one이 억제된 a 5 49 세포의 감염 세포 백분율은 비표적 scramble siRNA가 형질전환된 세포와 비교하여 절반으로 감소했습니다. scramble 대비 DIN one을 표적으로 하는 siRNA의 샘플 기반 정규화가 Z-score를 정의하는 데 적용되었습니다.표적 DIN 1에 대한 SI의 평균 Z-score는 약 -15로 나타났습니다. 별표 세 개(***)는 P 값이 0.0001 미만임을 나타냅니다. 이러한 결과는 DIN 1이 siRNA의 양성 대조군으로 사용될 수 있음을 시사하며, 고처리량 화합물 스크리닝(high-content compound screening)에서 DIN 1 siRNA와 동일한 표현형을 보이는 MTB 군락 형성 및 폐포세포 관련 기타 새로운 숙주 인자를 발견하기 위한 스크리닝에 활용될 수 있음을 보여줍니다.세포 내 세균 성장으로 본 화합물 효율은 용량 반응 곡선(DRC)을 설정하고 양성 및 음성 대조 화합물에 대해 표준화하여 평가하였습니다. 본 예시에서는 GFP를 발현하는 MTB H37Rv 균주에 감염된 인간 일차 대식세포를 음성 대조군으로 1% DMSO와 함께 배양하거나, 두 가지 참조 화합물인 이소니아지드(INH) 및 리팜피신(RIF)의 농도를 높여가며 함께 배양하였습니다. 대식세포는 적색 형광 염료로 표지되었으며, 녹색은 MTB를 나타냅니다. 감염된 인간 대식세포의 공초점 형광 이미지 분석 결과, 활성 화합물이 숙주 세포 내 MTB의 복제에 영향을 주어 마이코박테리아 부하가 감소하였으며, 이는 세포 내 GFP 신호 면적의 감소와 일치함을 확인하였습니다.세포 내 박테리아 면적과 전체 세포 면적의 비율을 계산한 후, 화합물 농도에 따른 함수로 도식화하여 DRC를 생성하였습니다. 여기에 제시된 그래프는 각각 isid와 rifampicin의 DRC입니다. 화합물의 DRC는 음성 대조군인 1% DMSO와 양성 대조군인 0.1 µg/mL isid의 결과값으로 정규화되었습니다. 이 곡선들을 통해 박테리아 군락 형성을 50% 억제하는 데 필요한 농도와 박테리아 복제를 99% 억제하는 데 필요한 최소 농도를 모두 결정할 수 있습니다.이 기술은 다음과 같이 나누어 총 10시간 동안 수행할 수 있습니다. 세포 형질전환 또는 화합물 준비에 2시간, 세포 감염 및 마이크로플레이트 분주에 6시간, 그리고 이미지 획득 유지에 2시간이 소요됩니다. 이는 8일의 기간에 걸쳐 진행됩니다. Mycobacterium tuberculosis를 다루는 작업은 매우 위험할 수 있으므로, 이 절차를 수행하는 동안 마스크를 포함한 개인 보호 장구 착용과 같은 예방 조치를 항상 취해야 함을 잊지 마십시오.

a-microscopic-phenotypic-assay-for-quantification-intracellular

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

이 동영상은 결핵균(Mtb) 감염에 대한 약물의 효능을 평가하기 위한 분석을 보여줍니다. 생체 내 감염을 모방하는 Mtb/대식세포 응집체를 포함하는 체외 감염 모델이 생성됩니다. 적절한 항생제를 도입하면 약물 농도가 증가하는 박테리아의 생존을 모니터링하기 위해 레수자린 분석을 통해 그 효능을 테스트합니다.

Mycobacterium tuberculosis 감염 모델에 대한 약물 효능을 평가하기 위한 분석

c harcoal agar resazurin assay(CARA)는 복제, 비복제 또는 둘 다인 마이코박테리아에 대한 테스트 에이전트의 활성을 평가하기 위한 반정량, 중간 처리량 방법입니다.  CARA를 사용하면 시간 및 농도에 따른 활성을 신속하게 평가할 수 있으며 CFU(Colony Forming Unit) 분석을 통해 추적할 매개변수를 식별할 수 있습니다.

마이코 박테리아의 세미 양적, 중간 처리량 열거의 숯 한천 레사 주린 분석의 시각화

우리는 세포를, 결핵균에 대해 신규 한 화합물을 발견 타겟팅 및 인스 국물 포유 동물 숙주 세포에 대해 박테리아뿐만 아니라 세포 독성이 증가하는 모듈 높은 처리량 스크리닝 시스템을 개발 하였다.

세포 내 타겟팅 억제제의 효능 및 세포 독성 검사를위한 시스템<em&gt; 결핵균</em

차세대 항결핵 약물을 위한 초기 약물 개발 과정을 개선할 수 있는 새로운 모델과 분석이 매우 바람직합니다. 여기에서는 고처리량 스크리닝에 쉽게 적용할 수 있는 결핵균에 대한 약물 효능을 평가하기 위한 빠르고 저렴한 BSL-2 호환 분석에 대해 설명합니다.

높은 처리량을 지원 분석은 대식 세포 계대에 대한 약물 효능을 평가하기<em&gt; 결핵균</em

세포 내 M. 결핵 성장의 신속하고 효율적인 정량화는 결핵(TB)에 대한 개선된 치료법을 추구하는 데 중요합니다 . 이 프로토콜은 후보 숙주 지시 요법으로 처리된 대식세포에서 Mtb 성장을 정량화하기 위해 자동화된 액체 배양 시스템을 사용하는 브로스 기반 비색 검출 분석을 설명합니다.

결핵에 대한 숙주 유도 요법의 전임상 테스트에 사용하기 위한 자동화된 배양 시스템

이 연구는 박테리아 생존력을 신속하게 평가하기 위해 형광 및 발광을 사용하여 최근에 생성된 이중 리포터 균주를 사용하여 Mycobacterium abscessus 에 대한 고처리량 스크리닝을 위한 분석을 개발했습니다. 이 프로토콜은 이 약물 내성 박테리아에 대한 신약을 스크리닝하려는 연구자들과 관련이 있습니다.

Mycobacteria에 대한 고처리량 약물 스크리닝을 위한 분석 개발

우리는 mycobacteria의 열거에 대한 대안적인 접근 방식을...

Mycobacteria의 가능성을 측정하는 기능 전체 혈액 분석은 리포터 - 진 BCG 또는 M. TB (BCG 태그 사용 럭스 / M. TB 럭스)

감염 THP1 셀과 기생충 - 구조 및 변화...

세포에 붙어 Antileishmanial 검사에 대한 기생충 구조 및 변화 분석<em&gt; Leishmania donovani</emTHP1 인간 급성 백혈병 Monocytic 셀 라인에서&gt; Amastigotes

thermostability 공학 분야에 해당 소설 감독 진화 방법은 bacteriolytic 효소 용으로 개발하고 결과적으로 확인되었습니다. 고온의 부화 후 야생 형 단백질에 비해 무작위 mutagenesis의 한 라운드, 발전 bacteriolytic 효소, PlyC 29C3는 두 번 잔류 활동보다 더 큰 표시 한 후.

내열 Bacteriolytic 효소의 감독 진화에 대한 새로운 검사 방법

Coxiella burnetii의는 인수 공통 질병 Q 열병에 대한 책임 의무적 세포 내 그람 음성 세균이다. 여기에서 우리는 Coxiella 형광 트랜스포존 돌연변이의 발생뿐만 아니라 자동 식별 및 결과 국제화, 복제 및 세포 독성 표현형의 분석 방법을 설명합니다.

세대와의 멀티 표현형 높은 콘텐츠 상영<em&gt; Coxiella burnetii의</em&gt; 트랜스포존 돌연변이

배우세요 고처리량 스크리닝을 위한 표현형 분석법으로 Mycobacterium tuberculosis의 세포내 복제를 정량화하는 방법입니다. 자동화된 공초점 현미경을 활용하여 형광 표지된 병원균을 검출하고 치료제 후보 물질을 선별할 수 있습니다.

고처리량/고함량 스크리닝에 적용된 세포내 진균의 정량화를 위한 현미경 표티픽 분석

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