May 27th, 2022
Ten protokół przedstawia szczegółową procedurę przygotowania biologicznych próbek kriogenicznych do eksperymentów z synchrotronową spektroskopią absorpcyjną promieniowania rentgenowskiego. Opisujemy wszystkie kroki wymagane do optymalizacji przygotowania próbek i kriokonserwacji wraz z przykładami protokołu z komórkami nowotworowymi i fitoplanktonem. Metoda ta zapewnia uniwersalny standard krioprzygotowania próbek.
Protokół ten został ustandaryzowany dla próbek komórkowych, umożliwiając porównanie eksperymentów prowadzonych w różnych lokalizacjach synchrotronowych. Główną zaletą tej techniki jest prosty i nieskomplikowany przebieg pracy, który pozwala na szybkie i niezawodne zachowanie chemicznej integracji próbki. Osoby, które są nowicjuszami w tej technice, mogą mieć problemy z granulowaniem zamrożonych iterowanych komórek i szybkim ładowaniem osadu komórkowego do kolejności kriopróbek.
Precyzyjne i szybkie odłączenie próbek w temperaturze kriogenicznej ma kluczowe znaczenie. W związku z tym demonstracja wizualna jest niezbędna, aby zrozumieć, jak wykonać tę technikę. Aby przygotować granulki komórek linii komórkowej ludzkiego raka prostaty i jajnika do specjacji selenu, wysiewaj odpowiednią liczbę komórek z każdej linii komórkowej do trzech kolb T-75 na warunki w odpowiednim pożywce do hodowli komórkowych w kapturze z przepływem laminarnym i umieść kolby w inkubatorze do hodowli komórkowych o temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla, aż komórki będą zlewać się w 80%.
Aby wystawić komórki rakowe na działanie selenu, należy najpierw poddać sonicyzacji świeżo przygotowane roztwory podstawowe nanocząstek w ultradźwiękowej łaźni wodnej przez 30 minut w temperaturze pokojowej, a następnie seryjnie rozcieńczyć roztwór nanocząstek selenu w kompletnej pożywce do hodowli komórkowej do odpowiednich stężeń roboczych. W okapie z przepływem laminarnym delikatnie umyj komórki dwa razy pięcioma mililitrami PBS o temperaturze 37 stopni Celsjusza na pranie i użyj sterylnej pipety o pojemności 25 mililitrów, aby ostrożnie dodać 15 mililitrów interesującego nas roztworu selenu na dno kolby. Zamknąć pokrywki, nie zamykając całkowicie kolby, a następnie umieścić kolby poziomo w inkubatorze do hodowli komórkowych na 24 godziny.
Aby przygotować osady komórkowe po umyciu i uzupełnieniu pożywki, należy użyć jednego skrobaka do komórek na kolbę, aby delikatnie odłączyć komórki. Użyć pożywki, aby przepłukać wszystkie komórki przyklejone do kolby do supernatantu i zebrać zdysocjowane komórki przez odwirowanie. Przemyj granulki dwa razy w pięciu mililitrach PBS na probówkę na pranie, aby usunąć wszystkie pozostałe ślady leczenia i ponownie zawiesić komórki w jednym mililitrze PBS.
Przenieś komórki do 1,5 mililitrowej probówki polipropylenowej i zbierz komórki za pomocą kolejnego wirowania. Następnie użyj pipety o pojemności 200 mikrolitrów, aby delikatnie usunąć cały supernatant i zanurz dolną część każdej 1,5 mililitrowej probówki w ciekłym azocie do poziomu osadu komórkowego. Natychmiast po zamrożeniu przenieś probówki do dewara z ciekłym azotem w celu długotrwałego przechowywania.
W przypadku spektroskopii absorpcyjnej promieniowania rentgenowskiego o wysokiej rozdzielczości zoptymalizuj wszystkie kryształy ze spektrometru analizatora kryształów w warunkach Bragga w odniesieniu do energii linii fluorescencji będącej przedmiotem zainteresowania i użyj odniesienia, dla którego położenie energii krawędzi absorpcji jest znane do kalibracji padającej energii wiązki monochromatycznej. Przenieś uchwyt próbki do kriostatu z ciekłym helem dla próbek biologicznych i ustaw kriostat na 10 stopni Kelvina, a następnie zamknij klatkę doświadczalną zgodnie z zasadami bezpieczeństwa synchrotronu i rozpocznij analizę. W tym przypadku reprezentatywne widma absorpcyjnej spektroskopii promieniowania rentgenowskiego o wysokiej rozdzielczości selenu w stanie początkowym i w komórkach inkubowanych do pożywki wykazują, że selen w początkowych nanocząstkach selenu był obecny zarówno w postaci selenu zero, jak i w formach podobnych do cellulitu.
Jednak po interakcjach z komórkami PC3 selen był obecny w komórkach głównie jako selen zerowy, co świadczy o zmianie gatunku selenu w komórkach. W przypadku żelaza, widma referencyjne spektroskopii absorpcji promieniowania rentgenowskiego o wysokiej rozdzielczości wykazują wyraźne położenie krawędzi w zależności od stopnia utlenienia żelaza, ze zredukowanymi gatunkami żelaza przesuniętymi do niskich wartości energii. Dwa kolejne widma zebrane w tym samym miejscu pastylki okrzemki były podobne, co wskazuje, że uszkodzenie wiązki było ograniczone między dwoma akwizycjami przy użyciu kriostatu helowego o temperaturze 10 kelwinów.
Co więcej, widma z różnych pozycji pastylki okrzemki były identyczne, co pokazuje, że osad próbki był jednorodny i że widma można uśrednić w celu uzyskania lepszego stosunku sygnału do szumu. Najbardziej krytycznymi etapami są przygotowanie rozcieńczenia nanocząstek, granulowanie w temperaturze kriogenicznej oraz przygotowanie standardowych próbek referencyjnych. Procedura ta może być stosowana do innych masowych technik analitycznych, takich jak ICP-MS lub HPLC-ICP-MS lub innych niesynchrotronowych technik spektroskopowych, które można wykonać w temperaturze kriogenicznej.
Za pomocą tej procedury można badać inne kwestie naukowe, szczególnie w dziedzinie biogeologii, biochemii i nauk o środowisku lub badań toksykologicznych. Związki selenu i nanocząsteczki selenu mogą być równie uciążliwe dla zdrowia i powinny być manipulowane w dedykowanym kapturze chemicznym za pomocą rękawiczek, okularów i maski na twarz.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten protokół przedstawia szczegółową procedurę przygotowania biologicznych kryoproboków do eksperymentów spektroskopii absorpcji rentgenowskiej opartej na synchrotronie. Opisuje kroki wymagane do optymalizacji przygotowania próbek i krioprezerwacji, z przykładami z komórek raka i fitoplanktonu.