-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Chemistry
Kowalencyjne przyłączanie pojedynczych cząsteczek do spektroskopii sił opartej na AFM
Kowalencyjne przyłączanie pojedynczych cząsteczek do spektroskopii sił opartej na AFM
JoVE Journal
Chemistry
This content is Free Access.
JoVE Journal Chemistry
Covalent Attachment of Single Molecules for AFM-based Force Spectroscopy

Kowalencyjne przyłączanie pojedynczych cząsteczek do spektroskopii sił opartej na AFM

Full Text
10,092 Views
10:37 min
March 16, 2020

DOI: 10.3791/60934-v

Adrianna Kolberg1, Christiane Wenzel1, Thorsten Hugel1,3, Markus Gallei2, Bizan N. Balzer1,3

1Institute of Physical Chemistry,Albert-Ludwigs-Universität Freiburg, 2Chair in Polymer Chemistry,Saarland University, 3Cluster of Excellence livMatS at FIT - Freiburg Center for Interactive Materials and Bioinspired Technologies,University of Freiburg

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Kowalencyjne dołączanie cząsteczek sondy do końcówek wsporników mikroskopii sił atomowych (AFM) jest niezbędną techniką do badania ich właściwości fizycznych. Dzięki temu możemy określić siłę rozciągania, siłę desorpcji i długość polimerów za pomocą spektroskopii sił pojedynczych cząsteczek opartej na AFM o wysokiej odtwarzalności.

Spektroskopia sił pojedynczych cząsteczek umożliwia nam pomiar parametrów fizycznych, które opisują właściwości mechaniczne i adhezyjne polimerów. W przypadku korzystania ze spektroskopii sił opartej na AFM do badania pojedynczych cząsteczek, niezbędne jest posiadanie niezawodnego i wydajnego protokołu kowalencyjnego wiązania tych cząsteczek z końcówką wspornikową AFM. Protokół ten można zastosować do wielu różnych polimerów, niezależnie od długości konturu czy hydrofobowości.

Wszystkie czynności należy wykonywać w dygestorium, aby uniknąć wdychania oparów organicznych. Dodatkowo wymagane jest szkło odporne na rozpuszczalniki, fartuch laboratoryjny i ochrona oczu. Najpierw użyj świeżo oczyszczonej pęsety, aby umieścić wióry wspornikowe AFM w komorze plazmowej.

Uruchom program aktywacji powierzchni komory plazmowej, wybierając start, a następnie tak. Sprawdź, czy proces plazmowy działa prawidłowo. Proces plazmowy o wysokiej zawartości tlenu ma jasnoniebieski kolor.

Podczas wykonywania programu aktywacji powierzchniowej rozpuść silan-PEG-mal w toluenie, aby uzyskać stężenie 1,25 miligrama na mililitr. Umieść trzy mililitry roztworu na płaskiej szalce Petriego. Po zakończeniu procesu plazmowego przewietrz komorę plazmową, wybierając opcję potwierdź, a następnie odpowietrzaj.

Przejdź natychmiast do następnego kroku, aby zapobiec wchłanianiu zanieczyszczeń. Umieść frytki na szalce Petriego i inkubuj je przez trzy godziny w temperaturze 60 stopni Celsjusza. Wyjmij szalkę Petriego z piekarnika i pozwól jej ostygnąć przez co najmniej 10 minut.

Następnie opłucz frytki. W przypadku wiązania PEG lub polistyrenu należy trzykrotnie spłukać wióry toluenem. W przypadku wiązania polinipamu wióry należy przepłukać raz toluenem i dwa razy etanolem.

Aby zmniejszyć wpływ sił kapilarnych na wspornik AFM, podczas płukania należy lekko przechylić wióry. Wióry wspornikowe AFM muszą być odpowiednio wypłukane, aby usunąć nadmiar polimerów fizycznych, które mogą mieć wpływ na eksperyment. Płukanie należy wykonywać ostrożnie, aby zapobiec uszkodzeniu wsporników AFM.

Na koniec przygotuj co najmniej dwa wióry, które będą służyć jako kontrole, które nie będą poddawane kowalencyjnemu przyłączeniu polimerowemu. W przypadku kontroli w porównaniu z wiórami PEG i polistyrenu spłucz dwukrotnie etanolem i raz wodą. W przypadku kontroli w porównaniu z chipsami z polinipamu, spłucz dwukrotnie wodą.

Aby wykonać kowalencyjne mocowanie PEG lub polistyrenu, przygotuj trzy mililitry roztworu polimeru w toluenie o stężeniu 1,25 miligrama na mililitr. Dodaj roztwór i frytki na szalkę Petriego i inkubuj chipsy w temperaturze 60 stopni Celsjusza przez godzinę. Po inkubacji z PEG lub polistyrenem pozwól frytkom ostygnąć przez 10 minut.

Wióry opłucz dwukrotnie toluenem, dwa razy etanolem i raz wodą. Aby wykonać kowalencyjne przyłączenie polinipamu, przygotuj trzy mililitry roztworu polimeru w etanolu o stężeniu 1,25 miligrama na mililitr. Dodaj roztwór i frytki na szalkę Petriego i inkubuj frytki w temperaturze pokojowej przez trzy godziny.

Po inkubacji z polinipamem spłucz frytki dwukrotnie etanolem i dwukrotnie wodą. Aby przechowywać chipsy do czasu wykorzystania w eksperymencie, umieść każdy chips osobno na mililitrowej szalce Petriego wypełnionej wodą. Utrzymuj szalki Petriego w temperaturze czterech stopni Celsjusza.

Najpierw włóż funkcjonalny chip wspornikowy AFM do uchwytu na wióry. Przyklej przygotowaną powierzchnię do uchwytu na próbkę, który jest odpowiedni do pomiarów w cieczy. Użyj pipety, aby zanurzyć chip w wodzie.

Zamontuj powierzchnię próbki w AFM. Zanurz powierzchnię próbki w wodzie. Podłącz uchwyt na wióry do AFM.

Następnie zbliż chip do powierzchni próbki. Użyj panelu środowiskowego, aby ustawić temperaturę docelową i włączyć przyciski opcji trybu i sprzężenia zwrotnego. Następnie pozwól systemowi zrównoważyć się przez około 15 minut.

Aby wykonać krzywą wydłużenia siły, zbliż końcówkę wspornika AFM do powierzchni i wybierz pojedynczą siłę. Wynikowa krzywa przedstawia ugięcie w stosunku do odległości piezoelektrycznej z podejściem do powierzchni pokazanym na czerwono i wycofaniem pokazanym na niebiesko. Rozszerz część krzywej, która reprezentuje wcięcie końcówki wspornika AFM w powierzchnię znajdującą się pod spodem.

Aby wykonać dopasowanie liniowe, ustaw kursory na krzywej podejścia lub krzywej cofania i wybierz opcję Aktualizuj INVOLS z menu kontekstowego. Wynikowa wartość odwrotnej czułości dźwigni optycznej jest wyświetlana w panelu w lewym górnym rogu. Po powtórzeniu tej procedury co najmniej pięć razy oblicz średnią dla odwrotnej czułości dźwigni optycznej i wprowadź średnią w panelu.

Ustaw wspornik AFM na wysokości około 100 mikrometrów nad powierzchnią, wybierając ruch, aby wstępnie włączyć. Aby uzyskać zadowalający stosunek sygnału do szumu dla widma szumu termicznego, ustaw liczbę uśredniania na co najmniej 10 i wybierz najwyższą możliwą rozdzielczość częstotliwości. Następnie zarejestruj widmo szumu termicznego, wybierając opcję przechwytywania danych termicznych.

Aby dopasować widmo szumu termicznego do prostej funkcji oscylatora harmonicznego, rozwiń część krzywej reprezentującą pierwszy pik rezonansowy. Następnie wybierz opcję Zainicjuj dopasowanie. Na koniec doprecyzuj dopasowanie za pomocą przycisku danych termicznych dopasowania.

Odpowiednia stała siły pojawi się w panelu. Aby rozpocząć zbieranie danych, ustaw parametry eksperymentu. Ustaw prędkość ciągnięcia na jeden mikrometr na sekundę i wymuś spust na jeden nanoniuton.

Zbliżyć końcówkę wspornika AFM do powierzchni i wybrać pojedynczą siłę, aby zarejestrować pojedynczą krzywą i określić, czy parametry należy dostosować zgodnie z opisem w manuskrypcie. Wybierz mapę F z panelu głównego. Aby uzyskać mapę sił ze 100 krzywymi, należy ustawić liczbę punktów sił i linii sił na 10.

Rozpocznij nagrywanie mapy siły, wybierając opcję do mapy F. Weź krzywe wydłużenia siły w sposób przypominający siatkę, aby uniknąć lokalnych efektów powierzchni i uśrednić różne obszary powierzchni. Po doświadczeniu powtórz wyznaczanie odwrotnej czułości dźwigni optycznej i stałej sprężystości, aby sprawdzić spójność i stabilność systemu.

Pojedyncze polimery polinipamu i PEG zostały kowalencyjnie związane z końcówką wspornika AFM na jednym końcu i fizjosorbowane na powierzchni dwutlenku krzemu na drugim końcu. Aby zmierzyć rozciąganie zależne od temperatury, zidentyfikowano wyraźne zdarzenie rozciągania pojedynczej cząsteczki, po którym następuje końcowe maksimum na końcu odpowiedniej krzywej wydłużenia siły. Następnie generowana była jedna krzywa wzorcowa dla każdej temperatury.

W przypadku PEG zaobserwowano spadek siły rozciągania wraz ze wzrostem temperatury. W przypadku polinipamu zaobserwowano odwrotną tendencję. Desorpcja polistyrenu z powierzchni SAM w wodzie może być wykorzystana do określenia siły i długości desorpcji.

Gdy mocowanie polimeru zakończyło się sukcesem, krzywe wydłużenia siły wykazywały plateau stałej siły. Każdy plateau został wyposażony w krzywą sigmoidalną w celu określenia siły desorpcji i długości desorpcji. Obserwowane siły desorpcji odpowiadały wcześniej uzyskanym wartościom.

Gdy więcej niż jeden polimer był przymocowany do końcówki wspornika AFM, zaobserwowano kaskady płaskowyżów na krzywych wydłużenia siły. Po przyłączeniu dwóch polimerów stwierdzono rozkład bimodalny dla długości desorpcji, podczas gdy siła desorpcji wykazała wąski rozkład. Funkcjonalizowana końcówka wspornikowa AFM może być używana do ilościowego określania odpowiedzi siłowej pojedynczych cząsteczek w środowisku ciekłym i przy bodźcach zewnętrznych.

Stosowanie czystego sprzętu, rozpuszczalników, końcówek wysięgników AFM i wielokrotne płukanie jest bardzo ważne dla osiągnięcia wysokiego poziomu czystości, który powinien zostać potwierdzony przed opisanymi kontrolowanymi eksperymentami. Zaprezentowane protokoły i procedury utorowały drogę do lepszego zrozumienia systemów polimerowych reagujących na bodźce. Wyniki można bezpośrednio porównać z symulacjami dynamiki molekularnej.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Przyłączanie kowalencyjne spektroskopia sił pojedynczych cząsteczek spektroskopia sił oparta na AFM właściwości mechaniczne właściwości adhezyjne wiązanie polimerów końcówka wspornikowa AFM aktywacja plazmy silan-PEG-mal roztwór toluenu procedura płukania wiązanie polistyrenu wiązanie polinipamu siły kapilarne chipy kontrolne

Related Videos

Badanie układów receptor-ligand celulosomu za pomocą spektroskopii sił pojedynczych cząsteczek opartej na AFM

11:34

Badanie układów receptor-ligand celulosomu za pomocą spektroskopii sił pojedynczych cząsteczek opartej na AFM

Related Videos

7.5K Views

Badanie adhezji pojedynczych cząsteczek za pomocą spektroskopii sił atomowych

09:48

Badanie adhezji pojedynczych cząsteczek za pomocą spektroskopii sił atomowych

Related Videos

10.7K Views

Wgląd w interakcje aminokwasów i peptydów z materiałami nieorganicznymi za pomocą spektroskopii sił pojedynczych cząsteczek

05:44

Wgląd w interakcje aminokwasów i peptydów z materiałami nieorganicznymi za pomocą spektroskopii sił pojedynczych cząsteczek

Related Videos

8.4K Views

Spektroskopia sił pojedynczych cząsteczek białka przy użyciu mikroskopu sił atomowych

06:45

Spektroskopia sił pojedynczych cząsteczek białka przy użyciu mikroskopu sił atomowych

Related Videos

9.2K Views

Kowalencyjna immobilizacja białek do spektroskopii sił pojedynczej cząsteczki

11:13

Kowalencyjna immobilizacja białek do spektroskopii sił pojedynczej cząsteczki

Related Videos

11.5K Views

Funkcjonalizacja wsporników mikroskopu sił atomowych z pojedynczymi limfocytami T lub pojedynczą cząstką do immunologicznej spektroskopii sił pojedynczych komórek

10:06

Funkcjonalizacja wsporników mikroskopu sił atomowych z pojedynczymi limfocytami T lub pojedynczą cząstką do immunologicznej spektroskopii sił pojedynczych komórek

Related Videos

7.7K Views

Pasywacja powierzchniowa w badaniach białek jednocząsteczkowych

10:35

Pasywacja powierzchniowa w badaniach białek jednocząsteczkowych

Related Videos

43K Views

Kowalencyjne wiązanie BMP-2 na powierzchniach przy użyciu samoorganizującego się podejścia monowarstwowego

10:23

Kowalencyjne wiązanie BMP-2 na powierzchniach przy użyciu samoorganizującego się podejścia monowarstwowego

Related Videos

14.4K Views

Otrzymywanie nanocząstek krzemionki za pomocą katalizy kwasowej wspomaganej mikrofalami

09:43

Otrzymywanie nanocząstek krzemionki za pomocą katalizy kwasowej wspomaganej mikrofalami

Related Videos

19.2K Views

Aktywacja cząsteczek, jonów i cząstek stałych za pomocą kawitacji akustycznej

14:22

Aktywacja cząsteczek, jonów i cząstek stałych za pomocą kawitacji akustycznej

Related Videos

15.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code