Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

تدخل Tuina في نموذج أرنب لالتهاب المفاصل في الركبة

Published: August 25, 2023 doi: 10.3791/65763
Automatic Translation
*1, *2, 3, 1, 1, 3, 1, 3, 3
1Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 2Liaoning University of Traditional Chinese Medicine, 3Shandong University of Traditional Chinese Medicine Affiliated Hospital
* These authors contributed equally

Summary

يصف البروتوكول طريقة لتدخل Tuina في نموذج أرنب من هشاشة العظام في الركبة.

Abstract

يتميز الفصال العظمي في الركبة (KOA) بشكل أساسي بالتغيرات التنكسية في غضروف مفصل الركبة والأنسجة الرخوة المحيطة. تم تأكيد فعالية Tuina في علاج KOA ، ولكن يجب التحقيق في الآلية الأساسية. تهدف هذه الدراسة إلى إنشاء نموذج أرنب KOA مجدي علميا تم معالجته باستخدام Tuina للكشف عن الآليات الأساسية. لهذا ، تم تقسيم ذكور الأرانب النيوزيلندية البالغة من العمر 18 و 6 أشهر بشكل عشوائي إلى مجموعات زائفة ونموذج وتوينا ، مع 6 أرانب في كل مجموعة. تم إنشاء نموذج KOA عن طريق حقن محلول غراء 4٪ في تجويف مفصل الركبة. تدخلت مجموعة Tuina مع Tuina جنبا إلى جنب مع طريقة تصحيح مفصل الركبة الدوار لمدة 4 أسابيع. تم إجراء الإمساك والتثبيت القياسي فقط في مجموعات صورية ونموذجية. في نهاية التدخل لمدة 1 أسبوع ، لوحظ نطاق حركة مفصل الركبة (ROM) ، وتم تلطيخ الغضروف الهيماتوكسيلين-يوزين (HE). تظهر الدراسة أن Tuina يمكن أن تمنع موت الخلايا الغضروفية المبرمج ، وإصلاح أنسجة الغضاريف ، واستعادة ROM مفصل الركبة. في الختام ، توضح هذه الدراسة الجدوى العلمية لعلاج Tuina للأرانب النموذجية KOA ، مع تسليط الضوء على تطبيقه المحتمل في دراسة KOA والحالات المماثلة المتعلقة بمفصل الركبة.

Introduction

هشاشة العظام في الركبة (KOA) هو مرض تنكسي يصيب مفصل الركبة ، ويتجلى بشكل رئيسي في آلام الركبة والتورم والتشوه وتقييد الحركة ، مع ارتفاع معدل الإعاقة وارتفاع معدل الانتشار لدى النساء ، مع 527.81 مليون مريض يعانون من هشاشة العظام في جميع أنحاء العالم في عام 2019 وانتشاره العالمي يمثل 60.6٪ من إجمالي الانتشار العالمي ل OA1. سريريا ، ينقسم علاج KOA عادة إلى علاجات غير جراحية وجراحية. تشمل العلاجات غير الجراحية العلاج الطبيعي والعلاج الدوائي والعلاج بحقن البلازما الغنيةبالصفائح الدموية 2,3. Tuina هي طريقة علاج شائعة وآمنة وموثوقة وفعالة في الطب الصيني. تستخدم هذه الدراسة Tuina جنبا إلى جنب مع طريقة تصحيح مفصل الركبة الدوار لعلاج KOA. يمكن لتقنيات Tuina مثل طريقة العجن والضغط الدوراني موازنة الأنسجة العضلية وتقليل الألم وضبط مستويات العوامل الالتهابية وتحسين التمثيل الغذائي للأنسجة وتثبيط تنكس الغضروف المفصلي 4,5. يمكن لطريقة التصحيح الدوراني لمفصل الركبة ضبط محاذاة عظام ومفاصل الأطراف السفلية ، وتحسين فجوة مفصل الركبة ، واستعادة خط القوة الطبيعي ، وتحقيق التوازن بين الميكانيكا الحيوية للأطراف السفلية6،7،8،9. تمارين المقاومة يمكن أن تعزز كتلة العضلات وقوتها وتعزز تجديد أنسجة الغضاريف10,11. وجدت دراسة أولية أن بروتوكول Tuina هذا أكثر فعالية بكثير من كبسولات كبريتات الجلوكوزامين عن طريق الفم في علاج KOA، مع بداية أسرع للعمل وتثبيط كبير لتنكس الخلايا الغضروفية وإصلاح أنسجة الغضاريفالتالفة 12. في علاج KOA، بالمقارنة مع العلاج Tuina، العقاقير غير الستيرويدية المضادة للالتهابات لها آثار ضارة وفعالية غير مرضية على المدى الطويل، ومخاطر وتكاليف جراحية عالية نسبيا، وتتطلب مؤشرات معينة للعلاج الجراحي، مع مشاكل ما بعد الجراحة ومضاعفات حول الأطراف الاصطناعية13،14،15. عند مقارنته بالعلاج الدوائي والجراحة ، يوفر علاج Tuina ل KOA العديد من المزايا ، بما في ذلك تقليل الآثار الجانبية ، وانخفاض المخاطر ، وتعزيز السلامة ، والفعالية من حيث التكلفة ، والفعالية طويلة الأمد. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن يخفف بشكل فعال من آلام مفصل الركبة والتورم والفرقعة وتقييد الحركة6،13،16،17.

ومع ذلك ، فإن آلية Tuina لعلاج KOA تحتاج إلى توضيح ، مما يحد من تحسين وكمال بروتوكول العلاج ل KOA. لذلك ، فإن دراسة آلية تدخل Tuina في KOA من خلال التجارب على هي طريقة فعالة. الأرانب ، مقارنة بالفئران ، لديها مزاج سهل الانقياد ومفاصل الركبة أكبر. تتشابه البنية التشريحية والمؤشرات الكيميائية الحيوية للغضروف مع تلك الخاصة بالبشر ، لذلك فهي موضوع مناسب لدراسة آلية مرض مفصل الركبة بواسطة Tuina18. يتميز نموذج KOA الذي تم إنشاؤه عن طريق حقن غراء في تجويف مفصل الركبة للأرانب بمزايا وقت النمذجة القصير ، وتقليل الصدمات ، ومعدل النجاح المرتفع ، ومعدل البقاء على قيد الحياة المرتفع ، وآلية مرضية مماثلة ل KOA19. تهدف هذه الدراسة إلى إنشاء بروتوكول تجارب حيوانية مجدية علميا لتدخل Tuina في KOA والتحقيق في آلية Tuina.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

تمت الموافقة على الدراسة من قبل لجنة الأخلاقيات في المستشفى التابع لجامعة شاندونغ للطب الصيني التقليدي (رقم الموافقة: 2020-29).

1. التجارب

  1. تربية 18 ، 6 أشهر من ذكور الأرانب النيوزيلندية من الدرجة العادية (2.75 ± 0.25 كجم) في أقفاص مفردة قياسية (دورة الضوء / الظلام 12 ساعة ، درجة الحرارة 20-24 درجة مئوية ، رطوبة الهواء 40٪ -60٪).

2. طريقة التجميع

  1. حدد 6 من أصل 18 أرنبا نيوزيلنديا كمجموعة وهمية باستخدام طريقة الأرقام العشوائية وقم بتعيين الأرانب ال 12 المتبقية لمجموعة النمذجة.
  2. بعد النمذجة الناجحة ، قسم أرانب مجموعة النمذجة إلى مجموعات النموذج ومجموعات Tuina وفقا لطريقة الرقم العشوائي ، مع وجود 6 أرانب في كل مجموعة.
  3. أداء تدخل Tuina في مجموعة Tuina. قم بإجراء نفس الإمساك والتثبيت في المجموعة الزائفة والنموذجية بدون Tuina. تعمل كل يوم لمدة 4 أسابيع (الشكل 1).

3. إنشاء نموذج KOA

  1. أداء التغذية التكيفية للأرانب في الحالة القياسية في الأسبوع 1. الحصول على الماء والغذاء. ضع الأرانب على جوانبها اليمنى في صناديق تثبيت الأرانب لتهدئتها لمدة 15 دقيقة في اليوم. ثبت رؤوسهم على ألواح تثبيت الرأس. ثبت ألواح التثبيت والبراغي حتى لا تتحرك الأرانب. ارتداء قفازات واقية عند الإمساك بالأرانب وتثبيتها (الشكل 1).
  2. في الأيام 1 و 4 و 7 من الأسبوع 2 ، ضع جميع الأرانب ال 18 على جوانبها اليمنى في صناديق تثبيت الأرانب (الشكل 1). قم بإجراء العمليات المذكورة أدناه.
  3. حقن 3٪ بنتوباربيتال الصوديوم (1 مل / كجم) في وريد الأذن الهامشي للأرنب. حلق مفصل الركبة اليسرى للأرنب باستخدام ماكينة حلاقة ، مما يؤدي إلى عدم وجود شعر على الجلد المكشوف.
  4. تطهير مفصل الركبة اليسرى للأرنب من الداخل إلى الخارج باستخدام اليودوفور الطبي و 75٪ كحول (الشكل 2 أ).
  5. ثني مفصل الركبة اليسرى للأرنب عند 60 درجة. أدخل إبرة (22 جم ، 0.7 مم × 30 مم) من Waixiyan. حقن محلول غراء 4٪ (0.1 مل / كجم ، 0.275 مل في المتوسط لحيوان 2.5 كجم) في تجويف مفصل الركبة لمجموعة النمذجة. حقن كمية متساوية من محلول كلوريد الصوديوم 0.9٪ في المجموعة الوهمية. جرعة الحقن هذه جيدة التحمل من قبل دون التسبب في دليل على الألم أو الضيق (الشكل 2 ب).
    ملاحظة: يقع Waixiyan (EX-LE5) في التجويف الجانبي للرباط الرضفي ، ويقع Neixiyan (EX-LE4) في التجويف الإنسي للرباط الرضفي20،21،22.
  6. اضغط على الثقب لمدة 2 دقيقة لتجنب انسكاب المحلول.
  7. ضع يديك فوق وتحت مفصل الركبة الأيسر للأرنب. قم بثني مفصل ركبة الأرنب برفق وبشكل سلبي وقم بتمديده 10 مرات ضمن النطاق الفسيولوجي للحركة (ROM) للتسلل إلى المحلول في تجويف مفصل الركبة بالتساوي15. مراقبة الأرنب كل 8 ساعات طوال مدة النمذجة. تطبيق البوبرينورفين SR (0.18 ملغ/كغ) عندما تظهر على الأرانب علامات الاختباء، ارتعاش الأطراف، التنفس الضحل والسريع، أو حتى العض والخدش.
  8. في الأسبوع 7 ، لاحظ الركبة اليسرى للأرنب في وضع مرن على أنها منتفخة ، مع زيادة قوة العضلات حول الركبة مع العقيدات والسطور ، وزيادة استجابة التهيج المؤلمة المحلية ، وانخفاض ROM في الركبة ، والمشية العرجاء ، وتحول مركز الثقل إلى الجانب الصحي. هذا يحدد نجاح نموذج KOA (الشكل 1 ، الشكل 2C)23,24.

4. التلاعب توينا

  1. قم بإجراء التدريب باستخدام أداة تحديد معلمة تقنية Tuina قبل معالجة Tuina. تدريب لمدة 1 ساعة في اليوم لمدة شهر واحد من قبل نفس المحترف.
    1. قم بإجراء طريقة العجن والضغط الدوراني بالإبهام على منصة محاكاة التلاعب Tuina بقوة 5 N وتردد 60 مرة / دقيقة (الشكل 3A ، C).
    2. قم بتحليل القوة في ثلاثة اتجاهات للمحاور X و Y و Z بواسطة برنامج معالجة معلمات معالجة Tuina وتحقق من حجم القوة وترددها ووقت عملها المعروض على الشاشة (الشكل 3B ، D).
    3. تقييم المعلمات الميكانيكية لمعالجة Tuina وتوحيد معالجة Tuina باستخدام البرنامج أثناء التدريب. حافظ على طريقة العجن والضغط الدوارة القياسية بالإبهام بقوة 5 نيوتن ، وتردد 60 مرة / دقيقة ، ووقت تشغيل مستمر يبلغ 10 دقائق. انظر الشكل الموجي الكمي القياسي للتلاعب في الشكل 3B ، D25،26،27.
  2. ضع الأرنب على جانبه الأيمن في صندوق تثبيت الأرانب. السكتة الدماغية بلطف الأرنب لمدة 10s لتهدئة واسترخاء الأرنب21. ثم قم بإجراء تدخل Tuina.
  3. قم بإجراء طريقة العجن الدوار بالإبهام على تصلب عضلات الأرنب اليسرى حول الركبة وعقدة الأوتار والرضفة ، مع التلاعب لأعلى ولأسفل ذهابا وإيابا بقوة 5 نيوتن وتردد 60 مرة / دقيقة لمدة 5 دقائق.
  4. استخدم طرف الإبهام للضغط على Yanglingquan (GB 34) و Yinlingquan (SP 9) و Waixiyan (EX-LE5) و Neixiyan (EX-LE4) و Heding (EX-LE2) و Xuehai (SP 10) و Liangqiu (ST 34) و Weizhong (BL 40) 20،21،22 ، بقوة 5 N وتردد 60 مرة / دقيقة ، وتعمل على كل نقطة لمدة 30 ثانية.
  5. قم بإجراء طريقة التصحيح الدوراني على مفصل ركبة الأرنب وقم بإجراء هذا 3x بشكل منفصل لكل في المجموعة.
    1. إصلاح عظم الفخذ بيد واحدة. ضع اليد الأخرى خلف مفصل الركبة أولا ، ثم ثبت اللقمات الظنبوبية الجانبية والإنسية بإصبعي الإبهام والبنصر ، على التوالي. إصلاح الحفرة المأبضية مع السبابة والأصابع الوسطى. تطبيق قوة الجر والتواء.
    2. إصلاح عظم الفخذ بيد واحدة. ثبت الحواف الإنسية والجانبية للرضفة بالإبهام والأصابع الصغيرة من اليد الأخرى. ثبت القاعدة الرضفية بالسبابة والوسطى والبنصر. تطبيق قوة التواء.
    3. حافظ على اتجاه قوة الجر موازيا للمحور الطويل للساق ، واتجاه قوة الالتواء بما يتماشى مع اتجاه Xiyan السفلي. استخدم الأصابع لتثبيت الجلد في مكانه لتجنب الاحتكاك بين الجلد والأصابع.

5. قياس ROM مفصل الركبة

ملاحظة: قبل القياس ، تهدئة الأرنب. يختلف إحصائي القياس والمشغل عن بعضهما البعض.

  1. قياس حركة مفصل الركبة الأيسر للأرانب من كل مجموعة في بداية التجربة ونهاية كل أسبوع.
  2. ضع الأرنب على جانبه الأيمن في صندوق تثبيت الأرانب وقم بتثبيت عظم الفخذ الأيسر بيد واحدة.
  3. قم بمحاذاة مركز دائرة منظار المفصل الطبي مع المركز الجانبي لمفصل الركبة الأيسر للأرنب. قم بتمديد ذراع التثبيت بحيث يكون موازيا لامتداد الخط الذي يربط مركز الدائرة بالمدور الأكبر. قم بتمديد الذراع المتحرك بحيث يكون موازيا للمحور الطولي للساق.
  4. ضع اليد الأخرى على المحور الطولي للساق ، على بعد حوالي 9 سم من مفصل الركبة. قم بتطبيق عزم الدوران تقريبا 750-850 جم يدويا بسرعة زاوية تبلغ 3 درجات / ثانية28.
  5. قم بذلك حتى يتوقف مفصل ركبة الأرنب عن الحركة . سجل عدد الدرجات التي يعرضها مقياس الزوايا عندما يتوقف المفصل عن الحركة ؛ هذا هو مفصل الركبة ROM. عند القراءة ، تأكد من أن خط الرؤية عمودي على سطح المسطرة.
  6. قياس ROM لكل ركبة 3x واتخاذ متوسط القيمة28.

6. تلطيخ الهيماتوكسيلين يوزين (HE)

  1. جمع العينات
    1. في أسبوع واحد من نهاية التدخل (الشكل 1) ، ضع الأرنب على جانبه الأيمن في صندوق تثبيت الأرانب (من المرجح أن تظل الأرانب مسترخية عند الاستلقاء على جانبها الأيمن). حقن بنتوباربيتون (100 ملغم / كغم) في الوريد الهامشي لأذن الأرنب للقتل الرحيمالإنساني 29،30.
    2. افتح تجويف الركبة اليسرى بسرعة باستخدام مشرط ومقص وملقط مرقئ لإزالة الأنسجة الرخوة المرتبطة حول غضروف عظم الفخذ البعيد.
    3. اجمع عينة عظم غضروف بحجم 1 سم × 1 سم تقريبا من عظم الفخذ البعيد باستخدام ملقط عض وضعه في محلول ملحي للتنظيف.
  2. التثبيت وإزالة الكلس
    1. ضع الغضروف في محلول بارافورمالدهيد 4٪ وقم بإصلاحه لمدة 72 ساعة.
    2. شطف في الماء الجاري لمدة 12 ساعة. إزالة الكلسify في محلول إزالة الكلس من حمض الإيثيلين ديامينيترايتيك (EDTA) لمدة 6 أسابيع. قم بتغيير محلول إزالة الكلس EDTA كل 3 أيام. حدد نقطة نهاية إزالة الكلس عندما تصبح الأنسجة العظمية ناعمة ومرنة ، ويمكن ثنيها بسهولة ، وثقبها بسلاسة بإبرة31.
  3. جفاف الأقسام المدمجة
    1. ضع العينة في مجفف أوتوماتيكي للجفاف.
    2. ضع الأنسجة المشمعة والمشذبة في قاع وعاء مربع مع شمع البارافين المذاب لمدة 1 ساعة. ضعها في فرن تبريد حتى تبرد وتتصلب في كتل صلبة. قم بتقطيع كتلة الأنسجة المضمنة بالبارافين في قطاعة إلى سمك 4 ميكرومتر.
    3. افتح الأقسام الموجودة في آلة التبييض ، ثم ضعها على شرائح لاصقة ، وقم بترقيمها ، وجففها باستخدام آلة خبز شرائح وفرن.
  4. إزالة الشعر بالشمع والترطيب
    1. تخبز الأقسام على حرارة 65 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة.
    2. انقع الأقسام في الزيلين لمدة 7 دقائق ، تليها جولتان أخريان من النقع في الزيلين الطازج لمدة 7 دقائق لكل منهما.
    3. انقع الشريحة في الإيثانول اللامائي لمدة 5 دقائق ، متبوعا بالنقع لمدة 2 دقيقة في 95٪ إيثانول و 85٪ إيثانول و 75٪ إيثانول.
    4. نقع المقاطع في الماء المقطر لمدة 2 دقيقة.
  5. تلطيخ الهيماتوكسيلين: أقسام وصمة عار مع الهيماتوكسيلين لمدة 20 ثانية. شطف المقاطع في الماء الجاري. نقع المقاطع في تجزئة الإيثانول حمض الهيدروكلوريك لمدة 3 ثوان. شطف المقاطع في ماء الصنبور لمدة 5 دقائق.
  6. إعادة تلطيخ Eosin: أقسام البقع مع eosin لمدة 30 ثانية. شطف الأقسام بماء الصنبور.
  7. الجفاف لشفافية العينة
    1. ضع المقاطع في 95٪ إيثانول مرتين لمدة 3 ثوان لكل منها ، متبوعا بوضعها في الإيثانول اللامائي لمدة 3 ثوان.
    2. مرة أخرى ، ضع الشرائح في الإيثانول اللامائي لمدة 1 دقيقة ، تليها جولتان من غسل الزيلين لمدة 1 دقيقة لكل منهما.
  8. ختم الشرائح: أخرج الشرائح ، وأسقط مانع تسرب اللثة المحايد ، وقم بتغطيتها بغطاء ، واترك الشرائح حتى تجف في غطاء دخان حتى تصبح عديمة الرائحة.
  9. تصوير العينة: المراقبة والتصوير تحت مجال رؤية المجهر الضوئي بمعدل 100x.
  10. التقييم: قم بتقييم أنسجة الغضاريف حسب درجة مانكين لكل مجموعة32.

7. تحليل البيانات

  1. تحليل البيانات التجريبية إحصائيا باستخدام برنامج التحليل. عندما خضعت البيانات للتوزيع الطبيعي ، قارن بين مجموعتين من العينات عن طريق اختبار t ومجموعات متعددة بواسطة ANOVA أحادي الاتجاه.
  2. التعبير عن النتائج كمتوسط ± الانحراف المعياري (SD). تمثيل النتائج كمخططات إحصائية باستخدام البرامج التجارية. كانت الفروق ذات دلالة إحصائية عند p < 0.05.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

تعكس درجة تقييد حركة الركبة وتلف أنسجة الغضاريف شدة KOA. يعكس ROM لمفصل الركبة درجة تقييد حركة مفصل الركبة. أصغر ROM مفصل الركبة ، وأكثر خطورة الحد من حركة مفصل الركبة. على العكس من ذلك ، كلما كان ROM لمفصل الركبة أكبر ، زادت درجة حركة الركبة بشكل طبيعي. يعكس تلطيخ HE لمراقبة مورفولوجيا وهيكل أنسجة الغضاريف درجة تلف أنسجة الغضاريف. كلما كان سطح أنسجة الغضاريف غير منتظم ، كلما زاد وجود الشقوق والعيوب ، انخفض عدد الخلايا الغضروفية ، كلما كان سمك طبقة الغضروف أرق ، كلما كان ترتيب الخلايا أكثر اضطرابا ، كلما كان توزيع الخلايا غير متساو ، كلما كانت الطبقات غير واضحة ، كلما كان خط المد والجزر أقل وضوحا وكاملا ، كلما ارتفعت درجة مانكين ، زادت خطورة الضرر الذي يلحق بأنسجة الغضاريف في مفصل الركبة ، والعكس صحيح ، كلما كان نسيج الغضروف طبيعياهو 32. عند إنشاء نموذج KOA ، يمكن تحديد نجاح النمذجة من خلال مراقبة درجة تقييد حركة مفصل ركبة الأرنب23,24. يمكن تحديد فعالية Tuina من خلال ملاحظة تحسن درجة الحد من حركة مفصل الركبة ودرجة تلف أنسجة الغضاريف عندما يتدخل مفصل ركبة الأرنب بواسطة Tuina12.

بعد الأسبوع السابع ، كشفت مقارنة مفصل الركبة الأيسر لمجموعتي الأرانب أن العضلات في مجموعة النمذجة كانت أكثر صلابة وكانت الحركة محدودة ، مع ROM 74.67 درجة ± 1.21 درجة ، وهو أقل من 140.17 درجة ± 1.33 درجة في المجموعة الوهمية ، مما يشير إلى النمذجة الناجحة (الشكل 2C ، الشكل 4).

بعد الأسبوع الثاني عشر من القياس والتحليل ، كانت ذاكرة القراءة فقط لمفصل الركبة للمجموعة الوهمية والمجموعة النموذجية ومجموعة Tuina 140.33 درجة ± 1.37 درجة و 76.33 درجة ± 1.37 درجة و 134.33 درجة ± 1.51 درجة على التوالي ، وكانت حركة مفصل الركبة لمجموعة Tuina أعلى بكثير من المجموعة النموذجية (p < 0.01) ، مما يشير إلى أن Tuina يمكن أن يحسن وظيفة مفصل الركبة لأرانب KOA (الشكل 5).

أظهر تلطيخ غضروف مفصل الركبة الأيسر للأرانب في كل مجموعة أن سطح أنسجة الغضاريف للمجموعة الوهمية كان أملسا وسليما ، وكان عدد الخلايا الغضروفية 331.67 ± 13.98 ، وكان سمك طبقة الغضروف 259.42 ± 41.97 ميكرومتر ، وكانت الخلايا مرتبة جيدا وموزعة بالتساوي ، وكانت المستويات واضحة ، كانت خطوط المد واضحة ومستمرة وكاملة ، وكانت درجة مانكين 0.33 ± 0.52. بالمقارنة مع المجموعة الوهمية ، كان سطح أنسجة الغضاريف للمجموعة النموذجية غير منتظم مع العيوب والشقوق ، وكان عدد الخلايا الغضروفية 29.50 ± 8.04 ، وكان سمك طبقة الغضروف 103.15 ± 24.64 ميكرومتر ، وكانت الخلايا مضطربة ، وموزعة بشكل غير متساو ، ولم تكن الطبقات واضحة ، ولم تكن خطوط المد واضحة وغير مكتملة ، وكانت درجة مانكين 9.33 ± 1.03. بالمقارنة مع المجموعة النموذجية ، كان لغضروف مجموعة Tuina سطح منتظم ، مع عدد أقل من العيوب والشقوق ، وكان عدد الخلايا الغضروفية 291.83 ± 8.18 ، وكان سمك طبقة الغضروف 183.58 ± 15.34 ميكرومتر ، وكانت الخلايا أكثر تنظيما ، وموزعة بشكل غير متساو قليلا ، وكانت الطبقات أكثر وضوحا ، وكانت خطوط المد واضحة وكاملة نسبيا ، وكانت درجة مانكين 3.00 ± 0.63 (الشكل 6)15,23,33. كان عدد الخلايا وسمك طبقة الغضروف ودرجة مانكين في مجموعة توينا أفضل بكثير من تلك الموجودة في المجموعة النموذجية (p < 0.001) ، مما يشير إلى أن Tuina يمكنه إصلاح أنسجة الغضاريف التالفة.

Figure 1
الشكل 1: بروتوكول إنشاء وتوينا الأرانب النموذجية KOA. بعد التغذية التكيفية للأرانب لمدة أسبوع واحد ، قم ببناء نموذج KOA على مفصل الركبة الأيسر للأرانب لمدة 6 أسابيع ، مع حقن محلول غراء 4٪ في الأيام 1 و 4 و 7 من بداية النمذجة. تدخل مفصل الركبة اليسرى للأرانب بواسطة Tuina لمدة 4 أسابيع ، 1 مرة كل يوم. بعد 1 أسبوع من التغذية ، قم بقياس ROM لمفصل الركبة الأيسر للأرانب وأخذ عينات. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2: إنشاء نموذج KOA . (أ) تم تحضير مفصل الركبة الأيسر للأرانب وتطهيره. (ب) أدخلت الإبرة من وايشيان، وحقن 4٪ محلول غراء ومحلول كلوريد الصوديوم 0.9٪ في تجويف مفصل الركبة للنمذجة والمجموعات الوهمية من الأرانب، على الترتيب. (ج) الأرانب النموذجية KOA المصبوبة بنجاح مع حركة محدودة لمفصل الركبة الأيسر. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3: التدريب على تقنيات Tuina باستخدام أداة تحديد معلمة تقنية Tuina. (أ) تدرب على طريقة العجن الدوار بالإبهام. ب: منحنى طريقة العجن الدوار بالإبهام. (ج) تدريب طريقة الضغط بطرف الإبهام. د: منحنى طريقة الضغط مع نهاية الإبهام. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 4
الشكل 4: ROM مفصل الركبة الأيسر في الأرانب قبل وبعد النمذجة. تمت معالجة البيانات بواسطة اختبار t حول مجموعات الخداع والنمذجة ، وتم التعبير عن النتائج كمتوسط ± SD. ns p > 0.05,*** p < 0.001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 5
الشكل 5: مفصل الركبة الأيسر للأرانب. بالنسبة للمجموعات الوهمية والنموذجية وتوينا ، تمت معالجة البيانات بواسطة ANOVA ، وتم التعبير عن النتائج كمتوسط ± SD. في الأسبوع 1 ، زاد ROM بشكل طفيف في جميع المجموعات الثلاث. بالمقارنة مع المجموعة الوهمية ، انخفض ROM تدريجيا في مجموعات النموذج و Tuina في وقت النمذجة (p < 0.001). على عكس المجموعة النموذجية ، زادت ROM تدريجيا بعد التدخل في مجموعة Tuina (p < 0.001). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 6
الشكل 6: تلطيخ غضروف مفصل ركبة الأرنب. أ: تلطيخ HE للمجموعة الوهمية. (ب) تلطيخ HE للمجموعة النموذجية. (ج) تلطيخ مجموعة توينا. د: مقارنة عدد الخلايا الغضروفية بين المجموعات. ه: مقارنة سمك طبقة الغضروف بين المجموعات. (و) مقارنة درجة مانكين بين المجموعات. تمت معالجة البيانات بواسطة ANOVA ، وتم التعبير عن النتائج كمتوسط ± SD. بعد 12 أسبوعا ، كما يتضح من تلطيخ HE ، كان نسيج الغضروف للمجموعة سليما من الناحية الهيكلية مع عدد الخلايا الطبيعي وترتيبها. تم تدمير النسيج الغضروفي للمجموعة النموذجية هيكليا مع انخفاض عدد الخلايا والترتيب غير المنظم ؛ كان النسيج الغضروفي لمجموعة Tuina سليما مع عدد الخلايا الطبيعي نسبيا وترتيبها. ***p < 0.001. شريط المقياس = 100 ميكرومتر. N = 6. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

تصميم البروتوكول التجريبي مهم بشكل خاص للتحقيق في آلية Tuina في علاج KOA. تم إجراء نمذجة KOA على الأرانب عن طريق حقن غراء في Waixiyan. يقع Waixiyan في القبو الجانبي للرباط الرضفي ، والذي يسهل تحديد موقعه ، ومساحة المفصل بين عظم الفخذ والساق كبيرة هنا أثناء ثني الركبة ، مما يجعل من السهل الحقن في تجويف مفصل الركبة ويمنع تلف الأنسجة المحيطة ، لذلك من السهل إنشاء نموذج KOA34. أثناء تدخل Tuina في أرانب KOA ، تم وضع الأرانب النموذجية بشكل مناسب لتسهيل إدارة Tuina. تم وضع الأرانب في صندوق تثبيت الأرانب على جانبهم الصحي ، مع تثبيت رؤوسهم ، وتم تهدئة عواطفهم لإرخاء أجسامهم بالكامل وعدم النضال. لتوحيد قوة Tuina وتواترها وتحسين تجانس تدخلات Tuina ، يتم تنفيذ Tuina بواسطة مشغل خضع لتدريب صارم على معالجة Tuina بواسطة أداة تحديد معلمة تقنية Tuina.

الخطوة الرئيسية في هذا البروتوكول هي استخدام Tuina جنبا إلى جنب مع طريقة تصحيح مفصل الركبة الدوار لعلاج KOA. قبل العملية ، تم تحسس الطرف السفلي المصاب للأرنب من الورك إلى الكاحل ، مع التركيز على المنطقة المحيطة بمفصل الركبة ، والتحقق من عقدة الأوتار وتصلب العضلات ، ثم ثني مفصل الركبة وتمديده لمراقبة ارتفاع Neixiyan و Waixiyan من أجل معالجة Tuina الدقيقة. يمكن لطريقة العجن والضغط الدوارة أن تطلق توتر العضلات وتشنجها ، وتحسن الدورة الدموية في مفصل الركبة ، وتعزز عملية التمثيل الغذائي للمواد الالتهابية ، وتقلل من التورم والألم35,36. نقاط الوخز بالإبر هي نقاط الاستجابة والعلاج للمرض ، و GB 34 و EX-LE2 هي نقاط ذات حساسية عالية لعلاج KOA، ومن خلال تحفيزها ، يمكن أن تعمل على الخلايا البدينة ، مما يؤثر على إطلاق 5-هيدروكسيتريبتامين ، تريبتاز ، وهيستامين37. كشف استخراج البيانات أن GB 34 و SP 9 و EX-LE5 و EX-LE4 و EX-LE2 و SP 10 و ST 34 و BL 40 كلها نقاط الوخز بالإبر شائعة الاستخدام في الممارسة السريرية38,39. هذه النقاط لها آثار تخفيف الأوتار والعقد ، وتنشيط الدورة الدموية ، وتخفيف الألم38,39. أظهرت الدراسات أن تحفيز نقاط الوخز المذكورة أعلاه يمكن أن يقلل من مستويات مصل العوامل الالتهابية مثل عامل نخر الورم α وإنترلوكين -1β ويمنع تدمير الهيكل العظمي للخلايا الغضروفية ، وبالتالي علاج KOA39،40،41.

طريقة تصحيح مفصل الركبة الدورانية التي يتم إجراؤها في ظل تمارين المقاومة النشطة مع مستويات قوة قابلة للتعديل سهلة الأداء وتتجنب المخاطر المحتملة للإصابة في تنظيم بنية الركبة مقارنة بتقنيات الحركة السلبية مثل الانثناء والضغط. تؤثر الزاوية على عزم الدوران ، ويمكن أن يؤدي عدم التوازن بين عزم الدوران الداخلي لمفصل الركبة وعزم الاختطاف إلى زيادة تحميل المفصل غير الطبيعي ، مما قد يؤدي إلى KOA42،43،44،45. أظهرت بعض الدراسات أن تدخل Tuina مع تمارين المقاومة المنتظمة يمكن أن يحسن كثافة العظام ، ويطلق التشنجات العضلية ، ويستعيد كتلة العضلات وقوتها ، ويقلل الألم ، ويعالج KOA46،47،48،49،50 بشكل فعال. نظرا لأن ركبة الأرنب أصغر من الركبة البشرية ولا يمكنها أداء حركات مقاومة طوعية ، فقد تم تغيير Tuina الأصلي المكون من شخصين إلى Tuina لشخص واحد ويدين لضمان فعالية أفضل وسهولة تشغيل طريقة تصحيح مفصل الركبة الدوراني تحت المقاومة12. الآن ، من خلال تثبيت عظم الفخذ للأرنب بيد واحدة لمحاكاة حركة المقاومة ، يتم استخدام اليد الأخرى لأداء طريقة تصحيح مفصل الركبة الدوار عن طريق تطبيق قوة الالتواء والجر على Xiyan السفلي بحيث يكون Waixiyan و Neixiyan في نفس الارتفاع ويتم ضبط الارتفاع النسبي لهضبة الظنبوب الإنسية والجانبية. يمكن أيضا تعديل مفصل الركبة إلى الداخل والخارج لتنظيم عزم الدوران الداخلي والخارجي ، وتعزيز المحاذاة المحورية ، وضبط محاذاة المفاصل الفخذية والفخذية الرضفية ، واستعادة بنية القوة الطبيعية لمفصل الركبة ، وتقليل حمل مفصل الركبة ، وزيادة استقرار مفصل الركبة ، واستعادة الحركة الطبيعية والوظيفة الفسيولوجية لمفصل الركبة42 ، 43,44,45.

أظهرت الدراسات السريرية السابقة للفريق فعالية هذه الطريقة في علاج KOA، وأظهرت الدراسات التي أجريت على أنها أكثر فعالية من كبريتات الجلوكوزامين في علاج KOA12. يمكن أن تتوسط Tuina في مسارات إشارات interleukin 1β (IL-1β) وكيناز 1/2 (ERK1 / 2) المنظم للإشارة خارج الخلية (ERK1 / 2) - عامل النسخ النووي κB (NF-κB) ، وتقليل تركيز IL-1β في مصل الأرانب المحيطي وسائل المفاصل ، وزيادة مستوى التعبير عن سرطان الغدد الليمفاوية للخلايا البائية -2 (Bcl-2) ، وتقليل مستويات التعبير عن ERK1 / 2 ، بروتين x المرتبط ب Bcl-2 ، NF-κB p65 ، وبروتياز الأسبارتات السيستين 3. هذا يساعد على تنظيم موت الخلايا المبرمج وانتشار الخلايا الغضروفية وتحقيق التوازن بين البيئة الداخلية للخلايا الغضروفية المضطربة ، وبالتالي تحسين التغيرات المرضية في الغضروف12.

يتمثل الحد من هذه الطريقة في أن تدخل Tuina يتم بواسطة إنسان بدلا من آلة ، ومن الصعب على المشغل تحقيق التجانس التام في قوة وتردد Tuina.

في الختام ، يمكن أن تقلل Tuina بشكل فعال من التهاب مفاصل الركبة ، وتمنع تنكس غضروف الركبة ، وتستعيد تدريجيا الحركة الفسيولوجية الطبيعية ، ويمكن أن توفر هذه الدراسة بروتوكول بحث علمي وعملي لآلية علاج Tuina لأمراض مفصل الركبة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

يعلن المؤلفون عدم وجود تضارب محتمل في المصالح.

Acknowledgments

تم دعم هذا العمل من قبل مشروع علوم وتكنولوجيا الطب الصيني التقليدي بمقاطعة شاندونغ (2021Q080) ومشروع وراثة المدرسة الأكاديمية لمدرسة تشيلو للطب الصيني التقليدي [Lu-Wei-Letter (2022) 93].

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.9 % sodium chloride injection Sichuan Keren Pharmaceutical Co. Z22121903
-20°C refrigerator Haier BD-328WL
4 % fixative solution Solarbio P1110
4°C refrigerator Haier SC-315DS
Anhydrous ethanol Sinopharm
Automatic tissue dewatering machine Dakowei (Shenzhen) Medical Equipment Co. HP30
Blast drying oven Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co. DHG-9070A
Coverslip Biyuntian FCGF50
Electric thermostat water bath Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co. HWS-26
Embedding freezing table Changzhou Paishijie Medical Equipment Co. BM450
Embedding machine Changzhou Paishijie Medical Equipment Co. BM450A
Ethylenediaminetetraacetic acid decalcification solution Servicebio G1105-500ML
Fluorescent inverted microscope Leica Leica DM IL LED
Hematoxylin-eosin staining kit Cisco Jet EE0012
Hydrochloric acid Laiyang Economic and Technological Development Zone Fine Chemical Plant
Medical joint goniometer KOSLO
Neutral gum Cisco Jet EE0013
Normal-grade male New Zealand rabbit Jinan Xilingjiao Breeding and Breeding Center SCXK (Lu) 2020 0004
Papain(3000 U/mg) Bioss D10366
Pathological tissue bleaching and drying instrument Changzhou Paishijie Medical Equipment Co. PH60
Pet electric clippers Codos CP-3180
Rabbit fixing box any brand
Rotating Slicer Leica 531CM-Y43
Tuina technique parameter determination instrument Shanghai DuKang Instrument Equipment Co. Ltd. ZTC-Equation 1
Ventilator TALY ELECTRIC C32
Xylene Fuyu Reagent

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Long, H. B., et al. Prevalence trends of site-specific osteoarthritis from 1990 to 2019: findings from the global burden of disease study 2019. Arthritis & Rheumatology. 74 (7), 1172-1183 (2022).
  2. Tschopp, M., et al. A randomized trial of intra-articular injection therapy for knee osteoarthritis. Investigative Radiology. 58 (5), 355-362 (2023).
  3. Buchanan, W. W., Kean, C. A., Kean, W. F., Rainsford, K. D. Osteoarthritis. Inflammopharmacology. , (2023).
  4. Wang, W. Y., et al. A randomized, parallel control and multicenter clinical trial of evidence-based traditional Chinese medicine massage treatment VS External Diclofenac Diethylamine Emulgel for the treatment of knee osteoarthritis. Trials. 23 (1), 555 (2022).
  5. Wang, M. N., et al. Mechanism of traditional Chinese medicine in treating knee osteoarthritis. Journal of Pain Research. 13, 1421-1429 (2020).
  6. Katz, J. N., Arant, K. R., Loeser, R. F. Diagnosis and treatment of hip and knee osteoarthritis: A review. The Journal of the American Medical Association. 325 (6), 568-578 (2021).
  7. Chang, A., et al. The relationship between toe-out angle during gait and progression of medial tibiofemoral osteoarthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 66, 1271-1275 (2007).
  8. Jenkyn, T. R., Hunt, M. A., Jones, I. C., Giffin, J. R., Birmingham, T. B. Toe-out gait in patients with knee osteoarthritis partially transforms external knee adduction moment into flexion moment during early stance phase of gait: a tri-planar kinetic mechanism. Journal of Biomechanics. 41 (2), 276-283 (2008).
  9. Brouwer, G. M., et al. Association between valgus and varus alignment and the development and progression of radiographic osteoarthritis of the knee. Arthritis & Rheumatism. 56 (4), 1204-1211 (2007).
  10. Liao, C. D., et al. Effects of protein supplementation combined with resistance exercise training on walking speed recovery in older adults with knee osteoarthritis and sarcopenia. Nutrients. 15 (7), 1552 (2023).
  11. Thudium, C. S., et al. Cartilage tissue turnover increases with high-compared to low-intensity resistance training in patients with knee OA. Arthritis Research & Therapy. 25 (1), 22 (2023).
  12. Zheng, L. J., et al. Shutiao Jingjin massage can stabilize intracellular environment of rabbit chondrocytes following knee osteoarthritis-induced cartilage injury. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 27, (2023).
  13. Liu, K. Q., et al. Efficacy and safety of Tuina (Chinese therapeutic massage) for knee osteoarthritis: A randomized, controlled, and crossover design clinical trial. Frontiers in Medicine. 10, 997116 (2023).
  14. Wang, Z., et al. Systematic Review and Network Meta-analysis of Acupuncture Combined with Massage in Treating Knee Osteoarthritis. BioMed Research International. 2022, 4048550 (2022).
  15. Li, Y. Y., et al. Therapeutic effect of acupotomy at Sanheyang for cartilage collagen damage in moderate knee osteoarthritis: a rabbit model. Journal of Inflammation Research. 16, 2241-2254 (2023).
  16. Guo, G. X., et al. Cerebral mechanism of Tuina analgesia in management of knee osteoarthritis using multimodal MRI: study protocol for a randomised controlled trial. Trials. 23 (1), 694 (2022).
  17. Perlman, A., et al. Efficacy and safety of massage for osteoarthritis of the knee: a randomized clinical trial. Journal of General Internal Medicine. 34 (3), 379-386 (2019).
  18. Chen, B. J., et al. Aerobic exercise combined with glucosamine hydrochloride capsules inhibited the apoptosis of chondrocytes in rabbit knee osteoarthritis by affecting TRPV5 expression. Gene. 830, 146465 (2022).
  19. Rasheed, M. S., Ansari, S. F., Shahzadi, I. Formulation, characterization of glucosamine loaded transfersomes and in vivo evaluation using papain induced arthritis model. Scientific Reports. 12 (1), 19813 (2002).
  20. Li, Z. R. Experimental acupuncturology. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. 2003, 314-319 (2003).
  21. Hu, Y. L. Manual of practical animal acupuncture. Beijing: China Press of Agriculture. 2003, 286-298 (2014).
  22. Liu, J., et al. Effects of "knot-loosing" of acupotomy on motor function and morphological changes of knee joint in knee osteoarthritis rabbits. Zhen Ci Yan Jiu. 46 (2), 129-135 (2021).
  23. Li, Q., et al. The protective effects and mechanism of Ruyi Zhenbao Pill, a Tibetan medicinal compound, in a rat model of osteoarthritis. Journal of Ethnopharmacology. 308, 116255 (2023).
  24. Kwon, M., Nam, D., Kim, J. Pathological characteristics of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 20 (3), 435-446 (2023).
  25. Wang, J. G., Tang, C. L. Experimental Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. Chinese. , (2017).
  26. Fang, M., Song, B. L. Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. , (2016).
  27. Jin, X. Y., Yu, Y. Y., Lin, Y. Y., Yang, J. P., Chen, Z. H. Tendon-regulating and bone-setting manipulation promotes the recovery of synovial inflammation in rabbits with knee osteoarthritis via the TLR4-MyD88-NF-κB signaling pathway. Annals of Translational Medicine. 11 (6), 245 (2023).
  28. Wang, M., Liu, C., Xiao, W. Intra-articular injection of hyaluronic acid for the reduction in joint adhesion formation in a rabbit model of knee injury. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy: Official Journal of the ESSKA. 22 (7), 1536-1540 (2014).
  29. Xu, C., et al. Bacterial cellulose membranes used as artificial substitutes for dural defection in rabbits. International Journal of Molecular Sciences. 15 (6), 10855-10867 (2014).
  30. Leary, S., et al. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2020 edition. Schaumburg: American Veterinary Medical Association. 2020, (2020).
  31. Amirtham, S. M., Ozbey, O., Kachroo, U., Ramasamy, B., Vinod, E. Optimization of immunohistochemical detection of collagen type II in osteochondral sections by comparing decalcification and antigen retrieval agent combinations. Clinical Anatomy. 33 (3), 343-349 (2020).
  32. Niazvand, F., et al. Curcumin-loaded poly lactic-co-glycolic acid nanoparticles effects on mono-iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Veterinary Research Forum: An International Quarterly Journal. 8 (2), 155-161 (2017).
  33. Liu, A., et al. Intra-articular injection of umbilical cord mesenchymal stem cells loaded with graphene oxide granular lubrication ameliorates inflammatory responses and osteoporosis of the subchondral bone in rabbits of modified papain-induced osteoarthritis. Frontiers in Endocrinology. 12, 822294 (2022).
  34. Hall, M. M. The accuracy and efficacy of palpation versus image-guided peripheral injections in sports medicine. Current Sports Medicine Reports. 12 (5), 296-303 (2013).
  35. Xing, L., et al. Traditional Chinese medicine ointment combined with Tuina therapy in treatment of pain and swelling after total knee arthroplasty. World Journal of Orthopedics. 13 (10), 932-939 (2022).
  36. Xu, H., et al. The effectiveness of Tuina in relieving pain, negative emotions, and disability in knee osteoarthritis: a randomized controlled trial. Pain Medicine. 24 (3), 244-257 (2023).
  37. Ding, N., et al. Mast cells are important regulator of acupoint sensitization via the secretion of tryptase, 5-hydroxytryptamine, and histamine. The Public Library of Science One. 13 (3), e0194022 (2018).
  38. Cai, F. H., Li, F. L., Zhang, Y. C., Li, P. Q., Xiao, B. Research on electroacupuncture parameters for knee osteoarthritis based on data mining. European Journal of Medical Research. 27 (1), 162 (2022).
  39. Mei, Z. G., Cheng, C. G., Zheng, J. F. Observations on curative effect of high-frequency electric sparkle and point-injection therapy on knee osteoarthritis. Journal of Traditional Chinese Medicine. 31 (4), 311-315 (2011).
  40. Xiao, G., et al. Effect of manipulation on cartilage in rats with knee osteoarthritis based on the Rho-associated protein kinase/LIM kinase 1/Cofilin signaling pathways. Journal of Traditional Chinese Medicine. 42 (2), 194-199 (2022).
  41. Wu, M. X., et al. Clinical study on the treatment of knee osteoarthritis of Shen-Sui insufficiency syndrome type by electroacupuncture. Chinese Journal of Integrative Medicine. 16 (4), 291-297 (2010).
  42. Richards, R. E., Andersen, M. S., Harlaar, J., van den Noort, J. C. Relationship between knee joint contact forces and external knee joint moments in patients with medial knee osteoarthritis: effects of gait modifications. Osteoarthritis Cartilage. 26 (9), 1203-1214 (2018).
  43. Shull, P. B., et al. Toe-in gait reduces the first peak knee adduction moment in patients with medial compartment knee osteoarthritis. Journal of Biomechanics. 46 (1), 122-128 (2013).
  44. Adouni, M., Shirazi-Adl, A. Partitioning of knee joint internal forces in gait is dictated by the knee adduction angle and not by the knee adduction moment. Journal of Biomechanics. 47 (7), 1696-1703 (2014).
  45. Kutzner, I., Trepczynski, A., Heller, M. O., Bergmann, G. Knee adduction moment and medial contact force--facts about their correlation during gait. The Public Library of Science One. 8 (12), e81036 (2013).
  46. Camacho-Cardenosa, A., et al. Resistance circuit training combined with hypoxia stimulates bone system of older adults: a randomized trial. Experimental Gerontology. 169, 111983 (2022).
  47. Babur, M. N., Siddiqi, F. A., Tassadaq, N., Arshad Tareen, M. A., Osama, M. Effects of glucosamine and chondroitin sulfate supplementation in addition to resistance exercise training and manual therapy in patients with knee osteoarthritis: A randomized controlled trial. The Journal of the Pakistan Medical Association. 72 (7), 1272-1277 (2022).
  48. Wang, H. N., et al. Effect of low-load resistance training with different degrees of blood flow restriction in patients with knee osteoarthritis: study protocol for a randomized trial. Trials. 23 (1), 6 (2022).
  49. Cheon, Y. H., et al. Relationship between decreased lower extremity muscle mass and knee pain severity in both the general population and patients with knee osteoarthritis: Findings from the KNHANES V 1-2. The Public Library of Science One. 12 (3), e0173036 (2017).
  50. Murton, A. J., Greenhaff, P. L. Resistance exercise and the mechanisms of muscle mass regulation in humans: acute effects on muscle protein turnover and the gaps in our understanding of chronic resistance exercise training adaptation. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 45 (10), 2209-2214 (2013).

Tags

تدخل Tuina ، نموذج الأرنب ، هشاشة العظام في الركبة (KOA) ، التغيرات التنكسية ، الغضروف ، الأنسجة الرخوة ، فعالية Tuina ، الآلية الأساسية ، مجدية علميا ، نموذج أرنب KOA ، Tuina جنبا إلى جنب مع طريقة تصحيح مفصل الركبة الدوار ، نطاق حركة مفصل الركبة (ROM) ، موت الخلايا الغضروفية المبرمج ، إصلاح أنسجة الغضروف ، ترميم ROM لمفصل الركبة ، التطبيق المحتمل
تدخل Tuina في نموذج أرنب لالتهاب المفاصل في الركبة
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Zhang, S., Zhang, X., Sun, G., Wang, … More

Zhang, S., Zhang, X., Sun, G., Wang, K., Qiao, Y., He, Y., Li, M., Li, H., Zheng, L. Tuina Intervention in Rabbit Model of Knee Osteoarthritis. J. Vis. Exp. (198), e65763, doi:10.3791/65763 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter