Summary

Hızlı Aktarım ve Lyme Hastalığı Patojenler lokalizasyonu için işaretleyin Gut içinde Yöntemleri

Published: February 14, 2011
doi:

Summary

Lyme hastalığı araştırma çalışmaları, genellikle bir süreç genellikle birkaç hafta sürer patojen Borrelia burgdorferi ile enfekte kenelerin nesil gerektirir. Burada saat içinde yapılabilir mikroenjeksiyon tabanlı bir kene enfeksiyonu prosedürü göstermektedir. Ayrıca keneler içinde B. burgdorferi in situ lokalizasyonu için immünofloresan yöntemi göstermektedir.

Abstract

Lyme hastalığı kene kemirgen enfeksiyon döngüsü 1 doğa korunur spirochete patojen Borrelia burgdorferi ile enfeksiyona neden olur. Kene kaynaklı bir fare modelinde 2 laboratuvar Lyme hastalığı araştırmak için geliştirilmiştir . Naif keneler B ile enfekte olabilir burgdorferi enfekte fareler üzerinde onları beslemek, döküm işlemi tamamlamak için ay birkaç hafta sürer. Bu nedenle, mikroenjeksiyon tabanlı bir prosedür olarak daha hızlı ve verimli bir kene enfeksiyonu teknikleri, geliştirme, Lyme hastalığı 3,4 çalışması için önemli bir araçtır. Bu prosedür, sadece saat keneler üretmek için gerektirir ve bir kohort keneler spiroketlerine eşit miktarlarda teslim üzerinde kontrol sağlar. Bu nesil olarak B. özellikle önemlidir fareler kullanarak doğal beslenme süreci burgdorferi keneler beslenen keneler arasında patojen yükünün değişimi% 100 enfeksiyon oranı ve potansiyel sonuçları sağlamak için başarısız olur. Ayrıca, mikroenjeksiyon, B ile keneler enfekte için kullanılabilir burgdorferi bir zayıflatılmış gerginlik farelerde enfeksiyon kuramadı ve böylece doğal keneler 5 tarafından elde edilemez durumlarda izole eder. Bu teknik aynı zamanda kenelerin diğer biyolojik malzemelerin çeşitli sunmak için kullanılabilir, örneğin, spesifik antikorlar veya çift RNA 6 telli . Bu makalede, B. in vitro yetiştirilen nymphal keneler mikroenjeksiyon gösterecektir burgdorferi. Biz de, Lyme hastalığı kene gut konfokal immünofloresan mikroskopi kullanılarak patojenlerin lokalizasyonu için bir yöntem anlatacağım.

Protocol

1. Nymphal Ixodes scapularis Keneler, Mikroenjeksiyon 1. Hazırlanması iğneler Isıtma ve bir cam mikropipet çektirmesi cihazı (Narishige) 1 mm cam kapiller tüplerin (Dünya Hassas Aletler) çekerek birkaç mikroenjeksiyon iğneler üretmektedirler. Kırılgan kılcal tüpler dikkatlice çıkarın. Mağaza bir Petri kabındaki, iğne ucu yukarı bakacak şekilde yapışkan bant çekti. 2. B. hazırlanması burgdorfe…

Discussion

Burada bakteriyel patojen B. nymphal Ixodes keneler hızlı ve etkin enfeksiyon mikroenjeksiyon tabanlı bir prosedür göstermek burgdorferi. Ayrıca B. tespiti için bir konfokal immünofloresan prosedürü tarif in situ kene gut burgdorferi. Bizim gösteri nymphal gut ibaret olmasına rağmen, benzer prosedürler, larva veya yetişkin 8,9 olarak keneler diğer gelişim evreleri için de geçerlidir . Ancak, küçük boyutu nedeniyle, teknik larvaları kullanmak …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz içtenlikle Pal laboratuvar üyeleri bu gösteri hazırlığı ile ilgili yardım için teşekkür ederim. Bu çalışma NIH / NIAID PHS hibe AI076684 ve AI080615 tarafından desteklenmiştir.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Glass capillary tubes   World Precision Instruments TW100F-4  
Vertical glass puller   Narishige PC-10  
Petroff-Hausser counting chamber   Hausser scientific 3900  
Microloader pipette tips   Eppendorf 930001007  
Femtojet microinjector   Eppendorf 920010504  
Foot control FemtJet   Eppendorf 920005098  
Phosphate buffered saline   Fisher Scientific BP665-1 Filter-sterilized

References

  1. Steere, A. C., Coburn, J., Glickstein, L. The emergence of Lyme disease. J Clin Invest. 113, 1093-1101 (2004).
  2. Barthold, S. W., Diego, C., Philipp, M. T., Samuels, D. S., Radolf, J. D. . Borrelia, Molecular Biology, Host Interaction and Pathogenesis. , 353-405 (2010).
  3. Pal, U. OspC facilitates Borrelia burgdorferi invasion of Ixodes scapularis salivary glands. J Clin Invest. 113, 220-230 (2004).
  4. Yang, X. F., Pal, U., Alani, S. M., Fikrig, E., Norgard, M. V. Essential role for OspA/B in the life cycle of the Lyme disease spirochete. J Exp Med. 199, 641-648 (2004).
  5. Zhang, X., Yang, X., Kumar, M., Pal, U. BB0323 function is essential for Borrelia burgdorferi virulence and persistence through tick-rodent transmission cycle. J Infect Dis. 200, 1318-1330 (2009).
  6. Pal, U. TROSPA, an Ixodes scapularis receptor for Borrelia burgdorferi. Cell. 119, 457-468 (2004).
  7. Barbour, A. G. Isolation and cultivation of Lyme disease spirochetes. Yale J Biol Med. 57, 521-525 (1984).
  8. Narasimhan, S. Disruption of Ixodes scapularis anticoagulation by using RNA interference. Proc Natl Acad Sci U S A. 101, 1141-1146 (2004).
  9. Narasimhan, S. A tick antioxidant facilitates the Lyme disease agent’s successful migration from the mammalian host to the arthropod vector. Cell Host Microbe. 2, 7-18 (2007).
  10. Broadwater, A. H., Sonenshine, D. E., Hynes, W. L., Ceraul, S., DeSilva, A. Glass capillary tube feeding: a method for infecting nymphal Ixodes scapularis (Acari: Ixodidae) with the Lyme disease spirochete Borrelia burgdorferi. J Med Entomol. 39, 285-292 (2002).
  11. Policastro, P. F., Schwan, T. G. Experimental infection of Ixodes scapularis larvae (Acari: Ixodidae) by immersion in low passage cultures of Borrelia burgdorferi. J Med Entomol. 40, 364-370 (2003).
  12. Fuente, d. e. l. a., Kocan, J., M, K., Almazan, C., Blouin, E. F. RNA interference for the study and genetic manipulation of ticks. Trends Parasitol. 23, 427-433 (2007).

Play Video

Cite This Article
Kariu, T., Coleman, A. S., Anderson, J. F., Pal, U. Methods for Rapid Transfer and Localization of Lyme Disease Pathogens Within the Tick Gut. J. Vis. Exp. (48), e2544, doi:10.3791/2544 (2011).

View Video