Summary
Laboratuarda üretilen Floresan nanopartiküller fizyolojik homeostazı sırasında sinyalizasyon ve interstisyel sıvı sırasında hücre gibi biyolojik sistemler görüntüleme iyon konsantrasyonları ve iyon akıları için kullanılır.
Abstract
Vücut boyunca sıkı regüle iyon homeostaz dehidrasyon gibi zayıflatıcı devletlerin önlenmesi için gereklidir. Buna karşılık 1, hücresel düzeyde hızlı iyon akıları Uyarılabilir hücreler aksiyon potansiyelleri başlatmak için gerekli olan 2 Sodyum düzenleme, hem de önemli bir rol oynar Bu durumlarda, ancak hiçbir yöntem in vivo 3 ve 4 kalsiyum probları gibi benzer detaylı sonuçlar vermemektedir intrasellüler sodyum probları, sodyum düzeyleri sürekli olarak izlenmesi için var . Bu boşlukları doldurmak için bir çaba, floresan nanosensors, sodyum konsantrasyonları in vitro ve in vivo olarak izleyebilmesi için geliştirilmiştir. 5,6 Bu sensörler, iyon seçici optode teknoloji tabanlı ve sodyum özel tanıma yumuşatıcı polimerik partiküllerin oluşur 7-9 mekanistik elemanları, pH-duyarlı fluorophores ve katkı gömülüdür. sodyum tanıma elemanı sensör içine sodyum ayıklar. 10 Bu çıkarma neden olan sensör içinde şarj tarafsızlığını korumak için bir hidrojen iyonu serbest bırakmak için pH-duyarlı fluorofor neden floresan bir değişiklik. Sodyum sensörler hücre içi yüksek konsantrasyonlarda bile, potasyum üzerinde geri dönüşümlü ve sodyum için seçici. 6 çapı yaklaşık 120 nm ve biyouyumluluk vermek için polietilen glikol ile kaplanmıştır . Mikroenjeksiyon teknikleri kullanarak, sensörler, kardiyak miyositler dayak zamansal ve mekansal sodyum dinamiklerini izlemek için gösterilmiş olan hücrelerin sitoplazma içine teslim edilebilir. Ayrıca 11 enjekte edildiğinde, aynı zamanda in vivo olarak sodyum konsantrasyonları gerçek zamanlı değişiklikler izlenir subkutan farelere 3 Burada, ayrıntılı olarak açıklamak ve floresan sodyum nanosensors imalatı için metodoloji göstermek ve kısaca bizim laboratuvar nanosensors kullanır biyolojik uygulamalar göstermektedir: sensörler hücre içine mikroenjeksiyon ve sensörler farelere subkutan enjeksiyon .
Protocol
1. Optode, hazırlanması
Optode yapmadan önce, bileşenlerin hacimde kolaylıkla ölçülebilir ve saklanabilir ki bu yüzden ihtiyacı vardır.
- 50 mg Sodyum İyonofor X (NaIX) flakon ve 50 mg sodyum Tetrakis [3,5-bis (triflorometil) fenil] borat (NaTFPB) her tetrahyrdofuran (THF) büyümüş ve 1.5 ml polistiren santrifüj tüplerine içine aliquoted olacaktır. Kimyasal bir davlumbaz, nakliye flakon THF 1 ml, 50 mg NaIX çözülür ve katı tamamen çözülmüş olduğundan emin olmak için karıştırın. Bu çözüm ul 100 10 ayrı santrifüj tüplerine aktarın. NaTFPB için tekrarlayın. THF, gecede bir kimyasal davlumbaz buharlaşması santrifüj tüplerine etiket ve depolama için 4 derecelik buzdolabı onları yere bırakın. Bu kuru NaIX ve NaTFPB 5 mg alikotları oluşturur.
- 1 ml THF Chromoionophore III (CHIII) çözülür ve 3 ml'lik cam flakon transfer. CHIII nakliye flakon herhangi bir kalıntı CHIII çözülür ve 3 ml'lik cam flakon eklemek için başka bir 1 ml THF ekleyin. Şu anda toplam 2 ml olacak. Teflon kaplı kapaklar ile iki ayrı 1.5 ml cam şişe 1 ml THF çözüm CHIII aktarın. CHIII çözümü son 5 mg / ml konsantrasyonda 4 derece buzdolabında saklayın.
Bu alikot ve çözümler optode malzeme yapmak için kullanılır.
- Teflon kaplamalı vidalı kapaklı bir 1.5 ml cam şişenin içine Pipet 66 ul bis (2-etilheksil) sebacate (DOS) - Bu optode flakon. DOS viskoz bir çözümdür böylece flakon aktarılır çözüm uygun miktarda sağlamak için dikkat edilmelidir. Hacmi DOS ~ 60 mg karşılık gelir.
- Yüksek molekül ağırlıklı poli (vinil) klorür (PVC) 30 mg tartılır ve optode flakon için bu transferi.
- Şimdi aliquoted işlevsel bileşenleri istenilen optode oluşturmak için optode flakon eklemek. CHIII, NaIX ve NaTFPB göreceli konsantrasyonları sodyum sensörü yanıt belirleyecektir. Bu konsantrasyonları, ideal Kd 150 mM, 10 mM veya ekstrasellüler konsantrasyonları Kd ile konsantrasyonları hücre içi yanıt bir sensör için ayarlanabilir. Ayrıca, büyük olasılıkla, sensörler satıcı ve kalibrasyon kimyasalların toplu değişkenlik toplu kimyasal bileşenleri her yeni parti için doğru tepki oluşup oluşmadığını belirlemek için gerekli olacaktır. Burada genellikle intraselüler sodyum ölçümleri için kullanılan konsantrasyonlarda bir sensör oluşturmak için bir yöntem tarif.
- Kimyasal bir davlumbaz, THF çözüm optode flakon 5 mg / ml CHIII 100 ul aktarın.
- THF 300 ul NaIX 5 mg çözülür ve bu ilişkilendiren NaIX 5 mg optode flakon 300 ul transfer.
- THF 500 ul 5 mg NaTFPB bir kısım çözülür ve 0.1 mg NaTFPB optode flakon, bu ilişkilendiren çözüm 20 ul transfer.
- THF 80 ul optode flakon ekleyin.
- Optode flakon çözüm PVC, DOS 60 mg, 5 mg NaIX NaTFPB, THF 500 ul CHIII 0.5 mg, 0.2 mg 30 mg içerir. PVC kadar yavaşça girdap bu flakon çözünmüş vardır. Optode kırmızı bir renk olmalıdır. THF toplam tutarı ne olursa olsun kullanılan bileşenlerin oranı 500 mcL olmalıdır flakon ekledi.
- NaIX ve NaTFPB alikot kalan THF gecelik ve yeniden-etiket tüp kimyasal doğru miktarda buharlaşmaya bırakın.
2. Nanosensors Oluşturma
- Pipet 100 ul 10 mg / ml 1,2-Distearoyl-sn-Glycéro-3-Phosphoethanolamine-N - 4 dram cam şişenin içine kloroform [metoksi (polietilenglikol) -550] (PEG-lipit). Kloroform, kimyasal bir davlumbaz buharlaşmaya bırakın. Bu süreç, çözüm, azot gazı veya ev hava ile kurutulması ile hızlandırılmış olabilir.
- Için istenen sulu çözelti PEG-lipit flakon 4 ml ekleyin. Sonicating ucu altından bir laboratuvar jack flakon yerleştirin ve ucu çözümü 7 mm derinliğinde ve 30 saniye kadar düşük sonication güç sonikasyon flakon yükseltmek. Burada ½ inç ucu çapı adım korna ile% 15 genlik kümesi Branson dijital sonifier kullanın. Sulu çözelti herhangi bir çözüm olabilir. Örneğin, biz trizma tabanı ile 10 mM HEPES pH 7,2 sensörleri yanıt belirlemek için.
- Çözüm sonicated edilirken, 0.6 ml mikrosantrifüj tüp diklorometan 50 ul optode malzeme 50 ul karıştırın. Hatta karışmasını sağlamak için pipet ile karıştırın.
- 3 dakika boyunca sonikasyon sonifier kontrolü ayarlayın. Sonication başlatın ve sonicating ise çözüm pipet içine çeker ve bir hızlı, hatta enjeksiyon 100 ul çözüm dağıtım flakonuna optode karışımı çözümü eklemek. Çözüm mavi, Depe açmalısınızkullanılan sulu çözelti bulgu.
- Sonication sonra yaklaşık 30 saniye boyunca devam sonicating ucu çözüm derin yaklaşık 2 mm jack böylece düşürmek için izin verin. Bu çözüm havalandırmak için başlamalıdır ve çözüm opak hale gelecektir. Bu adım, kalan THF ve diklorometan çözüm kaldırmak için yardımcı olur.
- Sonication tamamlandıktan sonra, 5 ml enjektör içine nanosensor çözüm yukarı çekin. 0.2 mikron şırınga filtresi takın ve nanosensor çözüm vidalı üst kapak ile bir cam şişenin içine dağıtmak. Az 10 mM sodyum içerir ve yaklaşık 9 yıldan az bir pH değerine sahiptir sulu bir çözüm ise çözüm, berrak ve mavi olmalıdır. Aksi takdirde, hiçbir renk ya da pembe olmalıdır.
3. Nanonsensor yanıt Belirlenmesi
Bu yöntem, hücre içi sodyum ölçmek için tasarlanmış nanosensors yanıtı belirlemek için kullanılır. Ekstrasellüler sodyum konsantrasyonu nanosensors için farklı konsantrasyonlarda kullanılması önerilir.
- 10 mM HEPES (0 Na) ve 10 mM HEPES (1 M Na) ve pH Bu çözümlerin her biri 7.2 trizma tabanı kullanarak 1M sodyum klorür (NaCl) stok çözümleri olun. 0, 1, 5, 10, 20, 50, 100, 200, 500, 1000 mM NaCl konsantrasyonları: çözümleri oluşturmak için 50 ml konik santrifüj tüplerine 0 Na ve 1 M Na stok çözümleri karıştırın.
- Yanıtı belirlemek için bir optik alt 96 plaka kullanın. Her bir sütun 3 kuyu sodyum konsantrasyonu 100 ul ekleyin. Bu 3 x 10 kuyu bir dizi üretecek.
- Her biri için de 100 taze hazırlanmış nanosensors ul ve bir mikroplak flüorometre yük ekleyin. Biz Moleküler Cihazlar SPECTRAmax M3 kullanın.
- Aşağıdaki dalga boylarında her iyi okuyun:
| Tahrik olma (nm) | Emisyon (nm) | Cut-Off (nm) |
| 488 | 570 | 530 |
| 488 | 670 | 610 |
| 639 | 680 | 665 |
Her bir dalga boyunda nanosensor yoğunluğu sodyum konsantrasyonuna bağlıdır. Dalga boyu kullanımı uygulamaları bağlıdır. Intrasellüler yavaş dinamikleri ölçümleri için, biz, 488 nm/570 nm (uyarma / emisyon) ve oranı iki dalga boyları için bize izin ve gürültüyü azaltmak 488 nm/670 nm kullanın.
- Geleneksel olarak, optode veri bir değerlere dönüştürülür: a = (I - I min) / (I max - I min), belirli bir sodyum konsantrasyonu yoğunluğu nerede, ben min yanıt ölçümlerde en düşük yoğunluk ve ben max yanıt ölçümleri en yüksek yoğunluğu. Yoğunluk oranı, 670 nm yoğunluğu veya α ile 680 nm'de yoğunluğu bölünmüş 570 nm ya dönüştürün.
- -1 'Den sıfır sodyum konsantrasyonu günlük, günlük sodyum konsantrasyonu karşı α çizmek için, Excel veya Menşei genellikle laboratuarda kullanılan ya komplo yazılımı kullanın. Bir sigmoid eğri yanıt sığdır. Eğri, sensör en iyi şekilde karşılık verir konsantrasyon temsil = 0.5 α az sodyum konsantrasyonunun hesaplanması.
- Nanosensors ilgi sodyum konsantrasyonu etrafında optimal cevabı oluşturmak için optode CHIII, NaIX ve NaTFPB oranı ayarlayın.
4. Hücre içi görüntüleme
- Hücre içi ölçümler için, suda 5 mg / ml glikoz nanosensors yapılır ve hücrelerin içine microinjected.
- Büyü ya da bir bardak alt yemek veya bir bardak lamel alt ile bir görüntüleme odası hücreleri aktarmak.
- Net medya ya da Tyrode çözümü hücrelerin inkübe edin. Görüntüleme odası veya çanak Epifloresans bir mikroskop üzerine monte edin. Biz Zeiss LSM 7 konfokal mikroskop kullanıyoruz.
- Bir pipet çektirmesi ile kılcal cam çekin. Biz son bir ucu çapı yaklaşık 300-500 nm, 1 mm OD, 0.78 mm ID cam kahverengi p-97 alevli bir Sutter kullanın.
- Dolgu nanosensor, bir şırınga ve Hamilton iğne kullanarak çözüm, ya da bir mikrotip yükleyici ve bir pipet pipet.
- Pipet bir micromanipulator bağlı bir basınç kontrollü enjeksiyon sistemine bağlı bir tutucunun içine monte edin. Burada bir Burleigh EXFO PCS 6000 mikromanipülatör ve medikal sistemler şirketi enjektör kullanın.
- Hücrenin üstüne pipet Alt ve sitoplazma içine, bazen de delmek için membran manipülatör tutucu "tap" için gereklidir. Nanosensor çözüm enjekte edilir ve hızlı pipet geri.
5. in vivo görüntüleme
Tüm işlemler, Northeastern Üniversitesi Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır .
- Nanosensorsin vivo olarak, ekstrasellüler görüntüleme fosfat tamponlu tuz ve sodyum konsantrasyonu 135 mM sodyum optimal bir yanıt var ayarlanabilir.
- Enjeksiyon set-up ve floresan nanosensors farelerde görüntüleme için, IVIS Lumina II ve ilişkili anestezi ünitesi kullanır. Indüksiyon ve görüntüleme odaları dezenfekte edin. Indüksiyon odasına yerleştirin CD1 çıplak farelerin (yaklaşık 20g) ve izofluran için bunları ortaya çıkarmak. Uygulandığında izofluran ve oksijen akış hızı yüzde farelerin türleri ve ağırlığına bağlı olarak değişir. Fareler tamamen anestezi olmak için bekleyin.
- Fareler anestezi sonra fareler, indüksiyon odası ve yerden görüntüleme odasına çıkarın. Fareler anestezi altında tutun. Her fare için, istenilen enjeksiyon alanları dezenfekte edin.
- Tüm hava kabarcıklarını çıkarmak için emin olun nanosensors 10 mcL ile steril bir 31G insülin enjektörü doldurun.
- Forseps kullanarak, istenilen enjeksiyon yerinde fare sırtı boyunca cilt kat küçük bir kavramak. Cilt açgözlü iken, yukarı gelecek şekilde eğim ve cilde paralel iğne ile cilt içine şırınga takın.
- Sensörler enjekte önce, bir kan damarı içine iğne takılı olduğundan emin olmak için şırınga pistonu geri çekin. Sonra, yavaşça iğne doğru hareket eder ve deri içinde bir cep oluşturmak için sol. Bu sensörleri enjeksiyon yerinde sızıntı neden geri basınç en aza indirecektir. Sensörler enjekte şırınga ve yavaşça çıkarın.
- Enjeksiyon yerinde hafifçe basınç uygulayın ve enjeksiyon yerinde dışarı sızdırılmış olabilir herhangi bir çözüm silerek temizleyin. Bu cilt içine enjekte sensörlerden gelen floresan en aza indirecektir.
- Istenen enjeksiyon alanların sayısı ulaşana kadar tekrarlar 5.7 ile 5.4 adım. Arka sağ ve sol tarafta eşit aralıklı altı enjeksiyon siteleri tavsiye edilir. Iğne deri içine eklemek için zor olur, her bir fare için, iğneler değiştirin. İğneler fareler arasında paylaşılan olmamalıdır. Fareler arasında hastalık bulaşma veya çapraz kontaminasyon en aza indirecektir.
- Görüntüleme sodyum floresan sensörleri için, en yakın 640 nm/680 nm (uyarma / emisyon) nanosensors spektrumu uyumlu ve aynı zamanda cilt otofloresans en aza indirmek filtre setlerini kullanarak farelerde aydınlık ve floresan görüntü kazanır.
6. Temsilcisi Sonuçlar
Şekil 1 sodyum beş farklı nanosensor setleri cevabı eğrileri. Her set CHIII, NaTFPB, PVC ve DOS aynı miktarda ama NaIX değişen miktarlarda farklı optode formülasyonları nanosensors temsil eder. Veri 639/680 nm şiddetlerini kullanarak α değerlere dönüştürülür. Veri Kökeni kullanarak monte sigmoid eğri, açıklık için atlanmış 3, hata çubukları ortalama. Bu yanıt eğrisi, maksimum kullanılan sodyum konsantrasyonu 500 mM oldu. Sodyum sodyum nanosensors Kd 10 mM (turuncu elmas) hakkında 150 mM (siyah kareler) arasında değişmekteydi.
Şekil 2 yenidoğan kardiyak miyositler Injected. Hücreler, coverglass kültür mikroskop üzerine monte edilmiş ve sodyum nanosensors ile enjekte edildi. Floresan (639 nm uyarım), aydınlık ve bindirme gösterilir. Not bazı sensör kümeleme oluşur, ancak hücreleri sensörleri sitoplazmada her tarafına nüfuz etmiş ve hiçbir nükleer yükleme var, normal morfoloji var.
Şekil 3 sodyum nanosensors farelerin Subkutan enjeksiyon. Çıplak farelerin subkutan uzaya sodyum nanosensors Dokuz farklı enjeksiyonları yapıldı. Parlak bir alan ve floresan görüntüleri (640/680), üst üste.
Discussion
Nanosensors oluşumu, 10 dakikadan daha optode çözümü yapıldıktan sonra artık almalı ve PEG lipid kurutulur. Optode sadece ihtiyaç duyulan hızlı zaman yapılabilir değil, ancak 4 derece C saklandığı zaman, bu ay için kararlı olabilir. Nansensors, bir kez kuruldu, haftada en az bir çözüm kararlı olduğunu göstermiştir. Ancak, ışıktan nanosensors bloke ederek bu zaman içinde photobleaching önlemek için dikkat edilmelidir 6 sodyum nanosensors göstermiştir iken, optodes edilmiştir gibi potasyum ve klorür. 10,12 gibi en biyolojik ilgili iyonları Ayrıca glukoz gibi küçük moleküller için bu teknolojiyi daha da genişlettik yarattı. 13
Farklı analitler izlemek için nanosensors üreten yanı sıra, bu nanosensors çoğu biyolojik deneyler faydalı kılan diğer değişiklikler için uygun. Örneğin, yüzey kaplama, poli (etilen glikol), bu durumda kolayca suda çözünür A'nın herhangi bir molekül ile değişmiş olabilir. Bu farklı uygulamalar veya hedefler için bu nanopartiküller functionalizing imkanı sağlar. Nanoparçacıkların boyutu, yüzey kaplama, sonication yoğunluğu veya kullanılmış olan solvent değiştirerek ayarlanabilir.
Kalsiyum floresan göstergeler, hücre içi kalsiyum sinyalizasyonu belirlenmesinde çok değerli olan, ancak, hiçbir sodyum hassas boyalar aynı ideal özelliklere sahiptir. Optode görüntüleme iyonları intraselüler yıldır geliştirilmekte olan alternatif bir yöntem sağlamak için tasarlanmıştır nanopartiküller 14 Biz umarım sodyum sinyalizasyon hücresel fonksiyonları ve nasıl etkilediğini anlamak için bir araç sağlayacaktır intrasellüler sodyum görüntüleme için özel nanosensors oluşturmak için bu, daha önceki araştırma üzerine inşa bazı hastalıklara neden sinyal değişiklikler.
In vivo olarak floresan nanosensors kullanımı, gerçek zamanlı izleme analitler kan çekilir. 3 Sodyum ve yukarıdaki teknoloji tabanlı glikoz nanosensors sırasıyla, sodyum ve glikoz değişiklikleri izlemek gösterilmiştir gibi diğer yöntemlere göre minimal invaziv bir alternatif sunuyor in vivo. 3,13 Ancak, şu anda bu yöntem bir izleme aracı olarak sınırlamalar var. Örneğin, sensörler cilt arka otofloresans en aza indirmek için 15 İkinci yeterince yakın kızılötesi kızıla doğru kaydırılır bir yelpazede fluorofor içermelidir, mevcut enjeksiyon tekniği bu neden olabilir nanosensors tek tip enjeksiyon üretmek değil enjeksiyon derinlemesine değişimi gibi hataları. Bu kısıtlamalara rağmen, bu floresan nanosensors geliştirilmesi ve başarılı bir gösteri bu sensörler hastanın sağlık izlenmesi için paha biçilmez bir araştırma aracı ve yöntemi yapabilir.
Disclosures
Çıkar çatışması ilan etti.
Acknowledgments
JMD ve MKB Northeastern Üniversitesi (NSF hibe DGE-0.504.331 NCI ve fon), IGERT Nanotıp Fen ve Teknoloji programı ile finanse edilmektedir. Bu çalışma aynı zamanda Genel Tıp Bilimleri Hibe R01 GM084366 Sağlık Ulusal Enstitüsü Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından finanse edildi. Ayrıca Saumya Das ve Boston BIDMC Anthony Rosenzweig hayvan protokol gelişimine yaptığı katkılar için, kardiyak miyositler ve Kevin Nakit sağlamak için teşekkür ederiz.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| IVIS Lumina II Instrument Package | Caliper Life Sciences | 126273 | |
| CD-1 Nude Mice | Charles River Laboratories | Strain Code: 086 | Immunodeficient |
| Insulin syringes | BD Biosciences | 328438 | 3/10 ccmL , 8mm, 31G |
| High Molecular Weight PVC | Sigma-Aldrich | ||
| DOS | Sigma-Aldrich | ||
| CHIII | Sigma-Aldrich | ||
| NaTFPB | Sigma-Aldrich | ||
| NaIX | Sigma-Aldrich | ||
| Thin walled capillary glass | Sutter Instrument Co. | ||
| PEG lipid | Avanti Polar Lipid, Inc | ||
| Table 1. Provides a list of chemicals and equipment used in this procedure. All common chemicals not listed were purchased from Sigma. | |||
References
- Adrogue, H. J., Madias, N. E.
- Kim, D. Y. BACE1 regulates voltage-gated sodium channels and neuronal activity. Nat Cell Biol. 9, 755-764 (2007).
- Dubach, J. M., Lim, E., Zhang, N., Francis, K. P., Clark, H. in vivo sodium concentration continuously monitored with fluorescent sensors. Integr Biol (Camb). , (2010).
- Minta, A., Tsien, R. Y. Fluorescent indicators for cytosolic sodium. J Biol Chem. 264, 19449-19457 (1989).
- Dubach, J. M., Harjes, D. I., Clark, H. A. Ion-selective nano-optodes incorporating quantum dots. Journal of the American Chemical Society. 129, 8418-8418 (2007).
- Dubach, J. M., Harjes, D. I., Clark, H. A. Fluorescent ion-selective nanosensors for intracellular analysis with improved lifetime and size. Nano Letters. 7, 1827-1831 (1021).
- Schaffar, B., Wolfbeis, O.
- Seiler, K. Characterization of sodium-selective optode membranes based on neutral ionophores and assay of sodium in plasma. Clin Chem. 37, 1350-1355 (1991).
- Zhujun, Z., Mullin, J., Seitz, W. Optical sensor for sodium based on ion-pair extraction and fluorescence. Anal Chim Acta. 184, 251-251 (1986).
- Bakker, E., Buhlmann, P., Pretsch, E. Carrier-Based Ion-Selective Electrodes and Bulk Optodes. 1. General Characteristics. Chem Rev. 97, 3083-3132 (1997).
- Dubach, J. M., Das, S., Rosenzweig, A., Clark, H. A. Visualizing sodium dynamics in isolated cardiomyocytes using fluorescent nanosensors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 16145-16150 (2009).
- Harjes, D. I., Dubach, J. M., Rosenzweig, A., Das, S., Clark, H. A. Ion-Selective Optodes Measure Extracellular Potassium Flux in Excitable Cells. Macromolecular Rapid Communications. 31, 217-221 (2010).
- Balaconis, M. K., Billingsley, K. L., Dubach, J. M., Clark, H. A. Pittsburgh Conference on Analytical Chemistry and Applied, , Forthcoming.
- Park, E. J., Brasuel, M., Behrend, C., Philbert, M. A., Kopelman, R. Ratiometric optical PEBBLE nanosensors for real-time magnesium ion concentrations inside viable cells. Anal Chem. 75, 3784-3791 (2003).
- Frangioni, J. V.
