Summary
기록 칼슘 활동을위한 칼슘 표시기 염료와 subventricular 영역 (SVZ) 세포를로드 할 방법이 설명되어 있습니다. 출생 후의 SVZ는 신경 전구 세포와 neuroblasts 포함 단단히 포장 세포가 포함되어 있습니다. 오히려 목욕로드를 사용하는 것보다 우리가 더 나은 염료 확산을 허용 조직 내부의 압력에 의해 염료를 주입했다.
Abstract
subventricular 영역 (SVZ)는 출생 후의 뇌의 두 neurogenic 지역 중 하나입니다. SVZ는 astrocytic 기능 (SVZ의 astrocytes라고도 함), neuroblasts, 그리고 중간 전구 세포와 신경 전구 세포 등의 밀도가 높은 포장 세포가 포함되어 있습니다. SVZ에서 태어난 Neuroblasts는 tangentially가 interneurons로 차별화 후각 망울에 큰 거리를 마이그레이션. 접착 분자와 diffusible 신호를 통해 세포 신호는 제어 neurogenesis에 중요한 역할을 재생합니다. 이러한 신호의 대부분은 세포 내부와 사이에 정보를 전송 세포 칼슘 활동을 실행. 칼슘 활동은 세포 신호의 활동 따라서 반사하고 SVZ 세포 간의 기능적 세포 신호를 이해 할 수있는 최적의 방법입니다.
칼슘 활동이 성숙 astrocytes 뉴런 등 많은 다른 지역과 셀 유형,에서 공부하고 있습니다. 그러나, 로아에 전통적인 방법칼슘 표시기 염료 (예 : 욕조로드)와 D 세포는 모든 SVZ 세포 유형을로드에 효율적 아니 었습니다. 사실, SVZ의 세포 밀도는 조직 내부에 염료 확산을 precludes. 또한, 시상 조각을 준비하는 것은 더 나은 특히 SVZ 세포, 뱃 부리 장식이있는 - 꼬리 축에 neuroblast 이주의 흐름의 3 차원 배열을 유지합니다.
여기, 우리는 SVZ, 칼슘 표시기 염료와 SVZ 세포의 로딩, 시간 경과 영화와 칼슘 활동의 인수를 포함하는 시상 부분을 준비하는 방법을 설명합니다. 우리는 사용 Fluo-4는 조직 내부 압력 응용 프로그램을 사용하여 SVZ의 astrocytes를로드하는 염료입니다. 칼슘 활동이 구별 개별 셀에 대한 정확한 해결책을 허용 스캔 공 촛점 현미경을 사용하여 기록되었다. 우리 접근 방식은 성인 hippocampal subgranular 영역과 배아 neurogenic 구역 등 다른 neurogenic 영역에 적용됩니다. 또한, 염료 다른 유형의 수설명 방법을 사용하여 적용 할 수.
Protocol
1. 솔루션, 해부, 그리고 Vibratome의 작성
- 솔루션은 올바른 osmolarity와 산도 (표 1)에서 준비해야합니다. 인공 뇌척수 (ACSF)에 비해 분해 솔루션은 나트륨과 칼슘의 낮은 농도와 마그네슘의 높은 농도로 준비가되어 있습니다. 이 썰기 동안 excitotoxicity 효과를 최소화하는 것입니다.
- 모두 해부 및 ACSF 솔루션은 95% O 5분의 2 % 7.3 원하는 pH를까지 적어도 10 분 동안 버블 링에 의한 CO 2.로 포화되어 있어야합니다
- 트레이에 얼음 목욕을 준비합니다. 얼음 욕조에서 해부 접시를 놓고 분해 솔루션을 작성하십시오. 버블 절개 판입니다.
- 얼음 목욕을 만들어 vibratome를 준비합니다. 얼음 욕조에 sectioning 요리를 놓고 해부 솔루션, 풍선과 함께 요리를 입력합니다.
- 그 솔루션을 보장하기 위해 ACSF과 거품과 챔버를 가지고있는 슬라이스를 작성하는 것은 적절 관계없이 aerated 수 있습니다조각이 배치되는 위치의.
2. 뇌 조직의 제거
급성 뇌 조각은 젊은 쥐와 건강 경향이 있습니다. 설치류에서 출생 후의 SVZ의 세포 구조는 출생 후의 일 (P) 20 1 시경 발전되어 있습니다. 따라서, 우리는 P20-P30의 마우스 세에 우리의 실험을 제한하려고하지만 3 개월로 이전과 같은 마우스에서 성공 실험을 수행했습니다. 조직의 취급 전반에 걸쳐, 하나, 기계적 움직임과 뇌에 압력을 최소화 냉각 조건을 유지 및 솔루션 최대한 신속하게 다음과 희생에 SVZ를 노출주의해야합니다.
- pentobarbital의 주입 후, 마우스는 급속하게 목이 잘 렸나하고 있습니다. 털은 제거되고 절개는 두개골의 기지를 통해 이루어집니다. 머리 그 다음 해부 솔루션들로 가득 찬 트레이에 위치합니다.
- 집게로 머리를 안정 있지만, 지속적인 상처는 두개골 주위에 만들어 때로는 microsc로 중간 선까지issors. 조직과 접촉을 최소화 할주의하십시오. 후각 망울이 SVZ에서 신생아 뉴런의 최종 목적지이기 때문에, 하나는 특히이 지역 주변의 뼈를 제거하는 동안 그 지역을 보존 염두에두고 있어야합니다. 두개골 주위를 한 Microscissor 상처는 두개골 쉽게 제거 할 수 있도록하기 위해, 등쪽의 옆에 있어야합니다.
- 뇌를 놓인 두개골의 제거는 이제 뇌 아래에있는 뼈로부터 분리되어 있습니다. 이전 단계에서 상처가 제대로 된 경우,이 놓인 뼈는 핀셋이나 집게로 쉽게 제거 할 수 있습니다.
- 여전히 집게로 머리를 누른 상태에서, 하나는 깔끔하게 다음과 같은, 썰기 이전에 뇌 조직의 여러 조각을 제거하는 수술 블레이드를 사용할 수 있습니다. 코로나 컷은 람다 수준에서 만들 수 있습니다. 시상 상처는 SVZ에 측면 뇌의 양쪽에 만들 수 있습니다. 보수적 인 추정은 중간 선에서 ~ 2.5 mm 것입니다. 원하는 경우, 뇌도 여기 hemisected 할 수 있습니다. 이러한 상처는 모두 것처럼 것조직의 장착 itate과 뇌 썰기 때 SVZ가 더 빨리 도달 할 수 있습니다. 그 약은 뇌 (예 : 밀어 또는 안 나오는데)에 기계적 힘의 최소한의 금액을 발휘하는 것을 잊지하는 것이 중요합니다.
3. 급성 뇌 슬라이스 준비
- , 다음 단계를 준비 조직을 마운트하는 데 사용되는 슈퍼 접착제는 나막신의 무료 vibratome 판에 적용 할 준비가되어 있는지 확인합니다. 그 약은 뇌를 손상시키지 않고 최대한 빨리 가능한 이동하는 것이 중요합니다.
- 뇌 세포는 동시에 신경을 분리하는 동안 기본 뼈에서 조직을 분리 아래에에서 갔었 할 수 있습니다.
- 조직은 마운트 플레이트에 접착하고 vibratome에 표시됩니다. SVZ의 뱃 부리 장식이있는 - 꼬리 해부학로 인해 우리는 neuroblasts의 이동 경로, glial 집, 그리고 대부분이 방향으로 정렬되어있는 vasculature를 보존으로 시상 조각을에 초점을 맞추고 있습니다. 하나는 MO 중 하나를 수행 할 수 있습니다중간 선이나 SVZ에 측면 시상 삭감을에 의해 생성 된 평면 표면에 조직을 unt. 선택 단계는 슬라이스를 잘라야으로 블레이드에 받침 역할을하는 조직 뒤에 3 % 아가로 오스 블록을 배치하는 것입니다. 우리는 우선적으로 시아 노 아세틸렌 기반의 슈퍼 접착제를 사용했습니다.
- 오일을 제거하고 증류수로 씻어하기 위해 에탄올과 칼을 씻어. 블레이드 홀더에 칼을 놓으십시오. vibratome에 블레이드 홀더를 탑재합니다.
- 슬라이스 당 250-350 μm의 두께로 조직을 잘라 vibratome 설정을 조정합니다. 이 고주파 진동 및 낮은 속도를 사용하여 절단하는 것이 중요합니다.
- 점진적으로 조직을 통해 섹션을 참조하십시오. 후각 망울의 모양은 사람이 가장 옆 조각은 어느 지역을 포함으로 시상 슬라이스의 SVZ 근처에있는 좋은 지표입니다. 찾아 다른 랜드 마크 심실과 SVZ가있는 아래의 코퍼스 callosum의 증점 안정제가 포함되어 있습니다. SVZ 더 측면 sagit에서 처음 나타납니다탈 조각. RMS는 중간 시상 슬라이스에 표시됩니다.
- 끝이 끊어과 플라스틱 파스퇴르 피펫으로 SVZ를 포함하는 슬라이스를 제거합니다. 슬라이스 지주 챔버에 받고 있습니다. 우리는 종종 우리가 작업 하루에 사용할 수있는 것보다 더 많은 조각을 얻습니다. 그러나, 조각이 SVZ를 포함하는 세포의 양에 따라 달라질 수 있습니다. 이 영상에 원하는 하나를 찾기 위해 몇 조각을 찾아하는 것이 필요합니다.
4. 현미경과 염료의 작성
조각은 절개와 썰기를 복구 할 수 ACSF에 1 시간 배양 시간을 필요로합니다. 몇 가지 단계이 슬라이스 복구 기간 동안 수행 할 수 있습니다.
- 칼슘 염료 및 / 또는 약물 응용 프로그램에 대한 피펫의 준비
- 유리 피펫은 직경 팁 길이 (~ 2 ㎜)과 재관류 챔버과 접촉을 방지 각도 (~ 16 ° 피펫 홀더 용)에 2-3 μm의 팁이 필요합니다 및 게재 위치에 대한 공간을 수 있습니다목표.
- 하나는 일반적으로 실험을 매일 6-8 압력 피펫을 준비 할 수 있습니다.
- 칼슘 염색 준비
- 작업 솔루션을 (욕조의 4-5 μM, 250 μM 압력 응용 프로그램) 준비 할 때, 셀에 DMSO의 최소 금액을 표시하는 것이 가장 좋습니다. 이것은 매우 집중 주식을함으로써 달성 될 수있다. 예를 들어, Fluo - 4, 50 μg을 포함 한 튜브는 하루에 사용됩니다. 하나는 DMSO의 Pluronic F-127 20 % 솔루션의 4.6 μl를 추가하여이 나누어지는의 10 MM 주식을 만들 수 있습니다.
- 현미경 설정 (그림 2)를 준비합니다.
- 솔루션 흐름에 연동 운동의 펌프를 사용 이미지 드리프트를 최소화있었습니다. ACSF는 재관류 라인을 통해 실행하고 풍선 무료입니다 보장 할 수 있도록 사전에 연동 운동의 펌프를 실행합니다.
- 재관류 챔버에 튜브 입구를 설정하고 누수가없는 보장합니다.
- 엔터프라이즈 네트워크에 진공 팁을 위치솔루션은 재관류 챔버에서 흡입되는 것을 우레. 그 목적은 적절한 작동 거리에 몰두하지만, 이러한 그 솔루션은 챔버 넘치다 수 있도록 높은되지 않습니다 않도록 적절한 수준으로 설정되어 있는지 확인합니다. 솔루션의 낮은 수준은 흐름 왜곡을 최소화합니다. 상수 흡인도 steadiness를 수신하여 확인할 수 있습니다.
5. 염료 로딩
이 방법은 다른 원고 2에 자세히 설명되어 있습니다. 그 안에 그림을 참조하시기 바랍니다.
- 목욕 로딩 염료
- 염료의 1-2 ML 작업 솔루션을 확인하십시오. AM Fluo-4를 들어, 4-5 μm의 농도는 SVZ의 neuroblasts을 라벨에 적합합니다.
- 조각 먼저 이미 ACSF로 가득 메쉬 바닥과 35mm 문화 요리에 전송됩니다. 동시에 C를 추가하는 동안, 부드럽게 ACSF를 제거하는 3 ML 플라스틱 전송 피펫을 사용하여 솔루션을 교체alcium 염료 솔루션을 작동.
- 5 % CO 2 가스 제어 된 환경에서 30-60 분 동안 37 ° C에서 알을 품다.
- 세포를 입력하지 않은 염료를 씻어하는 ACSF이 가득한 가지고 챔버에 다시 슬라이스를 놓습니다. 또한, 하나는 ACSF을 실행하는 현미경 재관류 챔버에 직접 배치 할 수 있습니다. 이 세차 기간은 30-45 분입니다.
- 재관류 챔버에 슬라이스를 전송합니다.
- 염료의 압력 응용 프로그램을
- 홀딩 챔버에서 현미경 설정에서 재관류 챔버에 슬라이스를 전송합니다.
- micromanipulator에 250 μM 및 장소 인 작업 솔루션으로 유리 피펫을 입력합니다.
- 관심 지역에 피펫을 낮 춥니 다. 피펫은 끝이 떨어져 녹음 지역에서 두 슬라이스 표면 아래에 몇 마이크로 미터 슬라이스 표면 위 또는 매장 몇 마이크로 미터이지만, 그러한 배치 할 수 있습니다. 피펫의 각도는 affe 안중부 표준시로드 효율. 슬라이스 표면 아래의 이미지는, 우리는 이미징 비행기 아래의 피펫 팁을 배치하는 것이 더 나은 원하는 이미지 영역을 레이블 것을 발견합니다.
- 이 <3 PSI이되도록 압력이 염료를 적용하면 Picospritzer을 설정할 수 있습니다. 이 피펫 팁 직경의 다양성에 따라 달라질 수 있습니다 때문에 우리는 염료 확산의 볼륨을 추정하지 않은, 압력을 적용하고, 염료가 주입되는 조직의 밀도. 눈으로 평가로 우리가 원하는로드를 달성 할 때까지 우리는 간단하게 적용 할 수 있습니다. 끝이 슬라이스 표면 바로 아래에 위치 특히, 응용 프로그램 중에 슬라이스에 손상을 최소화합니다. 1-2 분 동안 적용됩니다. 때때로 반복 응용 프로그램은 눈으로 평가로 라벨에 따라 필요합니다. 이 농도 및 응용 프로그램 기간 동안, 우리는 표면 응용 프로그램을 아래 우선적으로 astrocytes에 이름표를하면서 염료의 표면 응용 프로그램이 우선적으로 neuroblasts에 이름표를 찾습니다. 그러나, 500 μM에서> 3 분 응용 프로그램은 neuroblasts 표시되며에 관계없이 끝이 위 또는 아래에있는 슬라이스 표면 (JC Platel, 게시되지 않은 관찰)입니다 여부. 30-45 분에 대한 세척 및 슬라이스 복구를 위해 허용합니다.
6. 칼슘 활동 공 촛점 이미징
- 이러한 4 배 또는 10 배와 같은 낮은 전력 목적으로 첫번째 관심 지역을 찾아보세요. 높은 전력 목표로 전환하기 전에 필드의 중앙에 놓습니다. 이 시점에서, 하나는 차등 간섭 대비 (DIC)에서 SVZ 세포의 모양을 지적하여 일반 슬라이스 건강을 평가 할 수 있습니다. 건강한 세포는 원형 통통 나타납니다. 전부 또는 밝은 형광 (죽어 셀)에서 노로드로해야로서뿐만 아니라, 건강한 세포는 희미한 Fluo-4 로딩을 표시합니다.
- 관심 지역에 물 침지 목표를 낮추고, 이는 현재 염료로드됩니다. 40x는보기의 넓은 필드를 제공하고 더 피펫에 액세스 할 수 있지만, 40x 또는 60x 목표 중 하나는 우리의 필요에 따라 적절한되었습니다. 하면 아래의 이미지표면, 우리는 종종 3 dimentional 건축과 세포의 건강을 더 잘 보존되어 슬라이스 표면 아래에 최소 15 μm를 이동합니다.
- 재관류 및 진공 충분히 작동하는지 확인합니다.
- 그 시간 경과 해상도와 공간 해상도가 원하는 속도로 설정되어 있도록 현미경을 설정하십시오. 공 촛점 현미경를 들어, 이러한 요소는 일반적으로 시스템의 스캐닝 특성으로 인해 공간 해상도의 손실 결과 시간적 해상도의 증가로 균형을해야합니다. 칼슘 활동을, 우리는 512x512 픽셀 해상도를 가진 약 매초마다 프레임을 이미지로하고 있습니다. 별도로 구입 한 여러 채널이 필요하면,이 또한 수집 속도에 영향을 미칩니다. 동영상의 기간 (2-10 분)을 설정합니다.
- 실행을 시작합니다. 약리 연구를 수행하는 경우, 적어도 5-10 분 동안 antagonists 또는 비 desensitizing agonists에 씻어 후 5-10 분의 또 다른 영화를 확인하십시오. 수용체 감도를 줄이다 수 있습니다 Agonists가 심하게 PR을 사용하여 같은 적용 할 수 있습니다micromanipulator에 의해 제어 피펫을 essure.
7. 칼슘 분석
분석은 우리가 투과시키는 출판물에 2-4 설명하는 표준 절차를 따릅니다. F 0 (즉, 기준) 및 F 관심 (ROIs)의 지역의 모든 전역 및 각 투자 수익 (ROI)에 측정 한 평균 형광 강도, 각각 있습니다. 형광의 변화는이 F / F 0 증가> 15 %입니다 경우 칼슘 2 + 증가로 간주되었다. 세포 내 칼슘 2 + 변경 사항이 Calsignal 5를 사용하여 계산 하였다.
8. 대표 결과
우리는 위 다른 2-4,6 설명 염료로드 프로토콜에 따라 SVZ 세포의 선택적 로딩을 얻을 수있었습니다. 대부분 Fluo-4시 (각각 4-5 또는 250 μM) 라벨 neuroblasts의 슬라이스 표면에 목욕로드 또는 압력 응용 프로그램입니다. 압력 응용 프로그램은 neurob을로드 할 수 있지만보다 신속하게 하나의 슬라이스에 목욕을로드하는 것보다 지속, 목욕로드는 여러 조각의 동시로드 할 수 있습니다. Google은 철새 행동 4,7, (2)의 형태, sulforhodamine 101 (3) 부정적 착색, astrocyte 특정 염료 3 (4) 긍정적 인 염색법과를 표시 여부 (1)에 의해 neuroblasts로 분류 세포의 신원을 확인 DCX-DsRed 표현 (JC Platel, 게시되지 않은 관찰). Neuroblasts은 생리적 온도 4,7-9에서 (60 μm / 시간의 평균) 빠르게 마이그레이션 있지만 운동은 쉽게 실온에서도 볼 수 있습니다. neuroblasts의 움직임은 우리의 영화는 일반적으로 기간이 짧은 때문에 지역 수준의 관심 (ROI)은 칼슘의 활동을 추적하기 위해 배치와 관련이있는 문제를 일으킬하지 않습니다. 그러나, 약물 솔루션 교류 동안 같은 긴 대기 기간, 동안, 수사관들이 제어 및 치료 기간에 ROIs 일치하도록주의해야합니다. neuroblasts은에 또는 내가 밖으로 이전하는 것은 흔하지 않은 일은 아니지 maging 필드 또는 초점 비행기.
슬라이스에 제한된 기간 (<2 분)에 대한 깊은 Fluo-4시 (250 μM)의 압력 응용 프로그램은 우선적으로 SVZ의 astrocytes에게 2 레이블. Astrocyte 라벨은 특히 우리가 최근 3 설명이 혈관에 투영 및 endfeet의 존재에 의해, sulforhodamine 101의 형태로 긍정적 인 상표에 의해 확인되었습니다. 이러한 방법을 사용하여, 우리는 SVZ의 neuroblast와 astrocyte 인구 (그림 1) 모두에 자발적인 활동을 관찰했다. astrocytes의 활동은 종종 혈관 3 참여 파도의 형태로 걸립니다. 또한, 분석으로 칼슘 이미징을 사용하여 약리 agonists의 응용 프로그램이 공개 또는 GABA의 표현 neuroblasts 4 neuroblasts과 astrocytes 6 수용체, AMPA와 NMDA 수용체가를 확인했습니다.
그림
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1 그림. astrocytes에 칼슘의 활동을 확산. (A) 대표는 칼슘 활동의 시간 경과 기록에서 이미지를 평균 한 값입니다. SVZ의 Astrocytes이 Fluo-4의 압력 응용 프로그램과 함께로드 된 것은 슬라이스로 깊이입니다. 영화는 0.75의 시간 단계에 인수되었다. 관심 영역 (ROI) 활동을 전시 셀 위에 배치됩니다. (B) ROIs의 흔적은 (A)에 도시 된 영화의 세포 위에 위치. 흔적은 이동 평균과 표준화를 필터링되었습니다. 수직 규모는 2를 나타냅니다 X ΔF / F는 신호 강도이며, F 0의 평균 기준 신호와 ΔF = FF 0 F 0.
그림 2. 재관류 시스템의 사진. 튜브의 한쪽 끝은 95% O 5분의 2 % CO 2 가스-P에 잠겨있다erfused 솔루션입니다. 솔루션은 다음 연동 운동의 펌프 (미도시)에 의해 튜브를 통해 목욕 챔버에 perfused 있습니다. 다른 쪽 끝은 플랫폼에 장착 목욕 챔버의 솔루션 입구에 삽입됩니다. 흡인 팁은 다음 챔버의 솔루션 콘센트에 연결 및 솔루션 높이를 결정하는 수준에서 설정됩니다. 콘센트에서 흡인 팁은 챔버에서 폐기물 용기에 솔루션을 aspirates 진공 라인에 연결되어 있습니다. 재관류 시스템은 시각적 명확성을 위해 현미경 단계를 표시됩니다.
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Discussion
SVZ 세포의 칼슘 이미징은 neuroblasts 10 모두 neuroblasts 및 astrocytes 4,6,8 및 astrocytic 칼슘 웨이브 3 수용체 채널 표현의 자발적인 활동에 패턴을 공부하는 데 사용되었습니다. SVZ의 세포 중 유치 또는 glial 속성을 가지고 있기 때문에, 그들은 성숙 네트워크 활동을 나타내는 전압 잠재적으로 밀리 변경이 지역에서 적용되지 않습니다 즉, 행동 할 가능성 11,12를 해고하지 않습니다. 따라서 느린 칼슘 이벤트 (초 순서)에 캡처하는 것은 생물학적으로 의미뿐만 아니라, 어쩌면이 세포의 활동의 관련성이 가장 높은 형식입니다.
수사 당국은 특히 슬라이스 건강을 기원하며,이 절차의 여러 단계를 염두에두고 있어야합니다. 솔루션의 부적절한 결정은 좋지 수질 (솔루션을 만들기 위해 사용), 느리고 부정확 한 dissections, 그리고 조직을 절감 더러운 면도날의 사용은 모든 해로운 EF를 가질 수활동에 fects.
우리는 Fluo - 오전 4시의 사용을 논의 중에 칼슘 지표의 사용에 관해서,으로, 우리는 Fluo-4보다 높은 기준을로드하는 수준이 오레곤 그린 BAPTA-AM을 포함한 서로 다른 상업용 염료를 시도했습니다. 다른 염료에 비해보다 큰 동적 범위 때문에 우리는 Fluo-4에 초점을 선택하지만, 다른 조사는 목적에 대해 서로 다른 염료가 유리 할 수도 있습니다. 모든 염료는 특정 세포 유형에 대한 서로 다른 선호도가있을 수 있습니다. 로딩 중 농도 및 방법은 각 염료에 맞게 변경해야 할 수 있습니다. 우리는 우선적으로 SVZ astrocytes와 건강, 깊이 세포를 라벨을로드 압력을 사용했습니다. 고려해야 할 금융 요인은 압력 피펫의 염료 솔루션은 정지하고 다음 날 재사용 할 수 있지만 압력 응용 프로그램을 사용하면, 목욕 응용 프로그램을보다 더 비용이 많이 드는 점입니다. 또한, 이러한 GCaMP3 같은 유전자 인코딩 칼슘 지표 (GECIs)는 다른 시스템과 브래지어를 공부에 대해 점점 더 인기가지역 13,14 인치 이 GECIs은 셀 특정 추구에서 구동되는 장점을 가지고 있지만, 자신의 속도론 및 동적 범위는 일반적으로 유기 염료 15보다 나은되지 않습니다. 출생 후의 SVZ에서의 사용은 또한 구조의 바이러스 성 라벨 또는 electroporation, 세포 분열 동안 플라스미드의 손실로 인해 신생아 기간에 neuroblasts 연구를 제한 후자가 필요합니다.
슬라이스 드리프트는 동영상의 기간 동안 신뢰할 수있는 신호 획득을 방지하고 뇌 조각의 라이브 영상 실험으로 가장 도전적인 기술 장애물 중 하나입니다. 그것은 재관류 율, 진공 배치, 목표 체중, 그리고 해당되는 경우, 온도 기울기 등 여러 가지 요인에 의해 영향을받습니다. 만약 25보다 큰 온도 ° C 온도가 크게 될 수 있으므로 자신의 문제에 대응 할 수있는 실험을 위해 하나가 U, 가장 낮은 온도에서 솔루션 및 재관류 챔버를 가열 시도해야합니다 필요합니다ndesired 초점 떠돌고 있습니다. 우리는 많은 성공을하지 않고 이전을 사용해하지만 목표 히터와 온수 인클로저 또한,이 효과를 최소화 도움을 줄 수 있습니다.
이 기술 장애물 없다면, 연구자들은 분석 출생 후의 개발 지역에서 세포의 큰 숫자를 할 수있는 기회가 있습니다. 이 neurogenesis을 규제하는 프로세스에 새로운 통찰력을 얻을 수있는 인구 수준에서 활동을 처리 할 수있는 기회를 제공합니다.
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Disclosures
관심 없음 충돌이 선언 없습니다.
Acknowledgments
이 작품은 NIH (DC007681, AB), CT 줄기 세포 기금 (AB), Pardee 재단 (AB), Predoctoral 루스 L. Kirschstein 국가 연구 서비스 상 (NRSA) (SZY) 및 NSF 대학원 연구에서 보조금에 의해 지원되었다 휄로 십 (BL). 우리는 원고에 대한 유용한 의견을 Bordey 실험실 구성원을 감사드립니다. 현재 자료는 부분적으로 코네티컷의 줄기 세포 연구 보조금 프로그램의 코네티컷 주에서 지원 작업에 기반을두고 있습니다. 의 내용이 전적으로 저자의 책임이며 반드시 코네티컷 주의 공식 전망을 대변하지 않습니다, 코네티컷 또는 중부 표준시 혁신의 주 공중 보건학과가 통합되었습니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Sucrose | Sigma | S0389 | Dissection: 147 mM ACSF: 0 mM |
| NaCl | Sigma | S9888 | Dissection: 42 mM ACSF: 126 mM |
| KCl | Sigma | P3911 | Dissection: 2.5 mM ACSF: 2.5 mM |
| MgCl2.6H2O | Sigma | M9272 | Dissection: 4.33 mM ACSF: 1 mM |
| NaH2PO4.H2O | Sigma | S8282 | Dissection: 1.25 mM ACSF: 1.25 mM |
| Glucose | Sigma | G8270 | Dissection: 10 mM ACSF: 10 mM |
| NaHCO3 | Sigma | S6014 | Dissection: 26 mM ACSF: 26 mM |
| CaCl2.2H2O | Sigma | C3306 | Dissection: 1.33 mM ACSF: 2 mM |
Table 1. Chemical list and recipes of dissection solution and ACSF. |
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| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Vibratome | Leica | VT 1000S | |
| Super Glue | Surehold or 3M | Surehold 3G Super Glue or 3M Vet-Bond | |
| Dissection tools | Roboz or Ted Pella | ||
| Fluo-4 AM calcium-sensitive dye | Invitrogen | F14201 | |
| Oregon Green BAPTA-1 AM calcium-sensitive dye | Invitrogen | O6807 | |
| Pluronic F-127 20% solution in DMSO | Invitrogen | P3000MP | |
| Upright confocal microscope | Olympus | FV300 or FV1000 | |
| Water-immersion objectives | Olympus | LUMPlanFl 40 x W/IR (NA 0.80); LUMPlanFl 60 x W/I (NA 0.90) | |
| Micromanipulators | Sutter | MPC-200/MPC-325/MPC-385 | |
| Pressure controller | Parker Hannifin | Picospritzer | <3 PSI during application |
| Pipette puller | Sutter or Narshige | Sutter P-97 or Narshige PP-830 | |
| Glass pipettes | Sutter | BF150-110-10 | I.D.:1.10, O.D.: 1.50 |
| Peristaltic pump | Harvard Apparatus | Model 720 | flow rate: 1 ml/min |
| Chamber bath | Warner Instruments | RC-26 GLP | Low profile allows for objective clearance |
| Tubing | Tygon | ||
| Temperature Controller | Warner Instruments | TC-324B/344B | |
Table 2. Materials/equipment list. |
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References
- Peretto, P., Giachino, C., Aimar, P., Fasolo, A., Bonfanti, L. Chain formation and glial tube assembly in the shift from neonatal to adult subventricular zone of the rodent forebrain. J. Comp Neurol. 487, 407-427 (2005).
- Lacar, B., Young, S. Z., Platel, J. C., Bordey, A. Imaging and recording subventricular zone progenitor cells in live tissue of postnatal mice. Front. Neurosci. 4, 10-3389 (2010).
- Lacar, B., Young, S. Z., Platel, J. C., Bordey, A. Gap junction-mediated calcium waves define communication networks among murine postnatal neural progenitor cells. Eur. J. Neurosci. , (2011).
- Platel, J. C., Dave, K. A., Gordon, V., Lacar, B., Rubio, M. E., Bordey, A. NMDA receptors activated by subventricular zone astrocytic glutamate are critical for neuroblast survival prior to entering a synaptic network. Neuron. 65, 859-872 (2010).
- Platel, J. C., Dupuis, A., Boisseau, S., Villaz, M., Albrieux, M., Brocard, J. Synchrony of spontaneous calcium activity in mouse neocortex before synaptogenesis. Eur. J. Neurosci. 25, 920-928 (2007).
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