Genetiği Tanımlı Nöral Devre arasında Tracing Viral
Summary
Synaptically bağlı nöronların izleme için bir yöntem tarif edilmektedir. Biz bir ilgi hücre popülasyonu tanımlı genetik hücre tiplerinden sinaptik girdi alıp almadığını soruşturma yönündeki bir hücrenin TVA özgüllüğü kullanın.
Abstract
Nöronal devreler eğitimi için klasik yöntemlerle oldukça düşük verim vardır. Transsinaptik virüsler, devreleri çalışmak için özellikle pseudorabies (PRV) ve kuduz virüsü (RABV), ve daha yakın veziküler stomatit virüsü (VSV), giderek daha popüler hale gelmektedir. Bunlar yüksek verim yöntemler ya anterograd veya retrograd yönde nöronlar arasındaki iletimi virüsleri kullanın.
Son zamanlarda, monosinaptik retrograd izleme için bir değiştirilmiş RABV geliştirilmiştir. (Şekil 1A). Bu yöntemde, glikoprotein (G) gen viral genomun silinir, ve hedef nöronları içinde sadece resupplied. Enfeksiyon özgüllüğü, normal RABV-G 1 için ASLV-A glikoprotein ve RABV-G (A / RG) ve sitoplazmik alan hücre dışı domenden oluşan bir kimerik G, ikame edilmesi suretiyle elde edilir. Bu kimerik G özellikle TVA reseptör 1 salgılayan hücrelerin bozar. Gen kodlama TVA d olmuştur edebilirsinizçeşitli yöntemlerle 2-8 ile elivered. Bir TVA-ifade nöronun RABV-G enfeksiyonu takiben RABV TVA reseptörü ile birlikte teslim oldu, kendi G doğanın bir retrograd yönde diğer Synaptically bağlı nöronlara iletebilir. Bu teknik, belli bir başlangıç hücre tipi üzerine girişlerin her bir örnekleme sağlayarak, belirli bir hücre tipi üzerine giriş nispeten büyük sayıda (% 5-10) 2 etiketler.
Biz son zamanlarda bir transsinaptik tracer 9 olarak VSV kullanmak için bu tekniği modifiye. VSV gen ekspresyonunun hız da dahil olmak üzere birçok avantaj sağlar. Burada ayrıntılı artan çözünürlük ile mikrodevreler problama için yararlı VSV kullanarak yeni bir viral izleme sistemi. Ederken Wickersham ve diğerleri tarafından ilk yayınlanmış stratejileri. 4 ve Beier ve ark. Başlangıçta enfekte üzerine proje TVA-hücrelerini ifade eden, burada VSV televizyon için sadece iletmek için tasarlanmış olan herhangi bir nöron 9 izin etiketlemeA-salgılayan hücre (Şekil 1B). Virüs ilk TVA-ifade nöron nöron mansap enfeksiyonu izin RABV-G ile pseudotyped edilir. Hücrelerin bu birinci popülasyon enfekte sonra, virüs sadece TVA-Salgılayan hücrelerin enfekte edebilir çıkardı. Transsinaptik virüs spread TVA-eksprese eden hücreler, hücre tiplerinden tanımlanmış bağlantı olmaması varlığı ile sınırlı olduğu için, yüksek çözünürlüğe sahip keşfedilebilir. Bu deneylerin bir deneysel akış şeması Şekil 2 'de gösterilmiştir. Burada bir model devresi göstermek, fare retinada yön seçiciliği olduğunu. Biz retina ganglion hücrelerinin (RGCs) için starburst amacrine hücrelerinin bağlantısı (SAC) inceleyin.
Protocol
Discussion
Nöral devrelerin çalışma virüsler kullanma bağlı nöronlar analiz nispeten yüksek verimlilik yöntemdir. Bununla birlikte, VSV ve RABV virionlar her ikisi de elde önemsiz değildir. CDNA'dan virüsü kurtarmak için yukarıda listelenen protokol sunulmasına rağmen, hala düşük bir olasılıkta olaydır. N, P ve L plazmidlerin her birinin seviyeleri ince ayarlanması gerekir, ve pek çok deneme ve çoğaltır viral kurtarma sağlamak için yapılması gerekir. Tam VSV genom RNA içeren ribonukleotid par?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Biz rekombinant VSV varyantları kurtarılması için yardım Sean Whelan kabul etmek ister ve teknik yardım için Didem Goz ve Ryan Chrenek olurdu. Bu eser HHMI (CLC) tarafından desteklenen ve # NS068012-01 (KTB) oldu.
Materials
| Reagent | Company | Catalogue number | |
| Tissue Culture | |||
| Baby Hamster Kidney (BSRT7) cells | available upon request | ||
| vaccinia (vTF7-3) | available upon request | ||
| pN, pP, pl plasmids | available upon request | ||
| Calcium Chloride | Sigma | C1016 | |
| Magnesium Chloride | Sigma | M8266 | |
| HEK 293T cells | Open Biosystems | HCL4517 | |
| 60 mm TC-Treated Culture Dish | Corning | 430166 | |
| 75 cm2 Rectangular Canted Neck Cell Culture Flask with Vent Cap | Corning | 430641 | |
| Media : DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle Medium) | Invitrogen | 12491-015 | |
| 1 M HEPES pH 7.4 | Gibo | 15630-080 | |
| FBS: Fetal Bovine Serum | Gibco | 10437-028 | |
| PKS | Invitrogen | 15140-163 | |
| Lipofectamine 2,000 Transfection Reagent | Invitrogen | 11668-019 | |
| Syringe: 5 ml Luer-Lock syringe | Sigma | Z248010-1PAK | |
| Syringe Filters | Nalgene | 190-2520 | |
| PEI: High Potency Linear PEI | Polysciences | 23966 | |
| Viral Centrifugation | |||
| Corning 150 ml Tube Top Vacuum Filter System, 0.45 μm Pore | Corning | 430314 | |
| Thinwall, Ultra-Clear, 38.5 ml, 25 x 89 mm ultracentrifuge tubes | Beckman-Coulter | 344058 | |
| Ultracentrifuge | Beckman-Coulter | optima XL-80K | |
| SW28 Ultracentrifuge rotor | Beckman-Coulter | 342207 | |
| Mouse Injection | |||
| Capillary micropipets | Drummond | 5-000-2005 | |
| Stereotax | Narishige | SR-5M | |
| Micromanipulator | Narishige | SM-15 | |
| Ump injector | World Precision Instruments | Sys-Micro4 | |
| Four channel microcontroller | World Precision Instruments | UMP3 | |
| M.TXB Bench Motor with C.EMX-1 Dial Control, 115 Volt | Foredom | M.TXB-EM | |
| H.10 Handpiece, Quick Change | Foredom | H.10 | |
| Step Drill, 0.5 mm | Foredom | A-58005P | |
| Microelectrode holder | World Precision Instruments | MEH2S | |
| Ketamine | Henry Schein | 995-2949 | |
| Xylazine | Henry Schein | 4015809TV | |
| Buprenorphine | Henry Schein | 1118217 | |
| 1 ml syringe | Becton-Dickinson | 309628 | |
| 30 gauge injection needle | Becton-Dickinson | 305106 | |
| Protective Ophthalmic Ointment | Doctors Foster and Smith | 9N-014748 | |
| Ethanol | Sigma | 493511 | |
| Iodine | Sigma | PVP1 | |
| Surgery and Dissection tools | |||
| Scissors | Fine Science Tools | 91402-12 | |
| Standard Forceps | Fine Science Tools | 11000-12 | |
| Fine Forceps | Fine Science Tools | 11255-20 | |
| Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15000-00 | |
| Scalpel handle | Fine Science Tools | 10003-12 | |
| Scalpel blades | Fine Science Tools | 10015-00 | |
| Sutures | Robbins Instruments | 20.SK640 | |
| Dissection and antibody staining | |||
| paraformaldehyde | Sigma | P6148 | |
| Phosphate Buffered Saline | Sigma | P4417 | |
| Triton X-100 | Sigma | T9284 | |
| Donkey Serum | Jackson Immunoresearch | 017-000-121 | |
| Antibodies | |||
| Antibodies | millipore | AB144P | |
| Anti-gfp | Abcam | ab13970 | |
| Donkey anti-chicken Dylight 488 | Jackson immunoresearch | 703-545-155 | |
| Donkey anti-chicken Alexa Fluor 647 | Jackson immunoresearch | 705-605-147 | |
| DAPI | Invitrogen | D1306 | |
| Tissue mounting | |||
| Superfrost plus microscope slides | Fisher | 12-550-100 | |
| Cover glass 22 x 22, 0 thickness | Electron Microscopy Sciences | 72198-10 | |
| Silicone elastomer | Rogers Corp | HT-6220 | |
| Clear nail polish | Electron Microscopy Sciences | 72180 | |
| Prolong Gold antifade reagent | Invitrogen | P36930 |
References
- Wickersham, I. R. Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53, 639-647 (2007).
- Marshel, J. H., Mori, T., Nielsen, K. J., Callaway, E. M. Targeting single neuronal networks for gene expression and cell labeling in vivo. Neuron. 67, 562-574 (2010).
- Wall, N. R., Wickersham, I. R., Cetin, A., De La Parra, M., Callaway, E. M. Monosynaptic circuit tracing in vivo through Cre-dependent targeting and complementation of modified rabies virus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 21848-21853 (2010).
- Wickersham, I. R. Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53, 639-647 (2007).
- Yonehara, K. Spatially asymmetric reorganization of inhibition establishes a motion-sensitive circuit. Nature. 469, 407-410 (2011).
- Stepien, A. E., Tripodi, M., Arber, S. Monosynaptic rabies virus reveals premotor network organization and synaptic specificity of cholinergic partition cells. Neuron. 68, 456-472 (2010).
- Beier, K. T., Samson, M. E. S., Matsuda, T., Cepko, C. L. Conditional expression of the TVA receptor allows clonal analysis of descendents from Cre-expressing progenitor cells. Dev. Biol. 353, 309-320 (2011).
- Seidler, B. A Cre-loxP-based mouse model for conditional somatic gene expression and knockdown in vivo by using avian retroviral vectors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 10137-10142 (2008).
- Beier, K. T. Anterograde or retrograde transsynaptic labeling of CNS neurons with vesicular stomatitis virus vectors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 15414-15419 (2011).
- Whelan, S. P., Ball, L. A., Barr, J. N., Wertz, G. T. Efficient recovery of infectious vesicular stomatitis virus entirely from cDNA clones. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 8388-8392 (1995).
- Fuerst, T. R., Niles, E. G., Studier, F. W., Moss, B. Eukaryotic Transient-Expression System Based on Recombinant Vaccinia Virus That Synthesizes Bacteriophage T7 RNA Polymerase. PNAS. 83, 8122-8126 (1986).
- Young, J. A., Bates, P., Varmus, H. E. Isolation of a chicken gene that confers susceptibility to infection by subgroup A avian leukosis and sarcoma viruses. J. Virol. 67, 1811-1816 (1993).
- Madisen, L. A robust and high-throughput Cre reporting and characterization system for the whole mouse brain. Nat Neurosci. 13, 133-140 (2010).
- Franklin, K., Paxinos, G. . The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1997).
- van den Pol, A. N. Viral strategies for studying the brain, including a replication-restricted self-amplifying delta-G vesicular stomatis virus that rapidly expresses transgenes in brain and can generate a multicolor golgi-like expression. J. Comp. Neurol. 516, 456-481 (2009).
