Summary
溶血试验可作为一种快速，高通量筛选，药物传递系统的细胞相容性和内货物配送endosomolytic活动的。该试验测量作为环境pH值的函数的红细胞膜的破坏。
Abstract
内溶酶体膜泡的磷脂双分子层构成，可以构成一道屏障，细胞内的目标提供生物药物。为了克服这个障碍，已设计了一些合成的药物载体积极破坏核内体膜，并提供货物进入细胞质。这里，我们描述的溶血测定，这可以用作快速，高通量筛选的细胞相容性和endosomolytic活性的细胞内的药物输送系统。
溶血试验，人的红血细胞和试验材料共同模仿细胞外的，早期内体，和晚期溶酶体内环境的定义的pH值的缓冲液中温育。颗粒完整的红血细胞的离心步骤之后，释放到培养基中的血红蛋白量的分光光度测定（405nm的为最佳的动态范围）。 ％的红血细胞破碎，然后相对于阳性对照SAMP量化LES用洗涤剂溶解。在该模型系统中，在红细胞膜的脂双层膜的替代品，包围内溶酶体囊泡作为。期望的结果是可以忽略不计的在生理pH（7.4）和pH约为5-6.8的溶酶体内pH值范围从鲁棒溶血溶血。
Introduction
虽然有许多潜在的高影响力的治疗靶点在细胞内，细胞内输送的代理商带来了显着的挑战。通常，药物，尤其是生物制剂，被细胞内化，贩卖到囊泡，要么导致它们的内容通过内溶酶体途径降解，或穿梭出细胞通过胞吐作用。1在后者的方法中，内部的pH值囊泡酸化至约5-6，这是活性的酶的最佳pH值，在此室的功能，如溶菌酶2
最近，一些材料经过特别设计，以充分利用酸化胞浆内吞体，以方便他们的货物交付。这种方法的一个示例中使用合成的聚合物胶束的纳米粒子，其核心是在生理pH值（ 即 7.4），两性离子和电荷中性。然而，在pH 6.0- 6.5，聚合物成为质子化并购入的净正电荷，破坏了胶束的核心，和暴露的聚合物链段相互作用和破坏核内体膜。这项活动已经表明，以促进核内体逃逸的多肽和核酸为基础的疗法，让他们来访问他们的胞浆目标。3,4调解胞内逃生，破坏黏膜屏障的方法的例子包括“膜融合肽或介导膜融合或瞬态孔形成的蛋白质，可以在磷脂双分子层中。5均聚物的阴离子的烷基丙烯酸，如聚（丙基丙烯酸酸）是另一种被充分研究的方法，并且在这些聚合物中，羧酸侧基的质子化状态的决定过渡为疏水性，膜中断状态内溶酶体的pH值范围6,7。
一个有用的模型系统，为筛选endosomolytic行为是电子x体内pH-依赖的溶血试验。8在该模型系统中，红细胞膜的脂双层膜的替代品，包围内溶酶体囊泡作为。此一般化模型已被用于别人，到评估的endosomolytic的行为的细胞穿透肽和其它聚合物的基因传递系统。8-11在本实验中，在模仿在定义的pH值的缓冲液共孵育的人的红血细胞和试验材料胞外（7.4），早期内体（6.8），和晚期内溶酶体（<6.8）的环境中。潜伏期过程中释放的血红蛋白的量进行定量的红血细胞溶解，其被归一化到在阳性对照样品用洗涤剂裂解释放血红蛋白量作为衡量。
从一个小型图书馆的潜在的endosomolytic测试材料筛选，可以推断出，不产生溶血的样品，在pH值7.4，但显着升高下摆olysis在pH <6.5时，将是最有效的和细胞相容性的候选人胞浆药物递送。预计将保持惰性的，而不是不分青红皂白地破坏脂质双分子层膜（ 即可能导致细胞毒性），直到被暴露后的pH值下降到溶酶体内舱的内符合这些条件的材料。
在这个协议中，红细胞从人供体中分离，并在pH为5.6，6.2，6.8或7.4与实验endosomolytic药物输送剂共同孵育。完整的红细胞沉淀，上清液（含血红蛋白释放溶解红细胞） 经由板读数器（ 图1）为特征的血红蛋白的吸光度分析。
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Protocol
1。缓冲器和测试代理的制备和消毒
- 150mM NaCl的缓冲液：溶解在500毫升水nanopure4.383克NaCl的晶体。
- pH缓冲液：准备在pH为5.6，6.2，6.8和7.4的磷酸盐缓冲液混合适量的一元和二元磷酸钠。如果样品是在较低的pH值（ 即pH <5.6），然后一个更合适的缓冲液，如柠檬酸盐缓冲液进行测试，应该被使用。缓冲液配方都是现成的，这里提供了一个例子参考。
- 消毒瓶顶真空过滤装置，并重新检查缓冲液通过上面提到的所有缓冲区。
- 20％的Triton X-100（阳性对照）：混合20毫升纯的Triton X-100在80毫升水nanopure。涡大力超声溶解。发布在使用前在室温下过夜。
2。红细胞制备
- 获得25毫升的血液FROM一个匿名的人的捐助，直接绘制到K-EDTA涂层Vacutainer管，以防血液凝结。
注意：所有程序必须事先批准的适当的机构审查委员会（IRB），静脉穿刺采血必须由经过培训的抽血以捐赠者的风险降到最低。标准放血程序已在其他地方发表。
- 离心血在500×g离心5分钟，和标记的血细胞比容水平（红色，下层）和血浆（微黄，上层）上管。
- 通过微量移液器轻轻吸出血浆，添加漂白剂，生物危险性废物丢弃到。
- 用150mM NaCl溶液填充的血细胞比容管，标记线（原件的血浆水平）。盖上盖子，颠倒几次，轻轻拌匀。 500×g离心5分钟离心。
- 重复步骤2.3-2.4再次洗血细胞。然后吸超自然蚂蚁和更换PBS在pH值7.4。反相，混合。
- 斯普利特血液均匀地进入四根管，对应于将被测试的每个pH。标签的管，根据每个以进行测试（5.6，6.2，6.8，7.4）的pH值。
- 在500×g离心5分钟，离心血液试管。马克的水平上管，然后吸出上清液。
- 填充适当的缓冲液的pH值（2.6）每管标线。
- 出版商四个50毫升锥形管（每一个pH值至测试），以及移液管49毫升PBS适当的pH值到每个锥形管。
- 成相应的管中加入1毫升的红细胞（相同的pH值）为1:50的稀释。目视检查稀释血液，应浑浊，解决不受干扰。如果没有颗粒的形式，细胞裂解。
3。裂解含量96孔板安装和定量分析
- 储备液的配制所有的实验给药制剂，在20倍所需的最终浓度（含量进行测试将10μl的药物输送剂+ 190μl稀释的红血细胞，导致原来的药物输送剂的1/20稀释到最终测试混合物中）。建议为20，100，和800微克/毫升的股票，从而导致在最终测试浓度的1，5，和40微克/毫升，分别。
- 移液管将10μl成V形底96孔板的每个原液。为了达到最佳效果，加载每个样品一式三份或四份。
注意：为便于，建议为每个pH值来进行测试，用每个样品（在每一浓度）加载在n = 3-4每板一个单独的96孔板中，应制备。
- 阳性对照孔，加10微升20％的Triton X-100。
- 对于阴性对照孔，加入10μl磷酸缓冲液。使用相同的pH值的缓冲液，以进行测试。
- 吸取190μL稀释的红细胞（2.10），每孔，确保细胞原液保持同质传输过程中。提示：使用多道移液器简化这一任务。
- 在37℃下温育平板一小时（可选：使用轨道摇床或摇臂）。
- 离心5分钟的板在500 XG颗粒完好红细胞的。注意：当从离心机除去板输送到下一步骤时，小心处理，某些不破坏细胞沉淀。
- 使用多通道移液管，从每个孔中加入100μl的上清液转移到一个清晰的，平底96孔板中。注：如果将细胞沉淀的任何样品（）被意外干扰，一个可以重新离心板，然后继续进行，上清液转移。
- 用酶标仪测量上清液的吸光度。需要注意的是，可以使用一定范围的波长（400 - 541纳米）。
注意：不同的板块读者可能有不同的饱和点和敏感，因此在选择的波长为我asurements取决于是否从实验样品的溶血数据可以可靠地对最大溶血归洗涤剂处理所诱导的。这就要求精确测量的阳性对照样品的吸光率值。
- 使用Microsoft Excel或类似的数据分析软件，找到从每个pH值（步骤3.4）的阴性对照样品的背景吸光度读数的平均值。这样的背景下吸光度值减去所有其它样品进行测量，pH值。
- 背景减法之后，发现阳性对照的平均吸光度，洗涤剂处理的样品（步骤3.3）。然后正常化所有的实验数据点，这意味着吸光度值，它应该代表100％溶血。最后，乘以每口井的100％计算％溶血发生在每一个人的洗涤剂控制。
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Representative Results
通常情况下，表现出理想的pH-依赖的溶血行为的代理具有胞质交付药物，核酸，或其它生物活性分子的最高电位。描绘在图2中，在pH = 7.4，显示出最小的溶血，这是举例说明由Agent＃1，但在核内体内的pH值范围（<6.5）的溶血行为急剧增加。有些剂可以表现出溶血行为的显着水平的在生理pH值范围（代理＃2（40微克/毫升）， 图2），这表明，这些药物可能不是血液相容性，并有可能在这些浓度是细胞毒素。
在大多数情况下，溶血也是剂量依赖性的，增加浓度的试验材料与溶血的较高水平，尤其是在较低的pH范围内测试（5.6 - 6.2）。
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图1。红细胞的溶血含量的示意图。人类红细胞了一系列的缓冲液的pH值范围从模拟生理（7.4）晚内涵体/的溶酶体（5.6），与实验endosomolytic的给药制剂的分离和培养。最佳给药制剂，不会破坏红细胞，在生理pH值，但更多的酸性条件下，会表现出强大的溶血。要评估％溶血，释放到周围介质中的血红蛋白通过平板读取器上的吸光度测定。
图2。代表的溶血试验结果证明行为的两种实验Endosomolytic代理。首先，平均A 450的车辆控制（PBS）中减去在该pH值从测试的其他样本。随后，实验样品进行归一到A 450的Triton X-100处理的红细胞样品，并乘以100％。基于这些对照样品，实验转染剂溶解红细胞的能力可以被计算。通常情况下，理想的endosomolytic剂表现出剂量依赖性和pH-依赖的溶血行为。理想的代理（如Agent＃1）表现出最小的溶血，在pH值7.4，但在胞内pH值范围内（<6.5）溶血行为急剧增加。有些剂表现出大量的溶血行为在生理PH范围（代理＃2 40微克/毫升），这表明，这些药物可能是细胞毒素在这些浓度。误差条表示4个独立测量的标准偏差。
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Discussion
的pH响应性聚合物或其他代理设计用于endosomolytic功能可以迅速和有效地筛选的基础上裂解过程中遇到的内体，在pH值的红血细胞（ 图1，pH为6.8 -早 期内体，pH值6.2 -晚期内含体，pH为5.6 -溶酶体）14-17 pH依赖性溶血已用于筛选进行调解内体释放的生物大分子的治疗药物（ 例如肽，的siRNA，反义寡核苷酸，蛋白质）的载流子的能力，并且该测定的结果，可以预测的性能，作为细胞内的药物递送载体3,4,8,18,19因此，该测定表示一个有效的屏幕上的能力来衡量聚合物药物载体介导细胞内药物传递基于它们的pH依赖性的膜破坏。
正如在程序中，被检测到，通过分光光度法测量的红血细胞的上清液与实验治疗溶血代理商。因此，在除了血红蛋白，它是可能含有其它的红细胞源性胞浆组件，包括蛋白质和碳水化合物。虽然这些其它组件可贡献一个小的信号量的分光光度测量，100％的溶血校准从治疗与Triton X-100所导致的红细胞溶胞产物。假设所有来自同一供体的红细胞中含有血红蛋白和其他生物大分子的水平相似的，我们可以有把握地得出结论的'污染'的组件将不会带来任何文物的溶血测量，特别是在同样的血液样本用于所有测试。然而，这凸显了这样一种可能性，对于任何给定的献血者中，有可能是小天的日常血液成分和血细胞比容的变化，因此，内部控制样品（的步骤3.3-3.4，3.10-3.11）应所有实验分析。
人们还应该总是仔细检查原料ABSorbance数据。虽然它不能中的归一化的例子在图2中所示的数据可以理解，洗涤剂如Triton X-100的有效地破坏红细胞膜的稳定的pH值无关，和一个应该期望看到很少的样品，在阳性对照样本变异。的Triton X-100的吸收光谱不包括此测定法推荐的在400-600 nm范围内的峰值，因此，不应该干扰实验数据的归一化20此外，对于阴性对照样品，应该没有观察到显着的在任何使用的缓冲器（ 即 ，即使是最酸性缓冲液通常不会在此时间范围内产生溶血）中孵育1小时后溶血。阴性对照样品的背景读数应密切近似的背景上新鲜的缓冲液的吸光度读数。
理想情况下，研究人员将采用互补的战略来描述他们的经验rimental药物输送系统。为的初始endosomolytic剂筛选上天然存在的生物膜的溶血试验是有利的，但应被视为仅用于测试胞质投递代理的药物输送研究者的医疗设备中的许多工具之一。例如，溶血测定的一个潜在的缺点是它利用的红血细胞的膜，核内体膜的生物模型。然而，细胞型化妆和核内体膜的脂质含量变化，可能不能准确地由血细胞膜扼要重述。1有多种其他的，互补的检测已经发展到模仿体膜的组合物和行为21， 22的一种替代方法是利用脂质体的荧光共振能量转移（FRET）淬火成为非淬火后，不稳定的脂质体和释放到周围介质的荧光团的荧光团，。在研究日采用这种方法时，定量的非淬火荧光团已发现与车辆的能力介导其有效载荷的内体逃逸21,23显微镜为基础的测量可以提供更健壮的，但较低的吞吐量的方法，该方法是互补溶血试验。例如，它是常见的与染料标记的溶酶体（ 例如 LysoTracker由Life Technologies），以评估共存的载体或药物本身，或贩卖通路可以使用pH值敏感的染料的共轭的载体或药物（ 如 pHrodo通过其特征在于Life Technologies公司）24-26
一旦一个endosomolytic的输送系统已被证实胞浆货物交付，溶血试验，也可以在核内体逃逸的发生机制，通过提供信息。例如，基因运载工具的聚乙烯亚胺（PEI）的基础上缺乏的固有能力，扰乱磷脂膜在中性或酸性pH值11,27相反，PEI实现胞质基因传递通过的“质子海绵”效应。 PEI内部化后，缓冲区内吞体“吸收”整个体膜质子泵酸化这些车厢。最终，这将导致过量的质子和其反离子内的核内体的积聚。这将导致在一个上升的渗透压，水侵，囊泡肿胀和endosomolysis。因此，成功的质子海绵效应需要的积累的临界浓度的PEI成的内体27，送货车辆通过“质子海绵”的效果，实现内体中断不会物理破坏红血细胞或脂质体，以及它们的功效在实现细胞内药物传递，必须通过渗透压计算评估，或在体外显微镜，或功能的研究。
总之，溶血试验描述在这里是一个可靠的药物筛选模型设计的生物药物的细胞内输送。本试剂盒提供了高吞吐量的药物输送装置，车辆检查，使与细胞内的目标，提供生物制剂的制剂的快速发展。
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Disclosures
IRB的批准程序已经批准了涉及人类受试者的范德比尔特大学机构审查委员会（IRB议定书＃111251）。没有利益冲突的声明。
Acknowledgments
的承认通过国防部的资助，国会导演医学研究计划（＃W81XWH-10-1-0445），美国国立卫生研究院（NIH R21 HL110056），和美国心脏协会（＃11SDG4890030）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| BD Vacutainer - K2EDTA Vacutainer Tubes | Fisher Scientific | 22-253-145 | For blood collection |
| BD Vacutainer Blood Collection Needles, 20.5-gauge | Fisher Scientific | 02-665-31 | For blood collection |
| BD Vacutainer Tube Holder / Needle Adapter | Fisher Scientific | 22-289-953 | For blood collection |
| BD Brand Isopropyl Alcohol Swabs | Fisher Scientific | 13-680-63 | For blood collection |
| BD Vacutainer Latex-Free Tourniquet | Fisher Scientific | 02-657-6 | For blood collection |
| Hydrochloric acid (conc.) | Fisher Scientific | A144-500 | For adjustment of pH of D-PBS. |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | Positive control |
| Dulbecco's PBS | Invitrogen | 14190 | |
| Nalgene MF75 Sterile Disposable Bottle-Top Filter Unit with SFCA Membrane | Fisher Scientific | 09-740-44A | |
| BD 96-well plates, flat-bottomed, tissue culture-treated polystyrene | Fisher Scientific | 08-772-2C | For plate-reading at the end of the assay. |
| BD 96-well plates, round-bottomed, tissue culture-treated polystyrene | Fisher Scientific | 08-772-17 | For incubation of red blood cells with experimental agents. |
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