Summary
Descriviamo i protocolli utilizzati per studiare le interazioni di 13,56 MHz a radiofrequenza (RF) elettrici-campi con colloidi nanoparticelle d'oro in entrambi i sistemi non biologici e biologici (in vitro / vivo). Queste interazioni sono studiati per applicazioni nella terapia del cancro.
Abstract
Terapie del cancro che sono meno tossiche e invasivo rispetto ai loro omologhi esistenti sono altamente desiderabili. L'uso di RF elettrici campi che penetrano in profondità nel corpo, causando minima tossicità, sono attualmente in fase di studio come mezzo vitale di terapia del cancro non invasivo. E 'previsto che le interazioni di energia RF con nanoparticelle internalizzate (NP) possono liberare calore che può quindi causare surriscaldamento (ipertermia) della cella, infine termina in necrosi cellulare.
Nel caso di sistemi non biologici, presentiamo protocolli dettagliati relativi alla quantificazione del calore liberato dai colloidi NP altamente concentrati. Per i sistemi biologici, nel caso di esperimenti in vitro, si descrivono le tecniche e le condizioni che devono essere rispettate al fine di esporre in modo efficace le cellule tumorali a radiofrequenza senza massa artefatti di riscaldamento del materiale che oscurano in modo significativo i dati. Infine, diamo una dettagliata metodologia fo in modelli in vivo del mouse con tumori epatici ectopiche.
Introduction
L'assorbimento di energia RF da tessuto biologico (per la loro permettività elettrica intrinseca) si traduce in temperature elevate tessuto in funzione del tempo, che conduce infine alla morte cellulare da ipertermia. Si ipotizza che l'ipertermia il cancro può essere ottimizzato attraverso l'utilizzo di nanomateriali mirati che internalizzano all'interno della cellula tumorale e agiscono come trasduttori RF-termici, lasciando intatte le cellule normali circostanti, sane. Diversi studi hanno già dimostrato che una varietà di NP può agire fonti di calore RF come efficace che aiuti il cancro necrosi 1-4.
In questi saluti, NP oro (AuNPs) 3-5, nanotubi di carbonio 1, e punti quantici 6, 7 hanno esposto le caratteristiche emozionanti quando viene utilizzato sia in vitro ed in esperimenti RF vivo. Sebbene l'esatta natura del meccanismo di riscaldamento di queste NP quando esposti ad un campo RF è ancora in discussione, una serie diesperimenti fondamentali che utilizzano AuNPs ha posto grande importanza sia formato NP e stati di aggregazione. E 'stato dimostrato che solo AuNPs con diametro <10 nm si riscalda quando esposti ad un campo RF-8. Inoltre, questo meccanismo di riscaldamento viene notevolmente attenuato quando i AuNPs vengono aggregati. Questa condizione di aggregazione è stato validato anche all'interno di modelli in vitro che hanno posto l'importanza su ottimizzare AuNP stabilità colloidale entro compartimenti intracellulari endolysomal di efficace terapia RF 4. Tuttavia, le tecniche ei principi sperimentali utilizzati per raccogliere e valutare questi dati possono essere problematico, soprattutto nel caso di convalida profili termici RF da colloidi NP.
Diversi studi hanno dimostrato che il riscaldamento Joule dello sfondo sospensione ionica che i PN sono sospese in può essere la principale fonte di produzione di calore RF e non NP stessi 9-12. Anche se il nostro recente articolo 8 ha convalidato tegli usa delle interazioni RF nel generare calore da AuNPs di diametro inferiore a 10 nm, ci proponiamo di descrivere questi protocolli più in dettaglio in questo articolo.
Abbiamo anche dimostrare i protocolli e le tecniche per valutare l'efficacia di AuNPs come agenti termici hyperthermic sia in vitro e in vivo per modelli di cancro al fegato. Anche se ci concentriamo principalmente su semplici colloidi di AuNPs citrato-capped, le stesse tecniche possono essere applicate ad altri ibridi AUNP come anticorpi e complessi chemioterapia-coniugato. Aderendo a tali principi il sperimentalista spera, dovrebbe essere in grado di valutare rapidamente il potenziale per qualsiasi nanomateriale ad essere un efficace agente ipertermica termico RF-indotta.
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Protocol
Una panoramica completa sperimentale è illustrato nella Figura 1.
Ulteriori dettagli sono descritti nei passaggi 1-3 sotto.
1. Valutare RF riscaldamento di NP Colloids: AuNPs come esempio
- In generale, per ogni campione indagato NP, prima lavare più volte il campione attraverso un filtro centrifugazione con acqua deionizzata (DI) per rimuovere ioni di sfondo e contaminanti. Tutti gli ioni e contaminanti sono stati rimossi dalla sospensione AuNP quando il liquido che viene lavato fuori ha tassi di riscaldamento RF simili (HR) come acqua deionizzata. Questo processo di purificazione consente anche di alte concentrazioni di NP da ottenere. Vale la pena notare che anche se usando AuNPs in questo esempio, i principi fondamentali possono essere applicati ad altri materiali NP.
- Come esempio, purificare una bottiglia da 500 ml di AuNPs disponibili in commercio di diametro 5 nm e poi sottoporli ad un campo RF 13,56 MHz di elettrico-fiELD forza 90 kV / m.
- Prendere ~ 125 ml di soluzione madre AuNP e diviso tra i sei 50 tubi filtranti centrifuga kDa. Centrifugare a 3.000 giri. per 2 min 5 sec. Rimuovere i filtri tampone e ricarica filtrati con il resto dello stock soluzione. Ripetere fino a quando tutti i 500 ml è stata filtrata.
- Sostituire il buffer filtrato con un simile volume di acqua deionizzata e ripetere circa 8 volte (o fino a quando gli HR RF tampone filtrati equivalenti a acqua deionizzata). Nota, analisi UV-Vis può anche essere utilizzato per monitorare picchi di assorbimento di contaminanti. Una volta che i contaminanti tampone sono stati, pipetta circa 0,5 ml di acqua deionizzata completamente rimosso in ogni filtro e sospendere nuovamente le AuNPs pipettando ripetuta. Questo dovrebbe rimuovere completamente i AuNPs dal filtro e consentire la completa risospensione. Unire tutte e sei le sospensioni in una provetta da 15 ml Eppendorf.
- Una volta che i AuNPs sono stati purificati e concentrati, analizzare il campione utilizzando ICP-OES e / o ICP-MS, UV-vis e il potenziale Zeta per i dati relativi concentration e stabilità NP, rispettivamente. SEM e / o analisi TEM può essere utilizzato anche per ottenere dati morfologici. Preparazione del campione estesa di queste tecniche possono essere trovate in letteratura 4.
- Utilizzando il sistema Kanzius RF descritto in studi precedenti 8, o derivazioni di questo sistema, posizionare un 1,3 ml cilindrica quarzo cuvetta in modo che il campo elettrico RF in aria (senza campione presente) sarebbe ~ 90 kV / m all'interno della cuvetta. Per un esempio di soluzione salina normale (0,9% NaCl) il campo elettrico si ridurrebbe a ~ 1,1 kV / m. Queste sono le condizioni approssimative utilizzati per consentire raffronti tra sistemi diversi.
- Pipettare 1,3 ml di un campione di 1.000 mg / l di purificato AuNP colloide nella cuvetta di quarzo e introdurlo in RF-campo. Questo può essere fatto utilizzando un portacampioni Teflon fuoriserie. Esporre campione al campo RF per un periodo di 120 secondi o fino a quando il campione raggiunge i 70 ° C per evitare la formazione di arco elettrico o bollitura rapida. Capture i dati di imaging termico (così come aree di controllo) utilizzando una telecamera a infrarossi e software associato. Ripetere questa procedura per tre volte.
- Filtrare il campione attraverso un altro filtro centrifuga 50 kDa per estrarre i AuNPs dal buffer di acqua deionizzata. Riesporre il buffer RF-campo, di nuovo tre volte. La differenza in ore tra il colloide AuNP e l'accumulo acqua DI sfondo determina la HR causa delle AuNPs stessi. Aspettatevi di ottenere HRs di ~ 0,3 ° C / sec e 0,05 ° C / sec per dare un HR dipendente AuNP di circa 0,25 ° C / sec. Risospendere le restanti AuNPs dal filtro in 1,3 ml di acqua per vitro esperimenti in vivo /.
2. Nanoparticelle assistita RF-ipertermia indotta: studi in vitro
- Questi studi in vitro possono essere applicate a qualsiasi tipo di tipo cellula tumorale che formano monostrati 2D. In questo esperimento utilizzare carcinoma epatocellulare umano cellule derivate Hep3B.
- Piatto ~ 50.000 cells nella parte anteriore tre pozzetti di una piastra 12 pozzetti con 1 ml di terreno di coltura. Ripetere questo 6 volte (utilizzare tre piastre per Studi NP e tre piastre come controlli). Incubare a 37,5 ° C per 24 ore prima di introdurre gli NP. Sterilizzare NP primo utilizzo BioSafety Cabinet esposizione ai raggi UV-luce per 5 min.
- In ogni pozzetto introdurre 0,1 ml di una soluzione di 1,000 mg / L AuNP e lasciare per un altro 24 ore. Aggiungere 0,1 ml di acqua in ciascun pozzetto delle tre piastre delle celle di controllo e lasciare anche per 24 ore.
- Dopo 24 ore sono passati, aspirare i media di cellule e lavare con PBS per rimuovere eventuali AuNPs-bound superficie. Sostituire il supporto cella. Le cellule sono ora pronti per l'esposizione alle radiofrequenze.
- Posizionare ogni pacco cella 12, ben all'interno della RF-campo. Attendere che le cellule si sono raffreddati a 31 ° C. Accendere il generatore di radiofrequenza ed esporre per 3,5 min. La temperatura finale del supporto cella sarà ~ 37 ° C. Spegnere il campo RF. Rimuovere le cellule e metterli in un incubatore per 24 ore prima dell'analisi.
- <li> rimuovere le cellule dal termostato e mezzi cellulare aspirare. Aggiungere 1,6 ml di mezzo di cellule in ciascun pozzetto e 0,4 ml di reagente MTT. Incubare le cellule per 4 ore. Aspirare il terreno e sostituirlo con 2 ml di dimetilsolfossido (DMSO). Posizionare le piastre di celle in un rocker panchina e lasciare per 10 minuti per consentire al DMSO per solubilizzare i reagenti MTT. Infine, pipetta 100 microlitri di ciascun pozzetto in una piastra da 96 pozzetti e otticamente leggere il pozzetto a 570 nm usando un lettore di piastre, come il lettore di piastre SPECTROstar Nano.
3. Nanoparticelle assistita RF-ipertermia indotta: studi in vivo
- Questi studi in vivo possono essere applicate a qualsiasi tipo di cancro che si forma tumori solidi in un modello murino ortotopico o ectopica. Questo esperimento utilizza le cellule tumorali del fegato Hep3B in un tumore BALB-C modello di topo nudo ectopica.
- Nota: tutti gli esperimenti in vivo sono eseguite in conformità con tutte le linee guida, regolamenti e agenzie di regolamentazione. Inoltre, il protocollo essendo dimostrato è stato eseguito sotto la guida e l'approvazione della University of Texas MD Anderson Cancer Center Institutional Animal Care ed uso commissione (IACUC).
- Crescere un numero appropriato di cellule (~ 100 k) in un pallone di coltura tissutale con il mezzo di crescita appropriato. Incubare in un incubatore a 37 ° C con 5% di CO 2 per la durata di coltura cellulare.
- Trattamento di cellule con tripsina (per staccare dal pallone) e produrre una soluzione di 2 milioni di cellule per ogni 25 ml. Aggiungere una quantità uguale di Matrigel (su ghiaccio) e mescolare accuratamente per preparare la soluzione ultima iniezione. Iniettare questa soluzione nella posizione desiderata sul dorso del mouse e attendere un tempo adeguato per i tumori di crescere alla dimensione desiderata (2-4 settimane per la maggior parte delle cellule). Prima esposizione a RF, BALB-C topi nudi dovrebbero sopportare tumori solidi ectopiche 0,5-1 cm di diametro.
- Preparare i topi da utilizzare (in questo caso BALB-C topi nudi) da anaeli sthetizing con una soluzione di chetamina e xilazina per iniezione IP. Mentre i topi sono in calo addormentato, tenerli in una camera a temperatura controllata a 37 ° C. Saranno necessari 20 topi in totale, tutti i portatori di tumori di dimensioni simili. Dieci topi saranno utilizzati in combinazione con e senza AuNPs (che è di soli iniezioni PBS), mentre i restanti 10 topi saranno divisi tra controlli RF-esposti non RF-vista e: entrambi i gruppi senza iniezioni AUNP.
- Una volta adeguatamente anestetizzato, iniettare i AuNPs direttamente nel tumore con una siringa da 1 cc con un ago G 27. La soluzione AuNP dovrebbe essere ad una concentrazione di Au 200 mg / L in 0,1 ml di PBS. Dopo l'iniezione, utilizzare un tampone chirurgico per assorbire il sangue e pulire il sito di iniezione con un batuffolo imbevuto di alcool.
- Poi montare il mouse da trattare sulla testa di ricezione del generatore RF. Il mouse deve essere posizionato in modo che il tumore è più vicina alla testa trasmissione. Proteggere le aree che non devono essere trattati, così come sensibilitiva aree come gli occhi, le orecchie e le dita dei piedi, con nastro di rame. Assicurarsi che il nastro di rame è adeguatamente contattando il piano di messa a terra in modo che non si verifichino accumulo di cariche. Inoltre, la zona di esposizione deve avere una distanza di almeno 1 cm maggiore della dimensione del sito di trattamento desiderato.
- Termocamera posizione IR in modo che il tumore e zona di trattamento sono visibili. Attivare RF per 5 min. Registrare la curva della temperatura risultante. Se la terapia raggiunge temperature superiori a 42 ° C per trattamenti fermata immediatamente.
- Dopo l'esposizione RF recuperare i topi dall'anestesia in una camera calda fino a quando non sono coscienti.
- Ripetere l'esperimento con la stessa topi 48 ore più tardi (punti 3.3.1 - 3.4.1).
- Dopo l'esperimento, i topi eutanasia secondo protocolli e procedure istituzionali. Registrare il peso del tumore. Per l'analisi istologica fissare i tumori con formalina e incorporarli in paraffina. Sezioni tumorali sono in genere macchiati spiritoh ematossilina e eosina e di obiettivi rilevanti per misurare l'efficacia terapeutica, ad esempio Ki-67, spaccati caspasi-3, ecc.
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Representative Results
1. Valutare il riscaldamento RF NP colloidi: AuNPs come esempio.
Dopo aver seguito la sezione 1.1 - 1.2.3 aspettano di avere una soluzione stabile, e purificato altamente concentrata su 5 nm e 10 nm AuNPs diametro. Dai 500 ml as-acquistato soluzione madre, si aspettano di ottenere almeno 4 ml di soluzione ad una concentrazione di 1000 mg / L. La differenza in ore tra i AuNPs e la soluzione tampone acqua DI sfondo a questa concentrazione dovrebbe essere ~ 0,25 ° C / sec e 0,1 ° C / sec per 5 nm e 10 nm AuNPs, rispettivamente, come illustrato nella Figura 2.
2. Nanoparticelle assistita RF-ipertermia indotta: studi in vitro
I risultati dovrebbero idealmente mostrano che le cellule esposte ad un campo RF che hanno interiorizzato AuNPs sono meno praticabile rispetto alle cellule esposte non AuNP RF. Un esempio di tali risultati attesi sono evidenziati in Figura 3.
3. Nanoparticolo assistita RF-ipertermia indotta: in vivo studi
Su iniezione di AuNPs PBS-sospesi e dopo il trattamento di esposizione RF ~ 2-3 settimane, analisi postuma dovrebbe rivelare crescita tumorale controllata e / o una riduzione delle dimensioni del tumore / massa (come mostrato in Figura 4). Ci può essere anche la prova di termoablazione cellulare diretta. Tuttavia, questo non può essere il caso come semplici AuNPs citrato-capped sono lungi dall'essere ottimizzata e tendono ad aggregarsi all'interno del tessuto tumorale. Come si può vedere in recenti pubblicazioni, AuNPs devono essere non aggregate all'interno organelli intracellulari che permettono di migliorare citotossicità RF-indotta. Inoltre, studi recenti hanno dimostrato che la coniugazione di farmaci chemioterapici come Gemcitabina per AuNPs ottimizza la terapia RF. L'investigatore può ancora utilizzare questi protocolli tuttavia di confrontare direttamente l'efficacia della propria AuNP complesso in relazione al lavoro precedente nostri gruppi.
Figura 1. Visione sperimentale. AuNP valutazione riscaldamento: AS-acquistato AuNPs (1.a) sono posti in un filtro di 50 kDa (1.b) e centrifugati giù per separare i AuNPs dal filtrato (1.c). Questo permette AuNPs altamente concentrati e purificati da formare (1.d). Il campione viene quindi inserito nel sistema RF utilizzando un portacampioni Teflon montato ad una fase rotante regolabile (1.e). Le AuNPs velocità di riscaldamento, così come altre quattro aree di controllo, vengono registrati utilizzando una telecamera a infrarossi (1.f) nei protocolli in vitro:. Cellule tumorali epatiche Hep3B vengono coltivate nella parte anteriore 3 pozzi di diversi pacchetti di cellulari da 12 pozzetti, come mostrato nella 2.a (la quantità di cellule-pack utilizzato dep termina su ciò che il sperimentalista vuole indagare in termini di potenza RF applicata, concentrazione AuNP, controlli, ecc.) Ciascuna piastra 12 pozzetti viene poi sottoposto al campo RF (2.b). Anche se non è necessario in quanto il tempo di esposizione RF ottimale è stato già determinato la temperatura media può anche essere registrato con la telecamera a infrarossi (2.c) in vivo protocolli:. Topi BALB-C portatori di tumori epatici ectopiche (3.a) sono stati sottoposti a iniezioni intra-tumorali di AuNPs ed esposti al sistema RF (3.b) per alcuni minuti. Nastro di rame è stato usato per terra i topi per evitare bruciore cutaneo. Una cuvetta di quarzo riempito con AuNPs viene mostrato anche vicino al mouse per convalidare l'esposizione alle radiofrequenze. L'area tumorale deve avere una temperatura più alta rispetto al resto del mouse e compare di solito rossi nell'immagine IR (3.c). ys ">
Figura 2. Velocità di riscaldamento (° C / sec) di 5 nm e 10 nm di diametro soluzioni AuNPs. Come da istruzioni di protocollo, velocità di riscaldamento sono previsti per AuNPs con surnatante (AuNPs + SN), AuNPs filtrati in modo che solo il surnatante è presente (SN) , e la differenza di velocità di riscaldamento tra questi due (differenza). I tassi medi di riscaldamento sono di tre diversi esperimenti (A, B, e C).
Figura 3. . Redditività idealizzato Ipertermia citotossicità (MTT) Vengono mostrati quattro esperimenti cellulari: controllo (senza RF), solo AuNP (senza RF), solo RF e RF con l'aggiunta di AuNPs interiorizzate cellulari (A, B, C, e D, rispettivamente ).
Figura 4. Analisi postuma dei tumori topi extrauterine. Il tumore di sinistra è quello che ci si aspetterebbe da entrambi i campioni di controllo, vale a dire non rf e nessuna iniezione AuNP). Il tumore centrale mostra una lieve diminuzione della dimensione quando sottoposto al campo RF solo. Tuttavia, il tumore destra mostra che la RF + AuNP terapia combinata può diminuire / controllare ulteriormente la crescita tumorale.
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Discussion
Questi protocolli consentono sperimentatore analizzare compiutamente la misura in cui nanomateriali (in questo caso AuNPs) può aumentare ipertermia indotta da radiofrequenza per il trattamento del cancro. Il primo protocollo si occupa specificamente di analizzare la produzione di calore da campioni AUNP altamente concentrato e purificato. Sebbene altri gruppi hanno riportato la produzione di calore principalmente dai buffer che le AuNPs sono sospesi e non gli stessi AuNPs 9-11, i loro sistemi RF utilizzate concentrazioni più basse di AuNPs con diametro> 10 nm, e anche poteri operativi RF inferiori con elettrico- intensità di campo <90 kV / m, che sono troppo bassi per vedere gli effetti del riscaldamento RF evidenti da AuNPs. Solo seguendo i protocolli e parametri elencati in questo rapporto può sperimentatore osservare il fenomeno di calore su scala nanometrica.
La sezione in vitro permette lo sviluppo di interfacce cellulare-RF-NP per essere studiati per ottimizzare RF / ipertermia NP-indotta. Befminerale aggiunta di AuNPs e l'esposizione alle radiofrequenze, si dovrebbe aspettare di avere una crescita del livello 2D vitale delle linee cellulari del cancro rilevanti (in questo caso Hep3B). Tuttavia, il tempo di esposizione RF corretto per ciascuna linea cellulare deve essere predeterminato prima questi esperimenti esponendo le cellule al campo RF a tempi diversi EG 2 -8 min) e guardando il loro profilo vitalità dopo 24 ore. Il tempo di esposizione RF corretto da utilizzare dovrebbe essere dove le celle sono ~ 80% praticabile. Nel caso di cellule Hep3B questa è risultata essere ~ 3,5 min.
Il dosaggio semplice di scelta per la vitalità è lo standard 3 - (4,5-dimethylthiazol2-yl)-2.5-diphenyltetrazolium bromuro (MTT), anche se un altro saggio può essere necessaria se si prevede che i PN interagiscono con i reagenti di saggio (come era il caso con test MTT reagendo con CNT 13). Altri saggi più avanzate e dettagliate possono essere utilizzati per valutare cella meccanismo di morte come l'analisi FACS con annessina-V e propidio ioduro di succinilcolinae (PI) colorazione. Futuro in vitro sviluppi del sistema all'interno del nostro gruppo cercherà di porre le cellule in un RF-inerte incubatore a temperatura controllata per escludere completamente eventuali possibili fonti di ipertermia dovuta al riscaldamento massa dei mezzi di comunicazione cellulare. Inoltre, la quantità di AuNPs che devono essere internalizzati all'interno di una cella di morte cellulare massimo, così come la loro stabilità all'interno organelli intracellulari, sarà studiata in maggior dettaglio. Ciò è in accordo con i recenti lavori che hanno mostrato che AuNPs devono essere non-aggregati all'interno dei lisosomi per una maggiore RF-terapia 4.
Infine, sono stati descritti i protocolli in vivo consentendo l'integrale bio-analisi di AuNPs ectopiche in modelli murini cancro epatico per la loro capacità di controllare o diminuire la crescita del tumore e / o dimensioni in combinazione con la terapia RF. Un punto importante di discussione è la possibilità per l'RF-campo per indurre ustioni cutanee nel topo causa di procedure di messa a terra non corrette. L'uso di properly a terra e messo nastro di rame, come indicato nella sezione del protocollo, è un requisito per fermare queste ustioni.
Futuro nel lavoro vivo nel nostro laboratorio lavorerà sulla valutazione del meccanismo effettivo di tumore controllo morte / size dall'esposizione RF-AuNP. Anche se si ipotizza che l'ipertermia gioca un ruolo critico, questo deve essere convalidato se l'uso di tali controlli come inserimento diretto di sonde termiche a fibre ottiche nel tumore e cellule sane circostanti a guardare la risposta temperatura RF indotta di tali tessuti . Inoltre, lo sviluppo di un colorante fluorescente termico intracellulare cui lunghezza d'onda di emissione è una funzione diretta della temperatura potrebbe essere un ottimo strumento per la convalida e potrebbe essere utilizzato anche per i modelli in vitro.
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Disclosures
Non abbiamo nulla da rivelare.
Acknowledgments
Questo lavoro è stato finanziato dal NIH (U54CA143837), i NIH MD Anderson Cancer Center di supporto Grants (CA016672), la Fondazione V (SAC), e di un assegno di ricerca senza restrizioni da parte della Fondazione Kanzius Research (SAC, Erie, PA). Ringraziamo Kristine Ash del Dipartimento di Oncologia Chirurgica, MD Anderson Cancer Center, per l'assistenza amministrativa.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagent/Material | |||
| 500 ml gold nanoparticles (5 nm) | Ted Pella, INC | 15702-5 | |
| Amicon Ultra-4/-15 Centrifugal Filter Units (50 kDa) | Millipore | UFC805024/UFC910096 | (4 ml and 15 ml volumes) |
| MEM X1 Cell Culture Media | Cellgro | 10-101-CV | (add extra nutrients as necessary) |
| Fetal Bovine Serum | Sigma | F4135-500 ml | |
| Copper Tape | Ted Pella | 16072 | |
| Equipment | |||
| Kanzius RF System (13.56 MHZ) | ThermMed, LLC, Inc. (Erie, PA, USA) | ||
| IR Camera | FLIR SC 6000, FLIR Systems, Inc. (Boston, MA, USA) | Contact FLIR | |
| 1.3 ml Quartz Cuvette | ThermMed, LLC, Inc. (Erie, PA, USA) | ||
| Teflon Sample holder with Rotary Stage | ThermMed, LLC, Inc. (Erie, PA, USA) | ||
| SPECTROstar Nano Microplate reader | BGM Labtech | ||
| UV-Vis spectrometer | Applied Nanofluorescence, Houston, TX) | NS1 NanoSpectralyzer | |
| ICP-–S | PerkinElmer | Optima 4300 DV | |
| Zetasizer | Malvern | Zen 3600 Zetasizer | |
References
- Gannon, C. J., et al. Carbon nanotube-enhanced thermal destruction of cancer cells in a noninvasive radiofrequency field. Cancer. 110, 2654 (2007).
- Curley, S. A., Cherukuri, P., Briggs, K., Patra, C. R., Upton, M., Dolson, E., Mukherjee, P. Noninvasive radiofrequency field-induced hyperthermic cytotoxicity in human cancer cells using cetuximab-targeted gold nanoparticles. J. Exp. Ther. Oncol. 7, 313 (2008).
- Gannon, C. J., Patra, C. R., Bhattacharya, R., Mukherjee, P., Curley, S. A. Intracellular gold nanoparticles enhance non-invasive radiofrequency thermal destruction of human gastrointestinal cancer cells. Journal of Nanobiotechnology. 6, 2 (2008).
- Raoof, M., et al. Stability of antibody-conjugated gold nanoparticles in the endolysosomal nanoenvironment: implications for noninvasive radiofrequency-based cancer therapy. Nanomedicine. 8, 1096 (2012).
- Glazer, E. S., Massey, K. L., Zhu, C., Curley, S. A. Pancreatic carcinoma cells are susceptible to noninvasive radio frequency fields after treatment with targeted gold nanoparticles. Surgery. 148, 319 (2010).
- Glazer, E. S., Curley, S. A. Radiofrequency field-induced thermal cytotoxicity in cancer cells treated with fluorescent nanoparticles. Cancer. 116, 3285 (2010).
- Glazer, E. S., Curley, S. A. Non-invasive radiofrequency ablation of malignancies mediated by quantum dots, gold nanoparticles and carbon nanotubes. Therapeutic Delivery. 2, 1325 (2011).
- Corr, S. J., Raoof, M., Mackeyev, Y., Phounsavath, S., Cheney, M. A., Cisneros, B. T., Shur, M., Gozin, M., McNally, P. J., Wilson, L. J., Curley, S. A. Citrate-Capped Gold Nanoparticle Electrophoretic Heat Production in Response to a Time-Varying Radiofrequency Electric-Field. J. Phys. Chem. C. 116, 24380 (2012).
- Kruse, D. E., et al. A Radio-Frequency Coupling Network for Heating of Citrate-Coated Gold Nanoparticles for Cancer Therapy: Design and Analysis. IEEE Transactions on Biomedical Engineering. 58, 10 (2011).
- Li, D., et al. Negligible absorption of radiofrequency radiation by colloidal gold nanoparticles. J. Colloid Interf. Sci. 358, 47 (2011).
- Liu, X., Chen, H. J., Chen, X., Parini, C., Wen, D. Low frequency heating of gold nanoparticle dispersions for non-invasive thermal therapies. Nanoscale. , (2012).
- Sassaroli, E., Li, K. C. P., O'Neill, B. E. Radio frequency absorption in gold nanoparticle suspensions: a phenomenological study. J. Phys. D App. Phys. 45, 075303 (2012).
- Worle-Knirsch, J. M., Pulskamp, K., Krug, H. F. Oops they did it again! Carbon nanotubes hoax scientists in viability assays. Nano Lett. 6, 1261 (2006).
