Summary
非常に後期ショウジョウバエの胚の胚性表皮は、急速な刺し傷応答解析のためのin vivoのシステムを提供し、哺乳動物モデルへの変換のための創傷治癒の研究を進めるために遺伝子操作や化学マイクロインジェクションの治療と組み合わせることができます。
Abstract
ショウジョウバエ胚は、両方とも厳しい外部環境から内部の細胞を保護するだけでなく、細胞の恒常性を維持するのに役立つ堅牢な表皮層を現像する。ガラス針で穿刺損傷は生きている胚または幼虫に局在レポーターシグナルで可視化することができる傷の転写レポーターを活性化し、迅速な表皮、創傷応答を誘発する直接的な方法を提供する。パンクやレーザー損傷はまた、創傷部位に血球の動員を促進する信号を提供する。胚を穿刺サイトから血リンパの即時漏れを最小限に油媒体中に注入されると、このような負傷の胚の90％以上が成人期まで生き残るように驚くべきことに、後期胚における重度（根っから）穿刺損傷はまれにしか、正常な胚発生を破壊しない。傷手順はAG上胚の手動アラインメントを含むショウジョウバエの胚の顕微操作を、必要としませんARプレートやスライドを顕微鏡に整列胚の移植。 ショウジョウバエ上皮創傷応答アッセイは、創傷治癒、ならびに創傷治癒を促進する潜在的な化学的化合物をスクリーニングする方法を促進する生物学的機能の種々の遺伝的要件をテストするための迅速なシステムを提供する。短いライフサイクルと簡単に培養ルーチンは、 ショウジョウバエの強力なモデル生物にする。 ショウジョウバエクリーンな創傷治癒には保存された調節を見つけるための優れたシステムを提供し、調査中である方法で、自然免疫応答、、で、表皮再生応答を調整するために表示されますショウジョウバエや哺乳動物の表皮創傷に共通するメカニズム。
Introduction
マイクロインジェクション技術を用いて、 ショウジョウバエの胚の操作は、十分に確立されたアッセイの1である。表皮創傷応答レポーター法の重要性は、蛍光リポーターでパンク/マイクロインジェクションのためのプロトコルを組み合わせて、 ショウジョウバエの胚における表皮損傷に対するin vivoでの応答を視覚化することです。このメソッドの目的は、表皮の穿刺損傷に対する転写応答を制御するプロセスを調査するツールとしてショウジョウバエを使用するために科学者のより広範なセットを有効にすることです。 ショウジョウバエの単層、表皮、穿刺負傷2の後に表皮の創傷応答を研究するための簡単なシステムを提供します。 ショウジョウバエの胚は、遺伝的に創傷応答、炎症、および再上皮3を含む、創傷修復の段階を分析する堅牢なモデル系である。多くのまたはほとんどの接合体変異体はembryogenesの最後に生き残るため、これは一部にはあるで、発達パターニングが深くゆがんで行く場合でも、表皮の障壁を開発しています。 GRH-標的遺伝子ドーパデカルボキシラーゼ（DDC）およびチロシンヒドロキシラーゼ（PLE）は転写的傷害4部位を中心に活性化することが確認され、よく保存された転写因子粒子の粗いヘッド（GRH）、以前のキャラクタリゼーション。 ショウジョウバエ創傷応答のためのモデル生物として哺乳動物の創傷治癒5の研究を進めるために、調査の補完的なラインを提供しています。その後の研究では、追加のショウジョウバエの創傷誘導される遺伝子を同定し、6が負傷きれいにするin vivoでの表皮創傷応答を監視するために、多くの蛍光創傷記者の「ツールキット」を開発しました。 ショウジョウバエ創傷治癒の調節に関する最近の報告では、細胞遊走を調節する多くの7,8経路の発見を可能にする、創傷閉鎖表現型に焦点を当てている。の分析を蛍光創傷記者が、私たちの研究では、表皮の傷誘導性遺伝子9の局所的な発現に必要な遺伝子の新規のセットを同定した。創傷応答レポーター方法の利点の一つは、結果は、信号が隣接セルへの損傷部位から形質導入されるかの機構により多くの洞察を提供することである。しかし、創傷応答レポーター方式のデメリットの一つは、結果が直接、創傷治癒や修復に表現型にリンクしていないということです。遺伝的および化学的な画面できれいな創傷穿刺プロトコルの広範な使用は、転写応答の新たな規制当局が特定することが負傷表皮および傷害治療の哺乳動物モデルに発見創傷治癒の翻訳を促進することができます。
Protocol
ショウジョウバエ胚性創傷プロトコルは、5つのステップに要約することができる：（1）胚収集、（2）胚の調製（3）胚負傷（4）胚のマイクロインジェクション、および（5）胚固定。
1。胚コレクション
- 2〜3日後にeclosing、大人のハエを集め、胚収集ケージに50人の女性と25人の男性を追加します。
- 3日間、毎朝、新鮮なリンゴジュース寒天プラス酵母プレートを置きます。
（注）25℃のインキュベーターで12時間昼間のスケジュールで最適な胚収集、サイクルのためのハエ（17:00ライト「OFF」「ON」5時点灯）、女性のハエは、明サイクルの変化に対応し、光を"OFF" 10,11 "ON"ラ イトから切り替え中の卵の大きな数量を堆積する。 - デイ3の午後には、ケージの新鮮なリンゴジュースを加えた酵母寒天プレートを配置し、2時間の胚を収集します。ケージに新しい酵母プレートを配置し、保存2時間の回収プレート。
- 胚を熟成25℃でさらに14時間回収プレートを保管してください。
注：創傷治癒はショウジョウバエの開発中にどの段階でアッセイすることができるが、このホワイトペーパーで説明した損傷誘発性の転写レポーターは、ステージ15〜16 12の間で最適な活性を有する。後期17で、胚は簡単に成熟キューティクルを貫通し、効率的に創傷の記者をアクティブまたは創傷誘導性転写を検出するにはあまりにも古いです。収集時間とピークラボ時間中に発生する創傷時間を確保するために、我々は2時間（16:00〜18:00）のための胚のコレクションのスケジュールに従う、18:00に新しいプレートとコレクションプレートを交換し、年齢コレクション·14時間（一晩）25℃でプレート、08:00（翌日）の胚を取った。
2。胚の準備
注意事項：このプロトコルは、シャープで多くのツールとオブジェクトの使用を含むまたはGで作られた小娘。けがをしないように注意して、すべての鋭利とガラスのオブジェクトを処理します。
- 優しくプレートおよび旋回2-3 mLの水を添加することにより、絵筆を持つコレクションプレートから胚を取り出します。ナイロンメッシュとコレクションチューブにプレートから水や胚を移す。
- プラスチックシャーレプレートのキャップに漂白剤4〜5 mlを添加し、2分間の漂白剤で胚を含むコレクションチューブのメッシュカバーの端を浸し、胚の外側の卵殻を除去する。手動でコレクションチューブを漂白剤にに凝集から胚を防ぐために、数回回転させます。水10倍で胚を洗浄し、ペーパータオルの上絨毛膜を除去した胚を含むメッシュカバーコレクションチューブを乾燥させます。
- 寒天プレートにナイロンメッシュから〜50胚を転送するために解剖針を使用してください。私たちは、胚の位置合わせのコントラストや助剤を添加する寒天プレートに緑色の食品着色料を追加します。解剖顕微鏡下で、エンブリーを揃える、〜25胚の2列を作るスライド上のOSそれらはマイクロインジェクション装置上の穿刺針に対して直角になるように。ガス交換の目的での胚の間に小さなスペース（約1胚の長さ）のまま。 2列は離れて約5ミリメートルである必要があります。
- 整列胚の上に両面接着テープでスライドを置き、慎重にスライドに緑のプレートから胚を転送するスライドを押してください。次いで、空気胚を乾燥〜25分間胚の内部の圧力を低下させ、創傷時バーストを防止する。
- さらに脱水を防ぐために、胚の上にハロカーボンオイルミックスの2〜3滴を配置します。
3。胚創傷は
- 注射顕微鏡ステージにおける胚のスライドを配置します。視野内の胚を見つけ、倒立顕微鏡のステージを移動練習。
注針で作業を始める前に、背腹軸に沿った胚の中央面に焦点を当てています。の効率的な創傷を可能にするために整列胚は、針装置に近い行を負傷させ始める。視野内に整列された胚の行の上端を持って、ステージを移動します。 - 慎重に配置して、針ホルダ引き込ま針を固定します。スライドに向かって針を移動するためにマイクロマニピュレーターを使用してください。同じ焦点面に、胚と針の位置を合わせます。針は胚に焦点が合っていると、マイクロマニピュレータで針を移動しないでください。
- 行の次の胚に移動して、根っから胚を穿刺する段階を移動します。最初の行が負傷し終わったら、スライドを移動する前の段階から持ち上げて完全に針を移動するためにマイクロマニピュレーターを使用して、手動でスライド180°回転し、二行目を取った。
- （プロシージャのステップ5を参照）を室温でハロカーボンオイルの下で胚を保存し、in situハイブリダイゼーションまたは抗体染色でやっている場合、胚の固定を進める。代わりに、4〜6時間の胚を保存するハロカーボン油の下および創傷転写蛍光レポーターの可視化（代表的な結果）に進む。
注：蛍光レポーターの可視化のために、我々は50％の1 -フェノキシ-2 -プロパノール13を用いて胚を麻酔する。胚はハロカーボン油から除去し、新しいスライド上に配置されている。我々は、胚の周りにガラスビーズを置き、麻酔を数滴を追加し、胚にカバースリップを配置。
4。胚のマイクロインジェクション
注：我々は、プロトコルで使用するマイクロインジェクション装置は、アッセイ中に特定のボリュームを提供するために自動化されていない。我々はマイクロインジェクションを視覚化し、配信ボリュームを正常化しようとするソリューションに染料を追加します。あまりにも多くの溶液を胚に注入されている場合は、卵黄膜が破裂します。
- 化学溶液を加えた色素の1μlのリアからのロード針（ 例えば 0.6 H 2 O 2）。毛細血管を許可する針の先端に薬液を描画する行動。
- 針を破るために、スライドとコートハロカーボンオイルミックスとエッジの角度でカバースリップを配置。角度のついたカバーガラスのエッジに焦点に取り付けられた針を持って、ゆっくりと壊れたまで針の先端間でカバースリップの端を移動します。マイクロインジェクション装置に圧力を適用し、化学溶液を加えた染料は、針を流出していることを確認してください。
- 顕微鏡ステージ上に整列した胚を含むスライドを置きます。胚と同じ平面内針を焦点に進みます。同時に穿刺し顕微注入する薬液を加えた各胚に染める。
注：詰まっ針が頻繁に発生し、不完全なマイクロインジェクションを回避するために、新しい針を破る。鈍針の先端のようにきれいに角度のついた針の先端のように巻かれていません。破損の際に非90°の角度にカバースリップを調整すると、角度のついた針の先端を製造することが最適である。
5。ホルムアルデヒドFiのxation
注意事項：このショウジョウバエの固定に使用される化学物質は有害である。化学薬品を取り扱う際の個人用保護具（ 例えば 、手袋、白衣、および安全ゴーグル）を使用します。規制化学物質の廃棄のための個々の施設のガイドラインに従ってください。
- 傷に誘導される遺伝子の転写活性化が起こるために負傷した後、15、30、60、またはそれ以上の分を待ちます。注入スライドから胚を削除するには、慎重に、スライドからハロカーボンオイルミックスを排出ラックに対してスライドリーンとキムワイプで終わりをブロット。
- スライド上でヘプタンをすすぎ、ガラスペトリ皿にリンス液を洗浄するためにガラスピペットを使用してください。ヘプタンは、テープを溶解し、胚をリリースする予定。すべての胚をスライドから除去されるまで洗い流し続ける。すべての胚をスライドから除去されるまで、次のスライドに進みます。
- 20ミリリットルSCIにガラス皿からヘプタンを加えた胚ソリューションを転送ntillationバイアル。 2〜3分間バイアルを振る、ヘプタンを除去し、新鮮なヘプタン5ミリリットルを追加。
- 新鮮な固定液を5ミリリットルを追加します（レシピのための試薬のリストを参照）。バイアルに蓋をし、軌道プラットフォームシェーカーに接続します。 220〜230 rpmで25分間胚を含むバイアルを横に振る。
- 振盪後、インタフェースのポップで泡をしてみましょう。完全に胚を引き上げ避け、下、ピペットを用いて水相を除去します。底部層は、固定液で構成され、適切に配置されるべきである。
- メタノール5ミリリットルを追加するバイアルにキャップをして、20〜30秒間、手でよく振る、スワールやベンチの上に置きます。負傷した胚は、間に滞在し、底に沈むことはありません。
注：固定後無傷の胚の卵黄膜は、通常、メタノールと脱水工程中に破裂します。しかし、負傷した胚における卵黄膜は、すでに分割され、脱水工程は、卵黄MEMBは削除されませんRANE。手devitellinzationは固定プロトコールを完了するために必要です。 - 慎重にトップヘプタン層を除去した後、新鮮な5mlのメタノールを加える。バイアルを振る、胚をシンクする必要があります。
- ガラス転移ピペットを用いてメタノールプラス胚溶液を除去し、ガラス皿にナイロンメッシュコレクションチューブに集める。
- メタノールを除去し、1×PBS溶液で胚をすすぐ。
- リンゴジュースプレートにナイロンメッシュからの胚を転送します。プレートの表面に沿って胚を広げる。
- ダブル粘着テープガラススライドに胚を移す。 1X PBSで胚をカバーしています。
注：胚が原因卵黄膜の凝集する傾向があります。リンゴジュースの場所を使用すると、凝集した胚の迅速な分離を可能にする。力から胚を除去するために適用されたときに胚を寒天プレートに沈むため、胚をプレートから除去し、両面接着テープをガラススライドに移されなければならない卵黄膜。 - 慎重に卵黄膜を「POP」する解剖針で胚を押してください。胚はPBS中に沈むはずです。
- 1.5ミリリットルチューブに1×PBSプラス胚を転送するためにガラスピペットを使用してください。 4℃で1×PBSおよびストアとの胚をすすぐエタノールを用いて胚を脱水するために進んでください：PBSシリーズ、in situハイブリダイゼーションや免疫局在プロトコル14 で続行します。
Representative Results
この方法に示す結果を得るために、緑色蛍光タンパク質（GFP）のオープンリーディングフレームは、 ドーパデカルボキシラーゼ（DDC）からのプロモーター/創傷誘導性エンハンサー配列に融合されたDsRedは、（ チロシンヒドロキシラーゼから創傷エンハンサー配列に融合されているPLE）4,6。ライブショウジョウバエ胚において、蛍光創傷レポータータンパク質の成熟は、最適な4-6十分なタンパク質の蓄積のための時間を視覚化することを可能にする創傷後時間、だけでなく、蛍光状態15に酸化する蛍光タンパク質のための時間です。レポーター局在を観察するために、化合物蛍光顕微鏡で十分である。レポーター局在の高倍率を観察するために、共焦点顕微鏡は、複数の光学切片の最大投影（ 図1）を生成するために最適である。 ショウジョウバエの胚のin vivoイメージング共焦点は、RAによって複雑になる胚のPIDうねり。 。胚の完全なビューは、20X対物レンズを得ることができ、創傷部位の拡大図は、40X対物レンズを用いて得ることができる。表皮創傷レポーター局在の上面図は、連続する101μmの光学切片を用いて画像化することができる。表皮創傷レポーター局在の横図40は、連続1μmの光学切片を用いて画像化することができる。
標準的な遺伝子交差方法を使用して、それが遺伝子変異を創記者を組み合わせることが可能である。本論文で提示つの例は、 フロティリン-2（FLO-2）であり、なぜなら機能喪失（P因子の挿入で生成ヌル対立遺伝子）および機能獲得（過剰発現は全ての細胞に遍在する表現で生成される）の変異株FLO-2フロー-2遺伝子産物は、レポーター9 Ddcに巻か-GFPの局在化を阻害するのに必要かつ十分で実証する（ 図2Aおよび2B）。マイルを使ってcroinjectionプロトコルは、薬液のsuperactivatesの導入や、創傷記者の局在を阻害するか否かを試験することが可能である。化学的に負傷した胚を同時に負傷し、1％トルイジンブルー染料および可溶化化合物の1:4の比を注射した。トルイジンブルー色素は、体腔内に注入される可溶化化合物の視覚的確認を可能にした。対照胚は、化学せずに、1％トルイジンブルー色素と溶質の1:4の比を含む壊れた針で負傷した。両方の薬液がグローバルに十分であるので、この論文で提示つの例は、DDC-GFPの局在9（ 図2Cおよび2D）レポーター創傷活性化、過酸化水素（H 2 O 2）、メチル-β-シクロデキストリン（MβCD）である。過酸化水素（H 2 O 2）2 O M.メチル-β-シクロデキストリン（MβCD）0.6は1メートルに可溶化したHで希釈した3 mmまでのNaOH。胚の固定プロトコールを用いて、創傷部位の周囲の、ローカライズされたドメインに巻か応答遺伝子の転写活性化を検出することができる。本論文で提示一例DDCはとPLE転写物4,6,9（ 図3Aと図3B）を検出するためにRNAプローブのin situハイブリダイゼーションである。
図1。 DDC-GFP及びPLE-DsRedのは、（B）は（A）DDC-GFP巻かレポーターのトップビュー。負傷野生型の胚で記者ローカリゼーション。明と蛍光像を巻か PLE-DsRedのトップビューは、レポーターを取った。全ての画像は、20X対物レンズで、ライカSP2共焦点顕微鏡で収集した。矢印は、創傷部位をマーク。 [データ]パネルの破線Sは、胚の輪郭をマークします。 拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください 。
図2。遺伝的変異体背景や化学微量注入した胚。明と負傷フロティリン-2（FLO-2）変異胚の蛍光画像におけるDDC-GFP巻かリポーターの局在。（A）の機能喪失FLO-2 {KG00210}の変異体、すべての表皮細胞全体のレポーター活性の膨張（B）の機能獲得フロー-2（アルマジロ-GAL4、UAS-Flo2）変異体、すべての表皮細胞全体のレポーター活性の阻害。（C）過酸化水素（H 2 O 2 ）ソリューションマイクロインジェクション、REPの拡大すべての表皮細胞全体orter活動。（D）メチル-β-シクロデキストリン（MβCD）ソリューションマイクロインジェクション、すべての表皮細胞全体でレポーター活性の拡大。全ての画像は、20X対物レンズで、ライカSP2共焦点顕微鏡で収集した。矢印は、創傷部位をマーク。データパネルの破線は、胚の輪郭をマークします。 拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください 。
図3。創傷応答遺伝子のRNA転写物の検出。傷ついた野生型の胚におけるin situハイブリダイゼーション及びRNAの検出における蛍光画像。DDC（A）及びPLE（B）RNA転写物は、創傷部位の周囲に蓄積する。全ての画像コレクション1だった20Xの目的とライカSP2共焦点顕微鏡、上のテッド。矢印は、創傷部位をマーク。データパネルの破線は、胚の輪郭をマークします。 拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください 。
表1。表皮の創傷応答記者の概要。4創傷応答記者（DDC、PLE、MSN、KKV）の挿入は、2番目と3番目の両方の染色体上に用意されています。創傷応答レポーターのすべては、 野生型の背景（ 例えば 、 "ローカル"表現型）の穿刺損傷部位の周囲の表皮細胞の限られた数の蛍光遺伝子（GFPまたはDsRedの）を活性化。DdcにおよびMSN創傷応答記者が探しGRHを必要とするfluorescenの活性化穿刺損傷（ 例： "none"に表現型）の後にCE遺伝子。創傷記者はすべて、穿刺損傷（ 例えば 、 "グローバル"表現型）後の蛍光遺伝子の局在のためにFLO-2が必要です。 拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください 。
Discussion
外部の合図にすぐに転写調節応答は、細胞がストレス、損傷、または感染を含むことができ、細胞外刺激に対する局所的な応答を調整することができます。ローカライズされた応答の不適切な制御は、傷害を修復するために有害な隣接セルへの影響だけでなく、資源の無駄を持つことができます。 ショウジョウバエの胚は、安価で容易な保守のモデル生物で、基本的な創傷治癒実験を行うための優れたシステムを提供します。他のモデル生物の研究とショウジョウバエの間のコラボレーションの可能性は、多くの生物学的な質問を探検するユニークな機会を提供します。
創傷レポーターの付加的な技術は、表皮の創傷応答経路の活性化に新しい遺伝子の寄与を試験するための効率的な方法を提供し、突然変異体の遺伝的背景を組み合わせたものである。我々は、表皮の創傷誘発性の転写レポーターがAV持って2 回目と3 回目の染色体5の両方でailable。本研究では、UAと過剰発現16のGAL4システムを使用しています。致死突然変異対立遺伝子を用いた研究のために我々は蛍光バランサー染色体、 例えばクルッペル GFP 17を使用して遺伝的背景を決定する。我々は、いくつかの遺伝的背景（ 表1）に巻かれたレポーター局在を解析した。
技術の可能性のある変更は、マイクロインジェクションおよび創傷を組み合わせることである。マイクロインジェクションは、胚への薬液を導入するために使用することができる。いくつかの化学化合物が試験されており、表皮の創傷レポーター9の活性を調節することが見出された。同時創傷およびマイクロインジェクションのこの方法は、創傷信号に応答し、直接18を創傷後の遺伝子発現変化をモニターするために使用することができるショウジョウバエ胚における細胞の数を増加させるために有用であり得る。マイクロインジェクション技術の将来の応用は、表皮創傷応答の調節のための新規な化学物質を試験するであろう。
遺伝子研究のためのモデル系として、ショウジョウバエを効率的に複雑な問題に対処するための簡単なプロトコルを幅広く提供しています。 ショウジョウバエの技術の実現可能性に関する最近の報告では、さらにショウジョウバエ研究者コミュニティの影響を拡大する手段として、血球移行19と寄生蜂感染20の使用を強調しています。傷の修復の研究に加えて、 ショウジョウバエ成虫ディスクシステム21,22と再生のための古典的なモデルを提供します。成虫椎間板再生研究やパンク/マイクロインジェクション負傷中の組み合わせの進歩は、組織修復のよく保存されたコンポーネントを発見するための優れたシステムを提供します。
Disclosures
利害の対立が宣言されていません。
Acknowledgments
このプロトコルは、マクギニスラボ、キムA.メイスとヨセフC.ピアソンの以前のメンバーと共同で開発されています。私たちは、貴重な株式を整理し、配布するための自分の仕事のためのブルーミントンショウジョウバエストックセンターの継続的な努力に感謝します。この作品は、国立衛生研究所（R01 GM077197およびK12 GM68524）とハーバート·スターンの家族からの資金によってサポートされていました。 MTJは現在、少数の健康と健康格差の国民の協会からの研究資源のための国民の中心および認可番号8G12MD7603-27からの助成金番号5G12RR003060-26でサポートされています。内容はもっぱら著者の責任であり、必ずしも少数の健康と健康格差や国立衛生研究所国立研究所の公式見解を示すものではありません。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| yeast | Sigma Aldrich | 51475 | |
| apple juice | Generic | ||
| agar | Fisher Scientific | 50-824-297 | |
| bleach | Generic | ||
| halocarbon oil, 700 W | Sigma Aldrich | H8898 | |
| halocarbon oil, 27 W | Sigma Aldrich | H8773 | |
| 1-phenoxy-2-propanol | Sigma Aldrich | 484423 | |
| hydrogen peroxide | Fisher Scientific | H324 | |
| methyl-β-cyclodextrin | Sigma Aldrich | C4555 | |
| toluidine blue | Sigma Aldrich | 89640 | |
| formaldehyde, 16% | Polysciences, Inc | 18814-20 | toxic chemical |
| heptane | Fisher Scientific | H360-1 | toxic chemical |
| methanol | Fisher Scientific | A412-1 | toxic chemical |
| 10x PBS | Fisher Scientific | 50-899-90013 | |
| 0.5 M EGTA | Fisher Scientific | 50-255-956 | |
| RNase free H2O | Fisher Scientific | BP2819-100 | |
| Drosophila incubator | Genessee Scientific | 59-197 | |
| fly cage | Genessee Scientific | 59-100 | |
| embryo collection tube | Genessee Scientific | 46-101 | |
| plastic Petri dish | Fisher Scientific | 50-202-037 | |
| double-stick tape | Generic | ||
| paintbrush | Generic | ||
| dissection needle | Fisher Scientific | 08-965A | sharp object |
| glass cover slip | Thermo Scientific | 3306 | sharp object |
| microscope slide | Thermo Scientific | 4445 | sharp object |
| dissecting microscope | Carl Zeiss | Stemi-2000 | |
| capillary needle | FHC | 30-30-1 | sharp object |
| needle puller | Narishige | PC10 | |
| microinjection needle holder | Narishige | MINJ4 | |
| micromanipulator | Narishige | MN151 | |
| inverted microscope | Carl Zeiss | Primo-Vert | |
| glass Petri dish | Fisher Scientific | 08-747A | sharp object |
| glass Pasteur pipette | Fisher Scientific | 22-063-172 | sharp object |
| transfer bulb | Fisher Scientific | 03-448-25 | |
| Kimwipe | Fisher Scientific | 06-666A | |
| scintillation vial | Fisher Scientific | 03-337-7 | sharp object |
| orbital shaker | Fisher Scientific | 14-259-260 | |
| 1.5 ml tube | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| laser scanning confocal | Leica | SP2 | |
| fixation solution | (5 ml) | ||
| 16% formaldehyde | 2.5 ml | toxic chemical | |
| 10x PBS | 0.5 ml | ||
| 0.5 M EGTA | 0.5 ml | ||
| RNase free H2O | 1.5 ml | ||
| Halocarbon oil mix | (10 ml) | ||
| halocarbon oil, 700 W | 5 ml | ||
| halocarbon oil, 27 W | 5 ml |
References
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