Summary
아주 늦은 단계 Drosophila의 배아의 배아 표피 빠른 찔린 상처의 응답 분석을위한 생체 시스템을 제공하고, 포유 동물 모델로 번역 상처 치료에 대한 연구를 진행하기 위하여 유전자 조작 물질 또는 화학 물질 미세 주입 치료와 결합 될 수있다.
Abstract
초파리 배아 모두 거친 외부 환경으로부터 내부의 세포를 보호 할뿐만 아니라, 세포의 항상성을 유지하는 역할을 강력한 표피층을 개발한다. 유리 바늘 구멍 부상 생활 배아 또는 유충의 지역화 기자 신호에 의해 시각하실 수 있습니다 상처 전사 기자가 활성화 빠른 표피 상처 반응을 일으킬 수있는 직접적인 방법을 제공합니다. 구멍을 뚫거나 레이저 부상은 상처 사이트에 혈구 세포의 채용을 촉진 신호를 제공한다. 놀랍게도, 최종 단계의 배아에서 심각한 (철저히) 빵꾸 부상은 거의 같은 부상 배아의 90 % 이상이 배아가 펑크 사이트에서 체액 즉시 누출을 최소화하는 오일 매체에 주입 할 때 성년 생존과 정상적인 배아 발달을 방해하지 . 상처 절차는 AG에 태아의 수동 정렬을 포함하여 초파리 배아의 미세 조작을 필요로하지AR 플레이트와 슬라이드를 현미경 정렬 된 배아의 전송. 초파리 표피 상처 반응 분석은 상처 치유뿐만 아니라 상처 치유를 촉진 잠재적 인 화합물을 선별하는 방법을 촉진 생물학적 기능의 다양한 유전 적 요건을 테스트하는 퀵 시스템을 제공한다. 짧은 수명주기 쉬운 배양 루틴이 초파리 강력한 모델 생물합니다. 초파리 깨끗한 상처 치유 규제 보존 찾을 수있는 훌륭한 시스템을 제공 아직 조사를 받고있다 방법으로, 타고난 면역 반응으로, 표피 재생 응답을 조정하기 위해 나타납니다 초파리와 포유 동물의 표피 상처를 입기에 공통 메커니즘.
Introduction
미세 주입 기술을 이용하여 초파리 배아의 조작은 잘 확립 된 분석 1. 표피 상처 응답 리포터 방법의 중요성은 형광 기자와 펑크 / 미세 주입을위한 프로토콜을 결합하고 Drosophila의 배아 표피 손상에 생체 반응을 시각화하는 것입니다. 이 방법의 목적은 표피 천자 부상으로 전사 반응을 조절하는 과정을 조사하기위한 도구로서 초파리를 사용하는 과학자의 광범위한 세트를 사용하는 것이다. 초파리의 단일 층 표피는 펑크 부상이 후 표피 상처의 반응을 연구 할 수있는 간단한 시스템을 제공합니다. Drosophila의 배아는 유전자 상처 반응, 염증, 및 재 상피화 3 등의 상처 보수의 단계를 해부에 대한 강력한 모델 시스템입니다. 많은 또는 대부분의 접합체 돌연변이 embryogenes의 단부에 생존 때문 부분에과 발달 패턴 뿌리깊은 틀려서 경우에도 표피 장벽을 개발한다. GRH-표적 유전자 아미노산의 일종 탈 카르복시 화 효소 (DDC)과 티로신 수산화 효소 (PLE)을 전사적으로 부상 (4)의 사이트를 중심으로 활성화됩니다. 확인 잘 보존 전사 인자 거친 헤드 (GRH), 이전 특성 초파리 상처 대응을위한 모델 생물로 포유 동물의 상처 치유 5에서 연구를 진행하는 조사의 보완 라인을 제공합니다. 후속 연구는 추가 초파리 상처 유발 유전자를 발견하고 6 명이 부상 청소 생체 표피 상처의 반응을 모니터링하는 많은 형광 상처 기자의 "키트"를 개발했다. 초파리 상처 치유의 규제에 관한 최근의 보고서는 세포 이동을 규제 7,8 많은 경로의 검색을 허용 상처 봉합 표현형에 초점을 맞추고있다. 의 분석형광 상처 기자는, 우리의 연구는 표피 상처 유도 유전자 (9)의 지역화 식에 필요한 유전자의 새로운 세트를 발견했습니다. 상처 응답 리포터 방법의 장점 중 하나는 결과 신호가 인접 셀에 부상의 사이트에서 형질 도입하는 방법의 메커니즘에 대한 추가 통찰력을 제공한다는 것이다. 그러나, 상처 응답 리포터 방법의 단점 중 하나는 결과 직접 상처 치유 또는 수리 표현형을 링크하지 않는다는 것이다. 유전 및 화학 화면의 깨끗한 상처 천자 프로토콜의 광범위한 사용은 전사 반응의 새로운 규제 식별 할 부상 표피 및 부상 치료의 포유 동물 모델로 상처 치유 발견의 번역을 증진 할 수 있습니다.
Protocol
Drosophila의 배아 상처 프로토콜은 다섯 단계로 요약 될 수있다 : (1) 배아 컬렉션, (2) 배아 준비 (3) 배아 부상, (4) 배아 미세 주입하고, (5) 배아 고정.
1. 배아 컬렉션
- 성인 파리를 수집 2~3일 eclosing 후 배아 수집 케이지에 50 명의 여성과 25 명의 남성을 추가합니다.
- 3 일 동안 매일 아침 신선한 사과 주스 한천 플러스 효모 판을 놓습니다.
주 : 25 ° C 배양기에서 12 시간 낮의 일정에 최적의 배아 수집, 사이클 파리 (17:00 빛 "OFF", "ON"5시 등), 여성 파리는 빛 사이클의 변화에 대응하고 빛을 "OFF", 11 "ON"등의 스위치 중에 계란의 큰 수량을 입금합니다. - 일 - 3 일 오후, 케이지에 신선한 사과 주스 플러스 효모 한천 플레이트를 배치하고 2 시간 동안 배아를 수집합니다. 새장에 새 효모 판을 놓고 저장2 시간 수집 판.
- 배아를 나이에 25 ° C에서 추가로 14 시간 동안 수집 판을 보관합니다.
주의 사항 : 상처 치유는 초파리를 개발하는 동안 모든 단계에서 정량 할 수 있으며,이 문서에 설명 된 상처에 의한 전사 기자는 단계 12월 15일에서 16일까지 사이의 최적의 활성을 갖는다. 말기 (17)에 의해, 배아 쉽게 성숙 표피를 관통하고 효율적으로 상처 기자를 활성화하거나 상처에 의한 전사를 감지 너무 오래. 수집 시간과 상처를 입기 시간이 피크 랩 시간 동안 발생할 수 있도록하기 위해, 우리는 18시 새 접시와 컬렉션 플레이트를 교환, 2 시간 (16시부터 18시까지)에 대한 배아 컬렉션의 스케줄을 따라 세 14 시간 (야간) 25 ° C에서 컬렉션 플레이트, 그리고 (다음 날) 08:00 배아를 상처.
2. 배아 준비
참고 :이 프로토콜은 날카로운 또는 G 만든 다양한 도구와 개체의 사용을 포함아가씨. 부상을 방지하기 위해주의 모든 날카로운 유리 개체를 처리 할 수 있습니다.
- 조심스럽게 접시와 소용돌이에 2 ~ 3 ㎖의 물을 추가하여 붓 수집 플레이트에서 배아를 제거합니다. 나일론 메쉬 및 수집 관에 접시에서 물과 배아를 전송합니다.
- 플라스틱 페트리 접시 접시의 뚜껑에 표백제의 4 ~ 5 mL를 넣고 2 분 동안 표백의 배아를 포함하는 수집 관의 메쉬 커버 끝 흡수, 태아의 외부 껍질을 제거합니다. 수동으로 수집 관에게 표백제의 응집에서 배아를 방지하기 위해 몇 번 회전합니다. 물 배와 배아를 씻어 종이 타월에 dechorionated 배아를 포함하는 메쉬 커버 포집 관을 건조.
- 한천 플레이트에 나일론 메쉬에서 ~ 50 배아를 전송하는 해부 바늘을 사용합니다. 우리는 배아의 정렬에 대비 및 지원을 추가 할 한천 플레이트에 녹색 식용 색소를 추가합니다. 해부 현미경, 엠브리 정렬 ~ 25 배아의 두 개의 병렬 행을슬라이드 OS가 마이크로 인젝션 장치에 천자 바늘에 대하여 직각이되도록. 가스 교환을 목적으로 배아 사이에 약간의 공간 (약 1 배아의 길이)를 둡니다. 두 개의 병렬 행이 떨어져 대략 5 mm 이상이어야한다.
- 정렬 된 배아의 상단에 두 배 지팡이 테이프와 슬라이드를 놓고 조심스럽게 슬라이드에 그린 접시에서 배아를 전송하는 슬라이드를 누릅니다. 그런 다음 공기 배아를 건조 ~ 25 분 배아에서 내부 압력을 감소시키고 상처를 입는 경우 버스트를 방지합니다.
- 더 탈수를 방지하기 위해 배아에 할로 카본 오일 혼합의 2 ~ 3 방울을 넣습니다.
3. 배아 부상
- 주사 현미경 단계에있는 배아 슬라이드를 놓습니다. 보기의 분야에서 배아를 찾아 거꾸로 현미경의 무대를 이동 연습.
참고 : 바늘을 사용하기 전에, dorsoventral 축을 따라 배아의 중간면에 초점을 맞 춥니 다. 효율적으로 상처를 입기을 허용하기 위해정렬 된 배아는 가까이 바늘 장치에 행을 부상 시작합니다. 보기의 필드에 정렬 된 배아의 행의 상단을 가지고 무대를 이동합니다. - 조심스럽게 배치하고 바늘 홀더에서 뽑아 바늘을 고정합니다. 슬라이드를 향해 아래로 바늘을 이동하는 미세 조작기를 사용합니다. 같은 초점면에서, 배아와 바늘을 맞 춥니 다. 바늘이 배아에 초점되면, 미세 조작기로 바늘을 이동하지 않습니다.
- 다음 행의 다음 배아로 이동을 통해 통해 배아를 천공 단계를 이동합니다. 첫 번째 행을 부상 할 때, 슬라이드를 이동하기 전에 단계로부터 멀리 완전히 바늘을 이동하는 미세 조작기를 사용하여, 수동으로 슬라이드를 180 ° 회전하고 두 번째 행 상처.
- 실온에서 할로 카본 오일에서 배아를 저장하고 배아 고정 진행 현장 하이브리드 또는 항체 염색에서하고있는 경우 (절차의 단계 5 참조). 또한, 4 ~ 6 시간 동안 배아를 저장할로 카본 오일에서와 상처 전사 형광 기자 시각화 (대표 결과)를 진행합니다.
참고 : 형광 기자의 시각화를 위해, 우리는 50 % 1 - 페녹시 -2 - 프로판올 (13)를 사용하여 배아를 마취. 배아는 할로 카본 오일에서 제거하고 새 슬라이드에 배치됩니다. 우리는 배아의 주위에 유리 구슬을 배치 마취 몇 방울을 추가하고, 배아에 커버 슬립을 배치합니다.
4. 배아 미세 주입
주 : 우리가 프로토콜에서 사용하는 미세 주입 장치는 분석 기간 동안 특정 볼륨을 제공하는 자동화되지 않습니다. 우리는 미세 주입을 시각화하고 전달 볼륨을 정상화하려고 솔루션에 염료를 추가합니다. 너무 많은 솔루션이 배아에 주입되는 경우, 난황 막 파열 것이다.
- 화학 용액 플러스 염료의 1 μL와 후면에서로드 바늘 (예 : 0.6 MH 2 O 2). 모세 혈관이 허용바늘의 끝 부분에 화학 용액을 그리는 작업입니다.
- 바늘을 중단하려면 슬라이드 코트 할로 카본 오일 믹스 가장자리에 각도로 커버 슬립을 배치합니다. 각진 커버 슬립의 가장자리에 초점에 장착 된 바늘을 가지고 부드럽게 깨진 때까지 바늘의 끝을 가로 질러 커버 슬립의 가장자리로 이동합니다. 미세 주입 장치에 압력을 적용하고 화학 용액 플러스 염료 바늘을 유출되어 있는지 확인합니다.
- 현미경 단계에 맞춰 배아를 포함하는 슬라이드를 놓습니다. 동일 평면에있는 배아와 바늘에 초점을 진행합니다. 동시에 찔린 microinject 화학 솔루션 플러스 각 배아로 염색.
참고 : 막힌 바늘 자주 발생, 불완전 미세 주입을 방지하기 위해 새로운 바늘을 휴식. 무딘 바늘 끝은 깔끔 각도 바늘 끝과 같은 상처를하지 않습니다. 파손하는 동안 비 90 ° 각도로 커버 슬립을 조정하면 각도 바늘 끝을 생산하기에 최적입니다.
5. 포름 알데히드 인터넷xation
참고 :이 초파리의 고정에 사용되는 화학 물질은 유해하다. 화학 약품을 처리하는 개인 보호 장비 (예 : 장갑, 실험복, 안전 고글)를 사용합니다. 규제 화학 물질의 처분을 위해 개별 기관의 지침을 따르십시오.
- 남긴 상처 후 발생하는 상처 유발 유전자의 전사 활성화를 위해 15, 30, 60, 분 이상 기다립니다. 사출 슬라이드에서 배아를 제거하려면, 조심스럽게 슬라이드에서 할로 카본 오일 혼합 드레인 랙에 슬라이드 기대어 킴 와이프로 끝을 얼룩.
- 슬라이드에 헵탄을 씻어 유리 페트리 접시에 린스 액을 씻어 유리 피펫을 사용합니다. 헵탄 테이프를 녹여 배아를 발표 할 예정이다. 모든 배아가 슬라이드에서 제거 될 때까지 계속 세척 할 것. 모든 배아가 슬라이드에서 제거 될 때까지, 다음 슬라이드로 이동합니다.
- 20 ㎖의 공상 과학에 유리 접시에서 헵탄 플러스 배아 솔루션을 전송ntillation 유리 병. 2 ~ 3 분 동안 병을 흔들어, 헵탄을 제거하고 신선한 헵탄 5 ㎖를 추가합니다.
- 신선한, 고정 솔루션의 5 ML을 추가합니다 (조리법에 대한 시약의 목록 참조). 유리 병 모자와 궤도 플랫폼 통에 연결합니다. 220 ~ 230 rpm에서 25 분 동안 배아를 포함하는 유리 병을 흔들어.
- 흔들어, 인터페이스 팝업에서 거품을 할 수 있습니다. 완전히 배아를 잡아 당겨 피 피펫 아래, 수성 단계를 제거합니다. 바닥 층은 고정 솔루션으로 구성되어 있으며 제대로 처리해야합니다.
- 메탄올 5 ㎖를 추가 유리 병 캡을 20 ~ 30 초, 소용돌이에 손으로 격렬하게 흔들 벤치에 놓습니다. 부상 배아는 계면에 남아있을 것하고 아래로 침몰하지 않습니다.
주의 사항 : 고정 후 unwounded 배아의 난황 막 일반적으로 메탄올 탈수 단계에서 폭발합니다. 그러나, 부상당한 배아의 난황 막 이미 고장 및 탈수 단계는 난황의 MEMB을 제거하지 않습니다RANE. 손 devitellinzation는 고정 프로토콜을 완료하는 데 필요합니다. - 조심스럽게 상단 헵탄 층을 제거하고 신선한 메탄올 5 ㎖를 추가합니다. 유리 병을 흔들어 배아 싱크해야합니다.
- 유리 전송 피펫으로 메탄올 플러스 배아 용액을 제거하고 유리 접시에 나일론 메쉬 포집 관에 수집한다.
- 메탄올을 제거하고 1X PBS 용액으로 배아를 씻어.
- 사과 주스 플레이트에 나일론 메쉬에서 배아를 전송합니다. 판의 표면을 따라 배아를 확산.
- 두 배 지팡이 테이프 유리 슬라이드에 배아를 전송합니다. 1X PBS와 배아를 커버.
참고 : 배아 때문에 난황 막 응집하는 경향이있다. 사과 주스 장소를 사용하여 응집 배아를 빠르게 분리 할 수 있습니다. 힘에서 배아를 제거하기 위해 적용되었을 때 배아 한천 플레이트에 싱크 때문에 배아는 플레이트로부터 제거되고 이중 스틱 테이프 유리 슬라이드로 전송해야난황 막. - 조심스럽게 난황 막 "팝업"으로 해부 바늘로 배아를 밀어 넣습니다. 배아는 PBS에 침몰한다.
- 1.5 ML 튜브에 1X PBS 플러스 배아를 전송하는 유리 피펫을 사용합니다. 4 ℃에서 1X PBS 및 저장과 배아를 씻어 PBS 시리즈와 현장 하이브리드 또는의 면역 프로토콜 14을 계속 : 에탄올을 사용하여 배아를 탈수로 이동합니다.
Representative Results
이 방법에 나타낸 결과를 얻으려면, 녹색 형광 단백질 (GFP)의 오픈 리딩 프레임은 도파 디카 르 복실 라 아제 (DDC) 및 DsRed를가 (티로신 수산화 효소로부터 상처 인핸서 서열에 융합에서 프로모터 / 상처 유발 인핸서 서열에 융합 PLE) 4,6. 라이브 Drosophila의 배아에서 형광 상처 기자 단백질의 성숙 최적의 4-6 충분한 단백질의 축적을위한 시간을 시각화 할 수 있습니다 부상 후 시간뿐만 아니라 형광 상태 (15)로 산화하는 형광 단백질을위한 시간이다. 기자 현지화를 관찰하기 위해, 화합물 형광 현미경은 충분하다. 기자 현지화의 높은 배율을 관찰하기 위해, 공 초점 현미경은 여러 광학 부분의 최대 투사 (그림 1)를 생성하는 최적입니다. Drosophila의 배아의 생체 내 이미징 공 촛점은 RA 복잡합니다배아의 PID 기복. . 배아의 전체보기는 20X 목적으로 취득 할 수 있고, 상처 사이트의 근접 촬영보기 40X 목적으로 얻을 수있다. 표피 상처 기자 현지화의 상위 뷰는 10 연속 1 ㎛의 광학 부분에 몇 군데 있습니다. 표피 상처 기자 현지화의 측면 뷰는 40 연속 1 μm의 광학 부분에 몇 군데 있습니다.
표준 유전자 횡단 방법을 사용하면, 유전자 변이 권취 기자 조합 될 수있다. 이 논문에서 제시 한 예는 Flotillin-2 (FLO-2)이다, 때문에 (P 요소의 삽입에 의해 생성 NULL 대립 유전자) 손실 함수와 기능 획득 (모든 세포에서 유비쿼터스 식으로 생성 과발현) 돌연변이의 FLO-2 FLO-2 유전자의 제품은 기자들에게 9 상처 DDC-GFP의 현지화를 억제하기 위해 필요하고 충분한 설명 (그림 2A와 2B). MI를 사용하여croinjection 프로토콜, 그것은 화학 솔루션 superactivates의 도입 또는 상처 기자의 지역화를 억제하는지 여부를 테스트 할 수 있습니다. 화학적 부상 배아 동시에 부상 및 1 % 톨루이딘 블루 염색 및 가용화 된 화합물의 1:4 비율로 주입 하였다. 톨루이딘 블루 염색은 체강에 주입되는 용해 된 화합물의 시각적 확인을 허용했다. 제어 배아는 화학하지 않고 1 % 톨루이딘 블루 염색 및 고용 1:4 비율을 포함 부러진 바늘로 부상했다. 본 논문에서 제시된 두 가지 예는 과산화수소이다 (H 2 O 2) 및 메틸-β-사이클로 덱스트린 (MβCD), 모두 화학 솔루션은 전 세계적으로 DDC-GFP의 현지화 기자 상처를 활성화하기에 충분하기 때문에 9 (그림 2C와 2D) . 과산화수소 (H 2 O 2) H에서 희석 2 O M. 메틸-β-사이클로 덱스트린 (MβCD) 0.6은 1m에 용해 된M NaOH를 3 mm로. 배아 고정 프로토콜을 사용하면, 상처 사이트를 둘러싸고, 국소 영역에서 권취 반응 유전자의 전사 활성을 검출 할 수있다. 이 논문에서 제시 한 예는 DDC와 PLE 성적 4,6,9 (그림 3a 및 3b)를 검출하기 위해 RNA 프로브의 현장 하이브리드입니다.
그림 1. DDC-GFP 및 PLE-DsRed를은 (B). (A) DDC-GFP 상처 기자의 높은보기. 부상 야생 형 배아 기자 현지화. 명 시야 및 형광 이미지를 상처 PLE-DsRed를의 높은보기 기자 상처. 모든 이미지는 20X 목적으로, 라이카 SP2 공 초점 현미경에 수집되었다. 화살표는 상처의 위치를 표시합니다. 데이터 패널에서 점선의 배아의 윤곽을 표시합니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
그림 2. 유전자 돌연변이 배경과 화학 미세 주입 배아. 명 시야 및 부상 Flotillin-2 (FLO-2) 돌연변이 배아의 형광 이미지의 DDC-GFP 상처 기자의 현지화. (A) 손실의 기능 FLO-2 {KG00210} 돌연변이, 모든 상피 세포 걸쳐 리포터 활성의 팽창. (B) 기능 획득 FLO-2 (아르마딜로-GAL4, UAS-Flo2) 돌연변이 모두 상피 세포 걸쳐 리포터 활성의 억제. (C) 과산화수소 (H 2 O 2 ) 솔루션 미세 주입, 담당자의 확장의 orter 활동 모든 표피 세포에 걸쳐. (D) 메틸-β-사이클로 덱스트린 (MβCD) 솔루션 미세 주입, 모든 표피 세포에 걸쳐 기자 활동의 확장. 모든 이미지는 20X 목적으로, 라이카 SP2 공 초점 현미경에 수집되었다. 화살표는 상처의 위치를 표시합니다. 데이터 패널의 점선은 배아의 윤곽을 표시합니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
그림 3. 상처 반응 유전자의 RNA 전 사체의 탐지. 부상당한 야생 형 배아 현장 하이브리드와 RNA의 검출의 형광 이미지. DDC (A)와 PLE (B) RNA 전 사체는 상처 사이트 주위에 축적된다. 모든 이미지는 컬렉터 엔진이었다20X의 목적으로 라이카 SP2 공 초점 현미경에 테드. 화살표는 상처의 위치를 표시합니다. 데이터 패널의 점선은 배아의 윤곽을 표시합니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
표 1. 표피 상처 응답 기자의 요약. 네 상처 응답 기자 (DDC, PLE, MSN, KKV)의 삽입 내용은 두 번째와 세 번째 염색체에 사용할 수 있습니다. 상처 응답 기자의 모든 야생형 배경 (예 : "로컬"표현형)에 찔린 상처의 사이트를 주변 표피 세포의 제한된 수의 형광 유전자 (GFP 또는 DsRed를)를 활성화합니다. DDC와 MSN 상처 응답 기자에 GRH가 필요 fluorescen의 활성화찔린 상처 (예를 들어, "없음"표현형) 후 CE 유전자. 상처 기자의 모든 구멍 부상 (예 : "글로벌"표현형) 후 형광 유전자의 국산화 FLO-2가 필요합니다. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오 .
Discussion
외부 신호에 즉시 전사 조절 반응은 세포가 스트레스, 손상 또는 감염을 포함 할 수있다 세포 자극에 대한 지역화 된 응답을 조정 할 수 있습니다. 지역화 된 응답의 부적절한 조절은 손상을 복구하는 손상 이웃 세포에 대한 영향뿐만 아니라 자원의 낭비가있을 수 있습니다. Drosophila의 배아는 저렴하고 유지 관리가 쉬운 모델 생물의 기본적인 상처 치유 실험을 수행 할 수있는 훌륭한 시스템을 제공합니다. 다른 모델 생물의 연구와 초파리 사이의 협력의 가능성은 많은 생물 학적 질문을 탐험 할 수있는 독특한 기회를 제공합니다.
상처 기자의 추가적인 기술은 표피 상처 반응 경로의 활성화에 새로운 유전자의 포스팅을 테스트하기위한 효율적인 방법을 제공하는 돌연변이의 유전 적 배경을 조합이다. 우리는 표피 상처에 의한 전사 기자 AV가2 차 및 3 차 염색체 5 모두 ailable. 이 연구에서 우리는 UAS 및 과발현 (16)의 GAL4 시스템을 사용합니다. 치명적인 돌연변이 대립 형질을 가진 연구를 위해 우리는 형광 균형 염색체, 예를 들어 크 룹펠-GFP (17)를 사용하여 유전 적 배경을 결정합니다. 우리는 여러 가지 유전 적 배경 (표 1)에 상처 기자 현지화를 분석 하였다.
기술의 가능한 변형은 미세 주입 및 상처를 입기를 결합하는 것입니다. 마이크로 인젝션은 배아에 약액을 도입하는데 사용될 수있다. 몇몇 화합물은 화학적 검사를 마친 표피 상처 기자 9의 활성을 조절하는 것으로 밝혀졌다. 동시 상흔 및 마이크로 인젝션이 방법은 상처 신호를 직접 반응 (18)을 부상 후 유전자 발현의 변화를 모니터링하는데 사용될 수 초파리 배아 세포의 수를 증가하는 것이 유용 할 수있다. 미세 주입 기술의 미래 응용 프로그램은 표피 상처 반응의 조절에 대한 새로운 화학 물질을 테스트하는 것입니다.
유전자 연구를위한 모델 시스템으로 초파리 효율적으로 복잡한 문제를 해결하기 위해 간단한 프로토콜의 넓은 범위를 제공합니다. 초파리 기법의 타당성에 대한 최근의보고는 더욱 초파리 연구계의 영향 범위를 확장하기위한 수단으로서 혈구 이주 (19)과 기생 말벌 감염 (20)의 사용을 강조한다. 상처 수리 연구뿐만 아니라, 초파리, 상상 디스크 시스템 (21, 22)와 재생을위한 고전적인 모델을 제공합니다. 가상적인 디스크 재생 연구와 펑크 / 마이크로 인젝션 남긴 상처의 결합 발전은 조직 복구의 잘 보존 된 구성 요소를 발견 할 수있는 훌륭한 시스템을 제공합니다.
Disclosures
관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.
Acknowledgments
이 프로토콜은 McGinnis 연구소, 김 A. 메이스와 조셉 C. 피어슨의 이전 멤버와 공동으로 개발되었습니다. 우리는 가치있는 주식을 정리하고 배포 할 수있는 자신의 작품에 대한 블루밍턴 초파리 증권 센터의 지속적인 노력에 감사드립니다. 이 작품은 건강의 국립 연구소 (R01 GM077197 및 K12 GM68524)과 허버트 스턴의 가족에서 자금에 의해 지원되었다. MTJ는 현재 소수 민족 건강과 건강 불균형에있는 국립 연구소의 연구 자원을위한 국립 센터와 그랜트 번호 8G12MD7603-27에서 부여 번호 5G12RR003060-26에 의해 지원됩니다. 내용은 전적으로 저자의 책임이며 반드시 소수 민족 건강과 건강 격차 또는 건강의 국립 연구소에있는 국립 연구소의 공식 견해를 대변하지 않습니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| yeast | Sigma Aldrich | 51475 | |
| apple juice | Generic | ||
| agar | Fisher Scientific | 50-824-297 | |
| bleach | Generic | ||
| halocarbon oil, 700 W | Sigma Aldrich | H8898 | |
| halocarbon oil, 27 W | Sigma Aldrich | H8773 | |
| 1-phenoxy-2-propanol | Sigma Aldrich | 484423 | |
| hydrogen peroxide | Fisher Scientific | H324 | |
| methyl-β-cyclodextrin | Sigma Aldrich | C4555 | |
| toluidine blue | Sigma Aldrich | 89640 | |
| formaldehyde, 16% | Polysciences, Inc | 18814-20 | toxic chemical |
| heptane | Fisher Scientific | H360-1 | toxic chemical |
| methanol | Fisher Scientific | A412-1 | toxic chemical |
| 10x PBS | Fisher Scientific | 50-899-90013 | |
| 0.5 M EGTA | Fisher Scientific | 50-255-956 | |
| RNase free H2O | Fisher Scientific | BP2819-100 | |
| Drosophila incubator | Genessee Scientific | 59-197 | |
| fly cage | Genessee Scientific | 59-100 | |
| embryo collection tube | Genessee Scientific | 46-101 | |
| plastic Petri dish | Fisher Scientific | 50-202-037 | |
| double-stick tape | Generic | ||
| paintbrush | Generic | ||
| dissection needle | Fisher Scientific | 08-965A | sharp object |
| glass cover slip | Thermo Scientific | 3306 | sharp object |
| microscope slide | Thermo Scientific | 4445 | sharp object |
| dissecting microscope | Carl Zeiss | Stemi-2000 | |
| capillary needle | FHC | 30-30-1 | sharp object |
| needle puller | Narishige | PC10 | |
| microinjection needle holder | Narishige | MINJ4 | |
| micromanipulator | Narishige | MN151 | |
| inverted microscope | Carl Zeiss | Primo-Vert | |
| glass Petri dish | Fisher Scientific | 08-747A | sharp object |
| glass Pasteur pipette | Fisher Scientific | 22-063-172 | sharp object |
| transfer bulb | Fisher Scientific | 03-448-25 | |
| Kimwipe | Fisher Scientific | 06-666A | |
| scintillation vial | Fisher Scientific | 03-337-7 | sharp object |
| orbital shaker | Fisher Scientific | 14-259-260 | |
| 1.5 ml tube | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| laser scanning confocal | Leica | SP2 | |
| fixation solution | (5 ml) | ||
| 16% formaldehyde | 2.5 ml | toxic chemical | |
| 10x PBS | 0.5 ml | ||
| 0.5 M EGTA | 0.5 ml | ||
| RNase free H2O | 1.5 ml | ||
| Halocarbon oil mix | (10 ml) | ||
| halocarbon oil, 700 W | 5 ml | ||
| halocarbon oil, 27 W | 5 ml |
References
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