Neuronal morfogenese og migration er afgørende begivenheder, der ligger til grund korrekt hjernens udvikling. Her beskriver vi fremgangsmåder til genetisk at manipulere dyrkede cerebellare granuleneuroner og udviklingen af cerebellum til vurdering af morfologi og vandrende karakteristika neuroner.
Udviklingsmæssige begivenheder i hjernen, herunder neuronal morfogenese og migration er stærkt orkestreret processer. In vitro og in vivo analyser giver mulighed for en grundig karakterisering at identificere veje involveret i disse begivenheder. Cerebellare granuleneuroner (CGN), der er afledt fra det udviklende cerebellum er en ideel model, der giver mulighed for morfologiske analyser. Her beskriver vi en metode til, hvordan man genetisk manipulere CGN, og hvordan man studerer axono-og dendritogenesis af individuelle neuroner. Med denne metode virkningerne af RNA-interferens, overekspression eller små molekyler kan sammenlignes for at kontrollere neuroner. Desuden gnaver cerebellar cortex er en let tilgængelig in vivo system, på grund af dens fremherskende postnatal udvikling. Vi præsenterer også en in vivo elektroporation teknik til genetisk manipulere udvikle cerebella og beskrive efterfølgende cerebellar analyser at vurdere neuronal morfologi ennd migration.
Lillehjernen er et fremragende system til at studere mekanismer axon vækst og migration. Lillehjernen har været genstand for anatomiske studier siden begyndelsen af neurovidenskab 1. Moderne mikroskopi og immunhistokemiske teknikker har væsentligt udvidet og forfinet de første opdagelser af Santiago, Ramon og Cajal 2-4. Mus genetik og molekylære undersøgelser afdækket væsentlige vækst-og transkriptionsfaktorer i kontrollen af cerebellar udvikling, som førte til større forståelse af afgørende begivenheder, der kræves for korrekt ledningsføring af forskellige typer af neuroner, herunder cerebellare granuleneuroner (CGN) 5-7.
Cerebellum er et derivat af rhombomere 1 i udviklingslandene baghjerne 8. Det rombiske læbe, som er en del af taget på den 4. ventrikel, giver anledning til cerebellare granula neuron progenitorceller, der skal udgøre den mest talrige neuronal population ivoksen lillehjernen 9.. Efter rostrale migration, de slår sig ned i det cerebellare anlage. Her mitose granule neuron forstadier fører til dramatisk udvidelse af det ydre granulære lag (EGL), som finder sted postnatalt hos gnavere. Fra EGL, neuroner begynde at migrere indad gennem den molekylære lag (ML), forbi Purkinje cellelag i sidste ende at tage ophold i det indre kornede lag (IGL 2). Under denne vandrende proces, de får en bipolar form med to axoner strækker sig ind i ML. Efter yderligere migration cellelegemet vandrer væk fra axoner og de to processer smelte til dannelse af en tvedelt, T-formet Axon 10. Efterfølgende disse axoner fasciculate og omtales som parallelle fibre. Efter at have afviklet i IGL, CGN vokser dendritter, som danner dendritiske kløer for at etablere synapser med Mossy fibre. For at undersøge de grundlæggende processer i udviklingen af cerebellum en kombineret in vitro og in vivo approach giver mulighed for pålidelige resultater og konklusioner.
CGN er ikke kun de mest talrige neuroner i lillehjernen, men af hele hjernen og kan dyrkes til høj renhed 11-13. I kultur, bliver dette meget homogen neuronal befolkning hurtigt postmitotiske og erhverver en polær morfologi med let identificerbare axoner og dendritter. Dyrkede CGN har vist sig at være særdeles nyttige til at studere forskellige aspekter af neuronal udvikling, herunder stamfader proliferation, differentiering aksonal og dendritceller udvikling, neuronal migration, apoptose og elektrofysiologiske egenskaber (14-19 og mange andre). Brugen af genetisk manipulation har udvidet den alsidighed af dyrkede CGN og mulighed for yderligere mekanistiske indblik i de angivne arrangementer. Transfektion af dyrkede neuroner ved hjælp af lav effektivitet calciumphosphat eller lipofile metoder efterfulgt af immuncytokemi med polaritet markører eller software-støttede analyse letteTates vurdering af f.eks morfologi af individuelle neuroner i en tæt neuronal kultur. Med denne fremgangsmåde kan den rolle af proteiner af interesse i Axon eller dendritceller vækst blive undersøgt 20-25,26-28. Denne kultur-system er dog mindre nyttigt at analysere neuronal migration som migration er meget begrænset i kulturer med høj densitet og ville kræve cokulturer. In vitro analyse af Axon og dendritceller vækst giver også mulighed for undersøgelse af indbyrdes forbundne proteiner af en signalvej bruger kombinationer af RNA-interferens (i), over-udtryk eller små molekyler.
At etablere relevansen af det interessante protein i Axon og dendritceller vækstregulering eller neuronal migration, in vivo elektroporation (IVE) teknik gør det muligt for analysen i udviklingslandene cerebellare cortex. På grund af det faktum, at cerebellare udvikling hos gnavere strækker ind i de to første postnatale uger lillehjernen repræsenterer en accessible hjernens struktur for genetiske manipulationer til at undersøge udviklingen af axoner og dendritter, neuronal migration synaptogenesis og apoptose 20-24,29,30,26,27,31-34. Desuden denne model system er også nyttigt for andre aspekter af neuronal udvikling, der kræver den intakte cerebellar cortex såsom Axon stifinding, ledningsføring og tilslutning af neuroner og neuron-glia interaktioner tilsammen denne protokol giver in vitro og in vivo teknikker til at tackle en komplementær tilgang til neuronal morfogenese og migration.
Fordele og begrænsninger, der er beskrevet in vitro og in vivo-metoder:
Dyrkede CGN fra mus og rotter er lige velegnet til morfologiske analyser. På grund af den større størrelse af rottecerebellum udbyttet af CNGs fra rotteunger overstiger værdien af museunger 3-4x. Bortset fra CGN kan corticale og hippocampale neuroner anvendes som dyrkningssystem samt. Calciumphosphatmetoden resulterer i en lav (0,01-5%) transfektionseffektivitet, som ønskes at analysere morfologi af …
The authors have nothing to disclose.
Vi takker N. Schwedhelm-Domeyer for fremragende teknisk assistance C. Hammer og S. Papiol hjælp til statistiske analyser. Vores arbejde er finansieret af Max Planck Society, Deutsche Forschungsgemeinschaft, Center for Nanoscale mikroskopi, og Molekylær Fysiologi af Brain (CNMPB), Göttingen, Tyskland og af GGNB Junior Group stipendium på universitetet i Göttingen.
DMEM | Gibco | 11960-044 | |
BME | Gibco | 41010-026 | |
Insulin | Sigma-Aldrich | Si-1-4011 | |
Poly-L-Ornithine | Sigma-Aldrich | P-2533 | |
CaCl2 | Appli-Chem | A3652 | |
Isofluorane | Actavis Deutschland | ||
Tissue-Tek OCT | Sakura | ||
Material Name | Company | Catalogue Number | Comments (optional) |
ECM 830 and tweezertrodes | Harvard Apparatus | ||
Epifluorescence microscope and camera | Nikon | ||
SP2 confocal microscope | Leica | ||
ImageJ | NIH | ||
Imaris 7.4.2 | Bitplane, Inc. | ||
GraphPad Prism | GraphPad Software, Inc. | ||
MS Excel | Microsoft | ||
Loading tip 1-200 µl | Costar | 4853 | |
Pipette tip 200 µl | Sarstedt | 70.760.502 | |
Microlance 3 needle, 30 gauge | BD | 302200 | |
50 µl gastight Syringe 1705 | Hamilton | ||
Glass coverslips | Thermo Scientific Menzel Glaeser | CB00120RA1 |