Detta protokoll använder en ballongkateter för att orsaka en intraluminal skada på råtthalspulsådern och hädan framkalla neointimal hyperplasi. Detta är en väl etablerad modell för att studera de mekanismer som kärlremodellering som svar på skada. Det är också allmänt används för att bestämma giltigheten av potentiella terapeutiska metoder.
Den halspulsådern ballongmodell skada hos råttor har väl etablerad i över två decennier. Det är fortfarande en viktig metod för att studera de molekylära och cellulära mekanismer som är involverade i vaskulär glatt muskulatur dedifferentiering, neointimabildning och kärlremodellering. Sprague-Dawley-råttor är de mest frekvent användes djur för denna modell. Honråttor är inte föredragna eftersom kvinnliga hormoner är skyddande mot kärlsjukdomar och därmed introducera en variation i denna procedur. Den vänstra hals typiskt skadade med den högra hals tjänar som en negativ kontroll. Vänstra hals skadan orsakas av den uppblåsta ballongen som denudes endotelet och distend s kärlväggen. Efter skadan, kan potentiella terapeutiska strategier såsom användning av farmakologiska föreningar och antingen genen eller shRNA överföring utvärderas. Typiskt för genen eller shRNA överföring, är den skadade delen av kärllumen lokalt transducerad 30 min med viral partiklar kodar antingen ett protein eller shRNA för leverans och uttryck i den skadade kärlväggen. Neointimal förtjockning representerar proliferativa vaskulära glatta muskelceller toppar vanligtvis vid 2 veckor efter skada. Fartyg är mestadels skördas vid denna tidpunkt för cellulär och molekylär analys av cellsignaleringsvägar liksom gen- och proteinuttryck. Fartyg kan också skördas vid tidigare tidpunkter för att bestämma uppkomsten av uttryck och / eller aktivering av ett specifikt protein eller väg, beroende på de experimentella syften avsedda. Fartyg kan karakteriseras och utvärderas med hjälp av histologisk färgning, immunohistokemi, protein / mRNA-analyser, och aktivitetsanalyser. Den intakta högra karotisartären från samma djur är en idealisk intern kontroll. Skade-inducerade förändringar i molekylära och cellulära parametrar kan utvärderas genom att jämföra de skadade artären till den interna högra kontrollen artär. På samma sätt kan terapeutiska modaliteter utvärderas genom att jämföra injured och behandlade artär till kontroll skadade bara artär.
Ballongkatetrar är medicintekniska produkter som används i förfarandet för angioplastik, i syfte att bredda hindras plats (er) av aterom eller blodpropp i ett blodkärl. De förträngda kärllumen tvingas att öppna upp av den uppblåsta ballongen och blodtillförsel skulle återställas sekventiellt för att lindra nedströms ischemi symptom, såsom angina, hjärtinfarkt, och smärta i benen. Ändå har den stora framgången med angioplastik har minskat med postoperativa komplikationer såsom resultat från kraft orsakar kärlbarotrauma (ballongskada), nämligen kärlväggen ombyggnad och i många fall åter förträngning av kärllumen (restenos) 1.
Ett antal djurmodeller har utvecklats imitera angioplastik förfarandet för att hjälpa utredarna att förstå mekanismerna bakom ballongen-skada relaterade kärlväggen ombyggnad 2. Bland alla de djurarter som används för modellering, är råtta den mest använda en. Compared till kaniner, hundar och svin, fördelarna med råttor är deras låga kostnad, deras relativa användarvänlighet och den nuvarande kunskapen om rått fysiologi. Även möss har en extra fördel i ett brett spektrum av genetiskt manipulerade stammar, är de möss kärlet för liten för att infoga en ballongkateter. Under de senaste tre decennierna har experimentråttor tillåtit forskare att få bättre förståelse för de molekylära och cellulära mekanismer som ligger till grund neointimabildning och kärlremodellering 3-6. Bortom ballongskada, är kärlremodellering också involverade i de flesta större vaskulära sjukdomar, såsom åderförkalkning 7,8, hypertoni 9, och aneurysm 10. Således fick kunskap genom ballongskademodellen är i allmänhet bra för övergripande studier kärlväggen sjukdom.
Det övergripande målet för råttballongskada modell är inte bara att ytterligare förstå kärlsjukdomar men också för att testa styrkan av nya medel försjukdomskontroll 11,12. Nuvarande klinisk läkemedelsbehandling till restenos appliceras med läkemedelsavgivande stentar placerade via kärllumen direkt efter angioplastik. I djurmodeller, är ett effektivt men ändå mer ekonomiskt sätt för ny agent testning ett väl utvecklat lokalt intraluminal perfusion metod. Kandidatmedel som har testats genom denna metod inkluderar småmolekylära läkemedel 13,14, cytokin eller tillväxtfaktorer 15,16, gen manipulera medel (cDNA-kloner, siRNA, etc.) 17-20, och nya farmaceutiska beredningar 21,22.
Hittills förblir råttan ballongskada modell en av de mest användbara modeller för att studera vaskulära sjukdomar / störningar. Det är den grundläggande steget från bänk till bedside, vanligen som ett första steg att gå från in vitro till in vivo, men det bör inte vara den sista. Resultatet av råttexperiment måste överlade och kännetecknas vidare innan översättning till människaklinisk användning, på grund av skillnaden i vaskulära bäddar och kärl anatomi liksom inneboende artskillnader mellan människa och råtta 23-26. Det är dock fortfarande ett viktigt verktyg i translationell medicinsk forskning. Även sådan forskning brukade vara begränsad av bristen av genetiskt modifierade råttor har det inte längre varit ett problem eftersom nya iska metoder såsom zink-finger nukleaser 27, Talens 28 och CRISPR-Cas 29 har gjort knockout råttor lättillgänglig.
Råttan halsballongskada har väl beskrivits av Tulis 2007 34. Det har omfattande diskuterat alla detaljer i detta förfarande av Dr. Tulis. De läsare som är intresserade av att utföra den här proceduren är rekommenderas att läsa Tulis "protokoll. Det finns dock en sak som vi inte överens med Dr Tulis: Istället för att blåsa upp ballongen med koksaltlösning eller någon form av vätska, föreslog vi att blåsa det med luft. Enligt vår egen erfarenhet, blåsa med vätska kan knappast undvika luftbubblor. Dessutom …
The authors have nothing to disclose.
We are grateful to Dr. Clowes for first developing and describing this method. We are also thankful to Dr. Tulis for his detailed protocol which has been fundamentally helpful to our previous, current and future work. This work was supported by grants R01HL097111 and R01HL123364 from the NIH to M.T., and by American Heart Association grant 14GRNT18880008 to M.T.
We would like to thank Rachel Newton for her expert technical support and for her valuable help during the filming process.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Fogarty balloon embolectomy catheters, 2 French | Edwards Lifesciences, Germany | 120602F | |
Deltaphase Operating Board – Includes 2 Pads & 2 Insulators | Braintree Scientific, Inc. | 39OP | |
LED light source | Fisher Scientific | 12-563-501 | |
Hartmann Mosquito Forceps 4” curved | Apiary Medical, Inc. San Diego, CA | gS 22.1670 | |
Crile Retractor 4” double ended | Apiary Medical, Inc. | gS 34.1934 | |
Other surgical instruments | Roboz Surgical Instrument Company, Inc., Gaithersburg, MD | ||
Peripheral Intravenous (I.V.) Cannula, 24G | BD | 381312 | |
Ketamine HCl, 100mg/mL, 10mL | Ketaset- Patterson Vet | 07-803-6637 | |
Xylazine (AnaSed),20mg/mL,20mL | Ketaset- Patterson Vet | 07-808-1947 | |
Buprenex, 0.3mg/1ml (5 Ampules/Box) | Ketaset- Patterson Vet | 07-850-2280 | |
Nair Baby Oil Hair Removal Lotion-9 oz | Amazon/Walmart/CVS | N/A | |
Inflation Device | Demax Medical | DID30 | |
D300 3-way Stopcock | B.Braun Medical Inc. | 4599543 | |
Artificial Tears Ointment | Rugby Laboratories, Duluth, GA | N/A |