Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Nöromusküler Kavşak: Ölçme Synapse Boyut, Konfokal Floresan Mikroskobu kullanılarak sinaptik Protein Yoğunluk Parçalanma ve Değişiklikler

doi: 10.3791/52220 Published: December 26, 2014

Abstract

nöromüsküler bileşke (NMJ) memeli motor nöronların istemli kas kasılması kontrol hangi aracılığıyla, büyük, kolinerjik röle sinaps olduğunu. NMJ yapısal değişiklikler zayıflık, atrofi ve kas lifi hatta ölümle sonuçlanan, nörotransmısyonunun başarısızlıkla sonuçlanabilir. Birçok çalışma, genetik modifikasyon veya hastalık fare NMJ yapısını değiştirebilir nasıl araştırdık. Ne yazık ki, doğrudan genellikle farklı parametreler ve analitik yöntemler istihdam nedeniyle bu çalışmalardan elde edilen bulguları karşılaştırmak zor olabilir. Üç protokolleri burada açıklanmıştır. İlk asetilkolin reseptörü (AChR) alanını ölçmek için maksimum intensite projeksiyon konfokal görüntüleri kullanır son plak ve örten presinaptik sinir terminal sinaptik vezikül boyama alanında bakımından zengin postsinaptik membran alanları. İkinci protokol postsinaptik membranın sinaptik proteinlerin immün için göreli yoğunluklarını karşılaştırır. Üçüncü protocol son plak de postsinaptik AChRs ambalaj değişiklikleri tespit etmek için Floresan Rezonans Enerji Transferi (FRET) kullanır. protokolleri geliştirildi ve çalışmaların bir dizi üzerinde rafine edilmiş. Kalite ve sonuç tutarlılığı etkileyen faktörler tartışılmıştır ve sayısal veriler, sağlıklı, genç, yetişkin farelerde NMJs verilmektedir.

Introduction

nöromüsküler bileşke (NMJ) sinir sistemi ve iskelet kası arasındaki iletişimi aracılık kritik röle sinaps olduğunu. Her gönüllü hareket için gereklidir. Floresan mikroskobu uzun NMJ 1-3 fare transgenlerin etkilerini incelemek veya kemirgen NMJs 4-11 yaş üzerine, diyet, egzersiz ve hastalığın etkilerini karşılaştırmak için kullanılır olmuştur. Bu tür çalışmalar NMJ fizyolojisi ve patofizyolojisi hakkında bize çok şey öğretti, ama farklı parametreler (örneğin, AChR alanı, plak alan, çevre uzunluğu, parçalanma endeksleri) sık sık zor bu çalışmaların bulgularını karşılaştırmak yapmak bildirildi. Klinik öncesi araştırmacılar, özellikle hastalığın 12 kemirgen modellerinde yapılan çalışmalarda, tekrarlanabilir göstermek edebilmek için giderek artan bir beklenti var. Burada anlatılan protokoller, gelişimsel, fizyolojik ve patofizyolojik ch araştırıldı çalışmaların bir dizi rafine edilmişNMJ için anges. Bu tür çalışmalar fare motor son plak sinaptik uzmanlık alanı ve postsinaptik uzmanlık 13-15 içinde sinaptik proteinlerin ambalaj nispi yoğunluk ölçümü gerektirir.

Bu yöntemlerin yarar miyasteni gravis, anti-misk bir fare modelinde, son çalışmalar açıklanmaktadır. Anti-MuSK-pozitif myastenia IgG Günlük enjeksiyonları erişkin farelere hastalar bunları 2 hafta içinde 16 zayıf hale gelmesine gravis. Kas (sinir-terminallerinde) sinaptofizin çift etiketli bölümler ve postsinaptik AChRs Konfokal maksimum projeksiyon görüntüleri birincil değişiklik olarak AChR boyama alanında ilerici bir düşüş gösterdi. Düşüş Önemli oranı sinaptik potansiyellerin, sinaptik iletim ve kas zayıflığı 17,18 başarısızlık amplitüdünde benzer düşüşler açıklamak için yeterliydi. Nitel benzer bulgular diğer araştırma grupları tarafından rapor edilmiştir10,19. Aynı NMJ ölçüm yöntemleri beri bu fare modeli 20,21 olarak gravis, anti-MuSK myastenia tedavisinde üç ilaç etkisini değerlendirmek için kullanılmaktadır.

Hareketsiz yaşlanma kas bağlantılarının kaybına yol açabilir. fareler yaşlılık içine ilerleme olarak burada açıklanan protokoller, motor endplate'lerin sinir terminali sinaptofizin alanında bir yaşa-bağlı düşüş ortaya koymuştur. Aynı yöntemler gönüllü egzersiz büyük ölçüde diğer gruplar 4 önceki çalışma ile uyumlu presinaptik sinir terminal alanında 22 azalma, önleyebilir ortaya koymuştur. Nöromüsküler bağlantı kaybı da amyotrofik lateral skleroz 9,23 arasında SOD1G93A fare modelinde ortaya çıkar.

Yukarıda belirtilen çalışmalar sağlık koşulları çeşitli NMJ öncesi ya da post-sinaptik uzmanlık ya alanında azalmalara neden olabileceğini göstermektedir. Bu bozulmuş sinaptik eğlenceli neden olabilirction nöromüsküler bağlantı tam kaybı habercisi olabilir ya. Üç protokolleri alan ve sinaptik uzmanlık yoğunluğunun nicelendirilmesine izin veren açıklanmaktadır. İlk protokolde amacı floresan mikroskopi kullanılarak, ön ve post-sinaptik uzmanlık ve memeli NMJs bunların uyum alanlarında pratik ve yeniden üretilebilir bir ölçü temin edilmesidir. İki-boyutlu maksimum projeksiyon konfokal görüntüleri ve NIH ImageJ ile görüntü analizi sinaptofizin boyama (sinaptik veziküller), postsinaptik AChRs ve sinaptik çakışma alanının alanında değişiklikleri tespit etmek için kullanılır. Sinaptik uzmanlık alanını ayırt kullanılan görsel bilgiyi maksimize edecek şekilde Konfokal görüntüleme parametreleri (kazanç ve ofset seviyesini) Her NMJ için optimize edilmiştir. Nöromüsküler yetmezliği de postsinaptik ACHR ve / veya diğer sinaptik proteinlerin yoğunluğu değişikliklere neden olabilir. İkinci protokol postsinaptik proteinler gibi göreli yoğunluk değişiklikleri tespit etmek için uygulanabilirmisk, rapsyn, distroglikan, fosforile Src kinaz ve fosforile ACHR 18,21 olarak.

Myastenia gravis olarak, postsinaptik membranın içinde ACHR azaltılmış yoğunluğu sinaptik yetmezliği ve kas güçsüzlüğü hemen nedenidir. Üçüncü protokolde ise postsinaptik membran 14,15 içindeki bitişik AChRs yakınında değişiklikleri değerlendirmek için bir flüoresan rezonans enerji transferi (FRET) yöntemi tarif etmektedir. Bu yöntem, floresan-α-bungarotoxin (bgt) ile etiketlenmiş çevre AChRs arasındaki enerji transferi tespit eder. Floresan, verici ve alıcı problar en az 10 nm ayrı olduğunda, FRET yalnızca oluşur. Bu doğrudan sinaptik potansiyellerin genlik ilgili olabilir AChR ambalaj gerginliği (mikroskopik) değişiklikleri ortaya çıkarabilir.

Geçtiğimiz on yıl içinde rafine Bu üç protokol de, tutarlı ve tekrarlanabilir bir şekilde NMJ bütünlüğü tamamlayıcı ölçümler ortaya koymaktadır. Standart protokoller a Kullanımınd parametreler memeli NMJ üzerine genler ve çevresel müdahalelerin etkileri karşılaştırılmasını kolaylaştırmalıdır.

Protocol

NOT: Hayvan deneylerinde tasarımı, yürütülmesi ve raporlanması güncel kılavuzlarda 24 dikkate almalıdır. Böyle bir çalışma (bizim durumumuzda Sydney Üniversitesi Hayvan Deneyleri Yerel Etik Kurulu olarak) yerel hayvan refahı otorite tarafından önceden onaylanmalıdır.

Hayvan ve kas diseksiyonu 1. Ötenazi

  1. Bu Shimizu 25 tarafından ayrıntılı fare kontrolü yöntemi kullanılarak pentobarbiton çözeltisinin intraperitonal enjeksiyonu (30mg / kg) ile ötenazi ayrı bir odaya tutma odasından fare aktarın. Onun kafese geri fare yerleştirin.
  2. Fare nefes fazla 1 dakika durduktan sonra, yavaşça hafifçe kornea fırçalayarak ayak ve kornea refleksi sıkıştırarak ayak çekme refleksi testi. Refleks tepkiler bulunmadığına Sadece fare diseksiyon için hazırlanabilir.
  3. Chiasson 26 olarak kemirgen anatomisi gibi bir atlas danışın ve / veya experien yardım isteyinilgi kas diseksiyonu başlamadan önce CED anatomist. Her durumda kas maruz cilt açmadan önce küçük bir elektrikli tıraş makinesi kullanarak örten deriden saç kaldırmak.
    NOT: Diseksiyon her anatomik-ayrı kas için farklı olacaktır.
  4. Künt forseps kullanarak zarları örten ve çevre dokulardan kas ücretsiz. Kavrayın ve ekleme gelen kas ayırmak için uzak tendon kesti.
  5. Yavaşça kızdırmak ve sağ arka aslına için çevreleyen dokudan serbest kas snip. Kısaca, daha sonraki işlemlerden önce, 0.1 M fosfat tamponlu tuz (PBS) çözeltisi ya da Ringer çözeltisi içine yeni kaslardan yerleştirin.

2. cryosectioning için Muscle hazırlanması

NOT: İsteğe bağlı aşama 2.1 'de tarif edildiği gibi, daha önce 27 ayrıntılı, ya da (küçük kaslar için) Daldırma tespitin en uygun yapısal koruma bütün hayvan perfüzyon ile elde edilebilir. Bununla birlikte,% 4 paraformaldehid tespit birçok antikor problar ve floresan-BGT ile sonraki boyama bozabilir. Glutaraldehit kaçınılmalıdır. Kaslar hemen donduruldu gereken sabit olması değilseniz (2.3 geçin).

  1. İsteğe bağlı daldırma sabitleme: Pim dinlenme uzunluğunda bir Petri kabındaki balmumu kas. 2%, oda sıcaklığında 2 saat boyunca (taze PBS) içinde çözülmüş / hac paraformaldehid w kas örtün. Daha sonra PBS içinde 30 ağırlık% / hac sakaroz ile PBS yerine ve 4 ° C 'de O / N inkübe 30 dakika ile (3 x 10 dakika) ile PBS içinde 3 kez değiştirilen ile yıkayın.
  2. . Şekil 1 'de gösterildiği gibi, alüminyum folyo, 2 cm x 1,5 cm parçalar katlama önceden kalıplar (' tekneler ') Marka teknenin altında, nitroselüloz zarın bir parça yerleştirin. Yavaşça hava kabarcıklarını önlemek için özen, 2 mm derinliğe kadar tekne içine kriyostat gömme matris (Malzeme tablosu) dökün. Üzerindeki tükenmez kalem hatları ile hizalayarak, tekne içine kas yerleştirinnitroselüloz. Tamamen kas (Şekil 1) kapsayacak şekilde daha gömme matrisi ekleyin.
  3. Silinmez bir işaret ile Ön-etiket polipropilen borular. Her bir tüp içinde bir damla su koyun ve sıvı azot içinde tüp soğuk.
    NOT: Donmuş su damlası buharı basıncı korur ve uzun süreli -80 ° C depolama sırasında kuruma önler
  4. Bir yüz kalkanı, kalın bir koruyucu eldiven ve küt forseps büyük çiftlerini kullanarak, kısmen 30 saniye için sıvı azot içeren bir kaba izopentan 2 cm derinliğinde ihtiva eden bir küçük metal beher (8 cm derinliğinde 3 cm çapında), alt. Beher çıkarın ve tezgah üstüne yerleştirin. Künt forseps daha küçük bir çift kullanarak kalıp kas içeren ve soğutulmuş izopentanın içine matris gömme yerleştirin. Izopentanın sıvı azot karışmasını önlemek için dikkat edin.
  5. Dışarı donmuş blok kaldırın ve doğru pr mühür künt forseps kullanmadan önce tamamen donmasına blok için 2 dakika bekleyinE-etiketli ve önceden soğutulmuş tüp (adım 2.3).
  6. -80 ° transfer edilmeden önce sıvı azot içinde geçici olarak tüpler saklayın. Dondurucu içeriğinin bir tablodaki tüm örnekleri yapın.

3. Cryosectioning ve Floresan Boyama NMJs En Face Images

  1. Alüminyum kalıp uzak soyun. 20 mikron cryosections kas liflerinin uzun ekseni (Şekil 1) paralel kesmek üzere -20 ° C kriyostat odasının içinde kriyostat chuck dondurulmuş blok takın. Poli-L-lizin veya jelatin kaplı mikroskop slaytlar üzerinde bölümleri Pick up.
  2. NOT: Doku dondurma önce sabit ise bu adımı atlayın. Bölümler slaytlar üzerinde kurumaya için 30 dakika beklendikten sonra, oda sıcaklığında 15 dakika için her bir bölümü üzerinde PBS içinde% 2 paraformaldehit bir damlasının yerleştirilmesiyle sabitleyin.
  3. Yıkama Coplin kavanoz PBS içinde 3 x 10 dakika slaytlar, 30 dakika, artık aldehid grupları bloke etmek için daha sonra 0.1 M glisin ihtiva eden PBS içinde slaytlar bırakın.
  4. 7 dakika boyunca (-20 ° C soğutulmuş), metanol sokmak, daha sonra, PBS içinde 10 dakika boyunca slaytlar yıkayın. Bu permeabilizasyon adım floresan-BGT ile çift etiketleme ve anti-sinaptofizin rutin bir parçası ama olumsuz bazı diğer proteinler için immün etkileyebilir.
  5. Yıkama daha sonra bir sabit ve tesviye nemli bir bölmede, her bir slayt yer PBS içinde 2 x 10 dakika boyunca kayar. Hemen bloke çözeltisinin 20 ul her bir bölümü kapsayan (% 0.2 Triton X-100,% 2 sığır serum albümini PBS (BSA)), oda sıcaklığında 1 saat karıştırıldı. Bölümler immun sürecinin herhangi bir aşamasında kurumasına izin verilmemelidir.
  6. Birincil inkübasyon gerçekleştirin: Bir defada bir slayt alarak dikkatle her bölüm üzerinde aşırı engelleme çözüm kaldırmak ve tavşan anti-sinaptofizin 20 ul ile değiştirin (: 200 engelleme çözümü 1 seyreltilmiş).
  7. Tek çözüm engelleme inkübe edilecek bir negatif kontrol slayt ekleyin. Bu 'hayır birincil antikor kontrolü'Her immün vadede esastır.
  8. Birincil antikor, her bir bölümü üzerinde yerinde kalır bakımı, nemlendirilmiş odasına yakın ve 4 ° C'de 1-2 gün süreyle inkübe edilir.
  9. Primer antikor yerinde kalmasını onaylamak için her bölüm inceleyin. PBS ile her slayt durulayın ve bir Coplin kavanoza yerleştirin Pasteur pipet kullanın. Tüm slaytları PBS içinde 3 x 10 dk yıkayınız.
  10. İkincil inkübasyon yürütmek. Her seferinde bir slayt alarak, dikkatli bir şekilde, fazla PBS kaldırmak nemlendirilmiş bir haznede lekelenmiştir dönük olarak ve FITC-konjügeli eşek anti-tavşan IgG ve bgt rodamin tetrametil konjüge ya da başka bir kırmızı florofor içeren bir karışımın 20 ul her bir bölümü (TRITC- kapağı / redBGT, 5 ug / ml) çözeltisi içinde bloke seyreltilmiştir. 2 saat oda sıcaklığında inkübe edin.
  11. Yıkama Coplin kavanoz içinde PBS içinde 3 x 10 dakika kayar.
  12. Bir seferde bir slayt alarak, dikkatle aşırı PBS kaldırmak ve glisero minimal hacmi kullanarak bir lamel ile montel-tabanlı, solmaya dayanıklı montaj orta. Şeffaf tırnak cilası ile lamelleri kenarları mühür. Zor kurumasını bekleyin.
  13. Uzun depolama süreleri (birkaç ay kadar) için bir haftaya kadar, ya da -20 ºC de 4 ºC karanlıkta slaytlar saklayın.

4. Unbiased Örnekleme ve Motor endplate'lerin En Face Görüntüleme

  1. (Değil analize dahil) ikinci bir araştırmacı bilinen tek kalır rastgele bir kod numarası ile her slayt etiketleme slaytlar kör. NMJ parametrelerin kantitasyonu, tüm örnekler için tamamlanana kadar bir sonucu olarak operatör tedavi gruplarına kör kalır.
  2. Mikroskop sahnede slayt yerleştirin ve TRITC filtre seti (63X yağı 1.3 NA objektif) ile geniş alan aydınlatma altında görüntülemek. Sağa ve geri bir plak alan (Şekil 2A) görünene kadar sol (alana göre alan) giderek taşıyın.
    NOT: Örnekleme kriteri: nispeten Her AChR-lekeli yapıDüz ve objektif bakan bir uç plakası olarak kabul edilir ve (AChR boyama hilal endplate'lerin aracılığıyla enine-kesitini göstermektedir; ve bu nedenle hariç) analiz için görüntülendi (yani, <Z-boyutu 15 m uzanır).
  3. 1.0 Havadar ünitesi ve düşük lazer gücü konfokal iğne deliği set ile görüntülü edilecek son plak de TRITC / kırmızı-BGT (532 nm lazer) için seviyeleri kazanç optimize ve ofset. Sonraki optimize FITC / 488 nm lazer kullanarak sinaptofizin floresan. Her optik dilim arasında 0.7 mikron aralığı ile son plağın z-yığını toplayın. Görüntüleme oturumun tarihini, slayt kod adını ve son plağın numarasını içeren bir dosya adı ile kaydedin.
    NOT: 488 nm kullanarak tarar ve 532 nm lazerler (FITC ve TRITC) kırmızı florofora ve tersi (sızdırma-through) dan floresan FITC kanalının kirlenmesini önlemek için sıralı (aynı anda değil) toplanması gerekir.
  4. Örnekleme a tekrarlayınnd adımların görüntüleme 4,2-4,3 20 kadar omurun slayt / numune toplanmıştır.
  5. Bir sonraki kodlu slayta değiştirin ve 4,2-4,4 tekrarlayın. Kodlu slaytlar her biri için bu işlemi tekrarlayın.
  6. Deneysel slaytlar (FITC floresan kanal karanlık görünmelidir) için en uygun bulundu konfokal ayarlarını kullanarak kontrol slayt (no-primer antikor kontrol) den endplate'lerin birkaç görüntüleri toplayın.
  7. Görüntü dosyaları başka bir bilgisayara ve geri bir harici sürücü veya sunucudaki dosyaların orijinal kadar konfokal oturum transferi sonunda.

5. En Face Görüntüler sinaptik Uzmanlıklar Alan Ölçme

  1. Her z-yığını maksimum projeksiyon (MIP) görüntüleri hazırlamak için NIH ImageJ freeware (http://imagej.nih.gov/ij/) kullanın. Tiff dosyalarını (Şekil 2A ve B) olarak kaydedebilirsiniz. Dosya adları görüntü oturumu tarihi, örnek kod, plak numarası ve floresan kanalı (örneğin, 060414_57 içermelidir23_7_FITC.tiff).
  2. ImageJ z-projeksiyon görüntüsünü açın. Asetilkolin reseptör görüntü kanalı (Şekil 3A) seçin ve seçin: Görüntü> ekranda üç 8-bit gri tonlama görüntü içine 24-bit RGB renkli görüntüyü dönüştürmek için> 8-bit yazınız.
  3. Ilgi son plak kaynaklı olmayan herhangi bir boyama hariç ederken, özellikle bireysel son plağın tüm belirgin lekeli bölgeleri, içerecek şekilde ImageJ poligon aracını kullanarak ((ACHR) kanal lekeli redBGT ilgi son plak etrafında kaba bir taslağını çizmek Şekil 3C).
  4. Seçerek görüntü asgari yoğunluk eşiği uygulayın: Görüntü> Ayarlama> Eşiği (Şekil 3E ve ilgili ImageJ ekran).
  5. Eşikaltı (Şekil 3E) olarak çevredeki arka plan sinyali hariç ederken AChR-lekeli bölümleri izole şekilde eşik seviyesini ayarlayın. Ikinci bir rüzgar açıneşik değeri hakkında karar kolaylaştırmak için, karşılaştırma için pencerenin yanında hemen orijinal (sürekli-ton) görüntü ile ow. Ko sonraki kullanım analizleri için eşik değerini kaydedin.
  6. Seçmek son plak çevresinde çokgen anahat İstinat:> Parçacıklar Analiz Analyze. (Bu fotomultiplier elektrik gürültü kaynaklanan küçük eserler ortadan kaldırır) sonsuz piksel 50: açılır menüsünde gibi boyutları aralığını belirtin.
  7. Analiz Parçacıklar komutu ayrık üstü eşik alanlarının bir listesini içeren bir pencere oluşturur ve bunlar ikili görüntü (Şekil 3G ve ilgili ImageJ ekran) göründükleri gibi kendi floresan yoğunluğu değerleri sayılı. Bir etiketli elektronik tabloya bu verileri kopyalayın.
  8. Seçerek Toplam plak alanı (poligon içindeki alan) ölçün: Analiz> Ölçü. Bu, toplam plak alanını verir. AChR alanlara ve şiddetleri içine yönelik kopyalama ve yapıştırma verileriuygun sütunları etiketlemek için emin bir elektronik tablo, satır belirli slaytlar için bireysel endplate'lerin için kullanılacaktır.
  9. Anti-sinaptofizin floresan kanalına geçin ve tekrar 5.1 adımları - 5.5, ancak FITC kanal için (Şekil 3B, D ve F). Amaç, göz tarafından algılandığı gibi, mümkün olduğu kadar yakın, boyama sınırlarını eşleşen bir ikili görüntü oluşturur, böylece eşiği ayarlamaktır. Eşik değerini kaydedin.
  10. Görüntüler Stack> Görüntü> Yığınlar: Aşağıdaki adımları uygulayarak örtüşme alanını ölçün: İki kanal görüntüler içeren orijinal dosyayı açın ve seçerek iki ayrı görüntü bölmek.
  11. Pluggin> ko ve giriş eşik değerleri, daha önce ilgili kanal sorgu b içine AChR ve sinir kanalları için kaydedilen: (ImageJ web sayfasından indirilebilir ve yüklü) ko eklentisi seçiniz kullanmaÖküz. Bu beyaz piksel (Şekil 3H ve ilgili ImageJ ekran) bir örtüşme görüntü verecektir.
  12. Gri tonlamalı biçime yeni oluşturulan örtüşme görüntü dönüştürme ve maksimum değere bir eşik uygulayın. Maksimum eşik sadece iki önceki kanalların örtüşme alanına gelen, beyaz pikseller seçecektir. E-tabloya rekor piksel örtüşme alanı temsil 'ko' ortaya çıkan alanı değeri.
  13. Veri örnek araçlarının bir elektronik tablo hazırlayın hesaplamak ve histogramlar veya scatterplots 20,22 gibi standart sapmalar ve standart hataları arsa. N değeri genel olarak istatistiksel amacıyla örnek grup başına farelerin sayısı temsil ettiğini unutmayın.
  14. Scatterplots veya frekans histogramlarına olarak arsa plak AChR alanları veri normal istatistik testi (Şekil 6) önce dağıtılan olup olmadığını belirlemek için.

6. Bağıl BoyamaYoğunlukları Enine Optik Bölümler kullanma Karşılaştırıldı

NOT: Tek bir konfokal oturumda bu protokol tüm kas numuneleri bir araya süreç ve görüntü için. Bir deney planlama kas numune başına 30 dk görüntüleme süresi kadar izin verir.

  1. Kas liflerinin uzun eksenine enine 15 mikron cryosections kesin ve adım 3.1 açıklandığı gibi slaytlar üzerine toplamak.
  2. Adımlarda 3,2-3,13 açıklandığı gibi floresan boyama yürütmek.
  3. Kod adım 4.1 açıklandığı gibi bu görüntüleme ve analizler, tedavi grubuna operatör kör üstlendiği böylece lekeli slaytlar.
  4. Kısaca her slayt bir bölüm anket 40X floresan objektif (NA 0.75) kullanarak tek bir kazanç belirlemek ve tüm örnek slaytlar arasında tüm endplate'lerin için uygun olacaktır ACHR için seviye ayarı ofset. parlak plak sonra ölçekte hemen altında 256 gri olmalıdır. Bu optimizasyon, ikinci fluorescenc için ayrı ayrı yapılmalıdıre kanalı (arka arkaya toplanan). Sabit kazanç kaydedin ve seviye ayarlarını ofset ve görüntüleme oturum boyunca onları değiştirmez.
  5. Lazer yoğunluğu olası dalgalanmaları tespit başından ve konfokal oturumun sonunda, aynı parametreler kullanılarak, bir floresan standart slayt (örneğin, ağartıcı olmayan floresan boncuk) görüntülerini toplayın.
  6. Uç plaka bulmak için giderek slayt taramak için AChR kanalı kullanın.
  7. AChR-lekeli endplate'lerin en sayısını içeren her mikroskop alanında tek optik düzlemini bulmak için odaklanın.
  8. İki kez bu tek optik bölümü tarayın ve ortalama görüntüyü (Şekil 4G) kaydedin.
  9. İkinci floresan kanalı aynı odak düzlemi anahtarı (faiz protein) tutulması ve adım 6.8 itibariyle görüntü toplamak. Görüntüleme oturumun tarih, örnek kod, resim numarası ve floresan kanal belirtmek için bir sembol: dosya adı dahil, görüntü dosyasını kaydedin. F rapsyn, misk veya -dystroglycan (-DG) göre ACHR olan plak dağılımı örneklerini gösterir.
  10. Bir veya daha fazla uç plaka içeren bir sonraki alana taşıyın ve sahne adımı 6,8-6,9 tekrarlayın. 60 endplate'lerin toplam görüntülü kadar bu işlemi tekrarlayın.
  11. Görüntüleme oturumu transferi sonunda tüm başka bir bilgisayara dosya ve onları yedeklemek.
  12. Her orijinal görüntü dosyasını açın ve AChR kanalı izlerken, seçin: Görüntü> Yığınlar> kanalları bölmek, Görüntüler Stack.
  13. Seçin: Görüntü> Yazım> 8bit ekranda 8-bit gri tonlama biçimine dönüştürmek için. Her iki floresan kanalları için bunu yapın.
  14. Seçin: Görüntü> Yığınları> Görüntüler Stack. İki önceden ayrılmış 8-bitlik görüntüleri yeni bir yığın açın. Bir sonra tek pencere içinde iki floresan kanalları arasında rahatlıkla geçiş yapabilirsiniz.
  15. Bir lin çizmek için poligon aracını kullanıne sıkıca AChR boyama (Şekil 4I) sınırları etrafında.
  16. Seçin: kapalı alan içinde ACHR için ortalama piksel yoğunluğunu ölçmek için ölçün> Analiz (sıkıca çizgi çizerek önemini unutmayın). Bir etiketli elektronik tabloya bu değeri kopyalayın.
  17. Aynı poligon anahat (bölgeyi tanımlamak için ölçülecek) İstinat, (örneğin, Şekil 4B, D, F) ikinci floresan kanala geçmek ve seçin: Analiz> ölçü. Bu AChR boyama ile tanımlanan sinaptik alanda ilgili protein için ortalama lekeleme yoğunluğu sağlayacaktır.
  18. Ortalama plan floresan yoğunluğunu ölçmek için Tedbir> Analiz: seçin uzak görünen plak boyama bir alan seçin. Diğer floresan kanal / s için bu işlemi tekrarlayın ve floresan değerleri elektronik tabloya arkaplan değerleri kopyalamak.
  19. AltACHR için düzeltilmiş yoğunluklarını ve her son plağın bir ilgi protein elde etmek için son plak değerlerinden ortalama arka plan değerlerini cezbet.
  20. Floresan yoğunluğu oranı 14,21 vermek üzere düzeltilmiş bgt floresan yoğunluğu ile, ilgilenilen protein için düzeltilmiş plak yoğunluk değerlerini bölün

7. FRET kullanarak postsinaptik Membran AChR Yoğunluk karşılaştırılması

NOT: Bu protokol postsinaptik membranda AChRs yakından paketlenmiş ölçüde (<10 nm aralığı) değerlendirir. tam verici ve alıcı florofor kombinasyon bu FRET deneyinde için çok önemlidir. İsimler ve fluorophores detayları malzemeler tabloda verilmiştir. Onların spektral özellikleri, FRET ilgili, önceki gazetelerde 14,15 tartışılmıştır.

  1. Bölüm 6.1 de tarif edildiği gibi sabit bir enine cryosections hazırlayın. Tüm örnek grupları birlikte ve görüntü işleme gerekirAynı konfokal seansta d.
  2. İyice g 10 ile 2.5 g / ml kırmızı-BGT (FRET donör) mix / ml kadar kırmızı-BGT (alıcısını FRET) 12 kez yukarı ve aşağı pipetleme küçük bir plastik tüp içinde çözüm engelleme ile. Bu 1: 4 molar karışımı FRET 14 verimliliğini maksimuma çıkarır.
  3. Dikkatli bir şekilde, yukarıdaki karışım bir damla (12 ul) ile her bir bölümü kapsar ve oda sıcaklığında 1.5 saat süreyle inkübe, nemli bir bölmede, her slayt yerleştirin.
  4. Kontrol bölümler:; ve ayrıca 10 ng / ml kadar, kızıl bgt bazı bölümleri / ml kırmızı bgt (etiketli C1 kontrol verici) g 2,5 bölümlerde az sayıda kapak (sadece alıcı etiketli C2 kontrolleri). Adım 7.3 itibariyle bu kontrolleri inkübe.
  5. Yıkama PBS içinde 3 x 10 dakika slaytlar ve monte gliserol-tabanlı, solmaya dayanıklı montaj orta (adım 3.12 bakınız).
  6. Adım 6.7 gibi endplate'lerin örnekleme gerçekleştirin. Verici ile kabul floresan bağlı floresan bgt moleküllerin rastgele bağlanma mükemmel endplate'lerin ko-lokalize olmalıdır.
  7. Kontrol görüntüleri: 40X objektif ve düşük lazer güç optimize redBGT kazancını kullanma ve kontrol slayt C1 endplate'lerin için seviye ayarlarını ofset. Uzak-redBGT kazanç Optimize ve kontrol slayt C2 endplate'lerin için seviyeleri ofset. Herhangi bir floresan boşaltma-through yokluğunu onaylayın.
  8. Lazer gücünü değiştirmeden kazanç veya ofset düzey ayarları deneysel slaytlar taşımak ve hem de floresan kanalları görüntüleri (ön-photobleach) toplamak.
  9. Seçmeli olarak, sonra% 100 güçte 633 nm lazer ile 10 kez tarama tarama alanının yaklaştırarak tek uç plakanın bir kısmı boyunca uzak-kırmızı bgt photobleach. Taranan alanın floresan loş hale gelmelidir.
  10. Lazer gücü sıfırlamak ve zoom ve 7.7 kurulan konfokal ayarları kullanarak hem floresan kanallarda sonrası ağartma görüntüleri toplamak.
  11. Alıcı (uzak-kırmızı-B photobleach aşağıdaki donör yüzde artış (kırmızı-BGT) floresan FRET verimliliği (E) hesaplayınAşağıdaki formüle * e göre GT):
    Denklem 1
    * Donör floresan akseptorü photobleaching sonra artar tüm durumlar için.

Representative Results

NMJ sinaptik Alanı Ölçümü

Alan herhangi bir tahmin sinaptik uzmanlık derecesini tanımlamak için bir sınır çizim dayanır. Sağlıklı genç erişkin kaslarda NMJ görüntüleri ACHR ve sinaptofizin boyama (Şekil 2A ve B) hem de iyi tanımlanmış sınırlar göstermelidir. ACHR ve sinaptofizin hem Floresan yoğunluğu, motor son plağın (Şekil 5A 've B')-peri sinaptik ve sinaptik kısmı arasındaki sınırda keskin yükselir. Bu tür görüntüler (sadece extrasynaptic eşiğe üstünde) bir asgari eşik için kolayca son plak ((Şekil 5A 've B') yatay kesik çizgiler) ve AChR-zengin veya sinaptofizin zengin bölgeyi izole edecektir. Yaşlı farelerde ve ACHR için bazı hastalık durumları plak boyama az yoğun olabilir, AChR küme kenarları bulanık görünür ve olabilirYeniden yüksek extrasynaptic otofloresanm seviyeleri (; 17,22 Şekil 5D) olabilir. Belirsiz sınırları ile Floresan boyama sinaptik alan tahminler içine hatayı tanıtabilirsiniz. Bütün durumlarda amaç orijinal, sürekli tonlu görüntüde göze göründükleri gibi AChR- veya sinaptofizin zengin bölgelere şekil ve büyüklükte benzer bir ikili görüntü veren bir eşik seçmektir. Tedavi grubuna analiz kör yapılması eşikleme adım (adım 4.1) de subjektif önyargı riskini azaltacaktır. Bazen soluk veya bulanık plak ve görüntüler alt Optimal bir işleme neden olabilir. Şekil 2C ve D, bir sağlıklı 2 aylık bir fareden düşük kaliteli bir son plak görüntüsünün bir örneğini göstermektedir. Bulanık kenarları ve soluk sinaptofizin boyama cryosectioning önce kas kısmi erimesi ve tekrar soğutulmasından bu durumda ortaya çıkmış olabilir. Sağlıklı genç (pozitif kontrol), kas bazı bölümleri kesit gerekennd deneysel örnekleri ile paralel olarak işlenmiş NMJ görüntülerde belirgin değer düşüklüğü immün sorunları nedeniyle değil emin olmak için. Alt-optimal işleme tehlikeye görüntülerin toplu halde analiz uzak tutulmalıdır.

Yüz z-yığın görüntüleri tr için, 15-20 omurun sinaptik alanları tahmin etmek için makul bir örneklem boyutu. Şekil ve NMJs boyutlarında geniş bir çeşitlilik herhangi bir kas içerisinde bulunur. Saçılım herhangi bir fare (Şekil 6A) ve kaval kemiği ön kasında endplate'lerin arasında AChR zengin bölgede bir yelpazesi ortaya koymaktadır. Yine, (yüz plak görüntüleri tr 15-20 dayalı) ortalama AChR alan yedi örnek farelerde (Şekil 6A ~ 200 m 2) arasında benzerdi. plak sinaptofizin boyama alanı da belirli bir kas endplate'lerin arasında önemli farklılıklar. Bir kez daha, 15-20 bir örneklem büyüklüğü kullanılarak plak sinaptofizin ortalama alanı simi oldu omurun7 fare arasında lar incelenmiştir (~ 170m 2; Şekil 6B). Toplanmış verilerin frekans histogramlar plak ACHR ve sinaptofizin (Şekil 6A 've B') alanı için kabaca normal bir dağılımlarını ortaya çıkardı. Bununla birlikte sinaptik alanlarında normal dağılım hastalık durumlarında kabul gibi miyasteni gravis 16,20 edilemez. Bu istatistiksel testin seçimi etkileyebilir.

Tablo Ben önceki çalışmalardan sağlıklı 2 aylık (genç yetişkin) dişi C57Bl / 6J fareler için NMJs öncesi ve post-sinaptik uzmanlık alanlarını listeler. öncesi ve post-sinaptik hem uzmanlık alanları sedanter 22 yaşlanma ile reddetti. AChR alanı da belirgin bir anti-MuSK miyasteni IgG ile enjekte edilmiş farelerde azaltılmıştır hasta 17,21 gravis. Kolinesteraz inhibitörü ilaç, piridostigmin ile muamele miyastenik fareler, son plak AChR alanı 20 <daha da belirgin bir azalma gösterildi/ Sup>.

Endplate Floresan Etiketleme Bağıl Yoğunluk

immunofloresan etiketleme nispi yoğunluk yaşı, genotip ve / veya hastalık durumu ile sinaptik protein-faiz yoğunluğu değişiklikleri ortaya çıkarabilir. AChR floresan (kırmızı-BGT veya uzak-kırmızı-BGT) ilk NMJ konumunu tanımlamak için kullanılır. 8-bit AChR zengin alan içinde floresans parlaklık sonra, kontrol hayvanlarına göreli ilgilenilen protein konsantrasyonundaki değişiklikleri değerlendirmek için kullanılır. Enine kesitlerde plak AChRs genellikle hilal şeklinde gibi görünür, ancak bu şekil, çoğunlukla (Şekil 4A, E, C, H) ​​düzensizdir. Düşük yoğunluklu arka plan floresan genellikle AChR boyama bir yama tek uç plakası temsil veya komşu kas lifleri üzerinde bulunan iki ayrı omurun olmadığını ortaya koymaktadır. Vardır (örneğin rapsyn, misk ve Src gibi) Birçok sinaptik proteinlerison plak (- D Şekil 4A) de ACHR ile kolokalize. Fosfo-spesifik antikorlar ile immünofloresan boyama, aynı zamanda, özellikle postsinaptik zar proteinlerinin 21 fosforilasyon durumu hakkında deneysel müdahalelerin etkisini karşılaştırmak için kullanılabilir.

florasan yoğunluğu ölçümü ve güvenilirliği tekrarlanabilirliği dondurulmuş kas bütünlüğü ve immün kalitesine büyük ölçüde bağlıdır. Kaslar disseke ve hemen ek-dondurulmuş veya paraformaldehid sabit (hayvanın ölüm dakika içinde) NMJ dejeneratif değişiklikleri önlemek için alınmalıdır. Immün reaktif kalitesi ve spesifik antikorların boyama protokolü optimize yüksek ölçüde bağlıdır. Primer antikor Pilot immun deneyler yeni parti için ihtiyaç vardır. Sağlıklı genç kasların Taze kesilmiş halinde kriyoseksiyonlar birincil antikor seri 2 kat seyreltileri ile inkübe edilir. BirBilinen güvenilir ikincil antikor kullanıldığı ve sonuçları karşılaştırılmıştır. İlgi dahilindeki protein NMJ sınırlı olduğu bilinmektedir sonra iyi antikor konsantrasyonu kas (arka plan flüoresan) ve extrasynaptic bölgelerinde bulunan göre NMJ floresan yoğunluğu en yüksek oranda elde edilmesini olmasıdır. Extrasynaptic (muhtemelen spesifik olmayan) floresan yoğunluğu, normal olarak son plak floresan yoğunluğunun% 15'inden fazla olmamalıdır. Benzer şekilde 'birincil antikor kontrolü' (ikincil antikor sadece kuluçkaya) bölümleri ikincil antikor non-spesifik olarak bağlanan olmadığını teyit karanlık görünmelidir. (poliklonal) ikincil antikorlar belirgin nedenle alternatif ikincil antikor toplu değişebilir farklı partilerin kalitesi standart bir protokol kurmadan önce karşılaştırılmalıdır. imünofloresans özgüllük için ideal bir deney fareleri t vahşi tip fareler ve negatif kontrol bölümleri alınan kesitlerin doğrudan bir karşılaştırma içerirşapka, protein-faiz (gen nakavt) eksikliği. Aşağıdaki referanslar misk, rapsyn, distroglikan, src ve AChR 13,14,18,21 için son plak floresan boyama kantitatif açıklar.

Küçük bir örnek boyutları göreceli floresan yoğunluğu tahminleri içine hatayı tanıtmak. Bağımsız omurun floresan yoğunluğu önemli ölçüde değişmiştir. Muhtemelen belli bir kas içinde endplate'lerin arasındaki bu değişkenlik örneklenmiş optik bölümünde NMJ yapısı ve şans farklılıkları çeşitliliğini yansıtır. Ancak, ortalama floresan yoğunluğu (Şekil 7) daha stabil bir tahminde endplate'lerin örneklenmiş sonuçlar sayısının arttırılması. Her kas örnekten 40-60 omurun ortalaması alınmalıdır ortalama plak floresan yoğunluğunu tahmin etmek.

AChR-AChR FRET

Her AChR (her a-alt-birimi üzerinde bir yer alır) BGT iki bağlanma siteleri ile bir pentamerdir. Bağlanması,-kırmızı BGT ve uzak-kırmızı-BGT yaklaşık 9nm 28-30 bir donör-alıcı ayrımı doğuracak bu iki sitelere. Böylece düşük verimlilik FRET AChRs kümeler 14 içine monte bile önce tespit edilebilir. Ancak, kemirgen endplate'lerin de FRET verimliliği kabaca bir sıkışık postsinaptik membran kafes içine 14 AChRs daha verimli dahil tutarlı, doğum sonrasında iki katına çıktı. FRET verici ve alıcı (sırasıyla) kırmızı-bgt ve uzak-kırmızı bgt kullanarak, 1-2 aylık farelerin omurun 20-37% (Tablo 2) arasında değişen ortalama FRET verimliliği gösterdi. % 20 veya daha fazla, FRET verimleri AChRs 14 arasında sıkı bir ambalaj temsil ettiği düşünülmektedir. Fareler, anti-MuSK-pozitif myastenia IgG ile enjekte edildikten sonra plak FRET verimliliği biraz denervasyon 14 aşağıdaki düşük ve belirgin azalma oldu hastalara 18 gravis. Bu münferit AChRs daha gevşek postsy içine paketlenmiş olan durumlardırpostsinaptik MuSK / rapsyn sistemi 31 tarafından naptic membran iskele.

Şekil 1,
Şekil 1. gömülmesi ve cryosectioning için dondurma kaslar (1-5) kalıpların hazırlanması ('tekne') kasların toplu dondurma önce:. (1) Alüminyum folyo dikdörtgenler (2.0 x 3.0 cm) ve bölünür (2). Bir kalıp / tekne oluşturmak için suçlanan şekilde katlanmış (3). (4) nitroselüloz immünoblotting kağıt Dikdörtgenler kalıp sığacak şekilde kesilir ve bir tükenmez kalem kas yönlendirici hatları yönetmek için kullanılır. (5) nitroselüloz dikdörtgen kalıp içine yerleştirilir. (6) Kriyostat gömme matris sıvı yavaşça (nitroselüloz üstünde) kalıp içine dökülmüş, 2 mm'lik bir derinliğe: gömülmesi ve kas dondurma (6-8). (7) Güzel forseps nitrocellu ile uyum içinde, gömme matrisin içine tendon tarafından, kas düşürmek için kullanılır(8) Ek gömme matrisi hafifçe kabarcıkları oluşturarak önlemek için özen, kas kapsayacak şekilde kalıba dökülür, kararları kaybedersiniz. gömülü kas sonra tüpler kapatılmış ve metinde anlatıldığı gibi -80 ° C'de saklandı, ani olarak dondurulmuştur edilir. (9-12) cryosectioning hazırlanması: (9) ince forseps alüminyum kalıp soyulmaya kullanılır ve dondurulmuş Blok daha sonra -20 ° C kriyostat bölmesinde °, nitroselüloz (10) işaretler ayarlanması için de kullanılır yerleştirilir uzunlamasına kesit (12) için aynasının (11) yüzüne kas paralel. Sıvı cryo-gömme ortamının bir damla soğuk ayna bloğu takmak için kullanılır. Künt forseps dondurulmuş kas bloğu işlemek için kullanılır. Enine bölümleri elde etmek için, blok yerine, kas aynasının yüzeyine dik olacak şekilde monte edilir (gösterilmemiştir).

Şekil 2,
F2 aylık dişi C57Bl6J farelerin tibialis anterior kas NMJs igure 2. Tu yüz görüntüleri. Taze dondurulmuş kas çırpıda oldu ve adım 3.2 olarak açıklanan bölümler slayt sabit. İlk protokolde açıklandığı gibi z-yığınlarının maksimum yoğunluğu projeksiyon görüntüleri elde edildi. (A) kırmızı-BGT boyama (yüz görünümü tr) AChR zengin birincil kavşak sonrası oluklarının iki setten oluşan tek bir motor uç plakası ortaya koymaktadır. (B) Sinaptofizin FITC-konjuge sekonder antikor ile boyanarak primer sinaptik olukları işgal presinaptik sinir terminali ortaya koymaktadır. Ön uç akson bir kısmı, ayrıca panelin üst kısmında görülebilir. (Cı-D) Sağlıklı genç fare düşük kaliteli bir NMJ görüntüye bir örnek. Boyama zayıf öncesi ve post-sinaptik uzmanlık sınırları bulanık. Bu t eksiklikleri atfedilmiştiro doku ve / veya yetersiz bir zaman işlem birincil antikor inkübasyon sağladı. Panel D Ölçek çubuğu 10 mikron temsil eder. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 3,
Şekil (protokol 1 özetlendiği gibi) yüz NMJ görüntülerin en işlenmesinde 3. Adım. (A ve B) Orijinal sürekli ton MIP görüntüler ACHR ve sırasıyla sinaptofizin yeşil immünoflüoresans ortaya kırmızı-BGT floresan göstermektedir. (C) uç plakası tasvir etmek çokgen aracının 8-bit gri ölçekli görüntüye dönüştürme ve kullanımdan sonra AChR boyama (ince sarı çizgi). (D) Endplate sınır çizgisi yeşil sinaptofizin resmin üzerine taşıdı. (E) İçiasgari yoğunluk eşik komutu ication suprathreshold kırmızı-BGT (AChR) floresan izole eden ikili görüntü oluşturmak için. ImageJ kullanıcı arayüzü ekran dizisi görüntülerinin solunda gösterilir. (F) ayrı bir eşik uygulandıktan sonra İkili sinaptofizin görüntü. analiz parçacıklar komutu uygulaması ile son plak içinde ayrık suprathreshold AChR zengin alanların (G) Kimlik ikili kırmızı bgt görüntü. Panelin sol mukabil ImageJ ((G). gerekli eşik üstü piksel alanların asgari büyüklüğü girilmelidir gerekli giriş verilerini göstermektedir. (H), ikili sinaptofizin ve AChR görüntülerin örtüşme bölgelerinin belirlenmesi. Üst üste beyaz pikseller ile temsil edilmektedir ikili örtüşme görüntüye gelmesi için gereken adımları gösterir. seçilen asgari yoğunluk eşik değerleri, her floresan c (panel H altında). ImageJ kullanıcı arayüzü ekran görüntüleriGezme 'ko' penceresi içinde girilmelidir. Ölçek çubuğu 10 mikron temsil eder. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 4,
Şekil nispi floresan yoğunlukları karşılaştırmak için kullanılan enine optik bölümlerde (protokol 2) 4. örnekleri. Kas dondurulmuş ve slayt sabit bölümler adım 3.2. (A ve B) kadar çift-etiketli bir tek plak açıklandığı gibi oturmaktadır edildi -kırmızı-bgt (AChR, mavi Pseudocolor Burada gösterilen) ve FITC-anti-rapsyn postsinaptik zar içinde, bu iki etkileşen proteinlere ko-lokalizasyonunu göstermektedir (C ve D), görüntü ac ko-lokalize bitişik kas lifleri ile iki omurun. İnsan Kaynakları ve MuSK. (E & F) Bir plak ACHR ve -dystroglycan (-DG) için çift-etiketli. -DG (Panel AF, F 'deki ölçek çizgisi: 25 um) doğru kas lifi çevresi etrafında uzanan, ancak son plak ile zenginleştirilmiştir (G - I)' yoğunluk ölçümü için bir uç plakası Ayırma (G), tipik bir mikroskop alanının.. Panel G üç uzak-kırmızı-BGT-lekeli uç plaka (ölçek çubuğu içeren: 40 mikron (H) kutulu son plağın bir büyütülmüş görüntüsü (I), aynı plak poligonu kullanarak 8-bit gri tonlama görüntüye dönüştürülür ve tasvir.. . ImageJ (ince sarı çizgi) aracı Ortalama floresan yoğunluğu bu sınır çizgisi içinde ölçülür. (H & I ölçekli bar: 10 mikron) Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

ontent "fo: keep-together.within-sayfa =" always "> Şekil 5,
Sinaptik alan değerlendirmede görüntü kalitesi Şekil 5. etkisi. (A ve B) kırmızı-BGT ve anti-sinaptofizin floresan kanallarında inceledi 2 aylık fare sağlıklı bir NMJ yüz görüntüleri tr Yüksek kaliteli. (A '& B '), flüoresan yoğunluğu, sırasıyla A ve B için son plak boyunca çizilen hattına karşılık gelen profiller. yatay kırmızı kesikli çizgi. ikili görüntü oluşturmak için kullanılan minimum eşiği gösteren yaşlı bir fare (C & D) Endplate. Plak sinaptofizin boyama genellikle daha az yoğundur. (C '& D') Yoğunluk profilleri geri (sinaptofizin (FITC) kanal extrasynaptic (başlangıç) floresan dalgalanma yüksek düzeyde göstermekUygun bir eşik belirlenmesini etkileyen toprak). Bu çoğu geniş spektrumlu doku otofloresansı olduğunu. Ölçek çubukları 10 mikron temsil eder. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 6,
Şekil 6. kas içinde ve fareler arasındaki NMJs arasında sinaptik alanların değişkenlik. (A) saçılım yazar NT tarafından elde edilen yedi naif 2 aylık dişi C57Bl / 6J farelerin tibialis anterior kas endplate'lerin toplam AChR zengin bölgeyi göstermektedir. Her sembol, bir uç plakası temsil eder. Her çubuk bir fare örneklenmiş endplate'lerin için ortalama ± SD temsil eder. (B) saçılım aynı endplate'lerin için sinaptofizin zengin bölgeyi gösteren. (A ') (B ') endplate'lerin (toplanmış veri) sinaptofizin zengin bölgesi için Frekans dağıtımı için frekans dağılımı. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 7,
Şekil plak floresan yoğunluğunun tahminlerine göre örnek büyüklüğü 7. etkisi. Enine optik kesitler sağlıklı 2 aylık bir fare kaval kemiği ön kasında 40 ila 60 endplate'lerin de (isteğe bağlı birimlerle ifade edilmektedir) fluoresans şiddetini ölçmek için kullanılmıştır. Toplu ortalama ortalamaya dahil endplate'lerin sayısına karşı gösterilir. (A) Endplate kırmızı bgt floresan yoğunluğu yazar AV elde edilmiştir. (B) Anti-synaptophysiPanel A'daki ile aynı son plaklardan için immünofloresan yoğunluğu n. Yazar NG ile ikinci bir kas numunesinden elde edilen (C) Endplate uzak-kırmızı bgt florasan yoğunluğu. (D), panel C ile aynıdır endplate'lerin Anti-rapsyn immünofloresan şiddeti.

Çalışma Kas fare sayısı AChR alanı Sinaptofizin alanı Üst üste binme alanı
ortalama ± SD (um2) ortalama ± SD (um2) ortalama ± SD (um2)
Morsch ve ark. (2012) 1 Gastroknemyus 3 181 ± 7 163 ± 24
diyafram 3 130 ± 41 102 ± 21 76 ± 26
Morsch ve ark. (2013) 1 tibialis anterior 3 166 ± 26 117 ± 21 nd
Cheng ve ark. (2013) 2 tibialis anterior 4 226 ± 18 150 ± 44 110 ± 34
Tse (yayımlanmamış) 2 tibialis anterior 7 213 ± 27 157 ± 23 111 ± 11
1 Zeiss LSM 510 Meta mikroskop ancak sabit kazanç ile Görüntülü ve seviyeleri ofset. Eşik ve sinaptik alanları ölçümleri Metamorph Softwar kullanılanMM e.
2 tedavi grubu açısından körlenmiş belirtilen birinci yazar tarafından mevcut protokole göre, bir Leica DM IRE2 mikroskop görüntü kazandırılmış ve analiz edilmiştir.
nd belirlenmedi.

2 aylık dişi C57BL / 6J fareler, NMJs Tablo 1. Sinaptik alanı (sağlıklı)

Çalışma Kas * Verimliliği (%) FRET Aralık (%)
(Ortalama ± SEM)
Brockhausen ve ark. (2008) tibialis anterior 24 ± 1 na
Ark. 2010 Cole ve tibialis anterior 26 ± 1 22-30
Morsch (yayınlanmamış) diyafram 37 ± 1 24-47
Ghazanfari (yayınlanmamış) tibialis anterior 30 ± 1 20-45
* FRET çifti = 51A için kırmızı bgt ve uzak-kırmızı bgt (Förster yarıçapı (Life Technologies) arasında FRET.
mevcut değil na veri

Tablo 2. ACHR için verimler genç yetişkin farelerde C57Bl6J farelerden FRET

Discussion

Burada anlatılan protokoller güvenilir ölçmek ve normal yaşlanma ve hastalık halleri dahil olmak üzere koşulları bir dizi, karşısında NMJ özelliklerinde değişiklikler ölçmek için bize sağlamıştır. tr için açıklanan yöntemler NMJ görüntüleri araştırmacılar öncesi ve postsinaptik uzmanlık alanı ve sinaptik örtüşme / uyum alanı karşılaştırmak sağlayacak karşıya. Pre-ve postsinaptik proteinler enine optik bölümleri kullanan ikinci protokol, nispi yoğunluğu karşılaştırmak için tercih edilir. Üçüncü protokol özellikle postsinaptik membranda AChRs ambalaj yakınında değişiklikler için sınar.

Özgünlük kontrolleri mikroskobik hayati önem taşımaktadır. Dolaylı imüno herhangi bir birincil antikor kullanıldığında, ilk kas bölümlerde hedef proteine ​​spesifik olarak bağlanan sağlamak için gereklidir. Doku işleme ve tespitin çeşitleri farklı şekilde özgünlüğünü değiştirebilirantikorlardır. Gerçekten Motor son plak de ACHR ile konsantre edilir (ki rapsyn için) o immünofluoresans boyama onaylamak için önemlidir. Negatif kontrol bölümleri de, antikor özel olduğundan emin olmak için muayene edilmelidir. - / - Farelerde Örneğin, rapsyn immünofloresans için en negatif kontrol rapsyn kesitleri olacaktır. Bu anti-rapsyn hiçbir plak boyama göstermelidir. Spesifik olmayan bağlanma, floresan doku (otofloresansı) 'de ya da floresan ikincil antikor konjugatı tarafından spesifik olmayan bağlanma endojen floresan kimyasal ortaya çıkabilir. Böyle floresan genellikle aldehit tespit kötüleşti. Ayrıca, endplate'lerin TRITC-BGT boyama bazen FITC floresan kanalında tespit edilebilir ve bu floresan boşaltma üzerinden belirli FITC Immünofloresan ile karıştırılmamalıdır olabilir. Non-spesifik floresan ikinci üç biçimlerine karşı korunmak için, lekeli slaytlar her parti, bazı n 'içermelidiro-primer antikor kontrolü 'bölümleri (3.7 ve 4.6 adımları). Bu kontrol kesimlerinden endplate'lerin Çıkan NMJs dolaylı immünofloresan boyama birçok birincil antikor bağlanmasının yansıtmasını sağlamak için deneysel slaytlar kişilerce karşılaştırılmalıdır.

Enine konfokal bölmelerin sinaps imüno-nispi yoğunluğu yönünden farklılıkları değerlendirmek için özellikle yararlıdır. Enine konfokal bölümlerde sinaptik proteinlerin tam birlikte-lokalizasyonunu yargılamak için daha kolaydır. hilal şeklinde plak profili sadece bir örnek kesim-yoluyla NMJ söz eder. Ancak, arka plan (extrasynaptic) floresan genellikle daha düşük yüz z-projeksiyon görüntüleri tr karşılaştırılır. Böylece, 'gerçek' (özel) immün ayrımcılık ve sabit konfokal kazanç kurmak ve enine optik bölümleri 13-15,18 kullanarak değerleri ofset daha kolay olabilir. Örneğin, miyastenya bir fare modelinde (nereye gravise plak AChR boyama belirgin azalır) omurun açıkça enine optik bölümlerde 18,21 yılında tarif edilmiştir. NMJ floresan ortalama yoğunluğundaki farklılıklar sinaptik uzmanlık içindeki hedef proteinin değişik yoğunluğa yansıtmak için olasıdır. Bir uyarı bazı durumlarda, hedef proteini ya da komşu proteinleri tarafından antikor bağlanması tıkanıklığında yapısal bir değişim değiştirilmiş boyama yoğunluğu açıklayabilir olmasıdır.

deney tasarımı, bazı göz önüne alınmasını gerektirir. Birçok durumda deney NMJ boyutuna bağlı bir transgen, gen demonte veya hastalık durumunun etkilerini test etmek amacı. Deney numune grubu daha sonra, aynı cinsiyet ve genetik arka plan Sağlıklı, genç (vahşi tip) farelere kıyasla olabilir. Son plak sinaptofizin, ACHR ve çeşitli kas sinaptik örtüşme alanı için başlangıç ​​değerleri Tablo 1 'de verilmiştir. Örnek büyüklüğü hayvan derecesine bağlı olacaktırTedavi grupları içinde -to-hayvan varyasyon ve (standart sapma başına kontrol grupları karşı deneysel için aracı fark) etki büyüklüğü. Analiz kaliteli görüntülere sınırlı zaman tutarlılık adil bir derecesi örnek, sağlıklı 2 aylık dişi farelerin C57Bl6J (Şekil 6A ve B) arasındaki son plak alanlar için gelir bulundu. Bu durumda, bu üç fareden 17,20,32 bir numune miktarı ile kontrol grubu ile karşılaştırıldığında, hastalar gravis, anti-MuSK pozitif miyastenya IgG ile enjekte edilmiş farelerde sinaptik alanında önemli% 30-40 azalma ortaya konması mümkün olmuştur. Yaşlı fareler genç farelerde 22 daha plak parametrelerinde büyük hayvan için hayvan-varyasyon görüntülenir. Sonuç olarak yaşlı farelerin içeren deneyler büyük örnek boyutları gerektirebilir.

Temel kaygısı daha sonra tr yüz son plak kazanç ve ofset seviye ayarları boyutunu ölçmek için ise her bireyin NMJ için optimize edilmelidir. Bireyselidual NMJs hastalık durumları incelendiğinde özellikle ACHR ve sinaptofizin boyama, parlaklık önemli ölçüde değişebilir. Ayrıca extra-sinaptik (spesifik olmayan) floresan yoğunluğu sağlıklı genç hayvanlarda (Şekil 5C ve D) ile kıyaslandığında, genellikle daha yüksek ve yaşlı hayvanlarda kas daha değişkendir. Son görüntülerde muhafaza edilecektir ton bilgilerin maksimize edecek şekilde 1-256 gri ölçekli tamamen istismar edilmelidir. Bu kazanç ayarlama dahil ve z-yığın tahsil edileceği her NMJ için seviyeleri ofset olacak. Şekil 5D ton bilgiler öncesi ve sonrası alanının sınırlarını tanımlayan kritik olabilecek bir NMJ görüntünün bir örneğini göstermektedir sinaptik uzmanlık.

Sinaptik alanlarında Ölçümler farklı kaslarında ve deneylere uygulanabilir. Sinaptik alanlarında eden ölçümleri çoğu çırpıda boyuna cryosections kullanmışlardır dondurulmuş kaslar. Tespit önce kas dondurma proteinlerin geniş bir antijenliğini tutar. Ne zaman önce NMJ yapısının daha iyi korunmasını sağlayabilir (adım 2.1) cryosectioning antijen, paraformaldehit fiksasyon ve sakaroz infiltrasyonu ile uyumlu. Optimum yapısal koruma paraformaldehit ile kardiyak perfüzyon ile elde edilebilir. Donma ve kesitlerle Eserleri tamamen sabit kas 21 alay fasiküller üzerinde sağlam kas ve görüntüleme NMJs yüzeyinde etiketleme endplate'lerin önlenebilir. Ne olursa olsun hazırlık, örnekleme, görüntüleme ve alan kantitatif için prosedürler (protokol 4-5 adımlarını) değişmeden kalır. Kör örnekleme, görüntüleme ve analiz protokolleri Tutarlı uygulama oldukça tekrarlanabilir ortalama değerler (Tablo 1 Cheng ve ark. Ve Tse sonuçları karşılaştırmak) neden olabilir, (farklı operatörleri, fareler ve farklı zamanlarda farklı örnekleri kullanarak).

"> Omurun hastalık durumlarında çeşitli 'parçalanmış' olma olarak tarif edilmiştir. Örneğin, fare kasları, kas lifi sporadik dejenerasyonu yaşlanma simit gibi plak AChR plak remodelinge sonuçlandı (kendi rejenerasyon ardından) Küçük çoklu AChR kümeleri 6 oluştururlar., anti-MuSK miyasteni IgG enjekte edilen farelerde, son plağın parçalanması oldukça farklı olan hastalardır gravis. ölçüde dağılmış plak AChR simit, küçük (<4 m2) ACHR 'mikroagregatlar bir takımı geride bırakarak '20,21. Bu iki örnek deney hayvanlarında 21 karşı kontrol endplate'lerin de AChR kümeler için boyut dağılımlarını karşılaştırmak gereğini vurgulamaktadır.

Diğer yöntemler NMJ yoğunluğu sinaptik alan değerlendirmek ya da boyanması için rapor edilmiştir. Burada kullanılan iki boyutlu z-projeksiyon görüntüleri syn hafife olabilir, böylece motor omurun bazen katlanabiliraptic alanlar. Mutlak sinaptik alan 33 tanımlanmış olmalıdır, eğer üç boyutlu rekonstrüksiyon konfokal daha doğru tedbirler sağlayabilir. Burada tarif edilen Z-projeksiyon protokolünün önemli bir avantajı ise, birden fazla tedavi grupları ve potansiyel değişikliklerin güvenilir bir şekilde belirlenmesi ile ilgili ölçülecek endplate'lerin sayıda izin verdi göreceli kolaylığı vardır. plak boyama yoğunlukları mukayese etmek için protokol, bir çok farklı sinaptik protein düzeylerindeki değişiklikleri çalışmak için adapte edilebilir. yöntem, tüm numuneler daha sonra aynı konfokal seansta görüntülü Immünofloresan için işlenir şartı ile, ancak, sınırlı. Yampolski ark. 5 tarafından yapılan son çalışmada, bu sınırlamanın üstesinden yardımcı olabilir plak AChR yoğunluğu ölçmek için bir yöntem tarif. Bu çalışmada, son plaklardan aynı alanları farklı lazer güç ayarlarında görüntülendi. Lazer gücü ve rhodami arasındaki ilişkinin eğimiNE-bgt florasan yoğunluğu farklı farelerde 5 endplate'lerin de AChR yoğunluğunda nispi değişikliklerin değerlendirilmesi için kullanılmıştır. Bu yöntem uzun bir çalışma süresi boyunca farklı zamanlarda görüntülü örneklerde AChR yoğunluğu mukayese etmek için yararlı olabilir.

AChR-AChR FRET plak AChRs organizasyonu hakkında özel ve tamamlayıcı bilgiler sağlar. 125 kullanarak elektron mikroskobik otoradyografisi. Ben-α-BGT AChRs 10 4 m düzlemsel yoğunluğu ile sıkı paketlenmiş -2 hemen verici sürümü her presinaptik sitenin altında, bitişik zar infoldings ACHR 34 daha düşük yoğunlukları içeren süre göstermiştir. AChR-AChR FRET nispeten kolay AChR ambalajında ​​(alt-mikroskobik) değişiklikleri tespit etmek için yapar. FRET verimliliği bir azalma ortalama bgt flüoresans yoğunluğunda bir değişiklik ile tespit olabilir postsinaptik zar içinde AChRs bir alt-mikroskopik yeniden dağılımını göstermektedir. Çoklu faktörler FRET etkinliğinin bir değişikliğe neden olabilir. Bu verici-alıcı boşluğu ve bağıl yönelimlerin yanı sıra moleküler ortam 35,36 bulunmaktadır. Plak FRET verimliliği bir azalma muhtemelen AChR kafes geometrisi değişikliği doğabilecek. Bununla birlikte, en büyük olasılıkla, nano ölçekli postsinaptik moleküler kafes 14 içine paketlenir AChRs yüzdesinde bir azalmaya bağlı olacaktır.

Motor nöron ya da kas lifleri arasındaki bağlantı kaybı, motor nöron hastalığı ve hareketsiz yaşlanma 9,22,23 kas zayıflığının ölüm nedeni olarak görülmektedir. Ölçme NMJs için Paylaşılan yöntemler ve parametreler daha kolay farklı araştırma grupları karşılaştırmak ve kontrast yayınlanan bulgular için yapmak gerekir. Ayrıntılı protokoller (ve onlara gelecekteki gelişmeler) paylaşmalarının hastalık durumlarında nasıl etkilenebileceği NMJ bakım mekanizmalarını anlamak ilerlemeyi hızlandırmak ve yardımcı olabilir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Scanning confocal microscope Leica DM 2000 with  TCS SP2 system Most scanning confocal microscopes should be suitable. 
Zeiss LSM 510 Meta 
Leica SPE-II
Alexa555-a-bungarotoxin (red-BGT) Life technologies B35451 Used for labelling AChRs
Alexa647-α-bungarotoxin (far-red-BGT) Life technologies B35450 Far red fluorescence: barely visible through the eyepiece 
rabbit anti-synaptophysin Life technologies 18-0130 Different batches of primary antibody differ in effective working dilution
FITC-anti-rapsyn mab1234 Milipore FCMAB134F Monoclonal antibody conjugated to FITC
FITC-donkey anti-rabbit IgG Jackson 711-095-152 Polyclonal secondary antibodies can vary in quality according to source and batch
Optimal Cutting Temperature compound (O.T.C.) ProSciTech IA018 Cryostat embedding matrix for freezing  muscles
DABCO Sigma 10981 Mounting medium that slows photobleaching of fluorophores

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Schmidt, N., et al. Neuregulin/ErbB regulate neuromuscular junction development by phosphorylation of α-dystrobrevin. J Cell Biol. 195, 1171-1184 (2011).
  2. Amenta, A. R., et al. Biglycan is an extracellular MuSK binding protein important for synapse stability. J Neurosci. 32, 2324-2334 (2012).
  3. Samuel, M. A., Valdez, G., Tapia, J. C., Lichtman, J. W., Sanes, J. R. Agrin and Synaptic Laminin Are Required to Maintain Adult Neuromuscular Junctions. PLOS ONE. 7, e46663 (2012).
  4. Valdez, G., et al. Attenuation of age-related changes in mouse neuromuscular synapses by caloric restriction and exercise. Proc Natl Acad Sci (USA). 107, 14863-14868 (2010).
  5. Yampolsky, P., Pacifici, P. G., Witzemann, V. Differential muscle-driven synaptic remodeling in the neuromuscular junction after denervation). Eur J Neurosci. 31, 646-658 (2010).
  6. Li, Y., Lee, Y., Thompson, W. J. Changes in Aging Mouse Neuromuscular Junctions Are Explained by Degeneration and Regeneration of Muscle Fiber Segments at the Synapse. J Neurosci. 31, 14910-14919 (2011).
  7. Zhu, H., Bhattacharyya, B. J., Lin, H., Gomez, C. M. Skeletal muscle IP3R1 receptors amplify physiological and pathological synaptic calcium signals. J Neurosci. 31, 15269-15283 (2011).
  8. Valdez, G., Tapia, J. C., Lichtman, J. W., Fox, M. A., Sanes, J. R. Shared resistance to aging and ALS in neuromuscular junctions of specific muscles. PLoS ONE. 7, e34640 (2012).
  9. Perez-Garcia, M. J., Burden, S. J. Increasing MuSK Activity Delays Denervation and Improves Motor Function in ALS Mice. Cell reports. 2, 1-6 (2012).
  10. Klooster, R., et al. Muscle-specific kinase myasthenia gravis IgG4 autoantibodies cause severe neuromuscular junction dysfunction in mice. Brain. 135, 1081-1101 (2012).
  11. Pratt, S. J., Shah, S. B., Ward, C. W., Inacio, M. P., Stains, J. P., Lovering, R. M. Effects of in vivo injury on the neuromuscular junction in healthy and dystrophic muscles. J Physiol. 591, 559-570 (2013).
  12. Landis, S. C., et al. A call for transparent reporting to optimize the predictive value of preclinical research. Nature. 490, 187-191 (2012).
  13. Gervásio, O. L., Phillips, W. D. Increased ratio of rapsyn to ACh receptor stabilizes postsynaptic receptors at the mouse neuromuscular synapse. J Physiol. 562, 673-685 (2005).
  14. Gervásio, O. L., Armson, P. F., Phillips, W. D. Developmental increase in the amount of rapsyn per acetylcholine receptor promotes postsynaptic receptor packing and stability. Dev Biol. 305, 262-275 (2007).
  15. Brockhausen, J., Cole, R. N., Gervásio, O. L., Ngo, S. T., Noakes, P. G., Phillips, W. D. Neural agrin increases postsynaptic ACh receptor packing by elevating rapsyn protein at the mouse neuromuscular synapse. Dev Neurobiol. 68, 1153-1169 (2008).
  16. Cole, R. N., Reddel, S. W., Gervásio, O. L., Phillips, W. D. Anti-MuSK patient antibodies disrupt the mouse neuromuscular junction. Ann Neurol. 63, 782-789 (2008).
  17. Morsch, M., Reddel, S. W., Ghazanfari, N., Toyka, K. V., Phillips, W. D. Muscle Specific Kinase autoantibodies cause synaptic failure through progressive wastage of postsynaptic acetylcholine receptors. Exp Neurol. 237, 237-286 (2012).
  18. Cole, R. N., Ghazanfari, N., Ngo, S. T., Gervasio, O. L., Reddel, S. W., Phillips, W. D. Patient autoantibodies deplete postsynaptic Muscle Specific Kinase leading to disassembly of the ACh receptor scaffold and myasthenia gravis in mice. J Physiol. 588, 3217-3229 (2010).
  19. Viegas, S., et al. Passive and active immunization models of MuSK-Ab positive myasthenia: Electrophysiological evidence for pre and postsynaptic defects. Exp Neurol. 234, 506-512 (2012).
  20. Morsch, M., Reddel, S. W., Ghazanfari, N., Toyka, K. V., Phillips, W. D. Pyridostigmine but not 3,4-diaminopyridine exacerbates ACh receptor loss and myasthenia induced in mice by Muscle Specific Kinase autoantibody. J Physiol. 591, 2747-2762 (2013).
  21. Ghazanfari, N., Morsch, M., Reddel, S. W., Liang, S. X., Phillips, W. D. Muscle Specific Kinase autoantibodies suppress the MuSK pathway and ACh receptor retention at the mouse neuromuscular junction. J Physiol. 592, 2881-2897 (2014).
  22. Cheng, A., Morsch, M., Murata, Y., Ghazanfari, N., Reddel, S. W., Phillips, W. D. Sequence of age-associated changes to the mouse neuromuscular junction and the protective effects of voluntary exercise. PLoS One. 8, e67970 (2013).
  23. Schaefer, A. M., Sanes, J. R., Lichtman, J. W. A compensatory subpopulation of motor neurons in a mouse model of amyotrophic lateral sclerosis. J Comp Neurol. 490, 209-219 (2005).
  24. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLos Biol. 8, e1000412 (2010).
  25. Shimizu, S. Routes of Administration. The Laboratory Mouse. Hedrich, H. J., Bullock, G. Elsevier. (2004).
  26. Chiasson, R. B. Laboratory anatomy of the white rat. Brown. Dubuque, Iowa. (1988).
  27. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole Animal Perfusion Fixation for Rodents. J. Vis. Exp. (65), e3564 (2012).
  28. Mitra, A. K., Stroud McCarthy, M. P., M, R. Three-dimensional structure of the nicotinic acetylcholine receptor and location of the major associated 43-kD cytoskeletal protein, determined at 22A by low dose electron microscopy and x-ray diffraction to 12.5A. J Cell Biol. 109, 755-774 (1989).
  29. Paas, Y., et al. Electron microscopic evidence for nucleation and growth of 3D acetylcholine receptor microcrystals in structured lipid-detergent matrices. Proc. Natl Acad. Sci. (USA). 100, 11309-11314 (2003).
  30. Samson, A. O., Scherf, T., Eisenstein, M., Chill, J. H., Anglister, J. The mechanism for acetylhcoline receptor inhibition by α-neurotoxins and species-specific resistance to α-bungarotoxin revealed by NMR). Neuron. 35, 319-332 (2002).
  31. Ghazanfari, N., et al. Muscle Specific Kinase: Organiser of synaptic membrane domains. Int J Biochem Cell Biol. 43, 295-298 (2011).
  32. Ghazanfari, N., Morsch, M., Tse, N., Reddel, S. W., Phillips, W. D. Effects of the β2-adrenoceptor agonist, albuterol, in a mouse model of anti-MuSK myasthenia gravis. PLoS ONE. 9, e87840 (2014).
  33. Prakash, Y. S., Miller, S. M., Huang, M., Sieck, G. C. Morphology of diaphragm neuromuscular junctions on different fibre types. J Neurocytol. 25, 88-100 (1996).
  34. Salpeter, M. M., Harris, R. Distribution and turnover rate of acetylcholine receptors throughout the junction folds at a vertebrate neuromuscular junction. J Cell Biol. 96, 1781-1785 (1983).
  35. Soper, S. A., Nutter, H. L., Keller, R. A., Davis, L. M., Shera, E. B. The photophysical constants of several fluorescent dyes pertaining to ultrasensitive fluorescence spectroscopy. Photochem Photobiol. 57, 972-977 (1993).
  36. Panchuk-Voloshina, N., et al. Alexa dyes, a series of new fluorescent dyes that yield exceptionally bright, photostable conjugates. J Histochem Cytochem. 47, 1179-1188 (1999).
Nöromusküler Kavşak: Ölçme Synapse Boyut, Konfokal Floresan Mikroskobu kullanılarak sinaptik Protein Yoğunluk Parçalanma ve Değişiklikler
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Tse, N., Morsch, M., Ghazanfari, N., Cole, L., Visvanathan, A., Leamey, C., Phillips, W. D. The Neuromuscular Junction: Measuring Synapse Size, Fragmentation and Changes in Synaptic Protein Density Using Confocal Fluorescence Microscopy. J. Vis. Exp. (94), e52220, doi:10.3791/52220 (2014).More

Tse, N., Morsch, M., Ghazanfari, N., Cole, L., Visvanathan, A., Leamey, C., Phillips, W. D. The Neuromuscular Junction: Measuring Synapse Size, Fragmentation and Changes in Synaptic Protein Density Using Confocal Fluorescence Microscopy. J. Vis. Exp. (94), e52220, doi:10.3791/52220 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter