Summary

Elektro og Morfologisk Karakterisering av Nevronale kretser i Akutt Brain Slices hjelp Grupperte patch-clamp Recordings

Published: January 10, 2015
doi:

Summary

Patch-clamp recordings and simultaneous intracellular biocytin filling of synaptically coupled neurons in acute brain slices allow a correlated analysis of their structural and functional properties. The aim of this protocol is to describe the essential technical steps of electrophysiological recording from neuronal microcircuits and their subsequent morphological analysis.

Abstract

Kombinasjonen av patch clamp opptak fra to (eller flere) postsynaptisk kombinert nevroner (sammenkoblede innspillinger) i akutte hjerne slice preparater med samtidig intracellulær biocytin fylling gir en korrelert analyse av deres strukturelle og funksjonelle egenskaper. Med denne metoden er det mulig å identifisere og karakterisere både pre- og postsynaptiske nevroner av deres morfologi og elektrofysiologisk reaksjonsmønster. Sammenkoblede innspillinger tillate studere tilkoblingsmønsteret mellom disse nevronene samt egenskapene til både kjemisk og elektrisk synaptisk overføring. Her gir vi en steg-for-steg beskrivelse av prosedyrene som kreves for å få pålitelige sammenkoblede innspillinger sammen med en optimal utvinning av nervecellen morfologi. Vi vil beskrive hvordan par av nevroner som er tilkoblet via kjemiske synapser eller gap veikryss er identifisert i hjernen slice forberedelser. Vi vil skissere hvordan nerveceller blir rekonstruert for å få deres 3D morfologi dendritic og aksonal domene og hvordan synaptiske kontakter er identifisert og lokalisert. Vi vil også diskutere de begrensningene og begrensninger av den sammenkoblede opptaksteknikk, spesielt de som er forbundet med dendrittiske og aksonale trunkeringer under utarbeidelsen av hjerneskiver fordi disse sterkt påvirke tilkoblings estimater. Men på grunn av allsidigheten til den sammenkoblede opptak tilnærming vil det fortsatt være et verdifullt verktøy for å karakterisere ulike sider ved synaptisk overføring på identifiserte nevrale kretser i hjernen.

Introduction

Nevrale kretser mellom to postsynaptisk kombinert nevroner er byggesteinene i store nettverk i hjernen og er de grunnleggende enheter av synaptisk informasjonsbehandling. En forutsetning for karakterisering av slike neuronal mikrokretser er kjent at morfologien og funksjonelle egenskaper av både pre- og postsynaptiske nevroner partner, typen av synaptisk forbindelse (r), og dens struktur og funksjonelle mekanisme. Men i mange studier av synaptiske forbindelser i det minste en av nevroner i en mikrokrets er ikke godt karakterisert. Dette skyldes den relativt uspesifikke stimuleringsregimer som ofte brukes i studier av synaptisk tilkobling. Derfor er de strukturelle og funksjonelle egenskaper av den presynaptiske neuron heller ikke identifisert i det hele tatt eller bare i ganske liten grad (dvs. ekspresjon av markørproteiner etc.). Sammenkoblede opptak i kombinasjon med intracellulær farging av markører such som biocytin, neurobiotin eller fluorescerende fargestoffer er bedre egnet for å studere små nevrale kretser. Denne teknikken gjør det mulig å undersøke mange strukturelle og funksjonelle parametre for en morfologisk identifisert synaptisk forbindelse på samme tid.

Såkalte 'enhetlige' monosynaptisk forbindelser mellom to nerveceller har blitt undersøkt i begge kortikale og subkortikale hjerneregioner 1-10 bruker akutte slice forberedelser. Initialt ble laminert mikroelektroder som brukes i disse forsøkene; senere ble patch clamp monitorerings anvendes for å oppnå opptak av synaptiske signaler med et lavere støynivå og et forbedret tidsmessig oppløsning.

Et betydelig teknisk fremskritt var bruken av infrarød differensialinterferenskontrast (IR-DIC) optikk 11 til 14, en mikroskopisk metode som i betydelig grad forbedret synlighet og identifisering av nevronene i hjernen skive slik at det ble mulig to innhente opptak fra visuelt identifisert synaptiske forbindelser 15-17. Generelt er sammenkoblede innspillinger gjort i akutte slice forberedelser; bare svært få publikasjoner er tilgjengelige rapporterings opptak fra postsynaptisk koblet nevroner in vivo 18-20.

Den viktigste fordelen med sammenkoblede opptak er det faktum at en funksjonell karakterisering kan kombineres med en morfologisk analyse ved både lys og elektronmikroskopnivå (se f.eks., 7,16,21). Etter histokjemisk behandling, er dendrittiske og aksonal morfologi av postsynaptisk koblet neuron par spores. Deretter er det mulig å kvantifisere morfologiske egenskaper som lengde, romlig tetthet, orientering, forgrening mønster etc. Disse parametrene kan deretter gi grunnlag for en objektiv klassifisering av en spesifikk synaptisk tilkobling. Videre, i motsetning til de fleste andre teknikker som brukes for å studere neuronal connectiteten, sammen innspillinger også tillate identifisering av synaptiske kontakter for enhetlige synaptiske forbindelser. Dette kan gjøres direkte med en kombinasjon av lys og elektronmikroskopi 16,21-27 eller bruke kalsium bildebehandling 28,29 av dendrittutløperne. Men med den sistnevnte tilnærmingen bare eksitatoriske men ikke hemmende tilkoblinger kan studeres som det krever kalsium tilstrømningen via de postsynaptiske reseptor kanaler.

I tillegg til en detaljert analyse av synaptisk transmisjon i en definert neuronal mikrokretssammenkoblet opptak også tillater studiet av synaptisk plastisitet regler 30,31 eller – i kombinasjon med agonist / antagonist søknad – modulering av synaptisk transmisjon av neurotransmittere slik som acetylkolin 32 og adenosin 33.

Protocol

Alle eksperimentelle prosedyrer har blitt utført i samsvar med EU-direktivet for beskyttelse av dyr, den tyske dyrevernloven (Tierschutzgesetz) og Retningslinjene av Federation of European Laboratory Animal Science Association. 1. Set-up for Elektro Før du begynner med paret opptak, har en elektrofysiologi satt opp til å bli bygget. En kort oversikt hvordan et slikt oppsett er satt sammen er gitt nedenfor: Installere et anti-vibrasjon bordet der mik…

Representative Results

Sammenkoblede innspillinger er metoden for valg for en grundig karakterisering av morfologisk identifiserte uni- eller toveis synaptiske forbindelser samt gap junction (elektrisk) tilkoblinger (figur 1). Et eksempel på en sammenkoblet opptak i laget 4 av somatosensory fat cortex er vist i Figur 1A. Både enveis eksitatorisk og hemmende synaptiske forbindelser kan karakteriseres (figur 1B, C). Videre sammenkoblede innspillinger tillate å ta opp fra toveis synaptiske <e…

Discussion

Sammenkoblede opptak fra postsynaptisk kombinert eksitatoriske og / eller hemmende nerveceller er en svært allsidig tilnærming til studiet av nevrale kretser. Ikke bare gjør denne tilnærmingen tillater en å anslå synaptic tilkobling mellom nevroner typer, men også tillater å bestemme de funksjonelle egenskapene til tilkoblingen og morfologi av pre- og postsynaptiske nevroner. Videre kan agonist og / eller antagonist lett påføres neuroner i skivepreparater. Dette gjør det mulig å studere effekter av nevromodu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank all members of ‘Function of Neuronal Microcircuits’ Group at Institute of Neuroscience and Medicine, INM-2, Research Centre Jülich and the ‘Function of Cortical Microcircuits’ Group in the Dept. of Psychiatry, Psychotherapy and Psychosomatics, Medical School, JARA, RWTH Aachen University for fruitful discussions. This work was supported by the DFG research group on Barrel Cortex Function (BaCoFun).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Amplifier HEKA EPC 10 USB Triple with 2-3 preamplifiers
Microscope Olympus BX51WI with 2 camera ports and a 4× objective, a 40× water-immersion objective
Camera TILL Photonics VX55 infrared CCD camera
Workstation Luigs & Neumann Infrapatch 240 with a motorized x-y stage and a motorized focus axis for the microscope
Micromanipulator Luigs & Neumann SM-5 x-y-z manipulators for 2-3 preamplifiers
Faraday cage Luigs & Neumann
Anti-vibration table Newport Spectra-Physics
Patchmaster HEKA
Microtome Microm International HM650V
Micropipette puller HEKA Sutter P-97
Neurolucida system Microbrightfield with Neurolucida and Neuroexplorer softwares

References

  1. Hughes, G. M., Tauc, L. A direct synaptic connexion between the left and right giant cells in Aplysia. J Physiol. 197 (3), 511-527 (1968).
  2. Korn, H., Triller, A., Mallet, A., Faber, D. S. Fluctuating responses at a central synapse: n of binomial fit predicts number of stained presynaptic boutons. Science. 213 (4510), 898-901 (1981).
  3. Miles, R. Synaptic excitation of inhibitory cells by single CA3 hippocampal pyramidal cells of the guinea-pig in vitro. J Physiol. 428 (1), 61-77 (1990).
  4. Malinow, R. Transmission between pairs of hippocampal slice neurons: quantal levels, oscillations and LTP. Science. 252 (5006), 722-724 (1991).
  5. Mason, A., Nicoll, A., Stratford, K. Synaptic transmission between individual pyramidal neurons of the rat visual cortex in vitro. J Neurosci. 11 (1), 72-84 (1991).
  6. Thomson, A. M., West, D. C. Fluctuations in pyramid-pyramid excitatory postsynaptic potentials modified by presynaptic firing pattern and postsynaptic membrane potential using paired intracellular recordings in rat neocortex. Neuroscience. 54 (2), 329-346 (1993).
  7. Buhl, E. H., Halasy, K., Somogyi, P. Diverse sources of hippocampal unitary inhibitory postsynaptic potentials and the number of synaptic release sites. Nature. 368 (6474), 823-828 (1994).
  8. Bolshakov, V. Y., Siegelbaum, S. A. Regulation of hippocampal transmitter release during development and long-term potentiation. Science. 269 (5231), 1730-1734 (1995).
  9. Debanne, D., Guerineau, N. C., Gahwiler, B. H., Thompson, S. M. Physiology and pharmacology of unitary synaptic connections between pairs of cells in areas CA3 and CA1 of rat hippocampal slice cultures. J Neurophysiol. 73 (3), 1282-1294 (1995).
  10. Miles, R., Toth, K., Gulyas, A. I., Hajos, N., Freund, T. F. Differences between somatic and dendritic inhibition in the hippocampus. Neuron. 16 (4), 815-823 (1996).
  11. MacVicar, B. A. Infrared video microscopy to visualize neurons in the in vitro brain slice preparation. J Neurosci Methods. 12 (2), 133-139 (1984).
  12. Dodt, H. U., Zieglgansberger, W. Visualizing unstained neurons in living brain slices by infrared DIC-videomicroscopy. Brain Res. 537 (1-2), 333-336 (1990).
  13. Stuart, G. J., Dodt, H. U., Sakmann, B. Patch-clamp recordings from the soma and dendrites of neurons in brain slices using infrared video microscopy. Pflugers Arch. 423 (5-6), 511-518 (1993).
  14. Debanne, D., et al. Paired-recordings from synaptically coupled cortical and hippocampal neurons in acute and cultured brain slices. Nat Protoc. 3 (10), 1559-1568 (2008).
  15. Gulyas, A. I., et al. Hippocampal pyramidal cells excite inhibitory neurons through a single release site. Nature. 366 (6456), 683-687 (1993).
  16. Silver, R. A., Lubke, J., Sakmann, B., Feldmeyer, D. High-probability uniquantal transmission at excitatory synapses in barrel cortex. Science. 302 (5652), 1981-1984 (2003).
  17. Biro, A. A., Holderith, N. B., Nusser, Z. Quantal size is independent of the release probability at hippocampal excitatory synapses. J Neurosci. 25 (1), 223-232 (2005).
  18. Crochet, S., Chauvette, S., Boucetta, S., Timofeev, I. Modulation of synaptic transmission in neocortex by network activities. Eur J Neurosci. 21 (4), 1030-1044 (2005).
  19. Bruno, R. M., Sakmann, B. Cortex is driven by weak but synchronously active thalamocortical synapses. Science. 312 (5780), 1622-1627 (2006).
  20. Constantinople, C. M., Bruno, R. M. Deep cortical layers are activated directly by thalamus. Science. 340 (6140), 1591-1594 (2013).
  21. Markram, H., Lubke, J., Frotscher, M., Roth, A., Sakmann, B. Physiology and anatomy of synaptic connections between thick tufted pyramidal neurones in the developing rat neocortex. J Physiol. 500 (Pt 2), 409-440 (1997).
  22. Gray, E. G. Axo-somatic and axo-dendritic synapses of the cerebral cortex: an electron microscope study). J Anat. 93 (Pt 4), 420-433 (1959).
  23. Uchizono, K. Characteristics of excitatory and inhibitory synapses in the central nervous system of the cat). Nature. 207 (997), 642-643 (1965).
  24. Tamas, G., Buhl, E. H., Lorincz, A., Somogyi, P. Proximally targeted GABAergic synapses and gap junctions synchronize cortical interneurons. Nat Neurosci. 3 (4), 366-371 (2000).
  25. Feldmeyer, D., Lubke, J., Silver, R. A., Sakmann, B. Synaptic connections between layer 4 spiny neurone-layer 2/3 pyramidal cell pairs in juvenile rat barrel cortex: physiology and anatomy of interlaminar signalling within a cortical column. J Physiol. 538 (Pt 3), 803-822 (2002).
  26. Feldmeyer, D., Lubke, J., Sakmann, B. Efficacy and connectivity of intracolumnar pairs of layer 2/3 pyramidal cells in the barrel cortex of juvenile rats). J Physiol. 575 (Pt 2), 583-602 (2006).
  27. Helmstaedter, M., Staiger, J. F., Sakmann, B., Feldmeyer, D. Efficient recruitment of layer 2/3 interneurons by layer 4 input in single columns of rat somatosensory cortex). J Neurosci. 28 (33), 8273-8284 (2008).
  28. Oertner, T. G., Sabatini, B. L., Nimchinsky, E. A., Svoboda, K. Facilitation at single synapses probed with optical quantal analysis. Nat Neurosci. 5 (7), 657-664 (2002).
  29. Koester, H. J., Johnston, D. Target cell-dependent normalization of transmitter release at neocortical synapses. Science. 308 (5723), 863-866 (2005).
  30. Markram, H., Lubke, J., Frotscher, M., Sakmann, B. Regulation of synaptic efficacy by coincidence of postsynaptic APs and EPSPs. Science. 275 (5297), 213-215 (1997).
  31. Egger, V., Feldmeyer, D., Sakmann, B. Coincidence detection and changes of synaptic efficacy in spiny stellate neurons in rat barrel cortex. Nat Neurosci. 2 (12), 1098-1105 (1999).
  32. Eggermann, E., Feldmeyer, D. Cholinergic filtering in the recurrent excitatory microcircuit of cortical layer 4. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (28), 11753-11758 (2009).
  33. Feldmeyer, D., van Aerde, K. I., Qi, G. . Society for Neuroscience. , 335.313 (2012).
  34. Radnikow, G., Gunter, R. H., Marx, M., Feldmeyer, D., Fellin, T., Halassa, M. . Neuronal Network Analysis : Concepts and Experimental Approaches. 67, 405-431 (2012).
  35. Feldmeyer, D., Egger, V., Lubke, J., Sakmann, B. Reliable synaptic connections between pairs of excitatory layer 4 neurones within a single ‘barrel’ of developing rat somatosensory cortex. J Physiol. 521 (Pt 1), 169-190 (1999).
  36. Koelbl, C., Helmstaedter, M., Lubke, J., Feldmeyer, D. A Barrel-Related Interneuron in Layer 4 of Rat Somatosensory Cortex with a High Intrabarrel Connectivity). Cereb Cortex. , (2013).
  37. Marx, M., Gunter, R. H., Hucko, W., Radnikow, G., Feldmeyer, D. Improved biocytin labeling and neuronal 3D reconstruction. Nat Protoc. 7 (2), 394-407 (2012).
  38. Biro, A. A., Holderith, N. B., Nusser, Z. Release probability-dependent scaling of the postsynaptic responses at single hippocampal GABAergic synapses. J Neurosci. 26 (48), 12487-12496 (2006).
  39. Huang, C. H., Bao, J., Sakaba, T. Multivesicular release differentiates the reliability of synaptic transmission between the visual cortex and the somatosensory cortex. J Neurosci. 30 (36), 11994-12004 (2010).
  40. Helmstaedter, M., et al. Connectomic reconstruction of the inner plexiform layer in the mouse retina. Nature. 500 (7461), 168-174 (2013).
  41. Oberlaender, M., et al. Cell type-specific three-dimensional structure of thalamocortical circuits in a column of rat vibrissal cortex. Cereb Cortex. 22 (10), 2375-2391 (2012).
  42. Dantzker, J. L., Callaway, E. M. Laminar sources of synaptic input to cortical inhibitory interneurons and pyramidal neurons. Nat Neurosci. 3 (7), 701-707 (2000).
  43. Schubert, D., et al. Layer-specific intracolumnar and transcolumnar functional connectivity of layer V pyramidal cells in rat barrel cortex. J Neurosci. 21 (10), 3580-3592 (2001).
  44. Schubert, D., Kotter, R., Zilles, K., Luhmann, H. J., Staiger, J. F. Cell type-specific circuits of cortical layer IV spiny neurons. J Neurosci. 23 (7), 2961-2970 (2003).
  45. Schubert, D., Kotter, R., Luhmann, H. J., Staiger, J. F. Morphology, electrophysiology and functional input connectivity of pyramidal neurons characterizes a genuine layer va in the primary somatosensory cortex. Cereb Cortex. 16 (2), 223-236 (2006).
  46. Yoshimura, Y., Dantzker, J. L., Callaway, E. M. Excitatory cortical neurons form fine-scale functional networks. Nature. 433 (7028), 868-873 (2005).
  47. Yoshimura, Y., Callaway, E. M. Fine-scale specificity of cortical networks depends on inhibitory cell type and connectivity. Nat Neurosci. 8 (11), 1552-1559 (2005).
  48. Shepherd, G. M., Svoboda, K. Laminar and columnar organization of ascending excitatory projections to layer 2/3 pyramidal neurons in rat barrel cortex. J Neurosci. 25 (24), 5670-5679 (2005).
  49. Bureau, I., von Saint Paul, F., Svoboda, K. Interdigitated paralemniscal and lemniscal pathways in the mouse barrel cortex. PLoS Biol. 4 (12), e382 (2006).
  50. Petreanu, L., Huber, D., Sobczyk, A., Svoboda, K. Channelrhodopsin-2-assisted circuit mapping of long-range callosal projections. Nat Neurosci. 10 (5), 663-668 (2007).
  51. Petreanu, L., Mao, T., Sternson, S. M., Svoboda, K. The subcellular organization of neocortical excitatory connections. Nature. 457 (7233), 1142-1145 (2009).
  52. Adesnik, H., Scanziani, M. Lateral competition for cortical space by layer-specific horizontal circuits. Nature. 464 (7292), 1155-1160 (2010).
  53. Molnar, Z., Cheung, A. F. Towards the classification of subpopulations of layer V pyramidal projection neurons. Neurosci Res. 55 (2), 105-115 (2006).
  54. Doyle, J. P., et al. Application of a translational profiling approach for the comparative analysis of CNS cell types. Cell. 135 (4), 749-762 (2008).
  55. Brown, S. P., Hestrin, S. Intracortical circuits of pyramidal neurons reflect their long-range axonal targets. Nature. 457 (7233), 1133-1136 (2009).
  56. Groh, A., et al. Cell-type specific properties of pyramidal neurons in neocortex underlying a layout that is modifiable depending on the cortical area. Cereb Cortex. 20 (4), 826-836 (2010).
  57. Brown, S. P., Hestrin, S. Cell-type identity: a key to unlocking the function of neocortical circuits. Curr Opin Neurobiol. 19 (4), 415-421 (2009).

Play Video

Cite This Article
Qi, G., Radnikow, G., Feldmeyer, D. Electrophysiological and Morphological Characterization of Neuronal Microcircuits in Acute Brain Slices Using Paired Patch-Clamp Recordings. J. Vis. Exp. (95), e52358, doi:10.3791/52358 (2015).

View Video