Summary

Et kirurgisk inngrep for Resecting Mouse Rib: En modell for Large-Scale Long Bone Repair

Published: January 21, 2015
doi:

Summary

The overall goal of this procedure is to successfully resect a portion of bone from the rib of a mouse. The procedure was developed as a model to study large-scale long bone repair.

Abstract

Denne protokollen introduserer forskere til en ny modell for storskala bein reparasjon utnytte musen rib. Fremgangsmåten beskriver følgende: fremstilling av dyret etter kirurgi, åpning av thorax kroppsveggen, utsette den ønskede ribbe fra de omkringliggende interkostalrom muskler, excising den ønskede delen av ribben uten å indusere en pneumothorax, og lukker snittene. Sammenlignet med bein av appendicular skjelett, ribbeina er svært tilgjengelig. I tillegg er det ikke nødvendig med intern eller ekstern fiksaturen siden de tilstøtende ribber gir en naturlig fiksering. Operasjonen bruker kommersielt tilgjengelige forsyninger, er grei å lære, og godt tolerert av dyret. Fremgangsmåten kan utføres med eller uten å fjerne den omgivende periosteum, og således bidrag av periosteum til reparasjon kan vurderes. Resultatene tyder på at hvis periosteum bibeholdes, oppstår robust reparasjon i 1 – 2 måneder. Vi forventer at bruken av denne protokollen vilstimulere forskning på rib reparasjon og at funnene vil lette utviklingen av nye måter å stimulere bein reparasjon i andre steder rundt om i kroppen.

Introduction

Ødeleggende skjelettskader, kronisk slitasjegikt, og de alvorlige problemene forbundet med rekonstruktiv kirurgi påvirke økonomisk produktivitet, familie trivsel og livskvalitet. Mens små pauser og lesjoner kan helbrede ganske godt, mennesker er ikke i stand til å reparere store defekter og derfor må stole på rekonstruktiv prosedyrer for å gjenopprette struktur og funksjon. Rekonstruksjon kan innebære allogene eller heterogeneic grafts, morcellized bein, implanterte stillas, eller distraksjon Osteogensesis. Dessverre, ikke bare er det vedvarende sykelighet faktorer assosiert med disse behandlingene, men den opprinnelige styrken av reparert benet er sjelden oppnådd. Dermed er nye kliniske tilnærminger nødvendig.

En måte å utvikle innovative metoder for å behandle segmentfeil er å studere situasjoner der storskala reparasjon forekommer naturlig. Amfibier famously kan regenerere skjelettelementer, mens pattedyr anses begrenset i ther evne. Men siden begynnelsen av det 20. århundre, noen få rapporter om gjenfødelse i menneske ribbe har blitt publisert som tyder på at mennesker ikke kan være så begrenset 1-4. Foreløpig er dette fenomenet er best kjent av plastiske kirurger som bruker rib materiale for kjeve, ansikt og øre gjenoppbygging, men det er ikke mer bredt verdsatt fem. For å studere dette reparasjon i mer detalj, har vi utviklet en kirurgisk modell ved hjelp av musen. Ved hjelp av denne protokollen, kan forskere identifisere de medfødte faktorer involvert og bruke denne informasjonen til å legge til rette for skjelett healing i andre steder.

Det er mange fordeler med å bruke ribbeina som en modell for å studere skjelett reparasjon. Først de omkringliggende ribber gir en naturlig fiksatur (sammenlignet med reseksjon av lårbenet 6,7). Dette reduserer sykelighet risikoen for interne og eksterne fixators og forenkler den kirurgiske prosedyren. Dernest de tynne muskel lag av bryst wall sørge for enkel tilgang og god sikt som gjør analysen sammenlignes med den praktiske calvarial resections 8. For det tredje, i motsetning til den calvariae som dannes ved intramembranøse ossifikasjon, ribbene form ved endochondral ossifikasjon og vokser i lengde via forlengelse på vekstplater plassert på hver ende av en sentral diaphysis. Derfor kan reparasjon av ribbeina være mer sammenlignbare med reparasjon av de lange bein i appendicular skjelett. Videre har vi funnet at i forhold til femur, er periosteum av ribben tykkere og lettere kan manipuleres. Således kan undersøkere som ønsker å analysere benreparasjon i den hensikt å studere periosteum eller testing av celleterapier, farmakologiske midler, og / eller vev stillasene finner kirurgisk modell anvendelige. Oppsummert gir denne rib reseksjon modellen en sammenheng som å studere naturlige storskala benreparasjon i pattedyr som ingen slik modell i alminnelig bruk for øyeblikket eksisterer.

Protocol

MERK: Alle prosedyrer er i samsvar med et dyr protokoll godkjent av Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC) ved University of Southern California. 1. Forberedelse til kirurgi Legg ut de nødvendige kirurgiske verktøy og rekvisita (sterilisert, elementer 1 – 18 i Materials liste) og arrangere en disseksjonsmikroskop og en fiberoptikk trans-lyset i en hette eller på en downdraft tabellen. Plasser en kjønnsmoden mus (20 – 30 g, 1 – 3 måneder…

Representative Results

Dyr vanligvis gjenopprette raskt fra denne prosedyren, snittet helbreder godt, og dyrene utviser normal atferd. Fremgangsmåten bruker kommersielt tilgjengelige forsyninger og etter trening, kan være ferdig på under 1 time. Før bruk av denne fremgangsmåten for å generere eksperimentelle data, er det viktig å analysere reseksjon på dag 0 tidspunkt for å bestemme om eventuelle store beinfragmenter kan forbli innenfor reseksjon sonen. En måte å vurdere riktig prosedyre er å vurdere dyrene ved X-ray eller microCT…

Discussion

Når først lære denne protokollen, bestemme hvor du skal finne den første innsnitt kan være utfordrende. Men praksis på avlives mus hjelper kirurgen lære hvor du skal plassere den første innsnitt og utsette den ønskede ribben skal resected. Arbeider på kadavre forbedrer også fin-motoriske ferdigheter som kreves for å fjerne rib del med eller uten periosteum. I tillegg kan noen nye til denne prosedyren finne manipulere de fine verktøy og tynne sting for å være vanskelig. Mens binde av, overskudd trekke i su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank members of the Mariani lab for critical reading of the manuscript. Our funding sources were: the Baxter Medical Scholar Research Fellowship (to M.K.S.), USC undergraduate fellowships and the Provost, Dean Joan M. Schaeffer, and Rose Hills Fellowships, (to M.K.S.). We also acknowledge a CIRM BRIDGES fellowship through Pasadena City College (to T.T.T). and the James H. Zumberge Research and Innovation Fund, the USC Regenerative Medicine Initiative, and the NIAMS NIH under Award Number R21AR064462 (to F.V.M).

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Medium sized micro-dissection scissors (Vannas-Tübingen Spring Scissors 5 mm) Fine Science Tools 15003-08
Fine micro-dissection scissors (Vannas Spring Scissors – 2mm Cutting Edge) Fine Science Tools 15000-04 curved tip is beneficial
Micro-scalpel 5.0 mm Fine Science Tools 10315-12 other fine scalpels can be substituted
Dumont 55 forceps Fine Science Tools 11295-51
Retractor  Fine Science Tools 17004-05 adjustability is convenient
Micro-needle holders Fine Science Tools 12060-01
9.0 nylon sutures (Ethilon), taper point best Ethicon 2819G or similar taper point best but reverse cutting is also good
7.0 prolene sutures (Prolene) Ethicon 8700H or similar 6-0 can be used too, needle point can vary
Large forceps (Adson Forceps) Fine Science Tools 11006-12 other brands are fine
Lubricant Eye Ointment (Akwa Tears) Akorn 17478-062-35
Suture glue (GLUture Topical Tissue Adhesive) Abbot 32046-01 has excellent working time
Shaver Wahl 9918-6171 or similar
Clamp lamp Zoo Med LF-5
Infrared Bulb, 75W Zoo Med RS-75
RC2 Rodent Anesthesia System VetEquip  922100
IsoFlo (Isoflurane) Abbot 05260-05
Buprenorphine (Buprenex) Reckitt Benckiser 12496-0757-1
Betadine Purdue Frederick 67618015017
Flavored Gelatin, raspberry Jell-O B000E1FYL0 made up firm, to the consistency of 'jigglers'

References

  1. Philip, S. J., Kumar, R. J., Menon, K. V. Morphological study of rib regeneration following costectomy in adolescent idiopathic scoliosis. Eur Spine J. 14 (8), 772-776 (2005).
  2. Munro, I. R., Guyuron, B. Split-rib cranioplasty. Ann Plast Surg. 7 (5), 341-346 (1981).
  3. Taggard, D. A., Menezes, A. H. Successful use of rib grafts for cranioplasty in children. Pediatric neurosurgery. 34 (3), 149-155 (2001).
  4. Head, J. R. Prevention of Regeneration fo the Ribs: A problem in thoracic surgery. Archives of Surgery. 14 (6), 1215-1221 (1927).
  5. Kawanabe, Y., Nagata, S. A new method of costal cartilage harvest for total auricular reconstruction: part I. Avoidance and prevention of intraoperative and postoperative complications and problems. Plastic and reconstructive surgery. 117 (6), 2011-2018 (2006).
  6. Cheung, K. M., et al. An externally fixed femoral fracture model for mice. Journal of orthopaedic research : official publication of the Orthopaedic Research Society. 21 (4), 685-690 (2003).
  7. Matthys, R., Perren, S. M. Internal fixator for use in the mouse. Injury. 40, S103-S109 (2009).
  8. Cooper, G. M., et al. Testing the critical size in calvarial bone defects: revisiting the concept of a critical-size defect. Plastic and reconstructive surgery. 125 (6), 1685-1692 (2010).
  9. . Ask the Vet. JAX NOTES. 499, (2005).
  10. Flecknell, P. A., Roughan, J. V., Stewart, R. Use of oral buprenorphine (‘buprenorphine jello’) for postoperative analgesia in rats–a clinical trial. Laboratory animals. 33 (2), 169-174 (1999).
  11. Rigueur, D., Lyons, K. M. Whole-mount skeletal staining. Methods in molecular biology. 1130, 113-121 (2014).
  12. Evans, D. J. Contribution of somitic cells to the avian ribs. Developmental biology. 256 (1), 114-126 (2003).
  13. Colnot, C., Thompson, Z., Miclau, T., Werb, Z., Helms, J. A. Altered fracture repair in the absence of MMP9. Development. 130 (17), 4123-4133 (2003).
  14. Lu, C., et al. Cellular basis for age-related changes in fracture repair. Journal of orthopaedic research : official publication of the Orthopaedic Research Society. 23 (6), 1300-1307 (2005).
  15. Zilberman, Y., Gafni, Y., Pelled, G., Gazit, Z., Gazit, D. Bioluminescent imaging in bone. Methods in molecular biology. 455, 261-272 (2008).
  16. Pelled, G., Gazit, D. Imaging using osteocalcin-luciferase. Journal of musculoskeletal. 4 (4), 362-363 (2004).
  17. Elefteriou, F., Yang, X. Genetic mouse models for bone studies–strengths and limitations. Bone. 49 (6), 1242-1254 (2011).
  18. Srour, M. K., et al. Natural large-scale regeneration of rib cartilage in a mouse. J. Bone Miner. , (2014).

Play Video

Cite This Article
Tripuraneni, N., Srour, M. K., Funnell, J. W., Thein, T. Z. T., Mariani, F. V. A Surgical Procedure for Resecting the Mouse Rib: A Model for Large-Scale Long Bone Repair. J. Vis. Exp. (95), e52375, doi:10.3791/52375 (2015).

View Video