Summary
이 원고는 신진 효모 사카로 마이 세스 세레 비지에, sumoylation 및 동원체 단백질, Ndc10 및 Ndc80의 유비퀴틴의 검출에 대해 설명합니다.
Abstract
이러한 인산화, 메틸화, 아세틸 화, 유비퀴틴 및 sumoylation 같은 번역 후 변형 (PTMS)는, 많은 단백질의 세포 기능을 조절한다. 센트로 DNA와 연관 동원체 단백질의 PTMS는 유전체의 안정성을 유지하기 위해 충실한 염색체 분리를 중재. 같은 질량 분석 및 웨스턴 블롯 분석과 같은 생화학 적 접근 방법이 가장 일반적으로 PTMS의 식별을 위해 사용된다. 여기서, 단백질의 정제 방법은, 사카로 마이 세스 세레 비지에 동원체 단백질 Ndc10 및 Ndc80의 sumoylation 및 유비퀴틴 양쪽의 검출을 허용하는 기술된다. Ndc10 Myc와 - 태그 또는 Ndc80가 건설하고 우리의 연구에 사용 된 표현 폴리 히스티딘 플래그 태그가 Smt3 (HF-Smt3) 및 변형. sumoylation의 검출을 위해, 우리는 니켈 비드를 사용하여 자신 태깅 sumoylated 단백질을 정제 친화력 프로토콜을 고안 sumoylated Ndc10 A를 검출하기 위해 항 - 나 Myc 항체로 웨스턴 블롯 분석을 이용ND Ndc80. 유비퀴틴의 검출을 위해, 우리는 Myc와 태그가 단백질의 면역을위한 프로토콜을 고안 Ndc10과 Ndc80이가 도처 것을 보여 방지 UB 항체와 웨스턴 블롯 분석을 사용했다. 우리의 결과는 그의 플래그에 대한 관심의 에피토프 태그 단백질이 Smt3 변형 여러 PTMS의 검출을 용이하게 태그를 보여줍니다. 앞으로의 연구는이 기술의 개발은 특정 PTM에 의존 단백질 상호 작용을 식별하고 특성화 할 수 있도록해야한다.
Introduction
각각 표적 단백질에 (S. cerevisiae의 1 Smt3 SUMO) 유비퀴틴과 sumoylation는 유비퀴틴과 작은 유비퀴틴 같은 수정의 활용을 할 수 있습니다. 동원체 단백질 PTMS 충실한 염색체 분리를 보장하기 위해 상이한 세포주기 단계에서 자신의 세포 수준 및 단백질 - 단백질 상호 작용에 영향을 미친다. 예를 들어, Cse4 / CENP-A 및 외부 동원체 단백질 Dsn1의 세포 수준 게놈 안정성 2-5을 보장하기위한 유비퀴틴 매개 단백질 분해에 의해 조절된다. 잘못된 동원체 - 미세 소관 첨부 불안정 직접 미세 소관 6-8과 상호 작용 Dam1과 Ndc80 단지를 인산화 Ipl1 / 오로라 B 키나제가 필요합니다. 일흔을 통해 동원체 단백질의 확인에도 불구하고, PTMS, 예를 들어, 유비퀴틴과 SUMO 이러한 단백질의 변형을 조사 거의 연구가있다. 주요한 제한은 PTM을 보존하는 능력이다정화 및 sumoylation, 인산화, 메틸화, 등과 같은 PTMS의 검출을위한 사용자 정의 항체의 소수 중의. sumoylated 동원체 단백질의 특성은 Ndc10, Cep3는 Bir1 및 Ndc80 사용자 정의 항체 (9)를 이용했다. 또한 Ndc10 유비퀴틴은 10 기재로서 연루되어왔다. 인간 Hec1 (S. cerevisiae의에서 Ndc80)도 APC / C-hCdh1 E3 리가 아제 (11)에 의해 규제, 유비퀴틴 화를 위해 기판이다. 따라서, Ndc10 및 Ndc80는 S.에서 sumoylation 및 유비퀴틴을 모두 감지 할 수있는 프로토콜의 최적화를위한 좋은 후보입니다 cerevisiae의.
sumoylation의 식별을 용이하게하기 위해, 우리는 HF-Smt3 및 Myc와 태그가 Ndc10 또는 Ndc80을 표현 균주를 건설했다. 에피토프 태그 (HF :을 His6-FLAG)의 사용으로 인해 자주 후보 단백질에 대해 발생하는 폴리 클로 날 혈청에서 관찰되고 교차 반응의 배경을 최소화한다. 우리는 선호도와 프로토콜을 고안HF-Smt3 접합체를 정제 한 다음 정제 Smt3 제제 sumolyated Ndc10 및 Ndc80의 존재를 검출하기 위해 상업적 방지 플래그 및 안티 나 Myc 항체를 사용 하였다. 유비퀴틴을 위해, 우리는 Myc와 태그가 동원체 단백질의 유비퀴틴 화를 보존하는 변형 된 면역 프로토콜을 고안 Ndc10과 Ndc80의 유비퀴틴 화를 감지하는 상업 항 UB 항체로 웨스턴 블롯 분석을 수행 하였다.
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Protocol
효모 세포의 성장 (1)
- 작은 플라스크에 YPD (표 1) 30 ㎖에 효모 세포를 접종한다. 진탕 30 ℃에서 밤새 품어.
- YPD 50ml에 600 나노 미터 (600 OD = 0.2)에서 0.2의 광학 밀도로 세포를 희석하고, 진탕하면서 30 ℃에서 배양한다.
- 600 nm의 (OD 600 = 1.0)에서 1.0의 광학 밀도 문화를 성장.
- 원심 분리기 세포 2,000 XG에 5 분 동안 상층 액을 버린다.
- 세포를 세척 2000 XG에서 5 분 동안 40 ml의 멸균 원심에서 세포 펠렛을 재현 탁. 뜨는을 취소하고 -20 ℃에서 세포 펠렛을 저장합니다.
단백질 2. 추출
- 또는 니켈의 superflow NTA 비드를 사용 풀다운 분석 용 빙냉 구아니딘 완충액 (표 1) 0.5 ㎖ 중의 재현 탁 세포 면역에 대한 A (표 1) 버퍼. 항상 얼음에 튜브를 유지합니다.
- 2m로 이동L 스크류 캡 튜브.
- 유리 구슬의 동일한 볼륨 (자료 표)를 추가합니다.
- 다음 2 ~ 3 분 동안 얼음에 배치, 실온에서 2 분 동안 미니 비드 비터의 셀 (자료 표)를 구슬은-이겼다. 이 세 번 반복합니다.
- 30 ~ 60 분 동안 4 ℃에서 고속에 소용돌이. 세포가 용해되어 있는지 확인하기 위해 현미경으로 시각화하여 세포를 확인합니다.
참고 : 용균 세포는 어두운 유령을 표시하고 경계 또는 정의 된 모양이 부족합니다. 최적의 셀의 적어도 80 %를 용해한다. - 15ml의 원뿔형 튜브 (스크류 캡이 느슨 함) 컬렉션에 푸시 핀과 장소를 이용하여 튜브의 바닥에 구멍을 천공.
- 해물를 수집하기 위해 1 분 동안 1,000 XG에 원심 분리기.
- 마이크로 원심 분리기 튜브에 해물을 전송합니다.
- 4 ℃에서 30 분 동안 15,000 XG에 원심 분리기는 추출 된 단백질을 수집합니다.
- ASSA 단백질을 사용하여 추출 된 단백질의 농도를 측정Y 키트 (자재 표)과 모든 추출물을 정상화는 동일한 양의 단백질을 함유한다. 적절한 버퍼 1 ml의에 총 볼륨을 가져 오십시오.
참고 : 총 단백질의 약 5 mg의 50 OD 600 세포로부터 얻어진다. - 전체 세포 추출물 (WCE)와 같은 (2.10 단계에서 추출 된 총 단백질은 5 mg의 경우 250 μg의 단백질) 50 μl를 저장합니다. 배 램 믈리 시료 완충액 (표 1) 50 μl를 첨가하고 3-5 분 동안 가열 블록에서 100 ° C에서 배양한다. 로드 웨스턴 블롯 분석 (5 절 : 웨스턴 블롯 분석)에 대한 SDS-PAGE 젤의 각 샘플의 10 μL.
HF-Smt3 복합체 3. 정제
- 실험 1 분간 저속 원심 분리 (800-1,500 XG)에 의해 (샘플 당 구슬 100 ㎕)에 필요한 니켈 NTA의 superflow 비즈 (재료 표)를 얻습니다. 상층 액을 제거합니다.
- 워시 비즈 PBS (자료 표)의 1 ml의 5 배 : 반전 최고의 오버구슬이 재현 탁 될 때까지 바닥, 저속 원심 분리하여 구슬을 수집하고 뜨는을 제거합니다.
- 구아니딘 완충액 (표 1) 1 ㎖에 비드를 일시 및 처리 대상에 대응하는 샘플 튜브의 개수로 나누어지는. 저속 원심 분리하여 구슬을 수집하고 뜨는을 제거합니다. 상단을 통해 반전 바닥에서 잘 구슬을 섞는다.
참고 : 상단 오버 바닥을 반전 잘 구슬을 섞는다. - 니켈 NTA의 superflow 구슬 100 μL에 각 샘플의 경우, (단백질의 추출 단계 2.11에서) 나머지 WCE의 950 μl를 추가합니다.
- 적어도 4 시간 또는 밤새 4 ℃에서 흔들 플랫폼에 품어.
- 4 ℃에서 1 분 800-1,500 XG에 원심 분리기.
- 상층 액 (삭제) 50 μl를 저장합니다. 배 램 믈리 시료 완충액 50 μl를 첨가하고 3-5 분 동안 가열 블록에서 100 ° C에서 배양한다. 로드 웨스턴 블롯 분석 (제 5 SDS-PAGE 젤의 각 샘플의 10 μL : 웨스턴 블롯 항문이 Analysis).
- 락을 플랫폼에 한 번 5 ~ 10 분 동안 구아니딘 버퍼 1 ml의 씻을 구슬.
- 워시 비즈 락 플랫폼에서 5 ~ 10 분 동안 버퍼 (표 1)을 깨고 1 ml의 5 배.
- 배 램 믈리 샘플 버퍼의 90 μL에 재현 탁 구슬.
- 1 M 이미 다졸의 10 μl를 추가합니다.
참고 : 이미 다졸 인해 이미 다졸과 구슬 사이의 경쟁의 상호 작용에 니켈 NTA 비즈에서 그의 태그가 단백질을 해리하는 데 도움이됩니다. - 3-5 분간 가열 블록에서 100 ° C에서 인큐베이션.
- 소용돌이, 다음 30 초 동안 13,000 XG에 원심 분리기. 새로운 튜브에 뜨는을 전송합니다.
- (: 웨스턴 블롯 분석 제 5 절) 웨스턴 블롯 분석을위한 SDS-PAGE 젤에서 각 샘플의 부하 10 ~ 20 μL.
주 : WCE 5mg을 사용하는 경우는 10 ~ 20 μL, 0.5-1.0 mg의 입력에 대응한다.
Myc와 태그가 동원체 단백질 4. 면역 침전
- 반 C-Myc와 아가 로스 친 화성 젤을 구하는tibody (자료 표) 저속 원심 분리 (800-1,500 XG)에 의한 실험 (샘플 당 수지 25 μL)에 필요한. 상층 액을 제거합니다.
- 버퍼 1 ml의 씻을 수지 5 배 : 수지가 재현 탁 될 때까지 반전 최고의 오버 바닥, 저속 원심 분리하여 수지를 수집하고, 상층 액을 제거합니다.
- 완충액 1 ㎖에서 수지를 일시 및 처리 대상에 대응하는 샘플 튜브의 개수로 나누어지는. 저속 원심 분리하여 수지를 수집하고, 상층 액을 제거합니다.
참고 : 위 이상 바닥을 반전 아니라 수지를 섞는다. - 수지의 25 μL에 : (단백질의 추출 단계 2.11에서) 나머지 WCE의 950 μl를 추가합니다.
- 4 ° C에서 하룻밤 흔들 플랫폼에 품어.
- 4 ℃에서 1 분 800-1,500 XG에 원심 분리기.
- 상층 액 (삭제) 50 μl를 저장합니다. 배 램 믈리 시료 완충액 50 μl를 첨가하고 3-5 분 동안 가열 블록에서 100 ° C에서 배양한다. 소호광고 웨스턴 블롯 분석을위한 SDS-PAGE 젤 (5 절 : 웨스턴 블롯 분석)에서 각 샘플의 10 μL.
- 버퍼 1 ml의 씻을 수지 5 배 : 수지가 재현 탁 될 때까지 반전 최고의 오버 바닥, 저속 원심 분리하여 수지를 수집하고, 상층 액을 제거합니다.
- SUMEB 샘플 완충액 (표 1) 100 ㎕에 재현 탁 수지.
참고 : SUMEB 샘플 버퍼가 8 M 우레아 1 % SDS (강한 변성 조건)가 포함되어 있습니다. - 3-5 분간 가열 블록에서 100 ° C에서 인큐베이션.
- 소용돌이, 다음 30 초 동안 13,000 XG에 원심 분리기. 새로운 튜브에 뜨는을 전송합니다.
- (: 웨스턴 블롯 분석 제 5 절) 웨스턴 블롯 분석을위한 SDS-PAGE 젤에서 각 샘플의 부하 10 ~ 20 μL.
주 : WCE 5mg을 사용하는 경우는 10 ~ 20 μL, 0.5-1.0 mg의 입력에 대응한다.
5. 웨스턴 블롯 분석
- 4~12% 비스 - 트리스 젤 (자료 표)와 반환 한의 단백질 추출물을로드ORM 전기는 90 분 동안 120 V에서 (버퍼를 실행 : 자료 표).
- 90 분 (: 자재 표 전송 버퍼)에 대해 30 V로 전송 장치를 이용하여 니트로 셀룰로오스 막 (자재 표)로 겔로부터 단백질을 옮긴다.
- 실온에서 1 시간 동안 5 % 우유 / 1X TBST (표 1)에서 막을 차단.
- 5 % 우유 / 1X TBST 밤새 4 ° C가 차 항체 (자료 표)와 멤브레인을 품어. 1,000 (안티 - 플래그 및 안티 UB 항체) 또는 1 : 5,000 (안티 - Myc와 항체) 일차 항체를 들어, 1의 희석을 사용합니다.
- 1X TBST 10 분마다 막 배를 씻으십시오.
- 실온에서 1 시간 동안 5 % 우유 / 1X TBST에서 이차 항체 (자재 도표)와 함께 막을 인큐베이션. 이차 항체의 5,000 희석 : 1을 사용합니다.
- 1X TBST 10 분마다 막 배를 씻으십시오.
- ECL 가공용으로 멤브레인을 품어NG 용액 (자료 표) 5 분.
- 블루 민감한 X 선 필름 막 (자료 표)를 노출 및 자동 개발자 (자료 표)를 사용하여 개발할 수 있습니다.
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Representative Results
이전에 설명 된대로 9,12- 동원체 단백질과 Ndc80 Ndc10의 sumoylation을 검출하도록, HF-Myc와 Smt3 및 태깅 동원체 단백질 (또는 Ndc80 Ndc10)와 균주 (표 2)를 구성 하였다. HF-Smt3 접합체 친화력의 Ni-NTA 비드를 사용하여 정제 하였다. HF-Smt3 (그림 1A와 1B, 왼쪽 패널)없이 제어 변형에 결석했다 스모 기판의 sumoylated 형태의 안티 - 플래그 항체 허용 감지와 정제 HF-Smt3의 웨스턴 블롯 분석. 예상대로, 스모 기판의 여러 형태는 HF-Smt3 변형 검출되었다. Ndc80과 Ndc10이 방지 Myc와 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 수행하여 정제 HF-Smt3 복합체에 존재하는 경우에 우리는 다음 결정. Ndc80 Ndc10 또는보다 높은 분자량이었다 다중 대역 명확 (도 1A 및 1B, 우측 판넬)을 검출 하였다. 또한, Ndc80과 Ndc10 모두의 다중 대역nocodazole 처리 된 세포 (도 1C 및 1D)가 감소 하였다. 이러한 결과는 이전에 9 바와 같이 단백질 정제 및 웨스턴 블롯 분석, 여기에 설명 Ndc80과 Ndc10의 sumoylation의 검출을 할 수 있음을 보여줍니다.
Ndc80과 Ndc10의 유비퀴틴 검색하려면 Ndc80 또는 Ndc10가 (IP)을 면역했다 Myc와를-태그 및 웨스턴 블롯 분석을 방지 Myc와 안티 UB 항체 (그림 2)를 수행 하였다. 전체 세포 추출물 (WCE) 상층 액 (SUP) 분석 및 Ndc80-Myc와 Ndc10-Myc와 (도 2a)의 발현을 확인 하였다. WCE에 저 분자량 밴드는 분해 산물을 나타낼 수있다. 항 Myc와 함께 프로브 IP 샘플 Ndc80 및 Ndc10 PTMS가 포함될 것을 시사 여러 고 분자량 밴드를 보여 주었다. 안티 UB 항체로 프로빙 IP 샘플 분절 패턴과 Ndc80 Ndc10가 도처이되는 것으로 나타났다 (도 2A, α-UB). Ndc80 및 Ndc10의 분절 패턴은 더이 밴드는 폴리 ubiqutination을 나타내는 것을 확인, 프로 테아 좀 억제제 (MG132) (그림 2B, α-UB)와 치료에 의해 강화되었다. 대표 결과 Ndc80과 Ndc10 모두 S.에서 sumoylation 및 유비퀴틴 용 기판이라는 것을 공개 cerevisiae의 및 설명 단백질 정제 방법은 sumoylation과 유비퀴틴 같은 PTMS의 검출에 유용 것을. 우리의 지식에 따르면,이 미의 Ndc80 그 첫 번째 보고서입니다 인간 상동 Hec1의 유비퀴틴 매개 단백질 분해 이전에 11을 발표했지만 cerevisiae의는 유비퀴틴 화를위한 기판이다.
그림 1 : sumolyated 기판의 정제 스모 기판 등의 동원체 단백질 Ndc80과 Ndc10의 식별을 할 수 있습니다 잠을.oteins는 추출 및 HF-Smt3 복합체는 SDS-PAGE 분리 후 준비 및 웨스턴 블롯 분석에 의해 분석 하였다. (A와 B) Ndc80 및 Ndc10는 sumoylated된다. 단백질은 YPD에서 대수적으로 성장 세포로부터 추출 하였다. 왼쪽 패널 : 총 스모 기판을 방지 플래그 항체 검출되었다. 오른쪽 패널 : 안티 - Myc와 항체 탐색 할 때 Sumoylated Ndc80 또는 Ndc10은 HF-Smt3 접합체에서 검출되었다. Ndc80과 Ndc10의 (C와 D) Sumoylation는 nocodazole 처리 한 세포에서 감소한다. (-) 대수 YPD에서 성장하는 세포가 DMSO로 처리 또는 DMSO + / ㎖ nocodazole (+) 30 ℃에서 2 시간 동안 20 μg의. HF-Smt3 접합체 방지 나 Myc 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석에 의해 분석 하였다. 사용 동종 효모 균주 (A와 C) YPH1800 (Ndc80-Myc와), YMB7862 (그의-FLAG-SMT3 Ndc80-Myc와)와 (B와 D) YPH1734 (Ndc10-Myc와), YMB7867 (그의-플로리다 있습니다AG-SMT3 Ndc10-Myc와).
그림 2 :. 프로토콜에 설명 된대로 동원체 단백질 Ndc80 및 단백질과 면역의 Ndc10 추출의 유비퀴틴을 실시 하였다. () Ndc80 및 Ndc10이가 도처에있다. 단백질은 YPD에서 대수적으로 성장 세포로부터 추출 하였다. 전체 세포 추출물 (WCE), 상청 (SUP)과 면역 침전 (IP) 분획을 SDS-PAGE를 실시 하였다. 웨스턴 블롯을 각각 항 및 항 Myc와 항체와 UB-Myc와 태그가 도처 및 단백질을 검출하기 위해 사용 하였다. Ndc80과 Ndc10의 (B) 유비퀴틴이 프로 테아 좀 억제제 MG132로 처리 한 세포에서 강화된다. (-) YPD에서 대수적으로 성장하는 세포는 DMSO로 처리 또는 DMSO (13)는 이전에 설명을 30 ° C에서 3 시간 동안 0.003 % SDS의 존재 하에서 50 μM + MG132 (+)로
| 해결책 | 구성 요소들 |
| YPD | 1 % 효모 추출물, 2 % 박토 - 펩톤, 2 % 글루코스 |
| 구아니딘 버퍼 | 0.1 M 트리스 -HCl pH가 8.0, 6 M 구아니딘 클로라이드, 0.5 M의 NaCl |
| 버퍼 | 50mM 트리스 - 염산 pH를 7.5의 50 mM의 NaCl, 0.2 % 트리톤 X-100, 1X 프로테아제 억제제 |
| 속보 버퍼 | pH가 8.0, 0.1 M 트리스 -HCl, 20 % 글리세롤, 1mM의 PMSF |
| SUMEB 샘플 버퍼 | 1 % SDS, 8 M 우레아, 10 mM의 MOPS의 pH 6.8, 10 mM의 EDTA, 0.01 % 브로 모 페놀 블루 |
| 배 램 믈리 샘플 버퍼 | 100 mM의 트리스 -HClpH가 6.8, 4 % SDS, 20 % 글리세롤, 0.2 % 브로 모 페놀 블루 (사용 전 : 200 mM의 최종 농도 (B) 머 캅토 에탄올 (BME)을 추가) |
| 1X TBST | 137 mM의 염화나트륨, 20 mM 트리스 - 염산 pH를 7.5, 0.1 % 트윈 -20 |
표 1 : 솔루션.
| 이 연구 *에 사용되는 표 2. 효모 균주. | |||
| 균주 | 부모 | 유전자형 | 참고 |
| BY4741 | 마타 his3Δ1 leu2Δ0 met15Δ0 ura3Δ0 | 열기 생물계 | |
| BY4742 | 마타 his3Δ1 leu2Δ0 lys2Δ0 ura3Δ0 | 열기 생물계 | |
| YMB7278 | BY4741 / BY4742 | 마타 his3Δ1 leu2Δ0 lys2Δ0 URa3Δ0 HF-SMT3 ::는 Leu2 | 이 연구 |
| YPH1734 | 마타 ura3-52 lys2-801 ade2-101 his3Δ200 leu2Δ1 trp1Δ63 NDC10-13Myc :: kanMX6 | Montpetit 등., 2006 | |
| YPH1800 | 마타 ura3-52 lys2-801 ade2-101 his3Δ200 leu2Δ1 trp1Δ63 NDC80-13Myc :: His3MX6 | Montpetit 등., 2006 | |
| YMB7862 | YMB7278 / YPH1800 | 마타 HIS3는 Leu2 URA3 ade2 TRP1 HF-SMT3 ::는 Leu2 NDC80-Myc와 :: His3MX6 | 이 연구 |
| YMB7867 | YMB7278 / YPH1734 | 마타 HIS3는 Leu2 URA3 TRP1 lys2 HF-SMT3 ::는 Leu2 NDC10-Myc와 :: kanMX6 | 이 연구 |
| * 모든 효모 균주는 사카로 마이 세스 세레 비지에 S288C에서 파생됩니다. |
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Discussion
이러한 HA, Myc와, 플래그 및 GST와 같은 에피토프 태그 널리 단백질의 생화학 적 분석을 위해 사용된다. HF-Smt3 및 Ndc10 Ndc80과 같은 나 Myc 태그가 동원체 단백질과 균주의 구성은 이러한 sumoylation 유비퀴틴과 같은 PTMS의 검출을 용이하게한다. HF-Smt3 분석를 풀다운는 sumoylated 동원체 단백질, Ndc10 및 Ndc80 (그림 1)의 검출을 할 수 있습니다. 안티 - 플래그 항체를 이용하여 친 화성 정화 프로토콜과 웨스턴 블롯 분석 HF-Smt3 및 표적 단백질 사이의 상호 작용의 특이성을 설정, 수정 된 단백질은 HF-Smt3없이 제어 변형에 검출되지 않았다있다. 단백질 기질에 Myc와 태그의 사용은 HF-Smt3 접합체에 sumoylated Ndc10 및 Ndc80의 존재를 검증한다. 또한, Ndc10과 Ndc80 모두의 sumoylation는 nocodazole 처리 된 세포 (그림 1C 및 1D) 감소했다. nocodazole treatmen에 대한 응답으로 Ndc10의 sumoylation 감소t 아니지만 Ndc80는 이전 Montpetit 등. (9)에 의해보고되었다. 이는 실험 프로토콜과 사용자 정의 앤티 스모 항체의 사용의 차이 일 수있다. 동원체 기판 sumoylation 대한 우리의 결과는 유사한 프로토콜이 다른 후보 SUMO 기판을 조사하는데 사용될 수 있다는 것을 시사한다.
유비퀴틴을 검출하도록, 나 Myc 태그가 동원체 단백질은 먼저 면역 침강시키고, IP 분획 항 UB 항체 (도 2)으로 프로빙 하였다. 세포는 프로 테아 좀의 기능 (그림 2B)를 억제하는 MG132로 처리했을 때 Ndc10과 Ndc80의 분절 패턴은이 단백질이 프로 테아 좀의 기질이 있음을 나타냅니다 증가 하였다. IP 분획 방지 플래그 또는 항 Smt3 항체와 함께 웨스턴 블랏에 Ndc10 또는 Ndc80 sumoylation의 검출에 실패 (데이터는 보이지 않음). 이는 IP 분획 또는 interferenc에 sumoylated 기판의 수준으로 기술적 인 이유 때문일 수 있습니다에피토프 태그로부터 E. 이러한 염 및 웨스턴 블롯 조건 농도 IP 프로토콜의 추가의 최적화는 관심있는 단백질의 여러 PTMS의 검출을 용이하게한다. 현재, sumoylation는 최고의 후보 스모 기판의 서쪽 오 점 (그림 1) 다음에 분석을 풀다운 HF-Smt3에 의해 검출된다.
몇몇 사항 단백질 정제 효율 PTMS를 검출하는 능력에 영향을 미친다. 첫째, 모든 튜브가 지정 제외하고 단백질 분해 효소를 억제하는 얼음에 보관해야합니다. 둘째, 1 : 유리 비드로 세포 현탁액 1 비율 비드 비터 및 / 또는 vortexer를하여 세포를 파괴하는 것이 중요하다. 세포 용해는 현미경으로 세포 검사에 의해 모니터링해야한다. 셋째, 풀다운 분석 또는 IP에 대해 명확히 분해물을 제조하는 것이 매우 중요하다. 짧거나 저속 원심 파쇄물에서 세포 파편의 오염에 기여할 수 있고, 이것은 DETE하는 능력에 영향을 미친다PTMS CT. 마지막으로, 1.5 ml의 마이크로 원심 분리기 튜브 분명 해물 (약 1 ml)을 대량으로 구슬의 격렬한 흔들림이 구슬이 완전히 풀다운 분석 또는 IP를 위해 중단되도록합니다. 요약하면, 이러한 여기에 설명 된 것과 같은 단백질 정제 및 탐지 기술은 동원체 단백질의 PTM 충실 염색체 분리 (14), (15)에 대한 자신의 구조 및 조립에 어떻게 영향을 미치는지에 중요한 기계적인 통찰력을 제공합니다.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Glass beads | BioSpec Products | 11079105 | 0.5 mm diameter |
| Mini beadbeater | BioSpec Products | #693 | 8 cell disrupter |
| Ni-NTA superflow | Qiagen | 30430 | 100 ml |
| Protease inhibitor cocktail | Sigma-Aldrich | P8215 | 1 ml |
| Anti-c-Myc agarose affinity gel antbody produced in rabbit | Sigma-Aldrich | A7470 | 1 ml |
| Monoclonal anti-Flag M2 antibody produced in mouse | Sigma-Aldrich | F1804 | Primary antibody, dilution 1:1,000 |
| c-Myc antibody (A-14) | Santa Cruz Biotechnology | sc-789 | Primary antibody, dilution 1:5,000 |
| Purified mouse antibody monoclonal 9E10 | Covance | MMS-150P | Primary antibody, dilution 1:5,000 |
| Ubiquitin (P4G7) monoclonal antibody | Covance | MMS-258R | Primary antibody, dilution 1:1,000 |
| ECL Rabbit IgG, HRP-linked whole Ab | GE Healthcare Life Sciences | NA934V | Secondary antibody, dilution 1:5,000 |
| ECL Mouse IgG, HRP-Linked Whole Ab | GE Healthcare Life Sciences | NA931V | Secondary antibody, dilution 1:5,000 |
| DC protein assay | Bio-Rad | 500-0116 | |
| Nitrocellulose membrane | Novex | LC2001 | 0.45 mm pore size |
| NuPAGE 4-12% Bis-Tris Protein Gels | Novex | NP0321BOX | 1.0 mm, 10 well |
| NuPAGE MES SDS Running Buffer | Novex | NP0002 | 20x |
| NuPAGE Transfer Buffer | Novex | NP0006-1 | 20x |
| SuperSignal West Pico Chemiluminescent Substrate | Thermo Scientific | 34078 | |
| 10x PBS pH7.4 | GIBCO | 70011-044 | |
| Blue sensitive X-Ray film | Dbio | DBOF30003 | |
| Automatic developer | Kodak | M35AX-OMAT | |
| Nocodazole | Sigma-Aldrich | M1404 | 50 mg |
| MG-132 | Selleck Chemicals | S2619 | 25 mg |
References
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