Summary
Hücre zarı atkı mikroparçacıklar (MPler), izole edilmiş ve kendi patofizyolojik etkileri, çeşitli modelleri üzerinde araştırılabilir aktif biyolojik veziküllerdir. Burada T lenfositleri (LMPs) türetilen milletvekillerini üretilmesi için ve solunum yolu epitel hücreleri üzerindeki proapoptotik etkilerini kanıtlamak için bir yöntem tarif eder.
Abstract
Hücre-hücre iletişimine hücre zarı türetilmiş veziküllerin biyolojik rolleri ilgi son yıllarda artmıştır. Mikropartiküller (MP) ile 1 um, 0.1 um çapı kadar, veziküllerin böyle bir tipi olup, tipik olarak aktivasyonu ya da apoptoza ökaryotik hücrelerin plazma zarından döküldü. Burada D LMPs çok aşamalı bir diferansiyel santrifüj işlemi ile izole edilir ve akış sitometrisi kullanılarak, özelliği aktinomisin ile uyarılan apoptotik CEM T hücreleri T lenfosit kaynaklı mikro (LMPs) üretimini tarif eder. Bu protokol, aynı zamanda, fare primer solunum bronş doku eksplantlarında türetilen bronş epitel hücrelerinde LMPs proapoptotik etkilerini kanıtlamak için in situ hücre ölümü algılama yöntemi sunulur. Burada tarif edilen yöntemler, in vitro apoptotik lenfositlerden LMPs, çok miktarda izole etmek için tekrarlanabilir bir yöntem sağlamaktır. LMPs türetilmişBu şekilde, çeşitli hastalık modellerinde özelliklerini değerlendirmek için kullanılır ve farmakoloji ve toksikoloji testleri için edilebilir. Solunum yolu epitel dış çevre ve altta uzanan doku arasındaki bir koruyucu fiziksel ve fonksiyonel bariyer sunar göz önüne alındığında, bronşiyal doku eksplantlarında yerine ölümsüz epitel hücre çizgilerinin kullanımı yolu sistemi doku gerektiren araştırmalar için etkili bir model sağlar.
Protocol
Not: Erkek C57BL / 6 fareleri (5-7 haftalık), Charles River Laboratories International, Inc. (. St-Constant, Quebec, Kanada) ve MUB Sainte-Justine Hayvan Bakım Komitesi tarafından onaylandı protokollere göre manipüle edilebilir. Fare bronş doku eksplantlarında epitelial hücreler üzerinde LMPs proapoptotik etkilerinin araştırılması için primer bronşiyal epitel hücreleri için iyi bir kaynak sağlamaktadır. Bu protokol LMPs in vitro üretimi ve aynı zamanda LMPs ile muamele edilmiş bronş doku eksplantlarında apoptotik epitel hücrelerinin bulgulanması için bir yöntem tarif eder. Bu protokol 3 bölümden oluşmaktadır.
1. LMPs üretimi ve karakterizasyonu
NOT: bulaşmayı önlemek, bu deneyde kullanılan tüm malzemeler steril ya da otoklava olduğundan emin olmak için. Aksi belirtilmediği sürece, steril koşullar altında, bir biyolojik güvenlik kabini içinde oda sıcaklığında her adımları.
1.1) uyarılması ve milletvekillerinin Koleksiyon9
- Bir 37 ° C su banyosu içinde 10000000 CEM T hücreleri bir kısım çözülme. 10 ml seyreltik önceden ısıtılmış serum barındırmayan 200 gx 5 dakika bir 15 ml'lik steril bir tüpe ve santrifüj, X-VIVO hematopoietik ortam. Önceden ısıtılmış orta 5 ml süpernatant ve tekrar süspansiyon hücreleri aspire.
- 15 ml önceden ısıtılmış hematopoietik X-VIVO gibi orta ve% 5 CO2 ile 37 ° C de, nemlendirilmiş bir kuluçka makinesi içinde, 4 gün boyunca inkübe ile (süspansiyon hücreleri için), T75 doku kültür şişesi içine aktarın hücreleri.
- 4 gün sonra, 100 ml taze ortam içeren bir T175 doku kültürü şişesi içine, tüm kültür ortamı ve hücre aktarın. Bunlar 2.000.000 hücre / ml'lik bir yoğunluğa kadar büyütüldü kadar aynı koşullar altında yaklaşık 72 saat boyunca hücrelerin kuluçkaya devam edin.
- Eşit dört T175 şişelerinden her biri 150 mi taze ortam ve hücreler, 2.000.000 / ml'lik bir yoğunluğa kadar (yaklaşık 48 saat enkübasyon) büyüyünceye kadar hücre kültürü devam arasında hücreleri ayrıldı.
- 0.5 ug / ml bir son konsantrasyonda ortama (2 mg / ml'de DMSO içinde çözülmüştür), aktinomisin D edin ve 24 saat boyunca inkübe edilir.
- 50 ml konik tüpler içine tüm kültür ortamı aktarın ve 5 dakika boyunca 750 xg'de hücreleri aşağı doğru döndürün. 15 dakika büyük hücre parçaları kaldırmak için 1.500 xg'de 50 ml konik tüpler ve santrifüj içine süpernatant aktarın.
- 50 dakika boyunca 12.000 xg'de 250 ml şişe ve ultrasantrifüjdeki içine süpernatant aktarın. Süpernatantı atın ve pelet toplamak.
- Yıkama 50 dakika boyunca 12,000 x g'de santrifüj ile 50 ml'lik bir tüp içinde 40 ml steril PBS ile pelet LMPs zenginleştirilmiş. Iki kez bu adımı tekrarlayın.
- Son yıkama süpernatant toplayın; Bu araç kontrolü olarak kullanılır. 1 LMPs pelet Askıyaml PBS ve 1.5 ml steril bir mikrotüp içine aktarın. Kısım ve mağaza izole LMPs -80 ° C 'de (birden fazla serbest-erime döngülerinden kaçınmak için).
FACS Analizi 4 üzerinden milletvekillerinin 1.2) Karakterizasyonu
- CaCI2 olmadan anneksin tamponu 2 örnekleri, 1 ve başka bir hazırlayın: HEPES 10 mM NaCl 140 mM, artı ya da eksi 5 mM CaCl2.
- Parçacıkları kaldırmak için 0.22 mikron filtre kullanılarak anneksin tampon ve FACS akış kılıf sıvısı Filtre.
- FACS tüpüne 5 mM CaCl2 ile anneksin tampon 44 ul LMPs 1 ul sulandırmak. CaCI2 (negatif kontrol) olmadan anneksin tamponu 44 ul LMPs 1 ul bir tüp hazırlanır.
- Her bir tüp içinde annexinV-Cy5 5 ul ilave edin ve iyice karıştırın. Karanlıkta oda sıcaklığında 15 dakika boyunca inkübe edin. Her bir tüp içinde, FACS akış kılıf sıvısı 400 ul karışım seyrelterek reaksiyonu durdurun.
- 7 mikron sayma bea 10 ul (200.000 boncuk) EkleHer bir tüp bir iç standart olarak DS süspansiyon mutlak sayısı elde edildi.
- Göreli büyüklüğü kapılarını (FSC-H, PMT E00, ölçek log) ve bağıl granülarite (SSC-H, PMT 325, log ölçek) büyüklüğü kalibre floresan boncuklar kullanılarak sitometrede akış nokta arsa kurulması 1 mikron (kapı 1) ve 7 mikron (kapı 2) hapların kapısı sayma.
- 20.000 sayma boncuk kapısı 2 ulaşılana kadar bir sinyal alarak, nokta arsa (ölçek log, PMT 765) anneksin kurulmuş kapıları ve FL-4 kanal kullanarak FSC-H / SSC-H arsa üzerinde LMPs örnek analiz.
- CaCl2 ihtiva eden tampon maddesi içinde anneksin LMPs pozitif annexinV olaylarını belirlemek ve CaCI2 (negatif kontrol) olmadan anneksin tamponunda LMPs olaylarını çıkarın.
- Aşağıdaki denkleme göre MP'lerin mutlak sayısı hesaplanır:
MP P 1.3) Belirlenmesirotein Konsantrasyon (Bradford tahlili)
- 1.25 ila 20 ug / ml bir protein standardı 5 seri dilüsyonları hazırlayın. Pipet iki kez temiz bir test tüpüne her bir standart ve örnek 800 ul. Her tüpe Bradford boya reaktif 200 ul ekle. İyice karıştırın, daha sonra 5 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir.
- 595 nm'de absorbansı ölçülür. Standart eğrinin lineer regresyon kullanılarak LMPs protein konsantrasyonunu belirleyin.
2. Bronş Doku Eksplantlarındaki ve LMPs Tedavisi
NOT: Steril bir çalışma ortamı özel dikkat ve aseptik deneyler aşağıdaki kullanılan çözümler ve orta hazırlamak. Komple Şifa Orta hazırlamak 100 ml Doku Şifa Orta (buz üzerinde çözülmüş) Serum ile Doku Şifa Orta Takviyeler 1 ml ekleyin ve iyice karıştırın.
Bronş Doku Eksplantlarından 2.1) hazırlanması
- Kültür işleminden önce, 1 cm 2 6 alanlarını çizilmeyebir neşter ile her biri 100 mm doku kültürü çanağı yüzeyinin kenarında her. Kat her bir kültür çanağı kaplama çözeltisinin 2 ml'si ile 100 mm doku kültürü çanağı çizilmiş ve 37 ° C'de / nemlendirilmiş bir CO2 kuluçka makinesi içinde O, N çanak inkübe edin. Vakum fazlası çözüm aspire ve Doku Yıkama Orta 15 ml çanak doldurun.
- Hayvan bakım etik komitesi tarafından onaylanmış protokollere göre CO 2 solumaktan (5 ila 7 haftalık) C57BL / 6 fareler Euthanize.
- Aseptik neşter, Dumont süper ince cımbız, ve cerrahi makas ile akciğer dokusunun teşrih. Dikkatle parankim ve kan damarları çıkarın. Uygunsa, laboratuara taşınması için buz soğukluğunda Doku, yıkama ortamı içine akciğer dokusu yerleştirin.
- Bundan başka doku Yıkama Ortamı içinde batık bronş incelemek ve periferik akciğer dokulardan 1-2,5 mm bir çapı olan bronş ayırın. Bir neşter ile ~ 5 mm kalınlığında bronş halkalar halinde Dilim bronşiyal dokular. Bronşiyal parçaları pick up ve yemekleri çizik alanlar üzerine yerleştirmek için steril kavisli Microdissecting forseps ile bir çekiş hareketi kullanın.
- Doku Yıkama Ortamı çıkarın ve bunları tabaklarına yapışmasının sağlanması için ~ 5 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe fragmanları.
- Her yemeğin Komple Şifa Orta 10 ml ekleyin ve kontrollü bir atmosfer modüler inkübatör odasına koyun. Yüksek O2 gaz karışımı (% 70 O2,% 25 N2 ve% 5 CO2), odasını yıkayın. Bir tezgah üstü yörünge inkübatör odasına yerleştirin ve 37 ° C'de sallayın. Orta parçaları üzerinde aralıklı olarak akmasına izin verecek şekilde, dakikada 10 çevrim, 24 saat boyunca çalkalayın.
- 24 saat inkübasyondan sonra, bir faz-kontrast ters ışık mikroskobu altında doku eksplantlar dikkate alınmalıdır. Sonraki LMPs tedavisi için tam, ince saç hareketi ve canlı bronş epitel ile bronş eksplantlar seçin.
2.2) LMPs Tedavi
- Aşağıdaki gibi tam büyüme ortamı hazırlayın: çözülme büyüme ortamı takviyeleri buz serum ve fibroblast inhibitörü ile. Serum ve büyüme ortamı, 100 ml 200 ul fibroblast inhibitörü ile büyüme ortamı takviyesi 1 ml ilave et; iyice karıştırın. Kullanımdan önce, 10 dakika boyunca 37 ° C'de tam büyüme ortamı ısıtın.
- 800 ug / ml bir konsantrasyonda bir LMPs stok hazırlamak için PBS ile yeni bir steril bir Eppendorf tüpü içinde izole LMPs seyreltin.
- 12-çukurlu bir doku kültür plakasının her bir oyuğuna, tam büyüme ortamında 0.5 ml ilave edilir.
- Doku kültürü plakasının her bir kuyunun önceki protokol (bölüm 2.1) den kavisli Microdissecting forseps ile seçilen bronşiyal eksplantlar aktarın.
- LMPs tedavi kuyuları ve kontrol kuyuları tespit etmek uygun kültür plaka etiketleyin. Ve 25 ul kontrol aracı (40 ug / ml bir son konsantrasyon için) her LMPs tedaviye 25 ul LMPs stok ekleyin (bkz LMP Kontrol kuyuları s üretimi).
- Hafifçe çalkalanarak 37 ° C sıcaklıkta kontrollü bir atmosfer modüler inkübatör içinde inkübasyona devam edin.
- 24 saat sonra, PBS ile eksplantlar 3 kez yıkayın ve bir sonraki aşama (% 4 paraformaldehit [PFA] katılaştırma) geçin.
3. Histopatolojik Sınav
3.1) Sonraki Adımlar Devam Etmeden Önce ardından Çözümler hazırlayın
- 137 mM NaCI, 2.7 mM KCI, 10 mM Na-2 HPO 4, 1.76 mM KH 2 PO 4, pH 7.4 karıştırılarak 1x PBS tamponu hazırlayın.
- % 4 PFA, karıştırılarak 60 ° C'de ısıtıldı, 400 ml su içinde PFA 20 g çözülmesi hazırlamak; çözeltinin-berraklaştırılması için 10 M NaOH ve bir kaç damla ekleyin. Sonraki 1x PBS tampon ekleyin ve 7.4 500 ml hacim ve pH ayarlamak. Filtre ve kısım; -20 ° C'de saklayın.
- Aşağıdaki dehidrasyon veya rehidrasyon reaktifler hazırlayın; % 100,% 90,% 70,% 50 etanol ve ksilen.
- % 4 PFA 1.5 ml ile etiketlenmiş bir mikrosantrifüj tüpü içinde, her eksplant yerleştirin ve 4 ° C 'de O / N inkübe edin. 1x PBS ile iki kez eksplantlar durulayın.
- Bir alkol serisi ile eksplantlar kurutmak (% 70 etanol: Her 3 kez 30 dakika% 90 etanol: Her 2 kez 30 dakika,% 100 etanol: 3 kez 30 dakika her biri, daha sonra, ksilen, 3 kere 20 dakika) ekstrakte edildi. Bir çeker ocak içinde, oda sıcaklığında bütün adımları.
- Bir fırın içinde 58 ° C 'de parafin doku eksplantlar imbed. Bir döner mikrotom kullanılarak 5 mikron kalınlığında doku bölümleri hazırlayın.
- 56 ° C su banyosunda bölümleri Şamandıra ve sonra etiketli histolojik slaytlar üzerine bölümleri monte edin. 1 saat 65 ° C'de manuel boyama rafları ve kuru slaytlar yerleştirin. Slaytlar oda sıcaklığında soğumaya bırakın.
- Parafin çıkarmak için 10 dakika her ksilen içeren 4 ardışık leke yemekler rafları batırın. Inci, sonra% 100,% 95: iksilenin çıkması için bir etanol seri rafları Dipdaha sonra% 80,% 70, sonra% 50 etanol (her adım için 5 dakika) tr. Etanolü ortadan kaldırmak için 5 dakika boyunca musluk suyu ile rafları durulayın.
3.3) Hematoksilen Eozin ve (H & E) Boyama
- Sabit doku bölümleri ile çalışmaya devam; 15 dakika için Mayer'in Hematoksilen ile dolu bir boyama çanak içine raf yerleştirin. 20 dakika için hematoksilin kaldırmak için musluk suyu ile raf durulayın.
- 30 saniye için% 95 etanol içinde 30 sec.Place için damıtılmış su içinde yerleştirin. 1 dakika Eosin Y çözüm boyama çanak yerleştirin. 2 dakika her biri için,% 95 etanol,% 100 etanol ve ksilen 2 değişikliklere dihidrat.
- Fazla eozin çıkarıldığından emin olmak için bir mikroskop altında hızlı bir kontrol yapınız. Bir kapak camı ile kapak daha sonra, her bir slayt üzerine montaj ortamı (Fisher SP15-100) olarak 2-3 damla yerleştirin.
3.4) in situ hücre ölümü algılama içinde: TÜNEL tahlili
- Başlamadan önce, proteinaz K çalışma çözeltisi hazırlayın: 20 ug / ml10 mM Tris / HCI, pH 7.4 ile yıkanır.
- Bölüm 3.2 (Eksplantın tespit ve doku bölüm Parafinden arındırmadan) 5'e kadar olan adımları tekrarlayın 1. Deiyonize H 2 O ile slaytlar durulayın
- 10 dakika boyunca 1x PBS ile slaytlar daldırın. Aşırı PBS boşaltın. Proteinaz K kullanmaya hazır çözelti ile oda sıcaklığında 30 dakika boyunca doku bölümleri inkübe edin. Durulayın 1x PBS ile iki kez kayar.
- Hücre ölümü algılama kiti Öğretim Kılavuzunda açıklandığı gibi TÜNEL tahlili yapın. Montaj orta kullanarak monte, ve cam lamelleri ile manuel lamel.
- Bir ışık mikroskobu altında örnekleri analiz edin. Kahverengi renk apoptotik hücreleri analiz Pro Image 4.5 kullanın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
LMPs floresan-aktive edilmiş hücre (FACS) analizi, sıralama ve MP'lerin (≤1 um)% 97 anneksin-V-Cy5 pozitif olan 1 um boncuklar kullanılarak bir kapı ile anneksin V boyama 10 ile karakterize edilmiştir (Şekil 1A ve 1B). Tipik haliyle, LMPs yaklaşık 2.5 mg ile bu protokol izlenerek elde edilmiştir. C57BL bronş doku eksplantlarında / 6 fareleri araç ve LMPs işlemine tabi tutulmuştur. Bronşiyal bölümlerin histopatolojik analizi bronşiyal epitel yapısal bütünlüğü ile LMPs etkisini ortaya çıkarmıştır. Kontrol eksplantlarda, bronşiyal epitel (Şekil 2A) büyük ölçüde hasar görmemiş idi; Ancak, LMPs-tedavi eksplantlarda, yüzeyel epitel hücre tabakası hasarlı veya kayıp, ve epitel hücre yüksekliği ve yoğunluğu (Şekil 2B) önemli düşüşler vardı oldu. TÜNEL pozitif boyama (apoptoz markeri) karşı daha fazla kontrol ile karşılaştırıldığında LMPs ile muamele edilmiş bronş epitel belirgindir ( 
CEM T hücre soyu elde MP'lerin sitometri analizi Şekil 1. Akış. (A) ileri (FSC) ve yan dağılım (SSC) kapı milletvekilleri için kullanılan 1 mikron boncuk özellikleri belirlenmesi. Milletvekilleri kapısı Olaylar daha da elektronik gürültü gerçek olayları ayırt etmek anneksin V-Cy5 ile etiketleme açısından değerlendirildi (B) böylece milletvekilleri algılama özgünlüğünü artırılması. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız. 
Şekil 2. bronşiyal epitel tabakası hasarı LMPs kaynaklı. Bronş epitheli Temsilcisi histopatolojik görüntüleri(A), kumanda ya da (B) LMPs (24 saat boyunca 40 ug / ml) ile muamele eksplantların um arasındadır. Eksplant bölümleri hematoksilin ve eosin ile boyandı. Siyah oklar epitel tabakası işaret. Yüzeysel ve bazal hücre tabakası yamalı kaybı LMPs ile muamele edilmiş bronş eksplantlar (B) bölümleri de görülmektedir. Büyütme 400X, bar = 20 uM. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız. 
Şekil 3. bronşiyal epitel hücre apoptozisi LMPs kaynaklı segmental bronşların epitel tabakasında apoptotik hücreler TUNEL testi ile tespit edilmiştir.; pozitif olarak lekeli hücreler, kahverengi olarak gösterilmiştir. Kontrol bronş epitel hücre Örnek görüntüsü (A)
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Milletvekilleri hücrelerarası çapraz konuşma aktif arabulucular ve onların çalışma bilimin birçok alanda umut vericidir. 11 Bu çalışma bir apoptotik T hücre soyu elde LMPs in vitro büyük ölçekli üretimi için ayrıntılı bir protokol sundu. Bu MPler lenfosit moleküllerinin büyük bir repertuarı ifade eder ve biyolojik hücre ve doku homeostazının düzenlenmesinde rol oynar. Bununla birlikte, farklı kaynaklardan elde edilen LMPs biyolojik olarak farklı olabilir. 4,9,12,13
LMPs vitro bunları üretmek için kullanılan uyaranlara ve türetildikleri hücreye bağlı olarak çeşitli özellikleri gösterir. Bu nedenle, in vivo olarak oluşan LMPs verilerine ölümsüzleştirilmiş hücre çizgilerinden türetilen LMPs kullanılarak in vitro elde edilen verilerin ekstrapolasyon dikkatli yapılmalıdır.
Bu protokol milletvekilleri izolasyonu için gerekli birkaç santrifüj adımları açıklar; Bu nedenle, Careful manipülasyon, bu işlem sırasında MP'lerin kaybını en aza indirmek için gereklidir. -70 ° C 'de izole edilmiş LMPs Snap dondurma tavsiye edilir; bu koşullar altında LMPs biyoaktiviteleri 2 yıla kadar (yayınlanmamış veriler) muhafaza edilebilir olduğunu gözlemledik.
Bugüne kadar, akım sitometri milletvekilleri analizi için "altın standart" olarak kabul edilir. Çok renkli akım sitometri analizi farklı hücresel kökenlerden gelen milletvekillerinin subpopülasyonunun belirlemek için kullanılır. Bununla birlikte, mevcut piyasada mevcut akış sitometrelerinde küçük ölçekli milletvekilleri popülasyonları (en az 300 nm) analiz etmek ve hücresel enkaz ve milletvekilleri arasında ayrım yeteneği sınırlıdır. Buna ek olarak, FACS analizi (sitoflüorimetrik analizi) İstatistiksel analiz için, apoptotik hücrelerin sayısı için TÜNEL tahlili için alternatif bir yöntem olabilir.
Burada, ex vivo olarak, bronşiyal eksplantlar kültürlenmiş f havayolu epitel hücrelerinde iyi bir kaynak sağlamak olduğunu göstermektedirveya farmakoloji ve toksikoloji tarama. Bu bronşiyal eksplantlar orijinal fizyolojik ortamlara benzer olduğundan, belirli bir bronş veya akciğer hastalıklarının sinyal yollarını belirlemek için yararlı olabilir. Ancak, mümkün değil epitel hücreleri üzerinde LMPs apoptotik etkisini onaylamak için tek bronşiyal eksplantlar kullanabilir ve / veya sekonder yerleşik bağışıklık hücrelerinin aktivasyonu doğrudan kaynaklanmaktadır. LMPs doğrudan etkisini araştırmak için, birinci hava yolu epitel hücreleri, bu amaç için uygun olacaktır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.
Acknowledgments
Vizyon Sağlık Araştırma Ağı - Bu çalışma Sağlık Araştırması (178.918), Fonds de recherche en santé du Québec, Kanada Enstitüleri hibe ile desteklenmektedir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| LMPs production and characterization | |||
| CEM T cells | ATCC | CCL-119 | |
| X-VIVO 15 medium | Cambrex, Walkersville | 04-744Q | |
| Flask T75 | Sarstedt | 83.1813.502 | |
| Flask T175 | Sarstedt | 83.1812.502 | |
| Actinomycin D | Sigma Chemical Co. | A9415-2mg | |
| PBS | Lifetechnologies | 14190-144 | |
| 0.22 µm filter | Sarstedt | 83.1826.001 | |
| Annexin-VCy5 | BD Pharmagen | 559933 | |
| FACS flow solution | BD Bio-sciences | 342003 | |
| Fluorescent microbeads (1 µm) | Molecular Probes | T8880 | |
| Polysterene counting beads (7 µm) | Bangs laboratories | PS06N/6994 | |
| Polypropylene FACS tubes | Falcon | 352058 | |
| 1 ml pipet | Fisher | 13-678-11B | |
| 5 ml pipet | Falcon | 357543 | |
| 25 ml pipet | Ultident | DL-357551 | |
| 1.5 ml conical polypropylene micro tube | Sarstedt | 72.690 | |
| 15 ml conical polypropylene tube | Sarstedt | 62.554.205 | |
| 50 ml conical polypropylene tube | Sarstedt | 62.547.205 | |
| 50 ml high speed polypropylene copolymer tube | Nalgene | 3119-0050 | |
| 250 ml high speed polypropylene bottle | Beckman | 356011 | |
| Protein assay (Bradford assay) | Bio-Rad Laboratories | 500-0006 | |
| Protein assay standard II | Bio-Rad Laboratories | 500-0007 | |
| Test tube 16 x 100 | VWR | 47729-576 | |
| Test tube 12 x 75 | Ultident | 170-14100005B | |
| Cell incubator | Mandel | Heracell 150 | |
| Low speed centrifuge | IEC | Centra8R | |
| High speed centrifuge | Beckman | Avanti J8 | |
| High speed rotor for 250ml bottle | Beckman | JLA16.250 | |
| High speed rotor for 50ml tube | Beckman | JA30.50 | |
| Fow cytometry | BD Bio-sciences | FACS Calibur | |
| Spectrophotometer | Beckman | Series 600 | |
| Bronchial tissue explants and sections | |||
| C57BL/6 mice (5-7 weeks old) | Charles River Laboratories, Inc. | ||
| Mouse Airway PrimaCell™ System: | CHI Scientific, Inc. | 2-82001 | |
| Rib-Back Carbon Steel Scalpel Blades | Becton Dickinson AcuteCare | 371310 | #10 |
| Scalpel Handle | Fine Science Tools Inc. | 10003-12 | #7 |
| phase-contrast inverted microscope | Olympus Optical CO., LTD. | CK2 | |
| high O2 gas mixture | VitalAire Canada Inc. | ||
| modular incubator chamber | Billups-Rothenberg Inc. | MIC-101 | |
| MaxQ 4000 incubated orbital shaker | Barnstead Lab-Line, | SHKA4000-7 | |
| 12-well tissue culture plate | Becton Dickinson and Company | 353043 | |
| Plastic tissue culture dishes (100 mm) | Sarstedt, Inc. | 83.1802 | |
| Surgical scissors | Fine Science Tools Inc. | 14060-09 | Straight, sharp, 9cm longth |
| Half-curved Graefe forceps | Fine Science Tools Inc. | 11052-10 | |
| humidified CO2 incubator | Mandel Scientific Company Inc. | SVH-51023421 | |
| Histopathological examination | |||
| formalin formaldehyde | Sigma-Aldrich, Inc. | HT5011 | |
| paraffin | Fisher scientific International, Inc. | T555 | |
| ethyl alcohol | Merck KGaA, Darmstadt | EX0278-1 | |
| glutaraldehyde | Sigma-Aldrich, Inc. | G6403 | |
| Cacodylate | Sigma-Aldrich, Inc. | 31533 | |
| microscope slides | VWR Scientific Inc. | 48300-025 | 25x75 mm |
| Xylene | Fisher scientific International, Inc. | X5-4 | |
| Mayer's hematoxylin | Sigma-Aldrich, Inc. | MHS16 | Funnel with filter paper |
| HCl | Fisher scientific International, Inc. | A144s-500 | |
| eosin | Sigma-Aldrich, Inc. | HT110116 | Funnel with filter paper |
| Permount™ Mounting Medium | Thermo Fisher Scientific Inc. | SP15-100 | |
| glass coverslip | surgipath medical industries, Inc. | 84503 | 24×24 #1 |
| TUNEL detection kit | In Situ Cell Death Detection, POD | 11 684 817 910 | |
| oven | Despatch Industries Inc. | LEB-1-20 | |
| rotary Microtome | Leica Microsystems Inc. | RM2145 | |
| filter paper | Whatman International Ltd. | 1003150 | #3 |
| Microscope | Nikon Imaging Japan Inc. | E800 | |
| staining dish complete | Wheaton Industries, Inc. | 900200 | including dish, rack, cover |
| 1.5 ml eppendorf tube | Sarstedt Inc. | 72.69 | 39x10 mm |
| Orbital and Reciprocating Water Bath | ExpotechUSA | ORS200 | |
| phosphate buffered saline | GIBCO | 14190-144 | |
| fume hood | Nicram RD Service | 3707E |
References
- Tushuizen, M. E., Diamant, M., Sturk, A., Nieuwland, R. Cell-derived microparticles in the pathogenesis of cardiovascular disease: friend or foe. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 31 (1), 4-9 (2011).
- Martinez, M. C., Tual-Chalot, S., Leonetti, D., Andriantsitohaina, R. Microparticles: targets and tools in cardiovascular disease. Trends Pharmacol Sci. 32 (11), 659-665 (2011).
- Benameur, T., Andriantsitohaina, R., Martinez, M. C. Therapeutic potential of plasma membrane-derived microparticles. Pharmacol Rep. 61 (1), 49-57 (2009).
- Yang, C., et al. Lymphocytic microparticles inhibit angiogenesis by stimulating oxidative stress and negatively regulating VEGF-induced pathways. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 294 (2), 467-476 (2008).
- Yang, C., Gagnon, C., Hou, X., Hardy, P. Low density lipoprotein receptor mediates anti-VEGF effect of lymphocyte T-derived microparticles in Lewis lung carcinoma cells. Cancer Biol Ther. 10 (5), 448-456 (2010).
- Angelillo-Scherrer, A.
- Maeno, T., et al. CD8+ T Cells are required for inflammation and destruction in cigarette smoke-induced emphysema in mice. J Immunol. 178 (12), 8090-8096 (2007).
- Qiu, Q., Xiong, W., Yang, C., Gagnon, C., Hardy, P. Lymphocyte-derived microparticles induce bronchial epithelial cells' pro-inflammatory cytokine production and apoptosis. Mol Immunol. 55 (3-4), 220-230 (2013).
- Martin, S., et al. Shed membrane particles from T lymphocytes impair endothelial function and regulate endothelial protein expression. Circulation. 109 (13), 1653-1659 (2004).
- Shet, A. S., et al. Sickle blood contains tissue factor-positive microparticles derived from endothelial cells and monocytes. Blood. 102 (7), 2678-2683 (2003).
- Mause, S. F., Weber, C. Microparticles: protagonists of a novel communication network for intercellular information exchange. Circ Res. 107 (9), 1047-1057 (2010).
- Yang, C., et al. Anti-proliferative and anti-tumour effects of lymphocyte-derived microparticles are neither species- nor tumour-type specific. J Extracell Vesicles. 3, (2014).
- Soleti, R., et al. Microparticles harboring Sonic Hedgehog promote angiogenesis through the upregulation of adhesion proteins and proangiogenic factors. Carcinogenesis. 30 (4), 580-588 (2009).
