Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Immunology and Infection

Экстракорпоральное поколение мышиный плазмоцитов дендритных клеток из общего предшественники лимфоидных клеток с использованием Feeder System АС-6

doi: 10.3791/53211 Published: November 23, 2015

Abstract

Плазмоцитов дендритные клетки (PDCs) являются мощным типа интерферона (ИФН-I), производящие клетки, которые активируются в ответ на инфекцию или во время воспалительных реакций. К сожалению, исследование функции PDC препятствует их низкой частоты в лимфоидных органах, а существующие методы экстракорпорального поколения DC преимущественно в пользу производства CDCs над PDCs. Здесь мы представляем уникальный подход эффективно генерировать PDCs из общих лимфоидных клеток-предшественников (CLPS) в пробирке. В частности, протокол, описанный подробно, как очистить CLPS из костного мозга и генерировать PDCs по сокультивировани гамма-облученной АС-6 фидерных клеток в присутствии лиганда Flt3. Уникальной особенностью этой системы культуры является то, что CLPS мигрировать под AC-6 клеток и стать булыжником площадь формирования клеток, важным шагом для расширения PDCs. Морфологически различные контроллеры домена, а именно PDCs и CDCs, были получены примерно через 2 недели с составом 70-90% PDCs в оптимальных условиях. Как правило, количество генерируемых PDCs этим методом, примерно в 100 раз количества CLPS семенами. Таким образом, это новая система, с которым решительно генерировать большое количество PDCs, необходимых для облегчения дальнейших исследований в развитие и функции этих клеток.

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Дендритные клетки (ДК) являются профессиональными антиген-представляющими клетками, которые играют важную роль в регулировании иммунного ответа 1. В то время как контроллеры домена являются гетерогенными, они могут быть классифицированы на две популяции, обычный РС (CDCs) и плазмоцитов ДК (PDCs) 2,3. В дополнение к лимфоидных органов, CDCs и PDCs также найдены в тканях, включая легкие, кишечник и кожу 2. Морфология CDCs и PDCs отличается, с CDCs проявляющих дендритных-выступы и форма PDCs быть более плазмы клеток, как. Кроме того, общий мыши округ Колумбия, CD11c, более высокий уровень экспрессии на CDCs чем на PDCs. Кроме того, CDCs может быть разделен на CD11b + CD24 - CDCs и CD11b - CD24 + CDCs, оба из которых выражают более высокие уровни МНС класса II и молекулы костимулирующих чем сделать PDCs 2. Зрелые PDCs, с другой стороны, было показано, что выборочно выразить Siglec-H и BST2 4. Functionally, CDCs являются лучшими антиген-представляющих клеток, чем PDCs; Однако, PDCs может производить огромное количество типов интерферона на вирусной инфекции или воспалительных стимуляции 5.

Оба CDCs и PDCs недолговечны, и, следовательно, должны быть постоянно пополняется из предшественников в костном мозге (ВМ) 6,7. Приемных передачи общих миелоидных клеток-предшественников (CMPS) и общих предшественников лимфоидных (CLPS) в смертельно облученных мышей-показывает, что CDCs и PDCs могут быть получены из обеих линий 8-10. Тем не менее, есть подмножество PDCs, выражающих RAG1 / 2 и обладают переставить DJ сегменты на IgH локуса 11,12. Эти клетки также поделиться молекулярные сходства с В-лимфоцитами, в том числе выражения B220 маркера, кислоты зондирования рецепторов нуклеиновых (TLR7 / TLR9), и транскрипционных факторов (SPIB и Bcl11a) 13, имеет все полагают, подписи лимфоидной линии. Таким образом, CLPс может быть хорошим выбором для поколения в пробирке PDCs из-за сходства клонов.

В то время как частота обоих CDCs и PDCs у человека и мышей очень низка 6, ДК, в частности CDCs, могут быть получены в лабораторных от BM или предшественников в присутствии цитокинов, таких как GM-CSF или 11,14 Flt3 лиганда (FL ) с использованием фидерных систем без 11,15,16. К сожалению, однако, это не возможно, чтобы произвести большое количество PDCs в пробирке с использованием FL 11,15,16. Ранее мы показали, что PDCs может быть эффективно генерируется в пробирке из CLPS с использованием системы АС-6 подачи 17. Преимущество использования стромальных клеток линии АС-6 в системе культуры в том, что оно обеспечивает контакт клетка-клетка и секреции цитокинов, которые поддерживают генерацию большого количества PDCs от CLPS. Хотя производство этой системы вполне надежный, заботливый репликации из процедур, описанных ниже, обязательны Яп Для того чтобы обеспечить эффективную генерацию PDCs.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

/ 6 мышей дикого типа C57BL были приобретены из Национальной лаборатории Центра животных (NLAC), Тайвань. Все мыши были выведены и выдерживают при конкретного патогена условиях. Протоколы и процедуры использования животных были рассмотрены и одобрены уходу и использованию комитета Институциональная животных Национального Тайваньского университета Медицинского колледжа (разрешение Номер: 20120075) по. Кроме того, исследователи сделали все возможное, чтобы уменьшить потенциал для боли, страданий, или терпящим бедствие на животных при выполнении экспериментов. Все процедуры, описанные проводились при комнатной температуре в перчатках.

1. Подготовка AC-6 фидерных клеток

Примечание: АС-6,21 (AC-6 в краткосрочной) линии 18 стромальных клеток (при условии И. Вайсман, Стэнфордский университет) должна поддерживаться в среде RPMI, дополненной 15% инактивированной нагреванием фетальной бычьей сыворотки (FBS). Чтобы служить в качестве питательных клеток, АС-6 клетки γ-облучении 3000 рад (30Gy) за один день до совместной культуры, чтобы предотвратить их распространение. Примечание гона АС-6 клеток, как правило, теряют свою дифференцировку поддержки способность, если покинул переполнены во время технического обслуживания, или если их количество проход более 20.

  1. Промыть АС-6 клеток один раз 1 мл Дульбекко забуференным фосфатом физиологическим раствором (DPBS) и удалить аспирацией DPBS. Treat АС-6 клеток в 0,8 мл раствора трипсина (0,05% трипсина и 0,5 мМ ЭДТА) в DPBS в течение 3-5 мин при температуре 37 ° С, 5% СО 2 и затем реакцию останавливают разбавлением 10 объемов питательной среде с целью сделать клеточной суспензии.
  2. Семенной АС-6 клеток на 5.9x10 4 клеток / лунку в 12-луночные планшеты и инкубируют при 37 ° С, 5% СО 2 O / N.
    Примечание: Плотность тока, 6 клеток очень важно, поскольку более низкой плотностью будут способствовать генерации CDC. Сеялки при плотности 5.9x10 4 клеток / лунку позволит АС-6 для достижения слияния на следующий день, который является оптимальным для вывода PDCs из CLPS.
  3. Облучают АС-6 клеток при 3000 рад (30 Гр) с использованием гамма-облучатель.
    Заметка: Доза для облучения AC-6 оптимизирована для предотвращения клетки от пролиферации и еще держать их жизнеспособными достаточно долго, чтобы обеспечить цитокинов и межклеточных контактов, необходимых для дифференциации ДК от CLPS.
  4. Аспирируйте среднего и заменить 1 мл среды RPMI полной (RPMI с 10% инактивированной нагреванием FBS, 50 мкг / мл гентамицина и 50 мкМ β-меркаптоэтанол).

2. Изолировать BM-клетки мышей

  1. Жертвоприношение мышей от СО 2 удушья и цервикальной дислокации. Поместите мышей на рассечение лоток и стерилизовать 70% -ным этанолом. Сделайте надрез в середине живота и снимите кожу от дистальной части мыши в том числе кожи, покрывающей нижние конечности.
  2. Проанализируйте мышей в полу-стерильных капот. Чтобы освободить бедра и голени, обрезать выше бедра и голени ниже коленного сустава. Снять мышцы от костей с помощью ножниц и место кости в 6 см чашку Петри, содержащую 5 мл RPMI завершить.
  3. Переместить в стерильной капот культуры. Заполните 3 мл шприц, соединенный с иглой 27G в полной среде RPMI с. Отрежьте оба конца костей с помощью ножниц и вставьте 27G иглу, чтобы очистить мозг из костей, осторожно инъекционных полный RPMI один раз с каждого конца.
  4. Подготовка суспензии отдельных клеток, осторожно пипеткой клетки вверх и вниз 3-5 раз в культуральной чашке с использованием шприца без иглы.
  5. Центрифуга клетки в течение 5 мин при 500 х г и декантируют супернатант.
  6. Лизировать эритроциты 1 мл буфера ACK (150 мм NH 4 Cl, 10 мМ КНСО 3, 0,1 мМ ЭДТА) инкубирование в течение 1 мин и реакцию останавливают разбавлением 10 объемами полного RPMI. Разрешить клетки стоят в течение 5 мин для того, чтобы на пеллетах замертво скопления клеток и тканей мусора под действием силы тяжести.
    Примечание: Не стоит более 5 мин, как это приведет к потере клеток из-за оседания жизнеспособных клеток.
  7. Медленно Декантировать клеток, содержащих супернатант в новую пробирку, оставляя мусорапозади в пробирку.
  8. Центрифуга в течение 5 мин при 500 мкг для осаждения клеток, затем снимите и выбросьте супернатант.
  9. Ресуспендируют общий клетках костного мозга (обычно 4-6 х 10 7 BM-клетки получают от одной мыши) в 100 мкл FACS буфера (PBS + 1x 2% FBS + 1 мМ ЭДТА).

3. FACS анализа и сортировки CLPS

  1. Добавить анти-CD16 / 32 (гибридомы, супернатант клона 2.4G2, 50 мкл / реакции или 1-2 мкг / реакция) в клетки в FACS буфере (этап 2.9) в течение 1-2 мин, чтобы блокировать рецепторы Fc.
    Примечание: Анти-CD16 / 32 также называют Fc-блок, который добавляется для предотвращения неспецифического связывания антител с клетками, экспрессирующими Fc рецепторы, включая гранулоцитов, моноцитов и лимфоцитов.
  2. Одновременно окрашивает клетки со следующими красителем меченых антител флуоресцентных (для 4x10 7 клеток) в течение 15 мин на льду, избегая освещенности. Антитела: ПЭ-сопряженных маркеры Lineage (0,2 мкг каждого) в том числе анти-CD3 (17A2), анти-CD8 (53-6.7), анти-В220 (RA3-6B2), против CD19 (eBio1D3), анти-CD11b (М1 / 70), анти-Gr-1 (RB6-8C5), анти- Thy1.1 (HIS51), анти-NK1.1 (PK136), анти-Ter119 (ТЕР-119), и анти-МНС-II (NIMR-4), 0,2 мкг анти-с-Kit-PerCP-Cy5.5 (2В8), 1 мкг анти-ССС-1-FITC (D7), 0,4 мкг анти-М-ЧСФР-АРС (AFS98) и 0,2 мкг анти-IL-7Rα-ПЭ-Cy7 (A7R34).
  3. Промыть клеток 3 мл FACS буфера и центрифуги в течение 5 мин при 500 х г в.
  4. Ресуспендируют клетки в 300 мкл FACS буфера, и клетки фильтр через сито 40 мкм клетки.
  5. Промыть пробирку с дополнительным 100 мкл FACS буфера для восстановления любых оставшихся клеток и фильтр в стерильный FACS сортировки трубку, используя тот же фильтр клеток.
  6. Сразу Выполнить анализ потока цитометрии после окрашивания с использованием соответствующих фильтров и напряжения для обнаружения сигнала. Используйте нм лазер 488 для обнаружения FITC-, PerCP-Cy5.5-меченых антител, нм лазер 561 для обнаружения ПЭ и ПЭ-Cy7-labelded антитела и 633 нм ласэ обнаружить APC-меченого антитела.
  7. Разобраться CLPS по следующим маркеров Lin - C-комплект INT SCA-1 INT ​​М-CSFR - Ил-7Rα + (а, окрашенных в шаге 3.2) с использованием клеточного сортера. Сбор отсортированных клеток в 15 мл пробирку, содержащую 8 мл полной среды RPMI в качестве подушки.
  8. Запись абсолютное число отсортированных клеток, как показано на клеточного сортера на конце прогона. Как правило, 5х10 4 CLPS могут быть получены из одного БМ мыши.

4. Совместное культивирование CLPS и AC-6

  1. Центрифуга отсортированные клетки от шага 3.7 в течение 10 мин при 500g, удалить супернатант, и ресуспендируют осадок клеток с достаточно полной среде RPMI, чтобы получить плотность клеток вокруг 5х10 4 клеток / мл. Семенной 500 клеток / лунку в 12-луночного планшета, содержащую фидерные клетки, полученные на стадии 1.4.
  2. Добавить 100 нг / мл FL 19 (HU-Flt3L-Ig-генерируется в доме с использованием системы экспрессии согласно М. Манц, Universiти Больница Цюрих, Швейцария) и инкубировать при 37 ° С, 5% СО 2 с периодическим визуальным контролем развития постоянного тока под микроскопом.
    Примечание: Коммерчески доступный рекомбинантный человеческий FL или мыши FL может быть использован в качестве замены для HU-Flt3L-Ig поддержки развития постоянного тока.
  3. Сбор клеток в супернатант в 12 день и мыть скважин раз с 0,5 мл RPMI среду завершить сочетая полученные супернатанты. Добавить 0,5 мл свежей среды и лом прикрепленные клетки с клеточным скребком.
  4. Смешайте клеток, содержащих среду от обеих частей и центрифуги в течение 5 мин при 500 х г в.
  5. Сцеживать супернатант и ресуспендирования клеток в 50 мкл FACS буфера. Добавить 50 мкл анти-CD16 / 32 гибридом супернатанта и инкубировать в течение 1-2 мин, чтобы блокировать Fc рецепторы.
  6. Перечислять и окрасить все клетки со следующими антителами (0,05 мкг каждая) анти-CD11c-АРС (N418), анти-CD11b-FITC и анти-В220-PE.
  7. Вымойте и центрифуги клетки, как описатьд в шаге 3.3.
  8. Ресуспендируют клеток в 100 мкл FACS буфера, ворота на CD11c + и анализировать для CDCs (CD11c + CD11b + B220 -) и PDCs (CD11c + CD11b - B220 +) 17.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

В общей сложности 4-6x10 7 ВМ клетки, как правило, изолированы от бедренных костей голени и одного 6-8 WK-старого дикого типа C57BL / 6 мыши. Чтобы до конца разобраться CLPS, всего клетки BM окрашивали PE-сопряженных антител против клона маркеров (CD3, CD8, В220, CD19, CD11b, GR-1, Thy1.1, NK1.1, Ter119 и МНС-II), анти -с-Комплект-PerCP / Cy5.5, анти-ССС-1-FITC, анти-М-ЧСФР-APC и анти-IL-7Rα-PE / Cy7, проанализированы и сортируются с клеточного сортера. Сортировки стратегия CLP показано на рисунке 1. Как правило, 5х10 4 CLPS получены от одного C57BL / 6 мыши. Для получения более CLPS, BM клетки 3-4 мышей могут быть объединены и протокол соответствующим образом скорректированы до сортировки.

После совместного культивирования 500 CLPS с 5.9x10 6 AC-6 фидерных клеток, мощеные площади, образуя клетки (CAFC) начинают появляться на 3-4 день. К 8 день, круглой формы PDCs появляются и подвешивают на верхней части CAFC (фиг.2А). Количество PDCs пики вокруг Dай 12-14, в котором точка PDCs начинают подвергаться апоптозу после их полного развития, и номера начинают постепенно снижаться. CDC колонии появляются позже, чем PDC колоний, в день 6-8, и морфология CDCs крупнее, шпиндель, как и приверженцем (2В).

Как правило, 5-6x10 4 клеток могут быть получены от 500 CLPS через 2 недели совместного культивирования. После окрашивания клеток с анти-CD11c-АПК, анти-CD11b-FITC и анти-В220-РЕ, анализ методом проточной цитометрии показывает, что процент PDCs (CD11c + CD11b - B220 +) и CDCs (CD11c + CD11b + B220 - ) составляет 91% и 6%, соответственно (фиг.3). Таким образом, с помощью этого метода PDCs может быть расширен так же, как в 100 раз.

фигура 1
Рисунок 1. Стратегии стробирования для CLPS. BM клетки изорованных от одной мыши окрашивали флуоресцентно-меченых антител и анализировали на CLPS, которые были определены как линь - C-Комплект INT SCA-1 Int M-ЧСФР -. Ил-7Rα + Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры ,

Рисунок 2
Рисунок 2. Морфология CDC и PDC колоний в CLP-АС-6 совместных культурах. 500 CLPS были совместно культивировали с Г-облучении АС-6 фидерных клеток в присутствии 100 нг / мл FL. (А) PDC колонии на 8-й день, 10 и 12, и (Б) CDC колонии в день 8, 12, и 16 были сфотографированы при световой микроскопии в 200 х (шкала бар 50 мкм). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть крупэ версия этой фигуры.

Рисунок 3
Рисунок 3. проточной цитометрии анализ полученных CLP-PDCs и CDCs. Пятьсот CLPS и гамма-облученной АС-6 фидерные клетки (5.9x10 4 / мл) культивировали совместно в пробирке в течение 12 дней в присутствии FL (100 нг / мл ). Клетки окрашивали анти-CD11c-АПК, анти-CD11b-FITC и анти-В220-РЕ и анализировали с помощью проточной цитометрии. Сначала клетки закрытого на CD11c +, а затем анализировали на CDCs (CD11c + CD11b + B220 -) и PDCs (CD11c + CD11b - B220 +). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Здесь мы опишем в пробирке культуру систему для надежной генерации ДК и PDCs в частности, из небольшого числа CLPS. Уникальность этой системы культуры связано с использованием АС-6 клеток, в стромальных клеток линии, как питатели. Этот подход был показан, чтобы обеспечить не только цитокины, такие как IL-7, SCF, M-CSF и FL 20, но также и межклеточного контакта 21 необходимо поддерживать развитие постоянного тока. AC-6 клеток были использованы ранее для облегчения изучения в пробирке развития постоянного тока от нескольких предшественников 8,16,22. Мы обнаружили, что очень важно, чтобы отобрать оптимального плотность АС-6 фидерных клеток для обеспечения эффективного дифференциацию PDCs от CLPS. В частности, посев 5.9x10 4 Г-облучении АС-6 клеток в 12-луночных планшетах приводит слияния на следующий день, который подходит для развития PDC. Нижняя АС-6 плотность клеток (3.9x10 4 / лунку в 12-луночного планшета) стремится поддерживать CDC РАЗВИТИЕт 24. Поэтому, рекомендуется, чтобы первые семян нескольких концентраций АС-6 клеток в целях оптимизации условий при масштабировании до систему культуры 23. Кроме того, это также важно, чтобы АС-6 клеток неукоснительно поддерживается, в том числе тщательным вниманием к числу проход, и никогда не позволял, чтобы достичь слияния. Если не переполнены, или если их количество проход больше, чем 20, эти клетки теряют способность поддерживать гемопоэз в пробирке. Кроме того, концентрация FL также влияет на развитие постоянного тока. В частности, при низких дозах (25-50 нг / мл) CDCs преимущественно разработан, а в больших дозах (100-200 нг / мл) PDCs преимущественно генерируется 24. В дополнение к АС-6 плотности клеток и FL дозировке, тщательный отбор партии FBS, которые эффективно поддерживает развитие постоянного тока в этой системе культуры является залогом успеха процедуры.

В то время как в пробирке -derived CDCs и PDCs может быть дисtinguished их поверхностных маркеров, а именно CD11c + CD11b + В220 - и CD11c + CD11b - В220 + соответственно, их морфологии также различимы микроскопии. CDCs крупнее, веретенообразные и единомышленником, в то время как PDCs меньше, круглой и расти в суспензии (рисунок 2). Кинетика дифференциации DC также отличается, с PDCs появляться раньше и CDCs позже. Кроме того, процесс развития PDC значительно влияют АС-6 плотности клеток с более AC-6 Плотность ускорить процесс развития. Следует отметить, что PDCs начинают умирать после полной разработки и, таким образом, отношение CDCs сравнению PDCs в этой системе культуры постепенно увеличивается в более поздние моменты времени. Таким образом, периодический контроль развития постоянного тока с помощью микроскопии и проточной цитометрии, настоятельно рекомендуется, чтобы определить, когда начинать PDCs к апоптозу.

Следует отметить, что describСпособ изд также могут быть применены к другим предшественников постоянного тока, таких как ОГТ; Тем не менее, основное население тока генерируется из этих клеток CDCs 17, даже при высоких АС-6 плотности или FL дозах. Низкая PDC потенциал ОГТ согласуется с сообщениями из различных групп, использующих либо CDP-фидерных 11 или фидерных бесплатно 16 систем, двух различных систем культуры в пробирке. Эти результаты показывают, что система фидера переменного 6 может точно отражать дифференцировке различных клеток-предшественников.

В PDCs, полученные от этой системы культура CD11c + CD11b - B220 +. Кроме того, они выражают относительно высокие уровни Tcf4 (кодирует E2-2) и RAG1, двух PDC-специфических генов, но более низкие уровни Id2, в CDC-специфического гена, чем сделать CDCs 17. Даже если эти PDCs хватает Siglec-H и BST2, маркеры считаются характеристика мышиных PDCs, они по-прежнему способны производить более высокие уровни ИФН-I, чемсделать CDCs и активируют CD86 при инфицировании вирусом везикулярного стоматита (VSV) 24. Это говорит о том, что эти PDCs, хотя полностью дифференцированы, все еще функционируют. Кроме того, мы уже успешно использовали этот метод, чтобы очертить синергетический роль IFN-I и Флорида в PDC развития от CLPS 17, подтверждая, что эта техника является ценным для исследования развития постоянного тока.

В заключение, здесь мы приведем простой, но эффективный метод, чтобы генерировать PDCs из небольшого числа CLPS использованием подачи совместного культивирования системы АС-6, который может способствовать развития или функциональные исследования PDCs.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Мы благодарны д-ра. Маркус Манц и Ирвинг Вайсман для обеспечения реагентов. Мы также признаем, услугу, предоставляемую на проточной цитометрии анализа и сортировки клеток ядра фонда Первого и Второго центральной лаборатории Национального университета Тайваня Медицинского колледжа и больницы НТУ, соответственно. Эта работа была поддержана Министерством науки и технологий, Тайвань (МОСТ 102-2320-B-002-030-MY3) и национальные медицинских исследовательских институтов, Тайвань (НПУ-EX102-10256SI и НПУ-EX103-10256SI).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Anti-mouse Ly6g/Ly6c (PE), clone RB6-8C5 Biolegend 108408 linage marker
Anti-mouse NK1.1 (PE), clone PK136 Biolegend 108708 linage marker
Anti-mouse  CD11b (PE), cloneM1/70 Biolegend 101208 linage marker
Anti-mouse CD19 (PE), clone eBio1D3 Biolegend 115508 linage marker
Anti-mouse B220 (PE), clone RA3-6B2 Biolegend 103208 linage marker/FACS
Anti-mouse CD3 (PE), clone 17A2 Biolegend 100308 linage marker
Anti-mouse CD8a (PE), clone 53-6.7 Biolegend 100707 linage marker
Anti-mouse MHC-II (PE), clone NIMR-4 Biolegend 107608 linage marker
Anti-mouse Ter119 (PE), clone TER-119 Biolegend 116208 linage marker
Anti-mouse Thy1.1 (PE), clone HIS51 eBioscience 12-0900-83 linage marker
Anti-mouse M-CSFR (APC), clone AFS98 Biolegend 135510 FACS
Anti-mouse c-Kit (PerCP/Cy5.5), clone 2B8 Biolegend 105824 FACS
Anti-mouse Sca-1 (FITC), clone D7 Biolegend 108106 FACS
Anti-mouse IL-7Ra (PE/Cy7), clone A7R34 Biolegend 135014 FACS
Anti-mouse CD11c (PerCP/Cy5.5), clone N418 Biolegend 117328 FACS
Anti-mouse CD11b (FITC), clone M1/70 Biolegend 101206 FACS
FACSAria III BD Biosciences Cell sorter
FACS sorting tube  BD Biosciences 352054
FlowJo FlowJo LLC Flow analysis sofrware

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Hartwig, C., et al. Fcgamma receptor-mediated antigen uptake by lung DC contributes to allergic airway hyper-responsiveness and inflammation. Eur. J. Immunol. 40, 1284-1295 (2010).
  2. Merad, M., Sathe, P., Helft, J., Miller, J., Mortha, A. The dendritic cell lineage: ontogeny and function of dendritic cells and their subsets in the steady state and the inflamed setting. Annu. Rev. Immunol. 31, 563-604 (2013).
  3. Mildner, A., Jung, S. Development and Function of Dendritic Cell Subsets. Immunity. 40, 642-656 (2014).
  4. Swiecki, M., Colonna, M. Unraveling the functions of plasmacytoid dendritic cells during viral infections, autoimmunity, and tolerance. Immunol. Rev. 234, 142-162 (2010).
  5. Liu, Y. J. IPC: professional type 1 interferon-producing cells and plasmacytoid dendritic cell precursors. Annu. Rev. Immunol. 23, 275-306 (2005).
  6. Merad, M., Manz, M. G. Dendritic cell homeostasis. Blood. 113, 3418-3427 (2009).
  7. Ghosh, H. S., Cisse, B., Bunin, A., Lewis, K. L., Reizis, B. Continuous expression of the transcription factor e2-2 maintains the cell fate of mature plasmacytoid dendritic cells. Immunity. 33, 905-916 (2010).
  8. Karsunky, H., Merad, M., Cozzio, A., Weissman, I. L., Manz, M. G. Flt3 ligand regulates dendritic cell development from Flt3+ lymphoid and myeloid-committed progenitors to Flt3+ dendritic cells in vivo. J. Exp. Med. 198, 305-313 (2003).
  9. Manz, M. G., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L., Akashi, K. Dendritic cell potentials of early lymphoid and myeloid progenitors. Blood. 97, 3333-3341 (2001).
  10. D'Amico, A., Wu, L. The early progenitors of mouse dendritic cells and plasmacytoid predendritic cells are within the bone marrow hemopoietic precursors expressing Flt3. J. Exp. Med. 198, 293-303 (2003).
  11. Sathe, P., Vremec, D., Wu, L., Corcoran, L., Shortman, K. Convergent differentiation: myeloid and lymphoid pathways to murine plasmacytoid dendritic cells. Blood. 121, 11-19 (2013).
  12. Shigematsu, H., et al. Plasmacytoid dendritic cells activate lymphoid-specific genetic programs irrespective of their cellular origin. Immunity. 21, 43-53 (2004).
  13. Reizis, B., Bunin, A., Ghosh, H. S., Lewis, K. L., Sisirak, V. Plasmacytoid dendritic cells: recent progress and open questions. Annu. Rev. Immunol. 29, 163-183 (2011).
  14. Inaba, K., et al. Generation of large numbers of dendritic cells from mouse bone marrow cultures supplemented with granulocyte/macrophage colony-stimulating factor. J. Exp. Med. 176, 1693-1702 (1992).
  15. Naik, S. H., et al. Development of plasmacytoid and conventional dendritic cell subtypes from single precursor cells derived in vitro and in vivo. Nat. Immunol. 8, 1217-1226 (2007).
  16. Onai, N., et al. Identification of clonogenic common Flt3+M-CSFR+ plasmacytoid and conventional dendritic cell progenitors in mouse bone marrow. Nat. Immunol. 8, 1207-1216 (2007).
  17. Chen, Y. L., et al. A type I IFN-Flt3 ligand axis augments plasmacytoid dendritic cell development from common lymphoid progenitors. J. Exp. Med. 210, 2515-2522 (2013).
  18. Whitlock, C. A., Tidmarsh, G. F., Muller-Sieburg, C., Weissman, I. L. Bone marrow stromal cell lines with lymphopoietic activity express high levels of a pre-B neoplasia-associated molecule. Cell. 48, 1009-1021 (1987).
  19. Onai, N., Obata-Onai, A., Tussiwand, R., Lanzavecchia, A., Manz, M. G. Activation of the Flt3 signal transduction cascade rescues and enhances type I interferon-producing and dendritic cell development. J. Exp. Med. 203, 227-238 (2006).
  20. Szilvassy, S. J., et al. Leukemia inhibitory factor upregulates cytokine expression by a murine stromal cell line enabling the maintenance of highly enriched competitive repopulating stem cells. Blood. 87, 4618-4628 (1996).
  21. Arcanjo, K., et al. Biochemical characterization of heparan sulfate derived from murine hemopoietic stromal cell lines: a bone marrow-derived cell line S17 and a fetal liver-derived cell line AFT024. J. Cell. Biochem. 87, 160-172 (2002).
  22. Onai, N., et al. A clonogenic progenitor with prominent plasmacytoid dendritic cell developmental potential. Immunity. 38, 943-957 (2013).
  23. Whitlock, C. A., Muller-Sieburg, C. E. Long-term B-lymphoid cultures from murine bone marrow establishment and cloning by using stromal cell line AC 6.21. Methods Mol. Biol. 75, 231-248 (1997).
  24. Chen, Y. -L., Chang, S., Chen, T. -T., Lee, C. -K. Efficient Generation of Plasmacytoid Dendritic Cell from Common Lymphoid Progenitors by Flt3 Ligand. PLoS ONE. 10, (8), e0135217 (2015).
<em>Экстракорпоральное</em> поколение мышиный плазмоцитов дендритных клеток из общего предшественники лимфоидных клеток с использованием Feeder System АС-6
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Chang, S., Pai, L. M., Lee, C. K. In Vitro Generation of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells from Common Lymphoid Progenitors using the AC-6 Feeder System. J. Vis. Exp. (105), e53211, doi:10.3791/53211 (2015).More

Chang, S., Pai, L. M., Lee, C. K. In Vitro Generation of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells from Common Lymphoid Progenitors using the AC-6 Feeder System. J. Vis. Exp. (105), e53211, doi:10.3791/53211 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter