Abstract
心脏成纤维细胞（CFS）成心肌细胞诱导直接转化（ICMS），通过治疗心脏疾病提供替代战略保持着再生医学的巨大潜力。这个转换已通过确定的因子如GATA4（G），MEF2C（M）和Tbx5中（T）的强制表达来实现。传统上，ICMS是由病毒表达这些个人因素鸡尾酒产生。然而，重新编程的效率是相对低的，大部分的体外 G，M，T转导的成纤维细胞不成为完全重新编程，使得难以研究的重编程机制它。我们最近已经表明，G，M的化学计量，T是用于有效ICM重新编程的关键。 G，M，T的具有M和低水平的G和T的通过使用我们的多顺反子MGT向量（以下称为MGT）显著增加重新编程的效率达到了较高水平的最佳化学计量学和体外改善ICM质量。在这里，我们提供用于产生ICMS与从心脏成纤维细胞MGT构建体的方法的详细描述。心脏成纤维细胞，代病毒重编程和重编程过程的评价的隔离也包括以提供有效和可再现代ICMS的一个平台。
Protocol
这里列出的协议采用新生小鼠。动物保健和实验是按照由科实验室的动物医学（DLAM）北卡罗来纳大学教堂山分校制定的准则进行。
1.准备缓冲区和媒体
- 制备成纤维细胞（FB）介质：补编500毫升的IMDM培养基用100ml胎牛血清（FBS）和6ml青霉素/链霉素。
- 制备ICM介质：补编400毫升DMEM培养基用100ml的M199培养基和50ml FBS中。
- 准备B27介质：补充490毫升RPMI1640培养基用10ml B27媒体。
- 制备开发平台-E培养基：补编500毫升DMEM培养基用50ml的FBS，5 ml青霉素/链霉素和5ml非必需氨基酸。
- 制备开发平台-E转染培养基：补编500毫升DMEM培养基用50ml的FBS和5ml非必需氨基酸。
- 镨epare明胶包被的24孔板：添加0.5 ml的0.1％明胶溶液至24孔板一个井，在37℃下使用前右至少10分钟，并吸出。
- 制备FACS标记缓冲液：补编500毫升DPBS用10ml的FBS和2ml EDTA（0.5M），以达到2mM的最终浓度。通过一个0.22微米的过滤器，并储存在4℃。
- 制备MACS分类缓冲器：补编500毫升的DPBS与2.5g的BSA和2ml EDTA（0.5M），以达到2mM的最终浓度。通过一个0.22微米的过滤器，并储存在4℃。
- 制备2×HBS缓冲液为染：补充500毫升的HEPES缓冲液（50mM）配有280 mM氯化钠（8.1816克），10毫米氯化钾（0.37275克），1.5毫的 Na 2 HPO 4（0.10647克），12毫葡萄糖（1.08096克）。加约650微升10N NaOH将pH调节至7.05-7.12。通过在4℃的0.22微米孔径过滤和储存过滤。
- 准备2.5M的氯化钙溶液转：添加18.376克钙Cl 2中至50ml双蒸2 O.通过在4℃的0.22微米孔径过滤和储存过滤。
- 准备ICC（免疫细胞化学）固定缓冲液：添加5 ml的多聚甲醛（PFA，32％）到35 ml的DPBS达到4％的最终浓度。
- 准备ICC透化缓冲液：添加0.1 ml的曲通至100毫升DPBS达到0.1％的最终浓度。
- 准备ICC封闭缓冲液：添加5克牛血清白蛋白（BSA）到100毫升DPBS达到5％的最终浓度。
- 准备ICC染色缓冲液：添加1克的BSA至100ml DPBS达到1％的最终浓度。
2.代新生小鼠心肌成纤维细胞
- 生成块培养方法心脏成纤维细胞
- 清洁新生儿αMHC-GFP转基因小鼠（P1到P2）用75％的乙醇。用无菌剪刀剪了头。然后，让来自在一个腋下到另一水平切口。使用无菌钝弯曲钳解剖出心脏，并将其放置在含冰冷的PBS缓冲液的24孔板的一个孔。
- 另外，横向切开后挤出的心脏。
- 通过荧光显微镜检查心脏GFP表达。由于GFP的表达是由αMHC启动子是一种心脏特异性启动子驱动，从转基因小鼠的心脏应该在绿15，而负心脏是暗淡的，在任何荧光。
- 需要3-4 GFP阳性的心成60毫米中心孔培养皿并剁碎成小块尺寸小于1毫米3通过无菌剪刀和镊子。
- 将3-4碎的心，1个10 cm培养皿用2毫升FB媒体。让组织安顿下来3小时。
- 慢慢加入8毫升预热FB媒体包含心脏组织的菜肴。请勿打扰组织了三天。
- 更换介质每三天。
- 第7天，aspir吃了培养液，洗涤细胞用DPBS。加入3 ml的0.05％胰蛋白酶，以每块板和消化在37℃下5分钟。
- 添加5毫升FB媒体解渴胰蛋白酶。轻轻分离细胞与细胞刮刀。吸取媒体上下进一步机械分离组织。
- 收集细胞，并通过40微米的细胞滤网过滤，以避免心脏组织碎片的污染，然后通过在200×g离心纺丝5分钟沉淀细胞。
- 洗涤细胞一旦与MACS缓冲液和细胞准备进行排序。
- 清洁新生儿αMHC-GFP转基因小鼠（P1到P2）用75％的乙醇。用无菌剪刀剪了头。然后，让来自在一个腋下到另一水平切口。使用无菌钝弯曲钳解剖出心脏，并将其放置在含冰冷的PBS缓冲液的24孔板的一个孔。
- 生成的酶消化法心脏成纤维细胞
- 收获GFP阳性的心为2.1.1。转移了所有的心情到10cm皿用10毫升冰冷的DPBS。
- 挤心室用无菌镊子以除去血液并用冰冷的DPBS中冲洗一次。
- 修剪的心是自由的其他组织和脂肪。
- 横切心脏成仍松散连接的约4个。
- 如果小于20心中，调心入15ml锥形管中以8毫升温的0.05％胰蛋白酶-EDTA，并在37℃下进行15分钟。
- 如果有20-30心中，转移心中到50ml锥形管中，用10毫升温的0.05％胰蛋白酶-EDTA，并在37℃下进行15分钟。
- 丢弃胰蛋白酶，并添加5毫升（对于小于20的心）或10毫升（20-30心）温暖的II型胶原酶（0.5毫克/毫升）在HBSS。
- 涡旋上涡旋管为在约4至6的速度级1分钟（如果液体不起床到盖，则速度为细）。
- 孵育管中37℃水浴3-5分钟。
- 涡管1分钟。
- 沉积物用于通过重力1分钟，直到组织碎片沉淀下来，收集液态到含有5毫升冷的FB培养基的新管中。
- 重复步骤2.2.6-2.2.10 3-5倍。
- 通过40微米的细胞过滤过滤把所有的收藏品使单细胞悬浮液。
- 离心机在200×g离心5分钟，在4℃。
- 悬浮细胞在10ml MACS缓冲液中，离心，在200×g离心5分钟，在4℃。
- 可选：如果有很多血细胞，重悬细胞与1ml RBC裂解缓冲液（150mM的氯化铵 ，10毫KHCO 3和0.1mM EDTA）中，保持在冰上1分钟，然后稀释用10ml MACS缓冲液和离心机在200×g离心5分钟。洗一次用MACS缓冲。
- Thy1.2 +成纤维细胞通过MACS分离（磁性激活细胞分选）
- 通过台盼蓝染色测定存活细胞数。
- 取10微升的细胞从10 mL细胞悬液步骤2.2.14。用10微升0.4％台盼蓝溶液混合。
- 该混合物添加到血球。允许它静置3-5分钟，然后在显微镜下立即检查。死细胞被染成蓝色，活细胞是未染色。
- 通过台盼蓝染色测定存活细胞数。
- 为小于1×10 7个细胞，重悬细胞，在90微升10微升Thy1.2微珠冷冻的MACS缓冲液中。添加更多的珠按比例，如果有大于1×10 7个细胞。拌匀，孵育在冰箱中（2-8°C）30分钟。
- 加入10 mL的MACS缓冲液和自旋样品在200×g离心5分钟;用10ml MACS缓冲液，再离心洗一次。
- 带来的体积至2ml在MACS缓冲液中。
- 设置一个MACS机在油烟机。插入一个LS柱到分离器。应用3 ml的MACS缓冲液向柱平衡它。
- 通过平衡LS列通过细胞悬液。
- 洗3次，用2ml MACS每次缓冲。
- 就拿LS列关闭t他分离器和洗脱3次用2ml MACS缓冲液到一个新的50ml管中。
- 旋转，在200×g离心5分钟。
- 悬浮细胞在10毫升FB媒体，计数细胞和种子成板在适当的密度。用于从外植体培养方法产生的成纤维细胞，所述种子细胞密度可以是约2-3×10 4个细胞/孔的24孔板中。从酶消化的方法产生的成纤维细胞，将细胞密度可能约为4-5×10 4个细胞/孔的24孔板中。
3.逆转录病毒生成的ICM重新编程
注意：执行在无菌条件下在一个BSL2生物安全柜以下步骤。妥善处置转染的细胞，吸头和管道的建议，以避免对环境和健康危害的风险。
- 保持开发平台-E细胞在开发平台-E的介质补充有1μg/ ml的嘌呤霉素和10μg/ ml的b在37℃下lasticidin用5％ 的 CO 2。
- 第2天，更换，由缺乏嘌呤和稻瘟开发平台-E培养基中。
- 在第0天，拆分开发平台-E细胞成10厘米的转染前一天以大约每盘4-5×10 6个细胞的菜肴。细胞应为〜上转染当天80-90％汇合。
- 在第1天，改变培养基，以转染培养基上在1小时内转染前细胞。转染程序如下：
- 使用商业试剂盒转染
- 混合20微升转染试剂（例如脂质体）和500微升减少血清的培养基（例如，的Opti-MEM）。加10微克的逆转录病毒质粒的另一个500微升减少血清的培养基。在室温下孵育（RT）下各混合物5分钟。
- 慢慢加入该质粒混合物转染混合物。这一步可能需要15-30秒。孵育20分钟后，混合物在RT（溶液可以出现混浊）。 添加混合物滴加至所述细胞。
- 在37℃培养箱中孵育过夜。
- 转用磷酸钙。
- 混合40微升2.5M的氯化钙和440微升双蒸2 O，然后加入20微克的逆转录病毒质粒（调整DDH 2 O的量，使总量为500微升）。
- 加入500微升2×HBS到一个15毫升的锥形管中。
- VORTEX哈佛商学院，同时添加钙DNA混合物到哈佛商学院滴加。此步骤需要约30秒，每个样品。因此，最大限度地同时做3-4个样品。
- 在室温下孵育3分钟孵育较长时间导致更大的沉淀和更少的细胞会占用沉淀物。
- 添加该混合物滴加至细胞和20X显微镜下观察。精细沉淀（很多小的是好的，但一些大的是不好的）应该可以看到。
- 孵育过夜，在37℃培养箱中。
- 第2天，对细胞用8ml预热培养基更换培养基。孵育24小时。
- 在第3天及4天，通过使用10毫升无菌一次性注射器，通过0.45μm孔径的醋酸纤维素过滤器过滤它，并转移到50毫升管收集从碗碟培养上清。加入2毫升逆转录病毒沉淀溶液到每8毫升含有病毒的上清液。轻轻地混合，并孵育过夜，4℃。
- 在第5天，在1500×g下旋转该病毒混合物在4℃下30分钟。病毒颗粒应在管的底部出现白色沉淀。
- 弃去上清液。降速离心残余溶液在1500×g下5分钟。吸卸下流体的所有痕迹时，注意不要打扰沉淀的逆转录病毒颗粒的沉淀。
- 重悬逆转录病毒颗粒与每8毫升病毒上清100微升DPBS缓冲。分装冰上病毒。立即使用或储存在-80℃。
4.重编程心脏成纤维细胞
- 加入4微升10毫克/毫升聚凝胺溶液放入10毫升ICM介质，并通过上下抽吸轻轻混匀。聚凝胺的最终浓度为4微克/毫升。
- 添加含有凝聚胺500微升ICM媒体的24孔板每孔接种成纤维细胞。
- 添加10微升反转录病毒到每孔含有任2-3×10 4个，从外植体培养物或4-5×10 4个细胞的酶消化法的细胞。病毒的量应成比例地增加在不同的培养板或菜肴增加的细胞数量。把板在37℃的培养箱中24-48小时，以使病毒感染。心脏重新编程时间线示于图1。
- 病毒转导后，用500微升常规ICM媒体替换包含媒体的病毒。
- 更换介质每2-3天。阳性筛选病毒转导的细胞，在2微克/毫升添加补充有嘌呤ICM媒体到靶细胞。保持三天。在此之后，保持嘌呤霉素在ICM介质以1微克/毫升的浓度。
- 病毒感染后三天，取板从培养箱并把它的倒置荧光显微镜（20X）下观察GFP表达。
注意：病毒感染后10天，细胞可以收获FACS分析和ICC分析，以确定重编程效率（在步骤5和6）。 - 病毒感染后14天，B27媒体取代ICM媒体。更换介质每三天。自发跳动的细胞位点可能会出现三个（细胞酶消化法）或病毒转导后四（细胞外植体培养方法）周。
重编程效率5.免疫细胞化学分析
- 冲洗细胞用冰冷的PBS三次;去除多余的解决方案。
- 添加0.5 ml的IC卡的固定缓冲液至24孔板各孔中。固定细胞在RT 15-20分钟。
- 冲洗细胞，用PBS三次。
- 添加0.5 ml的IC卡透化缓冲液到24孔板的每个孔中。透化的细胞在室温15分钟。
- 冲洗细胞，用PBS三次。
- 添加0.5 ml的IC卡封闭缓冲到24孔板各孔中，在室温下孵育1小时。
- 稀释的主要抗体与ICC染色缓冲液。加入200μl抗体溶液，每孔孵育过夜，在4℃。抗体的稀释因素中列出的材料。
- 在第二天，用PBS洗涤细胞三次。
- 加入200μl次级抗体溶液至细胞，并孵育1小时，在室温在暗处。
- 用PBS三次洗涤细胞。
- 添加150微升安装含有DAPI到各孔溶液中。允许染色细胞核1分钟。然后圆形的玻璃盖片以及覆盖各个轻轻按压在底面防滑用钳去除气泡。
- 吸出多余的溶液，样品准备用于成像。的代表图像表示重编程的细胞表达心脏标志物cTnT和αActinin在D14示于图2B。
重编程效率的6流式细胞仪分析
- 彻底DPBS洗一次细胞。加0.3 ml胰蛋白酶（0.05％），以每孔并在37℃下5分钟。
- 轻轻敲击板以方便吊装细胞。检查显微镜下细胞脱离。加入1毫升FACS缓冲液到每个孔中，当大多数细胞被离解。移液器上下进一步机械解离的细胞。
- 在24孔板孔转移细胞到96孔深孔板中，以良好。旋，在200×g离心5分钟，在4℃下以收集细胞。
- 洗涤细胞一次，流式细胞仪缓冲。
- 加入100微升固定/透化溶液重悬细胞进行20分钟，在4℃。
- 用1X洗涤液，颗粒洗涤细胞两次，并去除上清。
- 制备在1×洗涤缓冲液中对GFP和肌钙蛋白初级抗体溶液。彻底重悬用50μl抗体溶液各样品，孵育在4℃下30分钟。
- 在1X洗涤液，颗粒一次洗涤细胞，并去除上清液。
- 添加包含的Alexa Fluor 488缀合的驴抗兔IgG和Alexa Fluor 647缀合的驴抗小鼠IgG向每个样品加入50μl次级抗体溶液。孵育在4℃下，在黑暗中30分钟。
- 在1X洗涤液，颗粒一次洗涤细胞，并去除上清液。
- 悬浮细胞于400μl固定缓冲液（DPBS用1％PFA）。细胞转移到FACS管与细胞滤网盖。样品是准备流式细胞仪检测。重新编程efficienc代表FACS分析只有使用Y pMxs-嘌呤霉素MGT构造具有或不具有嘌呤选择示于图2A。
- 使用商业试剂盒转染
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Representative Results
重新编程步骤在图1中总结的示意图。MGT转导后，在重新编程的细胞的GFP表达可以早在第3天嘌呤选择转导的细胞的从第3天开始，并在头两个星期保持检测如果PMX-普罗-MGT构建体被使用。在第10天至14天，心肌标记物像cTnT和αActinin的表达可以由两个IC卡（图2B，步骤5）和FACS（图2A，步骤6）被检测到，这表明起始成纤维细胞正在经历重编程朝向心脏细胞命运。
图1：直接心脏重编程过程的示意图程序在每个时间点在黑盒子中描述。培养基为每个阶段示于下面的时间彩色框线。
图2：重编程效率通过流式细胞仪和ICC评估（A）FACS分析从新鲜分离的成纤维细胞产生的MGT转第10天ICMS。 ICMS（B）的染色在第2周用αMHC-GFP，心脏肌钙蛋白和αActinin用DAPI（4'，6-二脒基-2-苯基）。比例尺：200微米
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Discussion
对于成功的ICM代使用此协议时，存在具有对整体效率产生影响的几个重要因素。尤其在开始成纤维细胞的条件和逆转录病毒编码MGT的质量可以极大地影响重编程效率。
产生的成纤维细胞作为新鲜健康尽可能是重要的。外植体培养方法，成纤维细胞可用于前外植七天后铺于菜肴。酶消化法，成纤维细胞，可以早在隔离的次日使用。冻结或传代的成纤维细胞进行重新编程，不推荐。成纤维细胞的这些额外的治疗将显著减少重编程效率。接种密度是影响重编程效率的另一重要因素。如果细胞是人烟稀少种子，他们往往会变得不健康与不规则的细胞形态和在大尺寸。很少合作ULD那些细胞被转化成ICMS。如果细胞接种过于密集时，MOI（感染复数）为病毒感染降低。未感染的成纤维细胞过度生长显著稀释了重新编程的事件从而导致ICMS低百分比。我们也注意到小细胞的鹅卵石样形态的出现，如果更多的细胞接种进行重新编程。它们几乎不能被重新编程，从而导致降低的重编程效率。当修改协议的组织培养皿不同大小，则建议接种的细胞数目成比例地调整到培养皿的表面积。
成纤维细胞的纯度为重编程的关键。成纤维细胞的高纯度既可以通过FACS分选15或MACS富集如我们这里所描述而实现。相比于FACS分选，MACS分选更容易，更温和，更方便。 MACS后细胞纯度可以达到90％（重量）母鸡严格按照协议。成纤维细胞的低纯度可能降低重编程效率，因为被污染的细胞是难度比成纤维细胞重新编程并且它们增殖比重编程细胞快得多。它也强烈建议MACS之后种子细胞和播种后一夜之间执行病毒感染。排序后的成纤维细胞在培养皿增长的很长一段时间，从而降低了只感染增殖细胞逆转录病毒吸收后可部分变得衰老。尾尖成纤维细胞（专题信托基金）和胚胎成纤维细胞（MEF中）已报告因子10,12,19,26以转换成ICMS与其他一些转录。我们的协议在这里只着重于心脏成纤维细胞。此协议的其他类型的成纤维细胞的应用可进一步由于成纤维细胞签名如增殖状态，遗传和表观遗传标志的固有变化优化。
钍逆转录病毒转导电子质量是极为重要的。低滴度的病毒不能成纤维细胞转化成ICMS。而病毒在过量会引起细胞毒性直接导致成纤维细胞死亡。有必要确定病毒滴度和优化的病毒剂量为重新编程基于实验室建立和实验条件。该方法用于病毒滴定已经23前被彻底描述。事实上我们发现，开发平台-E细胞的生长条件，直接涉及病毒质量。建议解冻开发平台-E细胞在较低的通道（<30℃）各一次。在通道3获得的细胞是最适合的包装病毒的密度，每10厘米培养皿围绕4-5×10 6个细胞 。此外，新鲜收获的病毒产生比冻结病毒更高的重编程效率。请注意，共感染MGT病毒与另一种pMxs基于矢量逆转录病毒将降低重编程效率possibLY由于相同类型的两种病毒之间的竞争。这里有两种不同的转染方法。这两种方法产生可比较的逆转录病毒。而商业脂质体是昂贵的，但稳定，转染磷酸钙便宜。需要的HBS缓冲液制备取十分谨慎，因为HBS缓冲液pH值显著影响转染效率。
有此协议的一些限制需要加以解决。之一的局限性在于逆转录病毒的使用，这不可避免地呈现到生物安全问题。成纤维细胞的异质性和缺乏具体的心脏成纤维细胞标志物进行隔离也会影响细胞重新编程的纯度。的重编程效率的变化可能是由于批变异固有成纤维细胞条件和病毒产生观察到。此外，虽然重编程的细胞表达肌节结构的蛋白质，如肌钙蛋白T和αActinin，但它们仍然没有特征的功能特性，例如收缩力，电传播成熟的心肌细胞。
总之，这里所描述的方法允许有效地产生基于逆转录病毒递送M，G，T转录因子在一个单一的构建体ICMS的。我们的协议提供了ICM研究可重现的和有价值的平台，并且将有利于在高通量筛选和ICM重编程的机理研究正在进行的努力，最终将ICM重新编程字段更靠近临床应用。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| anti-cardiac troponin T | Thermo Scientific | MS-295-PO | 1:200 for FACS and 1:400 for ICC |
| anti-GFP | Life Technologies | A11122 | 1:500 for both FACS and ICC |
| anti- aActinin | Sigma-Aldrich | A7811 | 1:500 for both FACS and ICC |
| anti-Connexin43 | Sigma-Aldrich | C6219 | 1:500 for ICC |
| anit-Mef2c | Abcam | ab64644 | 1:1,000 for ICC |
| anti-Gata4 | Santa Cruz Biotechnology | sc-1237 | 1:200 for ICC |
| anti-Tbx5 | Santa Cruz Biotechnology | sc-17866 | 1:200 for ICC |
| Alexa Fluor 488–conjugated donkey anti-rabbit IgG | Jackson ImmunoResearch Inc | 711-545-152 | 1:500 for both FACS and ICC |
| Alexa Fluor 647–conjugated donkey anti-mouse IgG | Jackson ImmunoResearch Inc | 715-605-150 | 1:500 for both FACS and ICC |
| Cytofix/Cytoperm kit for intracellular staining | BD Biosciences | 554722 | |
| Rhod-3 Calcium Imaging Kit | Life Technologies | R10145 | |
| Thy1.2 microbeads | Miltenyi Biotec | 130-049-101 | |
| Vectashield solution with DAPI | Vector labs | H-1500 | |
| FBS | Sigma-Aldrich | F-2442 | |
| Trypsin-EDTA (0.05%) | Corning | 25-052 | |
| PRMI1640 medium | Life Technologies | 11875-093 | |
| B27 supplement | Life Technologies | 17504-044 | |
| IMDM | Life Technologies | 12440-053 | |
| Opti-MEM Reduced Serum Medium | Life Technologies | 31985-070 | |
| M199 medium | Life Technologies | 10-060 | |
| DMEM, high glucose | Life Technologies | 10-013 | |
| Penicillin-streptomycin | Corning | 30-002 | |
| Non-essential amino acids | Life Technologies | 11130-050 | |
| Lipofectamine 2000 | Life Technologies | 11668500 | |
| blasticidin | Life Technologies | A11139-03 | |
| puromycin | Life Technologies | A11138-03 | |
| Collagenase II | Worthington | LS004176 | |
| polybrene | Millipore | TR-1003-G | |
| Triton X-100 | Fisher | BP151-100 | |
| CaCl2 | Sigma-Aldrich | C7902 | |
| HEPES | Sigma-Aldrich | H4034 | |
| NaCl | Sigma-Aldrich | BP358-212 | |
| KCl | Sigma-Aldrich | PX1405 | |
| Na2HPO4 | Sigma-Aldrich | S7907 | |
| Glucose | Sigma-Aldrich | G6152 | |
| Bovine serum albumin | Fisher | 9048-46-8 | |
| paraformaldehyde | EMS | 15714 | |
| Retrovirus Precipitation Solution | ALSTEM | VC-200 | |
| 0.4% Trypan blue solution | Sigma-Aldrich | T8154 | |
| gelatin | Sigma-Aldrich | G1393 | |
| Dulbecco's PBS without CaCl2 and MgCl2 (D-PBS, 1x) | Sigma-Aldrich | D8537 | |
| HBSS (Hanks Balanced Salt Solution) | Corning | 21022 | |
| LS column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
| 0.45 μm cellulose acetate filter | Thermo Scientific | 190-2545 | |
| 24-well plates | Corning | 3524 | |
| 10 cm Tissue culture dishes | Thermo Scientific | 172958 | |
| 60 mm center well culture dish | Corning | 3260 | |
| 96 Well Clear V-Bottom 2 ml Polypropylene Deep Well Plate | Denville Scientific | P9639 | |
| Polystyrene round-bottom tubes with cell-strainer cap | BD Biosciences | 352235 | |
| Centrifuge | Eppendorf | 5810R | |
| Vortexer MINI | VWR | 58816-121 | |
| EVOS FL Auto Cell Imaging System | Life Technologies | AMAFD1000 | |
| MACS MultiStand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
| MidiMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-042-302 | |
| Round glass cover slip | Electron Microscopy Sciences | 72195-15 |
References
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