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Chemistry

In Situ caracterización de proteínas hidratadas en agua por Salvi y TOF-SIMS

doi: 10.3791/53708 Published: February 15, 2016
* These authors contributed equally

Summary

Este trabajo presenta un protocolo para el manejo de líquidos y de introducción de muestra a un microcanal para in situ de iones secundarios análisis de espectrometría de masas de tiempo de vuelo de biomoléculas de proteínas en una solución acuosa.

Abstract

Este trabajo demuestra la caracterización in situ de biomoléculas de proteínas en la solución acuosa utilizando el Sistema de Análisis de la interfaz de líquido de vacío (SALVI) y espectrometría de masas de tiempo de vuelo de iones secundarios (SIMS-TOF). La película de proteína fibronectina se inmoviliza sobre la membrana de nitruro de silicio (SiN) que forma el área de detección SALVI. Durante el análisis ToF-SIMS, se llevaron a cabo tres modos de análisis que incluye alta espectrometría de masas de alta resolución espacial, las imágenes de dos dimensiones (2D), y perfiles de profundidad. Los espectros de masas se adquirieron en los modos tanto positivos como negativos. agua desionizada también se analizó como una muestra de referencia. Nuestros resultados muestran que la película de la fibronectina en agua tiene picos de racimo de agua más distintos y más fuertes en comparación con el agua sola. picos característicos de fragmentos de aminoácidos también son observables en la proteína hidratada ToF-SIMS espectros. Estos resultados ilustran que la adsorción molécula de proteína en una superficie puede ser estudiado dynamicaLLY usando Salvi y ToF-SIMS en el medio líquido para la primera vez.

Introduction

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La hidratación es crucial para la estructura, conformación 1, 2 y 3 actividad biológica de las proteínas. Las proteínas sin moléculas de agua que rodean ellos no tendrían actividades biológicas viables. En concreto, las moléculas de agua interaccionan con la superficie y la estructura interna de las proteínas, y diferentes estados de hidratación de las proteínas hacen que tales interacciones distinta. 4 La interacción de las proteínas con las superficies sólidas es un fenómeno fundamental con implicaciones en la nanotecnología, biomateriales y procesos de ingeniería de tejidos. Los estudios han indicado durante mucho tiempo que se pueden producir cambios conformacionales como una proteína se encuentra con una superficie. ToF-SIMS se ha previsto como la técnica que tiene el potencial para estudiar la interfaz de proteína-sólido. 5-7 Es importante entender la hidratación de las proteínas sobre superficies sólidas, que potencialmente proporciona una comprensión fundamental del mecanismo de su estructura, conformación y biológicaactividad al.

Sin embargo, las técnicas analíticas superficie principal son en su mayoría basados ​​en vacío y aplicaciones directas para los estudios de líquidos volátiles son difíciles debido a la rápida evaporación del líquido volátil en el entorno de vacío. Hemos desarrollado un vacío interfaz de microfluidos compatible, Sistema de Análisis en la interfaz de líquido de vacío (SALVI), para permitir la observación directa de superficies de líquido y de las interacciones líquido-sólido utilizando el tiempo de vuelo espectrometría de masas de iones secundarios (ToF-SIMS). 8- 11 los aspectos únicos incluyen los siguientes: 1) la ventana de detección es una abertura de 2-3 micras de diámetro que permita imagen directa de la superficie del líquido, 2) la tensión superficial se utiliza para mantener el líquido dentro de la abertura, y 3) es SALVI portables entre múltiples plataformas analíticas 11,12.

SALVI se compone de una membrana de nitruro de silicio (SiN) como el área de detección y un microcanal hecho de polidimetilsiloxano (PDMS). Es fabricated en la sala limpia, y los factores de fabricación y de diseño se han detallado en los documentos y patentes anteriores. 8-12 Las aplicaciones de TOF-SIMS como una herramienta analítica se demostró usando una variedad de soluciones acuosas y las mezclas líquidas complejas, algunas de las que contenía nanopartículas. 13-17 en concreto, SALVI líquido TOF-SIMS dinámico permite sondeo de la interfase líquido-sólido de los sistemas biológicos vivos (es decir, los biofilms), células individuales, y la interfaz de electrolito sólido, la apertura de nuevas oportunidades para la fase in situ condensada Los estudios incluyendo líquidos utilizando TOF-SIMS. Sin embargo, el diseño actual no permite interacciones gas-líquido todavía. Esta es una dirección de desarrollo futuro. SALVI se ha utilizado para estudiar la película de proteína hidratado en este trabajo para la primera vez.

La fibronectina es un dímero de proteína de uso común, que consiste en dos monómeros casi idénticos unidos por un par de enlaces de disulfuro, 18 que iEs bien conocido por su capacidad para unirse a las células 19,20. Fue elegido como un sistema modelo para ilustrar que la película de proteína hidratado podía palpar de forma dinámica utilizando el líquido SALVI TOF-SIMS enfoque. La solución de proteína se introdujo en el microcanal. Después de incubar durante 12 horas, una película de proteína hidratado formado en el lado posterior de la membrana SiN. Agua desionizada (DI) se utilizó para enjuagar el canal después de la introducción de proteínas. Se recolectó información de las moléculas de proteína fibronectina hidratados en el microcanal SALVI usando dinámica TOF-SIMS. DI agua también se estudió como un control para comparar con los resultados obtenidos a partir de película delgada fibronectina hidratado. No se observaron diferencias claras entre la película de proteína hidratado y agua DI. Este trabajo demuestra que la adsorción de proteínas en la superficie en el medio líquido puede ser estudiada usando la novela Salvi y enfoque TOF-SIMS líquido. El protocolo de vídeo está destinado a proporcionar orientación técnica para las personas que están interesadasen la utilización de esta nueva herramienta analítica para diversas aplicaciones de SALVI con TOF-SIMS y reducir errores innecesarios en el manejo de líquidos, así como la adquisición de datos TOF-SIMS y análisis.

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Protocol

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1. Limpieza y esterilización del microcanal SALVI

  1. La esterilización del microcanal en SALVI
    1. Dibuje 2 ml de solución acuosa al 70% de etanol en una jeringa, conectar la jeringa con el extremo de entrada de SALVI, e inyecte lentamente 1 ml de líquido en 10 min. Retire la jeringa al final de la inyección. A continuación, conecte la entrada y salida de SALVI mediante una unión polieteretercetona (PEEK). Alternativamente, utilizar una bomba de jeringa para llevar a cabo el mismo procedimiento. Por ejemplo, ajustar la velocidad de flujo de 100 l / min.
    2. Mantenga el microcanal SALVI lleno de solución de etanol al 70% a temperatura ambiente durante 4 hr.
  2. Introducir agua desionizada (DI) en SALVI
    1. Dibuje 2 ml de agua DI esterilizados en un jeringa, conectar la jeringa con la entrada de SALVI, e inyecte lentamente 1 ml de líquido en 10 min. Retire la jeringa, y conectar la entrada y la salida del SALVI mediante una unión PEEK. Alternativamente, utilizar una bomba de jeringa como se menciona enpaso 1.1.1.

2. La inmovilización de la película de proteína en SALVI

  1. Inmovilizar la película de proteína en SALVI
    1. Dibuje 2 ml de fibronectina (10 mg / ml en solución salina tamponada con fosfato, PBS) solución en una jeringa, conectar la jeringa con la entrada de SALVI, inyecte lentamente 1 ml del líquido en 10 min, retire la jeringa, y conectar la entrada y la salida del SALVI mediante una unión PEEK.
    2. Incubar la SALVI lleno con la solución de fibronectina en una placa de cultivo limpio, mantener el plato en la campana a temperatura ambiente durante 12 hr.
    3. Dibuje 2 ml de agua DI esterilizada en una jeringa y conectar la jeringa con la entrada de SALVI. inyectar lentamente 1 ml de agua en 10 minutos, retire la jeringa, y conectar la entrada y la salida del SALVI.
      Nota: Si está equipado con un microscopio de luz, comprobar el SALVI bajo el microscopio para asegurarse de que la membrana de SiN está intacto antes del análisis ToF-SIMS. Ahora el dispositivo está listo para SALVI TOF-SIMS unaANÁLISIS.

3. Instalar SALVI en la Cámara de carga cerrada TOF-SIMS

Nota: Se deben usar guantes en todo momento al manipular el dispositivo de Salvi y de instalarlo en la etapa de TOF-SIMS para evitar posibles contaminaciones durante el análisis de superficie.

  1. Monte SALVI al escenario
    1. Coloque la etapa TOF-SIMS sobre una superficie plana y limpia. Coloque el dispositivo SALVI en el escenario con la oblea de silicio y la membrana de SiN hacia arriba. Fijar la SALVI utilizando cuatro piezas metálicas de sujeción y atornillar las piezas de metal que sujetan la esquina del dispositivo en la placa de metal con cuatro tornillos.
    2. rodar suavemente hacia arriba el tubo de PFTE conectado al canal microfluídico. Utilice cuatro piezas de metal y cuatro tornillos para sujetar la pieza rígida hacia abajo. Asegúrese de que el dispositivo se coloca en el espacio abierto en la etapa de SIMS de modo que no interfiera con el haz de iones primario durante el análisis. Imagen adicional e ilustración de la fabricat SALVIiones y la instalación están disponibles en publicaciones anteriores. 8,9,11
  2. Montar la Copa de Faraday al escenario
    1. Fijar la copa de Faraday en el escenario por un tornillo.
  3. Cargar la etapa en la cámara de carga cerrada TOF-SIMS
    1. Abra la carga cerrada TOF-SIMS, sostener y fijar la etapa horizontal sobre la plataforma de carga, y cerrar la puerta de carga cerrada.

4. TOF-SIMS Adquisición de Datos

  1. Encienda la bomba de vacío y garantizar vacío adecuada (por ejemplo, del orden de 10 -6 mbar o Torr) se alcanza en la cámara de carga cerrada.
  2. Mueva el SALVI en la cámara principal una vez que el vacío se estabiliza después de aproximadamente 30 min.
    Nota: El vacío debe ser inferior a 5 x 10 -6 mbar de vacío en la cámara principal durante la adquisición de datos. De lo contrario, el aumento de vacío es indicativo de una fuga en el sistema de SALVI.
  3. Ajustar el haz de iones primario y un analizador de TOF-SIMS con unaresolución espacial de aproximadamente 400 nm de acuerdo con las recomendaciones del fabricante. La corriente del haz primario es de 1.200 pA mientras que el tiempo de ciclo es de 30 microsegundos en virtud modo DC.
    Nota: Este proceso sigue en gran parte las recomendaciones del fabricante.
  4. Búsqueda del canal de microfluidos con el microscopio óptico. Utilice el centro óptico de la imagen como referencia y alinearlo para ser coherente con el centro de la imagen de iones secundarios.
  5. Antes de cada medición, utilice un 1 KeV O2 + viga (~ 40 nA) para escanear en la ventana de SiN con un área de 500 x 500 m 2 para ~ 15 segundos para eliminar la contaminación. Asimismo, el uso de un cañón de proyección de electrones para compensar la carga superficial durante todas las mediciones. Utilice la función automática del cañón de proyección en el modo por defecto para este paso.
  6. Seleccione el modo positivo o negativo antes de la adquisición de datos. Utilice el 25 keV Bi viga 3 + como el haz de iones primario en todas las mediciones.
    Nota: Los pasos son similares fo adquisiciones de datos positivos y negativos. Por el interés de espacio, el modo positivo se describe en detalles aquí.
    1. perfiles de profundidad
      1. Explorar el haz Bi 3 + en una zona redonda con un diámetro de ~ 2 micras con 32 píxeles por 32 píxeles de resolución.
      2. Para minimizar el tiempo requerido para perforar a través de la membrana SiN, utilice un ancho de pulso largo (es decir, 180 nseg, la corriente de haz ~ 1,0 Pa a un tiempo de ciclo de 100 microsegundos) Bi 3 + haz. Las intensidades de iones secundarios representante del aumento de la superficie del líquido cuando se alcanza traspaso de. El tiempo de traspaso de varía de 300 seg a 500 seg, dependiendo de la carga de la membrana SiN.
        Nota: Esta diferencia parece estar relacionada con el lote de membranas SiN adquiridos de acuerdo con nuestra experiencia. Sin embargo, el tiempo de traspaso de realidad no afecta al análisis de datos.
      3. Después de la membrana de nitruro de traspaso de control, mantenga la misma corriente por alrededor de 200 segundos paraobtener datos suficientes para una imagen reconstrucciones 2D.
      4. Reducir el ancho de pulso de 80 ns para la recolección de datos para adquirir espectros de masas con una mejor resolución. Continuar esta adquisición por alrededor de otros 200 seg. Los datos del espectro se muestran en la Figura 1 se obtienen a partir de esta región.
    2. 2D de imágenes y espectros de masas
      1. Recoger la formación de imágenes 2D y datos de los espectros de masas al mismo tiempo en la medición de los datos de profundidad de perfiles. El instrumento TOF-SIMS guarda toda la información de cada punto durante el experimento. Los datos se muestran en diferentes ventanas (Fpanel - Spectra, Fpanel - Perfiles y Fpanel - Imágenes por separado) del software de control digital. Comprobar los datos en cada panel juiciosamente durante la adquisición de datos.

Análisis 5. TOF-SIMS de Datos

Nota: El análisis de datos se lleva a cabo inicialmente utilizando el software decisivo IonToF TOF-SIMS.

  1. Abra la unaANÁLISIS software de SIMS (Medición Explorer) y haga clic en los "perfiles", "botones de imagen 'espectros' y ', respectivamente, para procesar perfil de profundidad, el espectro de m / z, y los datos de imagen.
  2. Abrir los archivos de datos que tienen la extensión ".ita".
  3. Seleccionar los picos de interés, escriba el nombre de la especie en el cuadro de "ion", y etiquetarlos con diferentes colores en el espectro. Utilice la rueda de desplazamiento del ratón para arrastrar a lo largo del eje x. Utilizar las teclas Ctrl y la rueda de desplazamiento para ajustar alturas de pico y anchuras. interruptores letra "L" entre los modos logarítmico y lineal a lo largo del eje y.
  4. Llevar a cabo la reconstrucción de datos antes de la calibración de masas. De lo contrario, es difícil elegir la separación entre picos en la etapa de calibración de masas.
    1. Seleccione los datos de perfiles de profundidad de interés y reconstruir los espectros de acuerdo a la serie temporal perfil de profundidad.
    2. Haga clic en el botón de la reconstrucción. En la ventana "Inicio Reconstrucción", forma en un rango de exploración de interest. Haga clic en "OK" para reconstruir los datos del perfil de profundidad.
  5. Realizar una calibración de masas. Pulse la tecla "F3" para abrir la ventana de "calibración de masa". Elija picos de calibración en base a la muestra específica. 21 En este trabajo, utilice los siguientes picos CH3 + (m / z 15), H3O + (m / z 19), C 2 H 5 + (m / z 29 ), H 5 O 2 + (m / z 37), C 3 H 7 + (m / z 43), H 7 O 3 + (m / z 55), H 9 O 4 + (m / z 71), H 11 O 5 + (m / z 99) y H 13 O 6 + (m / z 109) para el modo positivo. Utiliza el siguiente picos CH - (m / z 13), O - (m / z 16), OH - (m / z 17), C 2 H - (m / z 25), C 3 H - (m / z 37), y C 4 H - (m / z 49) para el modo negativo.
    1. Seleccionar un pico,asegúrese de que la flecha hacia abajo que está orientado hacia el pico en la esquina inferior izquierda de la ventana. Haga clic en ese pico y escriba el nombre de pico en la ventana de "calibración de masa", haga clic en "Añadir", y el ion de interés se incluye en la calibración de masa.
    2. Por último, haga clic en el botón "Volver a calibrar". Compruebe si las superficies de los picos están en los lugares correctos en función de su masa a carga proporciones. En el menú "Spectrum", seleccione y haga clic en "Aplicar la masa de calibración" a "todos los espectros" o "espectros seleccionados", según el análisis específico que se efectúe.
  6. Que sean necesarios para el análisis de muestras de selección pico, determinar los picos característicos de la muestra de acuerdo a la literatura u otros hallazgos anteriores. Comparar la intensidad de los picos de interés en los espectros m / z. Si es necesario, añadir nuevos picos o eliminar picos inútiles en el pico de la lista.
    1. Añadir picos. Haga clic en un pico, encontrar las líneas rojas en la ventana inferior izquierda. Hold la tecla "Ctrl", desplazarse ratón horizontalmente para definir la anchura del pico, lo que añade un pico a pico de la lista automáticamente. Otra forma de añadir un pico es seleccionar un pico en la ventana principal del espectro y, a continuación, hacer clic en el botón "añadir pico" por encima de la ventana. Si hay muchos picos de añadir, en el menú de "Spectrum", seleccione "picos" de búsqueda, comprobar las especificaciones relacionadas en la ventana que se abre, a continuación, añadir los picos según sea necesario.
    2. Para exportar una lista de pico, en el menú "Lista de pico", seleccione "Guardar ..." pico de la lista en el formato "itmil". Utilizar el botón izquierdo del Ctrl y arrastrar a lo largo del espectro. En la ventana de espectros, seleccionar un pico de interés y arrastre las dos líneas de puntos a las posiciones deseadas.
    3. Para importar una lista de pico, en el menú "Lista intervalo de masas", elegir la opción "Importar ...", localice un archivo de lista de pico existente con la extensión de archivo ".ITPL". Haga clic en "Abrir".
    4. Para utilizar un "itmil" pico de la lista, enel menú "Lista de intervalo de masas", haga clic en "Abrir ...", encontrar el archivo, a continuación, haga clic en "Abrir".
  7. Aplicar una lista de pico para analizar más datos. En la parte inferior-izquierda de la ventana "Spectra", hay una ventana llamada "Lista de intervalo de masas". El pico de la lista importada se muestra aquí.
    1. Haga clic en el archivo de lista de pico para ser utilizado, aplicarlo a la "espectro activo" o "todos los espectros".
  8. Ver los perfiles de datos. En la ventana "Perfil", Utilice la letra "M" para adaptarse a la ventana (toda la gama) y la letra "N" para adaptarse a la del eje y. Utilizar las teclas Ctrl y rueda de desplazamiento para ajustar el ancho de perfil. O use "/" y "*" en el teclado para cambiar el rango del eje y la altura.
  9. Los datos de exportación para el trazado más utilizando otro software gráfico después del análisis inicial.
    1. Para exportar un perfil de profundidad, en la ventana de "perfil", haga clic en el menú "Archivo", luego seleccione "Export & #34 ;, y luego seleccione "Guardar como" un archivo ".txt".
    2. Para exportar un archivo de espectro m / z, en la ventana "Spectra", haga clic en el menú "Archivo" y seleccione "Exportar" y seleccione "Guardar como" un archivo ".txt".
    3. Para exportar un archivo de imagen, en la ventana, impresión de pantalla "Imagen" y guardar como archivo de imagen.

6. TOF-SIMS trazado de datos y presentación

Nota: Utilice una herramienta gráfica para representar los datos después de que los datos de SIMS se procesan utilizando el software instrumental.

  1. Utilizar una herramienta gráfica para importar los datos.
  2. Haz un diagrama con el m / z como el eje x y la intensidad de pico como el eje y para mostrar el espectro reconstruido. Un ejemplo se da en la Figura 1.
  3. Haz un diagrama utilizando el tiempo de pulverización catódica como el eje x y la intensidad de pico como el eje y para mostrar la serie temporal perfil de profundidad reconstruida. Un ejemplo se da en la Figure 2.
  4. Combinar imágenes 2D reconstruidas de diferente m / z y formar una matriz para mostrar el mapeo de iones. Un ejemplo se da en la figura 2.

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Representative Results

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Un par de resultados representativos se presentan para demostrar las ventajas del protocolo propuesto. Mediante el uso de la interfaz de microfluidos SALVI, el haz de iones primario (Bi 3 +) puede bombardear directamente sobre la película de fibronectina hidratado en agua DI. Por lo tanto la asignación de química molecular de la superficie del líquido puede ser adquirido con éxito.

La Figura 1a y 1b muestran los espectros de masa positivo ToF-SIMS del agua película fibronectina y DI hidratada, respectivamente. Los picos de interés, incluyendo las agrupaciones de agua (es decir, m / z 19, 37, 55, 73, 91 y 109) fragmentos y amino ácidos (es decir, m / z 30, 44, 61, 74, 81, 83, y 98) se indican por las flechas rojas. Además de los picos característicos de los fragmentos de aminoácidos, que se ha informado ampliamente el uso de muestras de proteínas secas, los picos de las agrupaciones de agua se observan en elLos espectros de masas de película fibronectina hidratada en agua DI. Además, las intensidades de estos picos de racimo de agua son muy diferentes de los de los espectros de masas de agua DI. Este resultado proporciona la evidencia directa de la propiedad de las moléculas de agua que rodean y dentro de las moléculas de proteínas hidratadas que juegan un papel en su adsorción sobre una superficie.

La figura 2a muestra la serie temporal perfil de profundidad de la película fibronectina hidratado y agua DI. A medida que la muestra se encuentra bajo la membrana SiN, las intensidades de los segundos iones seleccionados son insignificantes ante la membrana se perfora a través de SiN (es decir, 280 seg para fibronectina y 340 seg de agua DI). Una vez que la membrana se perfora a través de SiN, las intensidades de estos iones secundarios aumentan significativamente. Cuando se utiliza el ancho de pulso largo, la resolución de masa es relativamente baja. Por lo tanto, el corto proceso de anchura de impulsos se utiliza para obtener datos con una mejor resolución de masade imagen y espectro reconstrucciones como se destaca en la figura 2a. Después de un período de tiempo (es decir, 60 seg para fibronectina y 220 seg para el agua DI), el ancho de pulso reducido se utiliza para obtener m / z espectros con una mejor resolución de masa. Los m / espectros z finales fueron reconstruidos a partir de 200 mediciones por segundo relieve en zonas de sombra verde en la serie temporal perfil de profundidad. La figura 2b muestra las imágenes en 2D de la película fibronectina hidratada y agua DI, que corresponden a la zona de sombra verde en la Figura 2a. Estas imágenes 2D representan los cargos de iones secundarios seleccionados de la muestra: la más brillante de la imagen, mayor será el número de iones secundarios. Tales imágenes intuitivas dan una comparación clara de iones secundarios seleccionados entre diferentes muestras, que es útil en el análisis de datos. De acuerdo con nuestra experiencia, la diferencia en el tiempo de SiN traspaso de control varía de lote a lote de las membranas pecado. Sin embargo, no afecta a la reresultados de la dinámica de análisis ToF-SIMS.

Figura 1
Figura 1: La comparación de los espectros de ToF-SIMS positivo de la película fibronectina hidratada y agua DI en el microcanal SALVI (a) El espectro de m / z reconstruida de la fibronectina.. (B) El espectro de agua DI.

Figura 2
Figura 2:. Perfiles de profundidad y las imágenes 2D de fibronectina hidratada y agua DI (a) La profundidad de perfiles de series de tiempo de la fibronectina y el agua DI en el modo positivo. (B) las imágenes 2D reconstruidos correspondiente al verde sombreada 200 segmentos de tiempo sec lo largo de la serie de tiempo perfil de profundidad en (a). Varios medios de característica para carga los coeficientes de relevancia para las agrupaciones de agua(Por ejemplo, m / z 1, 19, 37, 55) se muestran, además de fragmentos de aminoácidos conocidos (por ejemplo, m / z 30, 83, 98). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Discussion

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SALVI es una interfaz de microfluidos que permite superficie del líquido dinámico y el análisis de la interfaz líquido-sólido por instrumentos basados ​​en el vacío, como ToF-SIMS y microscopía electrónica de barrido (SEM). Debido al uso de pequeñas aberturas para exponer líquido directamente en el vacío, SALVI es adecuado para muchas técnicas de espectroscopia e imagen finamente enfocada, sin ninguna modificación; 22 la portabilidad y versatilidad de microfluidos que sea una verdadera plataforma de imagen multimodal. Distintas características y el significado de SALVI en comparación con otras técnicas existentes se resumen en varias revisiones recientes. 22-25 A medida que el desarrollador de la tecnología SALVI, nuestro grupo ha estado aplicando activamente a una variedad de estudios con superficies líquidas dinámicas e interfaces líquido-sólido . Algunos ejemplos de nuevas aplicaciones incluyen membranas de células de mamíferos, bacterias fijación biofilm, 15,16 o la formación de nanopartículas como consecuencia de oxidaciones superficiales acuosos. En este papor, presentamos los resultados iniciales líquido TOF-SIMS de la película delgada de proteína hidratado adsorbido sobre la superficie de SiN.

Es absolutamente crítico para manejar cuidadosamente los pasos resaltados en el protocolo. Por ejemplo, en la elaboración de líquido en la jeringa en los pasos 1 y 2, asegúrese de que no hay burbujas en el interior de la jeringa. Porque una vez que las burbujas se inyectan en SALVI, pueden inducir fugas en el vacío. 9 Por lo tanto, si se observan las burbujas, es prudente para deshacerse de ellos mediante el establecimiento de la jeringa en posición vertical y presionando suavemente las burbujas. Además, es muy importante hacer la ventana de pecado en SALVI plana optimizado para el análisis ToF-SIMS, tal como se describe en el paso 3. Esta nivelación de la zona de detección afecta directamente a la calidad de los datos de acuerdo con el diseño de TOF-SIMS. 26 Es es necesario inspeccionar visualmente el dispositivo después de asegurar que todo en el escenario SIMS. Si la ventana de SiN no es horizontal, ajustar los tornillos y cambiar la alturadel dispositivo SALVI para asegurarse de que todo está en el mismo plano que tanto como sea posible. Estos puntos delicados necesitan experiencia y cuidado, que determinan el éxito y la fiabilidad de todo el experimento.

Como se muestra en la Figura 1b, los picos con m / z 19, 37, 55, 73, 91 y 109 tienen recuentos elevados. Esto indica que hay un buen número de grupos de agua (H 3 O +, H 5 O 2 +, H 7 O 3 +, H 9 O 4 +, H 11 O 5 + y H 13 O 6 +) en el sentido positivo iones secundarios. Los otros grupos de agua (datos no mostrados) con valores de m / z más altas también tienen picos relativamente fuertes en comparación con sus picos vecinos. Estas grandes cantidades de grupos de agua son emitidos desde la superficie del agua DI después del traspaso de SiN. señales de racimo agua en el modo positivo no han sido observable en el anterior work; y esto se atribuyó a los bajos recuentos de iones secundarios y no optimizados ToF-SIMS condiciones en el pasado. 8 Con el esfuerzo continuo en la optimización de las condiciones de adquisición Salvi y ToF-SIMS tales como el haz de iones primario (es decir, Bi + vs . Bi + 3), ancho de pulso y las condiciones actuales durante perfiles de profundidad, ahora es posible observar hasta 44 grupos de agua en el modo positivo utilizando las condiciones presentadas en este documento. Los resultados mostrados aquí son prometedores para seguir investigando el papel del agua en la dinámica de varias moléculas biológicas y los sistemas biológicos.

Aquí, como un ejemplo para ilustrar las ventajas de Salvi y ToF-SIMS en el estudio de la dinámica molecular biológicos, se presentó la hidratación de la proteína fibronectina. Los picos de m / z 30, 44, 61, 74, 81, 83, y 98 pertenecen a los fragmentos de aminoácidos de acuerdo con el informe anterior, 27,28, que son mucho más fuertes que los de DI water se muestra en la Figura 1b. Esta diferencia en el aumento de la intensidad de los fragmentos de aminoácidos en la muestra de fibronectina sugiere que estos iones secundarios son de hecho de las propias proteínas. Además, los picos de grupos de agua en la Figura 1A son mucho más fuertes que los de agua DI en la figura 1b, lo que implica que las propiedades de moléculas de agua en la superficie de la adsorción de proteínas y la solución interfacial pueden ser muy diferentes de los que en agua pura.

La figura 2a muestra representativa de perfiles de profundidad serie temporal de dos muestras diferentes: fibronectina y agua DI en el microcanal SALVI. Se recogieron los datos de perfiles de profundidad ya que la ventana de SiN estaba siendo bombardeado por el haz de iones Bi + 3 primaria con el ancho de pulso largo. Como se ve en la figura 2a, la ventana de SiN se perfora a través de en torno a 300 seg. Antes de la ventana pecado en SALVI se perfora through, las intensidades de iones secundarios seleccionados son bastante bajos. Una vez que la ventana se perfora a través de SiN, las intensidades de los iones secundarios aumentan inmediatamente como la superficie del líquido comienza a ser bombardeado por el haz de iones primario. Por ejemplo, las intensidades de H + y H 3 O + muestran un gran aumento, indicando la observación de la superficie del agua. 8,9 Aunque las intensidades son derecho inestable después del traspaso de o en la interfase, pueden llegar a relativamente estable valores después de un período de tiempo (por ejemplo, 60 seg para fibronectina y 220 seg para el agua DI, respectivamente, en la Figura 2a). La diferencia en el tiempo de perforación anchura del pulso no afecta realmente a los resultados del análisis que aquí se ilustran en la reconstrucción de m / z espectros (por ejemplo, Figura 1), debido a que los espectros m / z eficaces son adquiridos después del traspaso de SiN. Sin embargo, un investigador puede optar por utilizar las mismas condiciones para todas las muestras de FOr consistencia y facilidad en la elección de las secciones de datos durante el análisis de datos. Con el fin de obtener una mejor resolución de masas, el ancho de pulso se redujo posteriormente y las intensidades se redujeron en consecuencia en la segunda parte del experimento profundidad de perfiles. La serie temporal perfil de profundidad se recogieron de forma continua durante otros 200 segundos para proporcionar datos amplios para el análisis espectral m / z. Los segmentos de tiempo que se reconstruyeron m / z espectros se destacan en las áreas verdes con sombra.

La fibronectina ha sido ampliamente utilizado para la adsorción superficial antes del cultivo celular; muchos estudios han demostrado la fibronectina es responsable de la adhesión celular y las interacciones célula-biomaterial. 19,20,29 Un estudio reciente caracteriza el espesor de la fibronectina adsorbida en poli cepillos (metacrilato de hidroxietilo) mediante elipsometría. La película delgada fibronectina se determinó que era 3-12 de espesor. 30 nm de espesor Tal es razonable para el análisis en profundidad de perfiles en una solu acuosa. ción 8,9 Con el desarrollo de SALVI, análisis directo de la proteína hidratada adsorbido en la superficie sólida es ahora posible. Este enfoque potencialmente puede tener amplias aplicaciones en el estudio de las interacciones de las proteínas con las superficies sólidas de forma dinámica.

La Figura 2b muestra las imágenes 2D seleccionados de diferentes iones secundarios a partir de muestras de fibronectina y de agua DI, respectivamente. Imágenes 2D se obtienen a partir de los datos temporales de perfiles de profundidad en zonas de sombra verde en la figura 2a, que corresponden a la superficie del líquido después del pecado traspaso de control como se ha descrito anteriormente. Las imágenes de iones secundarios de fragmentos de aminoácidos seleccionada CH 4 N +, C 5 H 7 O + y C 4 H 4 NO 2 + (es decir, m / z 30, 83 y 98) para la película delgada fibronectina eran mucho más brillantes que las de agua DI. Esto indica que los iones secundarios fragmento de ácido amino se observan fesde las moléculas de fibronectina en el interior de la abertura de diámetro 2 micras. Además, las imágenes de los picos seleccionados (por ejemplo, m / z 1, 19, 37, y 55) correspondientes a varios grupos de agua de la fibronectina son notablemente más brillante que las del agua DI. Este resultado demuestra que la hidratación de la fibronectina hace que las moléculas de agua que rodean la biomolécula distinta de las moléculas de agua en el agua DI.

En resumen, este trabajo ha proporcionado evidencia llamativa en la hidratación de proteínas de agua inducida por alteraciones de propiedad molécula. Tales resultados podrían proporcionar una comprensión fundamental mejorado sobre la estructura, conformación, y la actividad biológica de las proteínas adsorbidas sobre una superficie sólida en el microambiente líquido.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
ToF-SIMS IONTOF TOF.SIMS 5 Resolution: >10,000 m/Δm for mass resolution; >4,000 m/Δm for high spatial resolution 
System for Analysis at the Liquid Vacuum Interface (SALVI) Pacific Northwest National Laboratory N/A SALVI is a unique, self-contained, portable analytical tool that, for the first time, enables vacuum-based scientific instruments such as time-of-flight secondary ion mass spectrometry (ToF-SIMS) to analyze liquid surfaces in their natural state at the molecular level.
PEEK Union Valco ZU1TPK for connecting the inlet and outlet of SALVI
5 Axes Sample Stage IONTOF N/A Stage is self-made for mounting SALVI in ToF-SIMS
Barnstead Nanopure Water Purification System Thermo Fisher Scientific D11921 ROpure LP Reverse Osmosis filtration module (D2716)
Syringe BD 309659 1 ml
Pipette Thermo Fisher Scientific 21-377-821 Range: 100 to 1,000 ml
Pipette Tip Neptune 2112.96.BS 1,000 µl
Centrifuge Tube Corning 430791 15 ml
Fibronectin Sigma-Aldrich F1141 1 mg/ml
Ethanol Thermo Fisher Scientific S25310A 95% Denatured
Gibco PBS Thermo Fisher Scientific 10010-023 pH 7.4

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<em>In Situ</em> caracterización de proteínas hidratadas en agua por Salvi y TOF-SIMS
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Yu, J., Zhou, Y., Hua, X., Zhu, Z., Yu, X. Y. In Situ Characterization of Hydrated Proteins in Water by SALVI and ToF-SIMS. J. Vis. Exp. (108), e53708, doi:10.3791/53708 (2016).More

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